植物生理学实验-实验二 植物组织水势的测定(液体交换法)
植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定一、实验原理根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式：ΨW (细胞水势) =Ψs = — CRT求得溶液的水势，从而得知植物组织的水势。
二.实验材料试剂与仪器材料：黄山紫荆叶片若干试剂：1 mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液仪器：细滴管；试管及指形管；烧杯；镊子、剪刀；移液管；标签纸三.实验步骤1.用短滴管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、1ml、2ml、3ml 、4ml 分别放入10ml 刻度试管中，加蒸馏水至10ml，盖上塞子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M、0.4M的糖液。
2.用移液管从浓度各试管中吸出2ml注入对应的指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
3.将黄山紫荆叶片在叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min(期间摇动2~3次）后，加甲烯蓝2滴摇匀。
4.用长滴管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并作记录。
四.实验结果Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT得，Ψs= —0.3×0.008314×300MPa= 0.74826MPa式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。
R ——气体常数，为0.008314 MPa·L/（mol·K ）。
T ——绝对温度，即273 + t ℃, 单位为K。
C ——溶液的摩尔浓度，以mol/L 为单位五.思考1.用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管、毛吸管应保持干燥？答：防止残留的水汽影响溶液的浓度，影响实验结果。
2. 打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？答：防止圆片中的组织液蒸发：防止溶液浓度变大，影响实验结果。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。
放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。
（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。
实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
植物生理学实验课件2植物组织水势测定
* #和X为数字
7、当一组数据测量完成时，先将屏幕切 换到Screen#8，并将光标移动至“logging” 处，按“Value”键使“logging”处于“Off” 状态，此时水势仪停止工作。如果不再使 用水势仪，只要将屏幕切换到Screen#1后， 将开关杆拨到“Off”位置并将“探测头” 取下即可。如果还需要测定其它数据，再 按照步骤5至步骤6进行操作即可。
5、当水势仪平衡稳定以后，即可以进行水 势的测定。测定前将屏幕切换到Screen#10 输入ID号（有效的值为1～99，方法按照＊ 进行）。再将“探测头”夹在要测定的植 物的叶片上，接着按“Mode”键将屏幕切 换到Screen#8，并将光标移动至“logging” 处，按“Value”键使“logging”处于“On” 状态。此时水势仪即正式开始测定数据。
（整个数据的测定过程都由水势仪自动完 成）
Screen#8画面如下： 8 Backlight: always on
Logging: On
Screen#10画面如下: 10 PSYPRO number=XX(可输入1-99) (if several PSYPROs are Used, each needs a unique nember.)
Wescor PSYPRO x.xx
3、按向下的“Mode”键将屏幕切换到Screen#6， 并查看系统参数的设定是否正确，屏幕6显示的画 面如下：
6 Psy cool = 15 sec Plat=3.0 sec Av=
4.0 sec Scan=50 sec P#X Correction= 1.000 • 以上参数值为系统推荐参数。
实验二 植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定（小液流法）一、原理植物组织的水份状况可以用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织分别放在一系列已知浓度梯度的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据范德霍夫公式算出其渗透压，即为溶液的渗透势（ψs），即代表植物的水势（ψw）。
ψw＝ψs＝－iRTC s蔗糖溶液的特点：一是蔗糖溶液不易透过细胞膜；二是蔗糖溶液的粘滞度高，小液滴不易扩散。
二、仪器设备及试剂1．实验仪器：打孔器，带塞青霉素小瓶，试管，胶头滴管，镊子，培养皿2．实验试剂：1M蔗糖溶液，甲烯蓝三、材料：校园植物叶片四、实验步骤1．将1M的蔗糖溶液分别稀释成0.1、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5、0.6 mol/L 的一系列蔗糖溶液，每种溶液体积10 ml即可。
2．取9个干燥洁净的青霉素瓶，各瓶中分别加入配好的0.1～0.6 mol/L蔗糖溶液3 ml；另取9个干燥洁净的10 ml小试管，将剩余的0.1～0.6 mol/L蔗糖溶液分别放入其中，上述各瓶（管）加标签注明浓度。
3．取新鲜的植物叶片，去除表面水分和灰尘，然后将其切成0.5 cm2大小，约150 片左右，将其放入干燥洁净的培养皿中，混合均匀。
4．取10~15片放入青霉素小瓶中，并使其完全浸没于蔗糖溶液中，放置10~15分钟，为加速水分平衡，其间不断摇动青霉素小瓶。
5．取出叶片，向青霉素小瓶中加入少量的亚甲基兰粉末，摇匀。
6．用尖头的胶头滴管吸取各青霉素小瓶蓝色的蔗糖溶液少许，将胶头滴管插入盛有对应浓度蔗糖溶液的试管中部，小心地放出少量液体，观察蓝色液流的升降动向。
为尽量减小误差，检测应由低浓度到高浓度方向进行。
7．若液流上升，说明浸过叶片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水），表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势；若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
实验2 植物组织水势的测定(小液流法)
实验2 植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的1、学习和掌握植物水势测定的原理和意义2、掌握水势测定方法和原理二、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）三、材料、仪器设备及试剂1、材料：小白菜或其它作物叶片2、仪器设备：.试管；带有橡皮管的注射针头；镊子；.打孔器；.培养皿。
3、试剂：.0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L蔗糖溶液；.甲烯蓝粉末。
四、实验步骤1、取干燥洁净的试管8个为甲组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液约10ml，另取8个干燥洁净的试管为乙组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液4ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
2、取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的试管中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
3、经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
实验二植物组织水势的测定(小液流法)
实验二植物组织水势的测定(小液流法)本实验主要是采用小液流法，测定植物组织的水势变化。
水势是植物体内水分分布和转运的重要指标，能够反映植物的水分状态。
实验所需材料：1. 水压传感器2. 水分压力平衡仪3. 测压管4. 接头5. 试管6. 植物组织（如茎片）实验步骤：1. 准备实验材料，组装实验装置。
将水压传感器与水分平衡仪相连接，然后使用接头连接测压管。
2. 准备植物组织。
选择一片新鲜的植物茎片，用刀片将其切成5mm*5mm大小的块，一边切去树皮，并且保持其在水中5分钟，让其吸水。
3. 用细小的刀片将块的表面切成一段长度为约1mm的平面，使其减少压力下的机械性损伤。
同样处理它们对立面的中央一小段，将其口服、用勺子将其取下，直接将其放入小试管中，并迅速加上2ml的浸透液。
4. 手持试管，用尺度计测定柳树片与水之间的高度差，在水分压力平衡仪中设置对应值来调节水平衡仪。
然后将试管放入测压管中，并在水平衡仪中恢复平衡。
5. 记录水压传感器显示的数值，这相当于植物组织的水势大小。
然后将试管拿出，将茎片拿出，称重，测算其相对水分含量。
将茎片重新放回封装好的试管中，并加入2ml 浸透液溶液，重复以上步骤，直至植物组织水势的测定值变化不大。
实验注意事项：1. 选择新鲜的植物组织，避免机械性损伤和水分损失。
2. 手持试管时应迅速测定高度差，避免高度差变化导致的误差。
3. 测量需重复多次来确定准确的水势值。
实验结果：通过实验可以得到植物组织的初始水势变化值，并通过多次测量，得到稳定的水势值。
这可以反映植物的水分状态，比较不同植物组织的水分含量和水势变化，可以进一步研究植物的生长发育和环境适应性。
实验二植物组织水势和细胞渗透势的测定
实验二植物组织水势和细胞渗透势的测定实验二植物组织水势和细胞渗透势的测定项目一植物组织水势的测定一、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（water potential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：小白菜、菠菜或其它作物叶片（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（三）试剂：1. 0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30 mol/L蔗糖溶液；2. 甲烯蓝粉末。
三、实验步骤（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4 mL（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30 mol/L蔗糖溶液1mL 和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验目的，通过测定植物组织的水势，了解植物细胞内外水分的动态平衡及调节机制。
实验材料与方法：1. 实验材料，新鲜的植物叶片、瓶塞、注射器、离心管、蒸馏水、测量器具等。
2. 实验方法：a. 取一片新鲜的植物叶片，迅速切下并置于离心管中。
b. 在离心管中注入一定量的蒸馏水，并用瓶塞封紧。
c. 将装有叶片和蒸馏水的离心管放置于室温下一段时间，使叶片细胞内外水分达到动态平衡。
d. 使用注射器在叶片细胞外抽取一定量的液体，记录所抽取的液体体积。
e. 根据所抽取的液体体积和叶片细胞外水势的计算公式，计算出叶片细胞外的水势值。
实验结果与分析：根据实验测定所得的数据，我们可以得出植物组织水势的测定结果。
通过对不同植物组织进行水势测定，我们可以发现在不同的环境条件下，植物细胞内外的水势会发生变化，这与植物细胞的渗透调节有关。
另外，我们还可以通过比较不同植物组织的水势数值，来了解不同组织对水分的吸收和调节能力。
实验结论：植物组织水势的测定实验结果表明，植物细胞内外水分的动态平衡是通过渗透调节来实现的。
在不同的环境条件下，植物细胞的水势会有所变化，这为植物细胞的生长和发育提供了必要的物质基础。
通过本实验，我们对植物组织水势的测定方法有了更深入的了解，这对于进一步研究植物生长发育和适应环境具有重要意义。
实验注意事项：1. 实验中使用的植物叶片应为新鲜样品，以保证实验结果的准确性。
2. 在测定植物组织水势时，应尽量避免叶片细胞的破损，以免影响实验结果。
3. 实验过程中应注意操作的细致和准确，以确保实验结果的可靠性。
总结：通过本次实验，我们对植物组织水势的测定方法有了更深入的了解，同时也加深了对植物细胞内外水分动态平衡及调节机制的认识。
希望通过这一实验，能够为今后的植物生理学研究提供一定的参考和借鉴。
实验二 植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定实验目的：通过测定不同组织的水势，了解植物不同组织之间的水分关系。
实验原理：水势是指植物细胞内水分浓度差异的大小。
在植物体内，不同组织内的水势会不同，由高到低按照顺序为：叶片内的细胞→ 内部水分丰富的根毛→ 根外层细胞→ 植株外部环境。
为了测定植物的水势，需要使用一个称为压力室的仪器，它可以施加外界的压力，在不同的组织状态下测定其水势。
实验步骤：1. 收集同一植物的根、叶、茎和花等组织。
将每个组织放入不同的高压瓶中，同时向每个高压瓶添加约15 ml去离子水。
2. 将高压瓶放入等温水浴中，使其浴温为25℃左右。
等待10-15分钟，让组织内的压力达到平衡。
3. 取出高压瓶中的植物组织，将其放入压力室中。
在压力室中，施加不同的外压，测定植物组织内的水势。
4. 将每个植物组织的水势用图表表示。
将组织的名称和对应的水势值描绘在坐标轴上，然后用一个曲线连接这些值。
这将显示植物组织之间的水势关系。
实验结果：在测量不同植物组织的水势后，可以得到类似下图的结果：[插入图像]图中显示了标准植物的水势情况，根、茎、叶片和花的水势分别为 -0.3 MPa、-0.6 MPa、-1.2 MPa、-1.5 MPa。
从图中可以看到，叶片内水势最低，花的水势最高。
通过本实验的测量，我们可以了解到不同植物组织的水势大小。
叶片内的水势最低，花的水势最高，这说明植物内部水分的分布是不均衡的。
在自然环境条件下，植物会进行水势的调节，以保持组织内水分的平衡。
当外部环境干旱时，植物会调整其根部的水势，以确保植物能够正常生长和发育。
这种水势调节机制是植物适应不同环境的关键因素之一。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定【摘要】本实验通过小液流法测量植物组织的水势。
将植物组织放入不同浓度的蔗糖溶液中，叶片组织的水势与溶液的水势不等，会发生水分的转移至水势相等。
该溶液经染色后，吸去少量蓝色液滴至原浓度的蔗糖溶液中，观察小液流的运动，寻找与之等势蔗糖溶液浓度。
通过计算得出组织的水势。
关键词：小液流法，水势【材料与试剂】栾树叶片，蔗糖溶液（1mol/L)，亚甲基蓝溶液 【实验内容】 原理：水势（water potential ）是指每偏摩尔体水的化学势（差），即水的化学势（w μ） 与同温同压同一体系中纯水的化学势（0w μ）之差除以水的偏摩尔体积所得的商:这样定义的水势其单位是压力单位，用帕（Pa ）或兆帕（MPa ）表示。
与过去曾用单位atm 、bar 的换算关系为：1MPa = 610 Pa = 10 bar =9.87atm植物细胞的水势有以下几部分组成： （1）液泡的渗透势s ψ；（2）细胞壁对内容物的压力势p ψ；（3）原生质亲水胶体对水分子吸附作用产生的衬质势m ψ即m p s w ψψψψ++=植物体和环境之间的水分移动方向由水势差决定，当植物组织的水势与其环境的水势相等时，在组织与环境间便不发生水分的迁移。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势，则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡。
当植物材料浸入不同浓度的溶液中时，由于细胞与溶液之间发生水分交换，使原来的溶液浓度发生改变，浓度的改变又引起了溶液比重的改变。
若将已浸过植物材料的溶液用毛细管吸入一部分，然后移入与原来浓度相同的溶液时，由于其溶液比重的改变。
就会使移入的小液流向上或向下移动或者不移动。
这样，就可以根据小液流的移动情况，求出植物组织的水势。
步骤：1.将1mol/L 的蔗糖溶液分别稀释成0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mol/L 的蔗糖溶液。
植物学实验二--植物组织水势的测定
6.计算水势： φ w=-RTiC
φ W为细胞水势； R为气体常数=0.083×105L·Pa/mol·K T为绝对温度即273℃+t(t为实验温度)， i为解离系数(蔗糖为1)， C为等渗溶液的浓度。
思考题
1.测定同一植物上部及下部叶 片的水势有何差别？ 2.本实验做起来常不能得到完 满结果，你认为要做好本实 验应注意哪些方面？
利用溶液的浓度不同比重 就不同的原理，测定试验前后 溶液浓度是否变化，当溶液浓 度不变时，溶液的渗透势（可 用公式计算）即等于植物的水 势。
试剂和器材
材料：马铃薯块茎。 试剂：1mol/L蔗糖溶液、甲 烯蓝。 器材：试管、移液管、注射 器、打孔器。
操作方法
1.配制一系列不同浓度的蔗糖 溶液(0.05、0.1、0.2、0.3、 0.4、0.5、0.6、0.7mol/L) 各10ml注入8支试管中，分 别加上塞子，并编号，作为 对照组。
植物生物学实验
植物组织水势的测定 （小液流法）
目的要求
学习用小液流法测定植物组 织水势的方法。 了解不同组织的水势大小。
实验原理
水势表示水分的化学势， 水总是从水势高处流向低处。 植物体细胞之间、组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界 溶液中时，如果植物的水势小于 溶液的渗透势，则组织吸水而使 溶液浓度变大；反之，则植物细 胞内水分外流而使溶液浓度变小 ；若植物组织的水势与溶液的渗 透势相等，则水分保持动态平衡 ，外部溶液浓度不变。
2.另取8支试管，编好号，作 为试验组。分别取对照组各 试管中溶液4ml移入相同编 号的试验组试管中,再将各 试管都加上塞子。
3.用打孔器在马铃薯块茎上打下 若干圆段，并切成大小相等的 小块，向试验组的每一试管中 各加相等数目的小块，塞好塞 子,放置30min，在这段时间内 摇动数次，到时间后，向每一 试管中各加甲烯蓝粉末少许， 并振荡，此时溶液变成蓝色。
植物生理学实验-实验二 植物组织水势的测定(液体交换法)
实验二植物组织水势的测定(液体交换法)[实验目的]：了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
[实验原理]：植物组织的水分可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势(Ψcell)小于某一溶液的水势(Ψout),则组织吸水，反之组织吸水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及植物组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
小液流法[器材与试剂]：1.实验仪器：试管，移液管，毛细滴管，直径0.5cm打孔器，镊子2．实验试剂：1.00mol/L蔗糖溶液，甲烯蓝3．实验材料：菠菜叶片[实验步骤]：1.用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L)各10mL，注入8支编好号的试管中，各试管都加上塞子，按编号在试管架上排成一排，作为对照组。
2．另取8支试管对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移入相同编号的试验组试管中，并都加上塞子。
3．用打孔器在菠菜叶片中部靠近主脉附近打取叶圆片，随机取样，向试验组的每一支试管中放入相等数目(15-30)的圆叶片，加塞，放置30分钟，期间摇动数次。
到时间后，用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入到每一支试管中，并振荡，此时溶液呈蓝色。
4．用8支毛细滴管从试验组的各管中依次吸取着色的液体少许，然后深入对照组同样浓度溶液的中部缓慢从毛细滴管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色溶液的移动方向。
如果蓝色液滴向上移动，说明溶液从叶片细胞中吸出水分而被冲淡，密度比原来小了；如果液滴向下移动，则说明叶片细胞从溶液中吸了水分，溶液密度变大；如果液滴不移动，则说明叶片与溶液的水分交换平衡，即叶片的水势与此种浓度的溶液的渗透势相等。
植物生理学实验
植物⽣理学实验⼀．植物组织⽔势的测定（⼩液流法）【器材与试剂】1.实验仪器试管，移液管，长弯针头，直径0.5cm打孔器，镊⼦。
2.实验试剂 1.00mol/L蔗糖溶液（342.3g/L）,10%甲烯蓝（⽤⽔配制）。
3.实验材料菠菜叶⽚【实验步骤】1.⽤1mol/L蔗糖母液配制⼀系列不同浓度的蔗糖溶液（0.2，0.3，0.4，0.5，0.8mol/L）各10mL，注⼊5⽀编号号的试管中，各管都加上塞⼦，按标号顺序在试管架上排成⼀列，作为对照组。
将原液稀释10倍配10mL吸原液 2 mL 3 mL 4 mL 5 mL 8 mL加⽔ 8 mL 7 mL 6 mL 5 mL 2 mL2.另取5⽀试管或青霉素⼩瓶，对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移⼊相同编号的试验组试管或青霉素⼩瓶中，并都加上塞⼦。
3.菠菜洗净，⽤打孔器在叶⽚中部靠近主脉附近打取页原⽚，随机取样，向试验组的每⼀试管或青霉素⼩瓶中放⼊相等数⽬（10⽚）的叶圆⽚，加塞，放置30min，每⼗分钟摇动⼀次，每次30秒钟。
4.⽤点样针头蘸⼀下10%甲烯蓝溶液（如有条件的话，⽤微量移液器吸取1µL）加⼊每⼀试管或青霉素⼩瓶中，。
震荡，此时溶液呈蓝⾊。
5.⽤5⽀⾃制长弯针头，从试验组的各管中⼀次吸取着⾊的液体少许，吸取溶液量应相等，赶⾛溶液中⽓泡，如针头有液珠必须擦⼲，然后伸⼊对照组同样浓度溶液的中部，缓慢从针头尖端横向放出⼀滴蓝⾊溶液，轻轻取出滴管。
6.观察蓝⾊液滴的移动⽅向，如果蓝⾊液滴向上移动，说明⽐重⼩，原组织细胞失⽔，溶液从叶⽚细胞中吸出⽔分⽽被冲淡，密度⽐原来⼩了外液失⽔变浓，⽐重⼤；如果液滴向下移动，则说明叶⽚细胞从溶液中吸了⽔，溶液密度变⼤，外液失⽔变稀，⽐重⼩；如果液滴不动，则说明叶⽚与溶液的⽔分交换平衡，即叶⽚的⽔势与此种浓度的溶液的渗透式相等。
7.记录液温。
⾊滴不动的相应温度。
8.书写实验报告。
实验植物组织水势的测定小液流法
了解测定植物组各织管水势中的方溶法液及其的优缺比点重均加大。
所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。 释放蓝色液滴时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动。
试从管配、 制移好液的④管试和管蔗毛中糖细各管取溶等2m要液l（洗量用净准烘确前干？，一）移到液定相管应要与的毛摇青细霉移匀素液瓶，管或应时称从量低间瓶浓中放度（到久用高一浓了只度移的依液次蔗管吸由取糖低溶溶液。高液，不会要分润洗层）。，影响结
结果是否正确，为什么？
植物组织水势的测定
溶液浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
注意事项：
① 所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。
② 试管、移液管和毛细管等要洗净烘干，移液管与毛细移液管应从低
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）
试管、移液管和毛细管等要洗净烘干，移液管与毛细移液管应从低浓度到高浓度依次吸取溶液。
果。
⑤ 叶片打孔及投入青霉素瓶中要快，防止水分蒸发影响实验结果。
⑥ 释放蓝色液滴时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动。
植物组织水势的测定
思考题：
1．试述小液流法测定植物组织水势的原理。
2. 小液流法测定植物组织水势时，为什么 操作时，应强调所用试管、毛细管应保持 干燥？打取小圆片并投入到试管中时动作 应迅速？加入甲烯蓝时不能太多？
动方向并记录。（用白纸划一直线置于试管背面，方
便观察）
毛细管放置稳定
挤出小液滴
取出毛细管 观察液滴升降
液滴 植物材料
ψw >ψS ψw <ψS ψw =ψS
溶液浓度变小 溶液浓度变大ห้องสมุดไป่ตู้溶液浓度不变 静止不动
植物组织水势的测定(小液流法)方案
问题： 小液流法测定植物组织水势的原理？
植物组织水势的测定
（一）原理
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换： ★ 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质
势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS ★ 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质
势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS ★ 若两者相等，则水分交换保持动态平衡，
植物组织水势的测定
6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找 出与组织水分势相当的浓度，根据原理公 式计算出组织的水势。
植物组织水势的测定
溶液浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 液滴移动方向
具有平衡浓度结果
植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
植物体细胞之间，组织之间以及植 物和环境之间的水分移动方向都由水势 差决定。
植物组织水势的测定
植物组织水势和渗透势的测定方法： 水 液相平衡法：小液流法、称重法、质壁分离法 势 压力平衡法：压力室法 测 定 气相平衡法：露点法
渗 冰点降低法 透 势 蒸气压渗透压计法
植物组织水势的测定
一、液体交换法测定植物组织水势
2.用打孔器在灰莉叶的不同部位打120片，混匀，每个青霉素瓶各放入
20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）
3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶中（用一
只移液管由低
高，不要润洗）。放置20—30min，期间摇动数
次，以加速水分平衡。
植物组织水势的测定
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶 中，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿润， 加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）
植物组织中水势的测定PPT.
植物组织中水势的测定
水势：
水势表示水分的化学势； 水从水势高处流向低处； 植物体细胞之间，组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向由水势差决定（流速和方 向）。
植物组织水势（和渗透势）的测定方法：
水势测定：平衡法
液相平衡法－小液流法、重量法；质壁分离法。 所需仪器设备简单，但手续繁琐、效率低，难以自动记录。
各0.5ml（量准确？）。用一只移液器 低 高。 3. 乙组试管加入6种浓度的CaCl2溶液各4ml，用一只
移液器 低 高。4ml需要很准确吗？ 4. 甲、乙两组试管分别塞上相应的橡皮塞备用。
为什么盖橡皮塞？
5. 选取均匀一致的植物叶片8～10片（勿水洗！），
打 取 叶 圆 片 60 余 片 ， 甲 组 试 管 内 各 加 入 叶 圆 片 10 个 ， 一般情况下，不同的产品有不同的客户群。比如，你要了解你所销售的汽车产品属于哪一个档次，是高档车，中档车，还是低档车？ 使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞，平衡20min以上。期 汽车的排量是大排量，中排量，还是小排量？是商用，还是乘用？是属于哪一类人群的？只有在开发客户之前明确这些问题，你才能
4.4
2.4解读应聘者的形体语言
3. 甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗 第三部分 校内外活动安全
压力平衡法－压力室法。 适于测定枝条或整个叶片的水势，对于小型样品叶圆片等 则无能为力。
气相平衡法－热电耦湿度计法、露点法。 能广泛用于各种植物叶片水势和渗透势的测定，所需样品 量极少、测量精度高，是近年来发展起来的一类较好的植 物水势及其组分的测定技术。
一、液体交换Biblioteka 测定植物组织水势 （小液流法）候你就要了解对方，事先了解了以后，你才能有应对的策略。
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实验二植物组织水势的测定(液体交换法)
[实验目的]：了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
[实验原理]：植物组织的水分可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势(Ψcell)小于某一溶液的水势(Ψout),则组织吸水，反之组织吸水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及植物组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
小液流法
[器材与试剂]：1.实验仪器：试管，移液管，毛细滴管，直径0.5cm打孔器，镊子
2．实验试剂：1.00mol/L蔗糖溶液，甲烯蓝
3．实验材料：菠菜叶片
[实验步骤]：1.用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L)各10mL，注入8支编好号的试管中，各试管都加上塞子，按编号在试管架上排成一排，作为对照组。
2．另取8支试管对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移入相同编号的试验组试管中，并都加上塞子。
3．用打孔器在菠菜叶片中部靠近主脉附近打取叶圆片，随机取样，向试验组的每一支试管中放入相等数目(15-30)的圆叶片，加塞，放置30分钟，期间摇动数次。
到时间后，用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入到每一支试管中，并振荡，此时溶液呈蓝色。
4．用8支毛细滴管从试验组的各管中依次吸取着色的液体少许，然后深入对照组同样浓度溶液的中部缓慢从毛细滴管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色溶液的移动方向。
如果蓝色液滴向上移动，说明溶液从叶片细胞中吸出水分而被冲淡，密度比原来小了；如果液滴向下移动，则说明叶片细胞从溶液中吸了水分，溶液密度变大；如果液滴不移动，则说明叶片与溶液的水分交换平衡，即叶片的水势与此种浓度的溶液的渗透势相等。
5．根据公式计算叶片细胞的水势。
Ψcell=Ψout=-icRT
式中：Ψcell为植物细胞水势；
Ψout为外界溶液渗透势；
i为解离系数，蔗糖为1；
c为小液滴在其中基本不动的溶液的浓度，单位为mol/L；
R为摩尔气体常数，R=0.083×105L·Pa·mol-1·K-1；
T为热力学温度，单位K，即273+t，t为实验温度，单位是℃。
按上一实验修正后的浓度c代入上式。