【VIP专享】临床微生物标本采集与送检规范(试行)
临床微生物标本规范化采集和送检
注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率，要采集新鲜粪便作培 养，且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养，或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等，以助诊断；从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间： 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若为 培养，患者应停药1-2天后再采样，以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓血、 粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物2-3ml， 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时，或排 泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取， 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入肛 门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出， 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液， 进行血培养；
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位，无菌采集2套血培养， 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者： （1）怀疑血流感染时，从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体，至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片：常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍，再用含生
临床微生物样本采集规范
临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。
2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。
（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。
（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。
（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。
3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。
（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。
（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。
4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。
（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。
（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。
（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。
（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。
（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。
（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。
（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。
5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。
（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。
（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。
（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。
临床微生物标本的规范采集和送检
如果2套血培养和导管片段(-) ，则不可能是CRBSI 。
CRBSI-保留导管
应至少做2套血培养，其中至少有1套外周血，同 时应尽快无菌操作从导管采集另一套血培养。
2套 (+)，且分离的菌种相同，导管血(+)报警时间比外周 血(+)报警时间早≥120min，又没有其它明确感染源，则 提示为CRBSI。
根据指征行相应的细菌学检查 应在使用抗菌素之前采取标本 痰涂片意义很大
HAP
血培养 胸腔积液培养 保护性毛刷 气管吸取物 支气管肺泡灌洗液
我国痰培养的现状
苛养菌检出率低
结果重复性差
标本送检率高
药敏结果与治疗反应 存在差距
感染、定植难以区 分
临床上约半数咳痰标本不合格！
痰培养的局限性
易受到口咽部定植菌污染，不一定真正代表下呼吸道菌群 尽量在使用抗菌药物之前采样,否则降低肺炎链球菌，流感嗜血杆
菌等苛养菌分离率 以晨痰为佳，采集标本前1-2小时不可进食 指导采样!!!采集前应使用清水或生理盐水嗽口，有假牙的应先取
下假牙，嘱病人采集深部咳痰，直接收集入无菌痰杯。 1-2h内送检，如延长送检应保存在2~8⁰C，但会降低苛养菌培养阳
微生物学标本采集的一般原则
早期采集
用抗菌药物前 下次用药前
无菌观念 不污染标本 无菌密闭容器
正确的采集方法 如：针吸或组织培养 少用拭子
适量的标本
运送时间
1小时，最长不超过2小时
二区三区生长
一区（原始区）
？ 无生长
三区
微生物培养标本采集与送检
,
目录
确保标本质量
采集标本前，确保无污染
采集标本时，注意无菌操作
采集标本后，立即送检
送检过程中，保持标本的完整性和稳定性
避免交叉感染
微生物培养标本采集的重要性：避免交叉感染，防止疾病传播
采集标本时，应遵循无菌操作原则，防止污染
采集标本后，应立即送检，避免长时间暴露在空气中
送检过程中，应使用密封容器，防Fra bibliotek标本泄漏，造成交叉感染
反馈：微生物培养结果报告需要及时反馈给临床医生，以便医生根据结果制定治疗方案。
结果分析：微生物培养结果报告需要结合临床症状、实验室检查结果等进行综合分析，以便更准确地诊断疾病。
结果追踪：微生物培养结果报告需要追踪患者的治疗效果，以便及时调整治疗方案。
标本质量不佳的原因及解决方法
原因：采集方法不当，如未使用无菌操作、未使用正确的采集工具等
考虑微生物生长环境，选择适宜部位
避免损伤，选择安全部位
掌握采集时间
采集时间：根据微生物的生长周期和特性，选择合适的采集时间
采集频率：根据微生物的生长速度和检测需求，确定采集频率
采集环境：选择合适的采集环境，避免污染和干扰
采集工具：选择合适的采集工具，保证采集的准确性和完整性
严格遵守无菌操作
采集前准备：穿戴无菌手套、口罩、帽子等防护用品
采集后处理：立即放入无菌容器中，密封保存
送检过程中：保持标本的完整性，避免污染和破损
采集过程中：避免接触污染源，如皮肤、衣物等
确保标本新鲜
采集标本后立即送检，避免长时间放置
保持标本的完整性，避免破损和污染
使用合适的保存液，如生理盐水、福尔马林等
送检过程中保持低温，避免高温和阳光直射
医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范PPT医学课件
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应该采几份血液标本?
• 每位患者采血最少2 套，3 套更好 • 初发患者，绝不能只采1套标本
标本须间隔多久采集? ? ? ?
• 同时或短时间内采集 2 － 3 套血培养，因为体内巨噬细胞吞噬系 统会在15 ～ 30min 内清除掉进入人体内的细菌
• 标本接种后轻轻上下颠倒混匀防止血液凝固 • 切勿冷藏
•
血培养标本采集与运送
•
血培养的指征是什么? ? ? ?
血培养的指征是什么? 答 案
• 1. 当怀疑血流感染或脓毒症时，应常规行血培养 • 2. 怀疑患者有血流感染的症状有： • – – 不明原因的发烧( ( ＞ 36 ℃) ) 或体温过低( ( ＜ 36 ℃) ) • – – （ 白细胞增多（ ＞ 10,000/ul ），粒细胞减少（ ＜ 1,000ul ） • – – 休克，寒颤，僵直 • – – 严重的局部感染( ( 脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后
针对如此严重的分析前误差微生物室能做什么？
• • 提供准确的“标本采集输送的标准操作程序” • • 持续的临床教育和交流
三、常见标本的采集与运送规范
做好病原学检查要特别重视标本质量
基本原则: • 及时采集微生物标本作病原学检查 • 在抗菌药物使用前采集标本 • 采样时严格执行无菌操作 • 采样后立即送检
临床微生物标本的规范采集和送检
采血套数
➢ CLSI M47-A：每位患者采集2~3套血培养（40~60ml） ➢ 1套：一个穿刺点，通常为1个需氧+1个厌氧 ➢ 成人瓶：8~10ml；儿童瓶： 1~3ml；婴幼儿：<总血量 1% ➢ 明显地提高阳性率 ➢ 判断是否污染 ➢ 指南强调：初期诊断时不允许只采集一套血培养
➢ 如果采血量不足，应优先将血液注入需氧瓶，剩余血液注 入厌氧瓶，因为大部分需氧菌、兼性厌氧菌、酵母菌可以 在需氧瓶中生长
采血量是影响血培养阳性率的独立相关因素
采血量与检出率
% Relative Yield
100
80
60
40
20
0 5
15
25
35
45
55
血培养物每增加m一l 毫升，
成年人菌血症微生物的检出率增加3％
临床微生物标本的规范采集和送检
检验二科 刘 玲
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临床标本微生物检验流程
标本质量
临床信息？ 标本质量？
标本采集
标本检验
临床意义？ 结合临床症状、体征、影像、 其它检查等
检验报告
报告解读
采集部位 采集方法 送检要求
涂片镜检 培养鉴定 药敏试验
涂片报告 培养报告 药敏报告
诊断 治疗 评估
如何提高微生物检验的诊疗价值？
所以要最先采集血培养标本。 污染率的指标是 < 3%
（100份标本里只能有不到3个标本出现污染）
采血前质量保证：培养瓶消毒
选定采血点后，先对培养瓶进行消毒
弃去培养瓶金属盖 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,待干60秒
颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集。
（儿童采血量少，更应注意颠倒混匀）
医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范
测。 • 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液状便的效果最好
。 • 疑似致病性大肠埃希菌，气单胞菌，邻单胞菌，弧菌，小肠结肠
炎耶尔森菌感染的病人，需要培养时，须另外提出申请。
的，如果送检时间超过1小时，则会影响结果，在结果报告时， 在备注处注明此情况。
• • 如不能及时送检，可使用血培养瓶（怀疑脑膜炎奈瑟菌和淋病 奈瑟菌感染时，请勿使用血培养瓶）
•
穿刺液标本采集与运送
穿刺液标本的采集方法
• • 由临床医生进行。 • • 胆汁的采集方法有三种：十二指肠引流法（以“B”管—来自胆
最有价值的细菌学检测项目
• • 血液培养 • • 脑脊液培养 • • 胆汁培养 • • 胸腹水培养 • • 关节液 • • 其他无菌体液或分泌液
我国血培养现状—阳性检出率低<10%（国外约为 15％）
• 原因何在？？？ • ? ? 血流中含菌量低 • ? ? 血液中抗菌物质 • ? ? 抗生素的应用 • ? ? 培养条件限制
• • 3标本 采集时机不合适，未抓住菌血症时期，或在刚使用抗生 素不久。采血最好在：体温升高前半小时，使用抗生素前，或停 用抗生素24小时。
• • 4 标本消毒时 消毒酒精未完全挥发。
痰液标本采集存在的问题
• • 1、随机标本采集多而非晨痰 • • 2、痰培养送检的往往不是病人深部的咳痰，而是
唾沫居多。
• 标本接种后轻轻上下颠倒混匀防止血液凝固 • 切勿冷藏
•
血培养标本采集与运送
•
血培养的指征是什么? ? ? ?
血培养的指征是什么? 答 案
微生物标本采集与送检
微生物标本的采集与送检一、血液培养1、血液培养的送检指征：⑴症状指征：发热（≥38℃）、皮疹、肝脾肿大、关节疼痛、神志不清、昏迷或休克。
⑵疾病指征：化脓性病灶或损害、粘膜损伤性疾病、肝脏疾病、糖尿病、血液疾病及恶性肿瘤、艾滋病、呼吸道感染或呼吸衰竭、长期输液或导管介入疾病、血液透析患者。
2、采集流程：⑴培养瓶消毒程序：75%酒精擦拭橡皮塞，作用60秒后，用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精；⑵皮肤消毒程序：75%酒精擦拭静脉穿刺部位，从穿刺点向外花圈消毒，至消毒区域直径3cm以上，作用60秒，待酒精挥发干燥后采血；⑵静脉穿刺和培养瓶接种程序：用注射器无菌穿刺取血（成人：5-10ml，婴幼儿1-2ml），直接注入血培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检。
3、注意事项：⑴血培养采血最好不要和其他检验项目采血同时进行，否则应先采血培养标本；⑵切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血；⑶不宜从静脉导管或静脉留置口取血；⑷建议在患者出现寒战、体温升高前采血。
如患者有明显的发热前期症状，在患者寒战前或寒战后1h内采血可提高阳性率；⑸应同时在不同部位或在不同时间段内采集2次以上标本，只采集一瓶的血培养标本是不允许的，因为一瓶血培养标本的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。
⑹一般情况下（怀疑为持续性菌血症者除外），在采血后的2-5天内，无需重复采血培养标本。
二、脑脊液培养1、脑脊液培养的送检指征：⑴症状指征：发热等感染性全身性症状、颅内压升高症状、脑膜刺激症状等。
⑵疾病指征：化脓性、非化脓性脑膜炎。
2、采集方法：检查和细胞计数、⑵经脑室导管采集：无菌操作采集脑部脓肿或活检标本的抽吸物，立即送检。
3、注意事项：⑴如果只采集了一管脑脊液，应首先送到细菌室；⑵做脑脊液培养的同时，建议同时做血培养。
三、胸腹水培养1、胸水培养的送检指征：⑴症状指征：多伴有胸痛、发热、胸腔积液。
⑵疾病指征:细菌性肺炎引起的胸膜炎、真菌感染引起的胸腔积液。
2、腹水培养的送检指征：⑴症状指征：腹部有积液伴腹痛、呕吐、肌紧张、肠鸣音弱或消失等。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
临床微生物标本采集与送检规范(试行)
临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节，影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。
正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。
因此，希望临床各科能按照本操作规范采样送检。
在医院感染标本的采集和运送中，应遵循以下原则：1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。
2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3.采集标本时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4.采集标本后应立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。
6.盛标本须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
7.送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
常见的医院感染标本送检方法包括：1.血液与骨髓：通常采血部位为肘静脉，但疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
采血前应严格消毒，每次采血量应控制在一定范围内，采血后应立即送至实验室。
2.尿液：采集中段尿时，女性应先冲洗外阴部及尿道口，男性须翻转包皮冲洗，采集前应用消毒液消毒尿道口。
灭菌纱布擦干后收集标本。
以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法，希望医务人员能够严格按照操作规范执行，以提高微生物检测的准确性和有效性，为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。
导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。
对于留置导尿者，可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。
不可从集尿袋的下端管口留取标本。
对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况，可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。
临床微生物样本采集规范
二、泌尿道感染标本采集规范
尿道感染
•每年850万例尿路感染, 90% 为女性 •1/2.5个妇女在一生中会得 UTI •下行性感染：血流肾脏 膀胱（金黄色葡萄球菌，酵 母菌，结核分枝杆菌） •上行性感染：尿道膀胱 肾盂 血流
尿液培养标本送检指征
1 2 3 4 5 6 有典型的尿路感染症状；尿频，尿急，尿痛 肉眼脓尿或血尿； 尿道口有脓性分泌物； 不明原因的发热，无其他局部症状； 留置导尿管的病人出现发热； 尿常规异常：白细胞，细菌计数，亚硝酸盐。
血液及骨髓标本采集运送的规范（1）
1.采血时间：尽可能在用抗生素前，心内膜炎例外。
2. 采血量：采一次或采一瓶是错误的，至少应采一 套 2瓶，分需氧和厌氧。 2瓶血量不少于 16-20ml，先 将10ml注入需氧瓶，再将剩余血采血注入厌氧瓶。 3. 采血方法：不要与血气和血沉标本一起采血；不 推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不 宜在静脉导管或静脉留置口采血。
尿培养样本采集方法（1）
标本采集应力争在未使用抗生素之 前．注意避免消毒剂污染标本
1 清洁中段尿中段尿（晨尿最佳）约10 ～ 20ml直接排入专 用的无菌容器中，立即送检，2h内接种。 2 耻骨上膀胱穿刺：评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法。 3 直接导尿：可减少污染，准确反映膀胱感染情况。
临床常见的采血指征
发热（38C）或低温（36C） 寒战 白细胞增多（计数大于 10 ， 000109/L ，特别有“核左移” 未成熟的或杆状核的白细胞） 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1000109/L） 血小板减少 皮肤粘膜出血 昏迷 ，休克 多器官衰竭 CRP/PCT升高
污染细菌
血培养污染定义为在几次血培养中单个血培 养下列细菌阳性:
临床微生物标本规范化采集和送检
四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）、标本情况（标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达，冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时，应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前，应对创面彻底清洁，且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征：
由于烧伤的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时， 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官，标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在，采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖，采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三）采集方法
（1）男性：取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口，用灭菌纱布 或棉球擦干，用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2～4厘米取分泌物，置无菌试管中。如无 脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩，促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本，尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位，如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此，从这些部位采集标本，要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本的采集与送检
①一般要求常温下15-30分钟内接种培养皿，尤其是脑脊液和心包液；除了做结核杆菌、真菌培养的标本应在4℃下保存外，做其他项目的应常温保存。
②严格无菌穿刺。
③为了防止穿刺液的凝固，最好在无菌试管中预先加入灭菌肝素，再注入穿刺液
考虑到方便操作，建议常规血培养应尽量在使用抗菌药物前，于病人寒战或发热开始时30-60分钟内同时于不同部位采集2-3份血培养。
3.采血次数
①.留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：
至少同时采集2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集。（1套血培养定义：
从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内都只能算是1套）
先以无菌生理盐水清洗外阴部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口，待尿排出后送检注意事项严格进行无菌操作，因为尿液标本的采集和培养中最大的问题是污染杂菌通常应取晨起第一次尿液送检多数药物均通过尿液排泄，因此采集尿液应在用药前进行长期留置导尿管的患者应在更换新管时留取尿标本。导尿留取尿液时，集尿袋内的尿液和导尿管末端的尿液不能用于培养。
发热(≥38℃)或低温(≤36℃),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭,血压降低,C反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。新生儿可疑菌血症,应该同时做尿液和脑脊液培养。
2.采血时机：
据研究表明：
细菌通常在病人寒战和发烧前1小时进入血流，因此规范规定在病人发热高峰前1小时抽血。
（二）、微生物检查的标本采集、运送原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
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标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
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临床微生物标本采集与送检规范（试行）临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中
较为薄弱的环节，严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病
菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控，也影响临床诊断，
合理选用抗菌药物，降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率，而且
对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院
感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等，均具有
十分重要的意义。
严格实施正确的微生物标本送检和检验方法，是
做好医院感染病原体监测的关键。
鉴此，希望临床各科能按照本操
作规范采样送检。
一、医院感染标本的采集和运送基本原则
1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。
2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。
6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院感染标本送检方法
1．血液与骨髓
①通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
②采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必
置冰箱保存。
③每次采血量成人5～10ml，婴幼儿l～5ml，培养基与血液之比以lO：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下
次用药前采血。
⑤每例病人至少采血两次，间隔0．5～lh，以利于提高阳性率和
区分感染菌与皮肤污染菌。
⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。
2．尿液
①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗
外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用O．1％新洁尔灭消毒尿
道口．灭菌纱布擦干后收集标本。
②导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
或消毒后解开
接口，弃去导尿管前段尿液、留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。
不可从集尿袋的下端管口留取标本。
③尿厌氧菌培养，或婴幼儿中段尿采集困难，或培养结果与病情不符时，可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。
④送检标本以早晨第一次尿液为佳。
⑤室温下尿标本耽搁稍久，可致尿内细菌浓度明显增加而影响病原菌与污染菌的区分。
不能立即送检者，可暂存4℃冰箱。
3．痰液
①咳痰：清水反复漱口后用力咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。
痰量极少者可用45℃的lO％氯化钠溶液雾化吸入导痰。
②对咳嗽乏力或昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内吸引痰液。
用纤维支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病
原菌，但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。
③双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者，可用吸痰管经人工气道插至肺支气管水平吸引痰液。
④对重症、难治、或伴免疫抑制、或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染，可采用环甲膜穿刺经气管吸引(TTA)、经胸壁穿刺肺吸引(LA)、经纤维支气管镜或人工气道作防污染双套管毛刷(PSB)或防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)采集无口咽部菌群污染的痰液，进行感染病原学
诊断。
⑤痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。
如果室温下延搁数小时，定植于口咽部的非致病菌可呈过度生长，而肺炎球菌、葡萄球
菌和流感杆菌检出率则明显下降。
4．伤口、烧伤创面与脓液
①用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用棉拭于取病灶深部的脓液和分泌物，置运送培养基内送检。
②对未渍破的脓肿宜用碘酒、酒精消毒皮肤后，以无菌注射器抽取脓液送检：也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。
5．粪便
①排便后，挑取有脓血、粘液部分的粪便约2～3g(液状粪便则取
絮状物)，盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。
用棉拭子挑取粪便插入Cnry—BLair运送培养基或PH7．0的磷酸盐甘油中送检，可提高病
原菌检出率．
②对不易获取粪便者或婴幼儿，可用直肠拭于(又称肛拭)采集。
将拭子前端用无菌甘油水湿润，然后插入肛门约4～5cm(幼儿约2—
3cm)处，轻轻旋转擦取直肠表面粘液后退出置运送培养基内送检。
6．咽拭、口腔拭子
①病人清水嗽口后．由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能向外牵引，棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧，反复擦拭数次，插入运
送培养基。
棉拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。
②对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，用棉拭子在病灶部位擦拭数次即可。
7．浆膜腔积液、脑脊液
①浆膜腔积液包括胸水、腹水如心包液、关节液和鞘膜液等．以严格无菌操作抽取数毫升液体置无菌试管或小瓶送检。
对易自凝的标
本可添加抗凝剂。
②严格无菌操作下采取脑脊液数毫升置于无菌试管。
标本采集后应立即送检，以防细菌死亡。
疑似有脑膜炎奈瑟菌时，应注意保暖，
不可置冰箱保存。
8．生殖道标本
①根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本。
采集尿道标本时，应先用生理盐水局部清洗，以无菌棉拭子插入尿道口 l～2cm停留
十余秒钟。
轻轻旋转拭子后退出．
②对外阴部糜烂、溃疡者，经生理盐水清洗后用棉拭子擦取病灶边缘的分泌物。
③阴道和官颈口分泌物须在窥阴器下用长棉拭子采集。
④子宫内分泌物需用无菌导管抽取．导管外套一层保护膜，插入子宫后再刺穿该膜予负压吸引，可减少阴道菌群污染。
⑤女性盆腔脓肿，应在阴道局部消毒后，由直肠子宫凹陷处进针抽取。
⑥前列腺液需进行前列腺按摩获取。
9．组织标本
①表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除。
对窦道和痰管应深部刮取管壁组织。
②深部组织标本可经皮肤穿刺采集或手术切取。
标本置无菌容器并加少量生理盐水以保湿度，或置肉汤增菌液，或置血平皿送检。
③尸检标本应于死后20h内采取，以防肠道等菌群侵入引起污染。
④作病原体分离的组织标本，不可用福尔马林固定。
疑有污染的较大组织块，可用烧红的烙铁烧灼其表面或置沸水中5～10秒钟使表面变白消除污染后，再用无菌器械切开组织，取中央部位组织送检。
10.静脉导管
从病人体内拔出静脉插管，用无菌技术剪去导管体外部分。
体内段导管立即置血平皿上作滚动涂布接种。
不能作床旁接种者，将导管置含有少量生理盐水的无菌试管内送检。
也可将剪下的导管体内段置肉汤增菌液或置于血培养液内，但不能区分导管感染菌与少量的定植菌。