植物花色苷含量试剂盒说明书

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ph示差法测花色苷原理

ph示差法测花色苷原理

ph示差法测花色苷原理花色苷,听名字就感觉高大上,是吧?它们就是植物中的一种天然色素,通常藏在水果和花朵里,给我们带来那些迷人的色彩。

说到测量这些花色苷,大家听过“pH示差法”吗?这可是一种挺有意思的方法,像个小魔法一样,能让我们了解这些色素的秘密。

今天就来聊聊这个方法,轻松点,咱们不用专业术语,像聊天一样。

先来点背景知识。

花色苷其实是种有趣的东西,主要存在于植物中,负责色彩的传递。

你看到那些鲜艳的蓝莓、红葡萄,这些颜色可都是它们的功劳。

好吧,别光想着吃的,咱们得说说怎么测它们。

pH示差法可真是个神奇的工具,简单又有效。

它依靠植物色素对酸碱环境的反应,来判断花色苷的含量。

听起来像在做化学实验,但其实就像是在调饮料一样,酸酸甜甜的。

这个方法怎么操作呢?想象一下,你拿着一杯饮料,慢慢加入柠檬汁,颜色会变化,对吧?花色苷也是一样,pH值不同,它们的颜色就会出现大变脸。

比如在酸性环境下,颜色可能偏红;而在碱性环境下,颜色可能变成蓝色,甚至绿色。

是不是很神奇?就像小丑变魔术,令人目不暇接。

科学家们就利用这个变化来测量花色苷的含量,简单又直接。

使用这个方法,咱们需要一些仪器和试剂,像酸碱指示剂这些小家伙。

没啥复杂的,只要把样品调和后加点指示剂,就能看到颜色变化。

然后,再用比较的方法,把结果和标准样本对比,便能得出结果。

其实整个过程就像在玩颜色游戏,轻松又有趣。

只不过,这个游戏可以帮助我们了解植物的营养成分,对农业、药学都有很大的帮助。

很多人会问,为什么选择pH示差法呢?嘿,答案简单。

这个方法不需要高深的仪器,普通的实验室就能搞定。

结果精准,误差小。

它能快速出结果,像快餐一样,省时省力。

想想看,咱们做实验时,等个几天的感觉,真是让人抓狂。

用pH示差法,立马就能看到颜色变化,心里乐开了花。

大家可能想问,这个方法有没有局限性呢?当然有!就像一把双刃剑,既有优点,也有不足。

比如,对于某些复杂的植物样品,可能会出现干扰,导致结果不那么准确。

花色苷微胶囊的制备及其理化性质研究

花色苷微胶囊的制备及其理化性质研究

第44卷第15期包装工程2023年8月PACKAGING ENGINEERING·9·花色苷微胶囊的制备及其理化性质研究冯志强1,张阮冰1,段邓乐1,张佳生1,蔡哲妍1,王琴1,余元善2,肖更生1(1.仲恺农业工程学院 a.广东省岭南特色食品科学与技术重点实验室 b.农业农村部岭南特色食品绿色加工与智能制造重点实验室,广州510225;2.广东农业科学院蚕业与农产品加工研究所/广东省农产品加工重点实验室,广州510610)摘要:目的针对花色苷易降解不稳定等问题,采用复合壁材对花色苷进行微胶囊化处理以提高其加工稳定性。

方法以蓝莓花色苷为芯材,改性玉米淀粉/明胶作为复合壁材,利用真空冷冻干燥法制备花色苷微胶囊。

以花色苷的包埋率为评价指标,考察壁芯比、改性玉米淀粉/明胶的质量比、包埋温度和包埋时间对包埋率的影响。

通过傅里叶变换红外光谱(FTIR)、扫描电镜(SEM)、热重分析(TGA)对其进行表征并测定其抗氧化性。

结果当壁芯比为8∶1、改性玉米淀粉/明胶质量比为1∶2、包埋温度为60 ℃、包埋时间为40 min时,制备的微胶囊具有更高的包埋率。

FTIR结果表明花色苷被成功地包埋。

制备的微胶囊呈不规则的片层结构,整体表现光滑,表面无团聚现象。

微胶囊化后的花色苷热稳定性、抗氧化能力均有所提高。

结论所制备的花色苷微胶囊具有热稳定性高、抗氧化性强、壁材间相容性好等特点,在食品工业化应用方面具有巨大潜力。

关键词:花色苷;微胶囊;冷冻干燥;性质分析中图分类号:TS201.1 文献标识码:A 文章编号:1001-3563(2023)15-0009-07DOI:10.19554/ki.1001-3563.2023.15.002Preparation and Physicochemical Properties of Anthocyanin Microcapsules FENG Zhi-qiang1, ZHANG Ruan-bing1, DUAN Deng-le1, ZHANG Jia-sheng1,CAI Zhe-yan1, WANG Qin1, YU Yuan-shan2, XIAO Geng-sheng1(a. Guangdong Provincial Key Laboratory of Lingnan Specialty Food Science and Technology b. Key Laboratory ofGreen Processing and Intelligent Manufacturing of Lingnan Specialty Food, Ministry of Agriculture, Zhongkai University of Agriculture and Engineering, Guangzhou 510225, China; 2. Sericulture and Agri-Food Research Institute/Guangdong Key Laboratory of Agricultural Products Processing, Guangdong Academy of Agricultural Sciences,Guangzhou 510610, China)ABSTRACT: In view of the easily degradable anthocyanin, the work aims to conduct microcapsule treatment on antho-cyanin with compound wall material. In this thesis, anthocyanin microcapsules were prepared by vacuum freeze-drying with blueberry anthocyanin as the core material and modified corn starch and gelatin as the compound wall material. The effects of wall-core ratio, mass ratio of modified corn starch/gelatin, embedding temperature and embedding time on the embedding rate were investigated with anthocyanin embedding rate as evaluation index. It was characterized and its oxi-收稿日期:2022−12−19基金项目:广东省岭南特色食品科学与技术重点实验室项目(2021B1212040013);2022大学生创新创业训练计划(X202211347171,X202111347156);东源县蓝莓产业园科技支撑服务项目(D122207C1);广东省普通高校青年创新人才项目(2021KQNCX029)作者简介:冯志强(1998—),男,硕士生,主攻食物资源高效开发利用。

植物叶绿素含量检测试剂盒说明书

植物叶绿素含量检测试剂盒说明书

植物叶绿素含量检测试剂盒说明书微量法货号:BC0995规格:100T/96S 产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件提取液液体×1瓶(自备)4℃保存试剂一粉剂×1瓶4℃保存溶液的配制:1、提取液:自备无水乙醇和丙酮,将无水乙醇:丙酮(V :V )=1:2混合待用,提供一个125mL 空瓶。

产品说明:植物叶绿素广泛存在于绿色植物组织中,是光合作用的细胞器。

其含量与光合作用、营养状况密切相关,是反应植物生长状况的重要指标。

叶绿素a 和叶绿素b 在645nm 和663nm 处有最大吸收,根据经验公式可计算得叶绿素a 和叶绿素b 以及总叶绿素的含量。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。

如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板(建议使用非聚苯乙烯材质的96孔板)、可调式移液枪、天平、研钵/匀浆器、锡箔纸、蒸馏水、10mL 试管、无水乙醇和丙酮。

操作步骤:一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)1. 取新鲜植物叶片或其它绿色组织,用蒸馏水洗干净,然后吸干表面水分,去掉中脉,称取约0.1g ,剪碎放入研钵或匀浆器中。

2. 加入1mL 蒸馏水,少量试剂一(约10mg ),在黑暗或弱光条件下充分研磨,转入10mL 试管中。

3. 用提取液冲洗研钵,将所有冲洗液转入10mL 试管中,用提取液定容至10mL ,置于黑暗条件下或者包上锡箔纸浸提3h ,观察底部组织残渣颜色接近于白色则提取完全,若组织残渣未完全变白,继续浸提至组织残渣颜色接近于白色。

二、测定步骤1、分光光度计/酶标仪预热30min 以上,调节波长至645nm 和663nm ,分光光度计用提取液调零。

2、取上层浸提液200μL 于微量玻璃比色皿/96孔板中(若使用聚苯乙烯材质的96孔板,请在5min 内尽快测定完成),测定663nm 和645nm 处吸光值,分别记为A 663和A 645。

植物花色苷含量试剂盒说明书

植物花色苷含量试剂盒说明书

货号:QS1515 规格:50管/48样植物花色苷含量试剂盒说明书可见分光光度法正式测定前取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义:花色苷是一类易溶于极性溶剂的天然色素,属黄酮类化合物。

花色苷广泛存在于植物的根、茎、叶、花和果实中,使其呈现由红到紫等不同颜色,是植物主要的呈色物质。

测定原理:采用pH示差法测定花色苷含量,当pH为1.0时花色苷在530nm处有最大吸收峰,而当pH 为4.5时,花色苷转变为无色查尔酮形式,在530处无吸收峰, 利用此特性分别测定在不同pH 下的530nm和700nm处的吸光度值。

pH示差法减少了溶液pH和溶剂差异的影响,排除了其他非花色苷类物质对检测结果的干扰。

自备实验用品及仪器:可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵和蒸馏水。

试剂的组成和配制:提取液:液体50 mL× 1瓶,4℃保存;试剂一:液体50 mL× 1瓶,4℃保存;试剂二:液体50 mL × 1瓶,4℃保存;花色苷的提取:按照烘干样品质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g烘干样品,加入1mL提取液),充分匀浆后转移到EP管中,提取液定容至1 mL,盖紧后4℃浸提24 h,8000 g,25℃离心10 min,取上清液待测。

测定步骤:1、分光光度计预热30min以上;试剂一和试剂二预热10min以上。

2、取100 µL上清液和900 µL试剂一(相当于稀释10倍),40℃水浴20min,分别测定530nm和700nm处的吸光值,分别记为A1和A2。

3、取100 µL上清液和900 µL试剂二(相当于稀释10倍),40℃水浴20min,分别测定530nm和700nm处的吸光值,分别记为A3和A4。

4、计算△A=(A1-A2)-(A3-A4)注意:如果A1大于1,可以适当加大稀释倍数,保证总体积1mL不变,如50 µL上清液和950 µL 试剂一(相当于稀释20倍);如果A1小于0.1,可以适当缩小稀释倍数,保证总体积不变,如200 µL上清液和800 µL试剂一(相当于稀释5倍),使A1保持在0.1~1范围内,可提高检测灵敏度;同样调整上清液和试剂二体积比例;计算时以实际稀释倍数代入下述公式中。

植物花色苷含量检测试剂盒说明书 可见分光光度法

植物花色苷含量检测试剂盒说明书 可见分光光度法

植物花色苷含量检测试剂盒说明书可见分光光度法注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

货号:BC1380规格:50T/24S产品内容:提取液:液体30mL×1瓶,4℃保存。

试剂一:液体30mL×1瓶,4℃保存。

试剂二:液体30mL×1瓶,4℃保存。

产品说明:花色苷是一类可食用的易溶于水等溶剂的天然色素。

花色苷使植物呈现多彩的颜色,本身更具有多种保健作用,因而在天然食用色素、保健品和医药行业都有着广阔的应用前景。

根据花色苷在不同pH下的结构性质测定花色苷含量,在pH为1时花色苷在530nm处有最大吸收峰,而当pH 为4.5时,花色苷转变为无色查尔酮形式在530nm处无吸收峰,通过测定不同pH下的530nm和700nm处的吸光度值计算样本中花色苷的含量。

自备实验用品及仪器:可见分光光度计、离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器和蒸馏水。

操作步骤:一、样本处理:按照样品质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g样品,加入1mL提取液),充分匀浆后转移到EP管中,封口膜封口防止挥发,60℃浸提30min,期间可震荡数次,提取后提取液定容至1mL。

12000rpm,常温离心10min,取上清液待测。

二、测定步骤:(1)可见分光光度计预热30min,蒸馏水调零。

(2)加样表:试剂名称(μL)测定管1测定管2样品100100试剂一900-试剂二-900充分混匀后测定测定管1和测定管2分别在530nm和700nm处的吸光度,测定管1在530nm和700nm处的吸光值记为A1、A1’,测定管2在530nm和700nm处的吸光值记为A2、A2’,计算ΔA=(A1-A1’)-(A2-A2’)。

三、花色苷含量计算:1、按样本鲜重计算:花色苷含量(μmol/g鲜重)=[ΔA÷(ε×d)×103×F]×V提取÷W=0.037×ΔA×F÷W。

植物可溶性糖含量试剂盒(分光光度法)使用说明

植物可溶性糖含量试剂盒(分光光度法)使用说明

植物可溶性糖含量试剂盒(分光光度法)使用说明货号:BC0030规格:50T/48S产品简介:糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。

总糖是指样品中的还原单糖及在本法测定条件下能水解成还原单糖的蔗糖、麦芽糖和可部分水解为葡萄糖的淀粉。

检测原理为蒽酮比色法。

可用于可溶性单糖、寡糖和多糖的含量测定,具有灵敏度高﹑简便快捷﹑适用于微量样品的测定等优点。

试验中所需的仪器和试剂:可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、浓硫酸、研钵和蒸馏水。

产品内容:试剂一:粉剂×1瓶,4℃避光保存;试剂二:10ml×1瓶,4℃保存;操作步骤:一、样品中可溶性糖的提取:称取约0.1~0.2g样本,加入1ml蒸馏水研磨成匀浆,倒入有盖离心管中,沸水浴10 min(盖紧,以防止水分散失),冷却后,8000g,常温离心10min,取上清液于10ml试管中,用蒸馏水定容至10ml,摇匀备用。

二、测定操作表:分光光度计预热30min以上,调节波长至620nm,蒸馏水调零。

调节水浴锅至95℃。

工作液的配制:在试剂一中加入5ml试剂二,充分溶解后使用,如较难溶解,可加热搅拌。

加样表(在EP管中反应):试剂(μl)空白管测定管样本200蒸馏水400200工作液100100浓硫酸10001000混匀,置95℃水浴中10min(盖紧,以防止水分散失),冷却至室温后,于620nm处,分别读取空白管和测定管吸光值,ΔA=A测定管-A空白管。

注意:空白管只要做一管。

如果ΔA大于1,需要将样本用蒸馏水稀释,计算公式中乘以相应稀释倍数。

由于浓硫酸具有强腐蚀性,请谨慎操作。

可溶性糖含量计算:1、标准条件下测定的回归方程为y=8.55x-0.07;x为标准品浓度(mg/ml),y为吸光值。

2、按样本鲜重计算:可溶性糖(mg/g鲜重)=〔(ΔA+0.07)÷8.55×V1〕÷(W×V1÷V2)=1.17×(ΔA+0.07)÷W3、按样本蛋白浓度计算:可溶性糖(mg/mg prot)=〔(ΔA+0.07)÷8.55×V1〕÷(V1×Cpr)=0.117×(ΔA+0.07)÷CprV1:加入样本体积,0.2mL;V2:加入提取液体积,10mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本鲜重,g。

植物原花青素(OPC)含量检测试剂盒说明书 微量法

植物原花青素(OPC)含量检测试剂盒说明书 微量法

植物原花青素(OPC)含量检测试剂盒说明书微量法注意:正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定。

货号:BC1355规格:100T/48S产品内容:提取液:60%乙醇,自备,4℃保存。

试剂一:11%盐酸8mL,自备,4℃保存。

即2.4mL盐酸溶于5.6mL蒸馏水试剂二:粉剂×1瓶,4℃避光保存,临用前加8mL提取液溶解。

工作液:临用前按照用量将试剂一和试剂二按照1:1混合。

标准品:粉剂×1支,10mg原花青素。

产品说明:原花色素(Oligomeric Proantho Cyanidins,OPC)是一类黄烷醇单体及其聚合体的多酚化合物,广泛存在于植物的各种器官中,具有极强的抗氧化性和清除自由基的作用,广泛的应用于医药,食品,化妆品,保健品行业。

在酸性条件下,植物原花青素A环上的间苯二酚和间苯三酚与香草醛发生缩合反应,产生有色化合物,在500nm处有特征吸收峰,测定500nm光吸收值,可计算植物中原花青素的含量。

自备实验用品及仪器:天平、常温离心机、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板、蒸馏水、11%盐酸和60%乙醇。

操作步骤:一、OPC提取:将样本烘干至恒重,粉碎,过40目筛之后,称取约0.1g,加入1mL提取液,用超声提取法进行提取,超声功率300W,破碎5s,间歇8s,提取,30min,12000rpm,25℃,离心10min,取上清,用提取液定容至1mL,待测。

二、测定操作表:1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至500nm,蒸馏水调零。

2、用提取液将原花青素配制成10mg/mL标准液,用提取液梯度稀释为5、2.5、1.25、0.625、0.3125、0.156、0.078、0.039、0.02、0.01mg/mL的标准溶液。

3、操作表对照管测定管标准管空白管样本(μL)4040标准溶液(mg/mL)40工作液(μL)160160160HO(μL)160402混匀,30℃水浴30min,立即于微量石英比色皿/96孔板中检测500nm处吸光值,计算∆A测定=A测定管-A对照管,∆A标准=A标准管-A空白管。

花色苷含量计算吸附量

花色苷含量计算吸附量

花色苷含量计算吸附量
摘要:
1.花色苷含量的计算方法
2.吸附量的定义和计算方法
3.花色苷含量与吸附量的关系
正文:
花色苷是一类广泛存在于植物果实和种子中的天然色素,具有强大的抗氧化作用。

在食品工业和医药领域中,花色苷被广泛应用。

因此,对于花色苷含量的计算和吸附量的研究具有重要意义。

一、花色苷含量的计算方法
花色苷含量的计算通常采用光谱分析法,如紫外- 可见光谱法和红外光谱法。

紫外- 可见光谱法是利用花色苷在紫外和可见光区域的吸收特性来测定其含量,而红外光谱法则是通过检测花色苷在红外光区域的吸收峰来确定其含量。

二、吸附量的定义和计算方法
吸附量是指吸附剂在一定条件下吸附物质的能力,通常用质量分数表示。

吸附量的计算方法是通过比较吸附前后的质量变化来确定的。

例如,将一定质量的吸附剂与溶液混合,测量混合前后的质量变化,就可以得到吸附量。

三、花色苷含量与吸附量的关系
花色苷含量与吸附量之间存在密切的关系。

一般来说,花色苷含量越高,吸附量也越高。

这是因为花色苷分子中含有大量的羟基和羧基等官能团,这些
官能团可以与吸附剂表面的活性位点发生氢键和范德华力等相互作用,从而增加吸附量。

综上所述,花色苷含量的计算和吸附量的研究对于深入了解花色苷的性质和应用具有重要意义。

花色苷测定

花色苷测定

3.3.1 花色苷含量的测定
(1)缓冲液的制备:
pH1.0缓冲液:使用电子分析天平准确称量1.86g氯化钾,加蒸馏水约980ml,用盐酸和酸度计调至pH1.0,再用蒸馏水定容至1000ml。

pH4.5缓冲液:使用电子分析天平准确称量32.81g无水醋酸钠,加蒸馏水约980ml,用盐酸和酸度计调至pH4.5,再用蒸馏水定容至1000ml。

(2)花色苷含量的测定:
采用pH示差法[33]:用pH1.0、pH4.5的缓冲液,将样液稀释到适当的倍数,放在暗处,平衡15min。

用光路直径为1cm的比色皿在可见分光光度计的510nm 和700nm处,分别测定吸光度,以蒸馏水做空白对照。

按下式计算花色苷的含量。

A=[ ( A510 - A700 ) pH1.0 - ( A510 - A700) pH4.5]
花色苷浓度C ( mg/L) = A×MW×DF×1000 /(ε×l)
两式中:
( A510 - A700 ) pH1.0—加pH1.0缓冲液的样液在510 nm和700 nm波长下的吸光值之差;
( A510 - A700) pH4.5—加pH4.5缓冲液的样液在510 nm和700 nm波长下的吸光值之差;
MW=449.2(矢车菊—3—葡萄糖苷的分子量,mg/mol);
DF=样液稀释的倍数;
ε=26900(矢车菊—3—葡萄糖苷的摩尔消光系数,mol-1);
l=比色皿的光路直径,为1cm。

湖南植物花色苷测检测试剂盒介绍

湖南植物花色苷测检测试剂盒介绍

湖南植物花色苷测检测试剂盒介绍植物花色苷测检测试剂盒介绍:
可见分光光度法
保存温度
2-8℃避光
注意事项
开盖后组份按要求条件保存。

有效期
6个月
适用样本
植物
仪器准备
1.离心机
2.移液器
3.冰箱
4.冰盒
耗材准备
1.离心管
2.吸头
特别提示:本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
植物花色苷检测试剂盒信息由XXX生物科技有限公司为您提供,如您想了解更多关于植物花色苷检测试剂盒报价、型号、参数等信息,欢迎来电或留言咨询。

除供应植物花色苷检测试剂盒外,XXX生物科技有限公司还可为您提供人补体成分1q子成分A(C1qA)检测试剂盒;C1qA试剂盒、人补体成分1q子成分C(C1qC)检测试剂盒;C1qC试剂盒、人C1q肿瘤坏死因子相关蛋白3(C1QTNF3)试剂盒;C1QTNF3试剂盒等产品,公司有专业的客户服务团队,是您值得信赖的合作伙伴。

花色苷的检测方法

花色苷的检测方法

花色苷的检测方法我前几天又试了个新方法检测花色苷,这次总算成功了,可把我之前折腾的劲儿都补回来了。

我一开始也是瞎摸索。

先尝试了一种比较基础的方法,就是比色法。

这就好比看颜色猜东西一样。

你得先把样品处理好,这步可不能马虎。

就像做菜得把菜洗干净切好才能下锅似的。

要从植物组织里提取出花色苷来,我当时就是直接研磨植物样本,可这么做有点粗糙,有时候提取得不完全,这就是我的一个教训。

提取出来以后要先调pH值,这个很关键,就像调收音机的频道一样,得调到合适的位置,才能有清晰的反应。

但比色法有个问题就是不太精确,容易受其他物质干扰。

后来我又试过高效液相色谱法(HPLC)。

这个可复杂多了。

这个方法就像警察破案一样,一个一个把里面的成分都分离开,然后识别出来。

首先样品的准备就得特别精细,我那时候为了把样品处理成适合进柱子检测的状态,弄了好久。

要过滤除掉杂质,就像过滤咖啡渣一样,滤不干净柱子就会堵住。

一开始我不知道这个重要性,进去了一些杂质,结果仪器就出问题了,检测结果乱七八糟的。

流动相的选择也很麻烦,就相当于不同的交通工具,得选合适的流动相才能把花色苷这种“乘客”稳稳当当送到目的地给检测出来。

紫外- 可见分光光度法我也捣鼓过。

这方法听起来挺简单的,但是实际操作起来也是有不少坑的。

这个方法是基于花色苷在紫外和可见光谱区有特征吸收峰。

我当时以为只要把样品放进去测就行了,但是发现吸收峰老是对不上标准的值。

后来才意识到样本的浓度还有纯度也是相当会影响检测结果的。

就好比同样一杯果汁,浓的和稀的看起来颜色就不一样,检测出来的值也会不一样。

要说现在觉得哪个最好用,我还不太确定,反正不同的情况可能要用不同的方法。

如果只是初步检测,比色法简单快捷。

但是想要精确检测到花色苷的具体含量和结构,HPLC就比较靠谱了。

要是有大量样本需要粗略判断一下,紫外- 可见分光光度法还是可以试试的,只是得更仔细控制样本的条件罢了。

哦对了,还有纸层析法,这就像小朋友画画用的颜料晕染法差不多。

花色苷含量计算吸附量

花色苷含量计算吸附量

花色苷含量计算吸附量
【最新版】
目录
1.引言
2.花色苷含量的测定方法
3.吸附量的计算方法
4.结论
正文
【引言】
花色苷是一种广泛存在于植物果实和种子中的天然色素,其具有强大的抗氧化作用,对于防止自由基对人体造成伤害具有积极意义。

因此,对于花色苷含量的测定以及其吸附能力的研究,对于我们了解和利用这种天然色素具有重要价值。

本文将介绍花色苷含量的测定方法以及吸附量的计算方法。

【花色苷含量的测定方法】
花色苷含量的测定方法通常采用紫外 - 可见光谱法。

这种方法的基本原理是花色苷在紫外光区域有强烈的吸收峰,通过测量样品在紫外光区域的吸光度,可以推算出花色苷的含量。

具体操作步骤包括样品的制备、标准曲线的绘制以及样品中花色苷含量的测定。

【吸附量的计算方法】
吸附量是指单位质量的吸附剂在一定条件下能够吸附的物质的量。

对于花色苷的吸附量,通常采用静态吸附法进行测定。

静态吸附法的基本原理是在一定条件下,吸附剂对花色苷的选择性吸附,通过测量吸附前后溶液中花色苷含量的变化,可以计算出吸附量。

具体操作步骤包括吸附剂的制备、吸附实验的进行以及吸附量的计算。

【结论】
花色苷含量的测定以及吸附量的计算,为我们提供了深入了解和利用花色苷的重要工具。

这种方法不仅可以用于科研领域的研究,也可以应用于食品工业等领域,为我们的生活带来便利。

花色素苷含量表达方式

花色素苷含量表达方式

花色素苷含量表达方式
花色素苷是一类常见的天然化合物,可在许多植物中发现。

它们通常负责给植物提供色彩,并在医药和保健品行业中使用。

花色素苷含量通常是评估植物中功能活性成分含量的指标之一。

在研究或生产中,正确地表达花色素苷含量通常是非常重要的。

以下是几种常见的表达方式:
1. % 花色素苷含量:这种方式是将花色素苷的含量与样品总重量进行比较。

例如,如果样品中含有2克花色素苷,且总重量为100克,则含量为2%。

2. mg/g:这种方式是将花色素苷的含量与样品干重进行比较。

例如,如果样品中含有10毫克花色素苷,且干重为5克,则含量为
2 mg/g。

3. μg/mL:这种方式是将花色素苷的含量与样品提取溶液的体积进行比较。

例如,如果样品提取溶液中含有100微克花色素苷,且体积为10毫升,则含量为10 μg/mL。

需要注意的是,不同植物中花色素苷的含量可能千差万别,因此在比较不同样品之间的花色素苷含量时应该格外小心。

同时,在进行含量测定时应该使用适当的方法和技术,以确保结果的准确性和可重复性。

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货号:MS1515 规格:100管/96样
植物花色苷含量试剂盒说明书
微量法
正式测定前取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
花色苷是一类易溶于极性溶剂的天然色素,属黄酮类化合物。

花色苷广泛存在于植物的根、茎、叶、花和果实中,使其呈现由红到紫等不同颜色,是植物主要的呈色物质。

测定原理:
采用pH示差法测定花色苷含量,当pH为1.0时花色苷在530nm处有最大吸收峰,而当pH 为4.5时,花色苷转变为无色查尔酮形式,在530处无吸收峰, 利用此特性分别测定在不同pH 下的530nm和700nm处的吸光度值。

pH示差法减少了溶液pH和溶剂差异的影响,排除了其他非花色苷类物质对检测结果的干扰。

自备实验用品及仪器:
可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵和蒸馏水。

试剂的组成和配制:
提取液:液体100 mL× 1瓶,4℃保存;
试剂一:液体20 mL× 1瓶,4℃保存;
试剂二:液体20 mL × 1瓶,4℃保存;
花色苷的提取:
按照烘干样品质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g烘干样品,加入1mL提取液),充分匀浆后转移到EP管中,提取液定容至1 mL,盖紧后4℃浸提24 h,8000 g,常温离心10 min,取上清液待测。

测定步骤:
1、分光光度计或酶标仪预热30min以上;试剂一和试剂二25℃(室温)预热10min以上;
2、取20 µL上清液和180 µL试剂一(相当于稀释10倍),40℃水浴20min,分别测定530nm 和700nm处的吸光值,分别记为A1和A2。

3、取20 µL上清液和180 µL试剂二(相当于稀释10倍),40℃水浴20min,分别测定530nm
和700nm处的吸光值,分别记为A3和A4。

4、计算△A=(A1-A2)-(A3-A4)
注意:如果A1大于1,可以适当加大稀释倍数,保证总体积200 µL不变,如10 µL上清液和190 µL 试剂一(相当于稀释20倍);如果A1小于0.1,可以适当缩小稀释倍数,保证总体积不变,如100 µL上清液和100 µL试剂一(相当于稀释2倍),使A1保持在0.1~1范围内,可提高检测灵敏度;同样调整上清液和试剂二体积比例;计算时以实际稀释倍数代入下述公式中。

花色苷含量计算:
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
花色苷含量(µg/g干重)=[ΔA×V÷(ε×d)×M×F×106]÷W=16.7×ΔA× F÷W
V:提取液体积,1×10-3L;ε:花色苷的摩尔消光系数,2.69×104 L / mol /cm;d:比色皿
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光径,1cm;M:花色苷的相对分子质量:449.2g/mol;F:稀释倍数;106:1g=106µg;W:样本干重:g。

b.用96孔板测定的计算公式如下
花色苷含量(µg/g干重)=[ΔA×V÷(ε×d)×M×F×106]÷W=33.4×ΔA× F÷W
V:提取液体积,1×10-3L;ε:花色苷的摩尔消光系数,2.69×104 L / mol /cm;d:96孔板光径,0.5cm;M:花色苷的相对分子质量:449.2g/mol;F:稀释倍数;106:1g=106µg;W:样本干重:g。

ΔA线性范围为0.005-0.5。

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