细胞生长曲线的绘制实验报告范文
细胞培养生长曲线
细胞培养生长曲线细胞培养生长曲线是描述细胞数量随时间变化的关系曲线，是研究细胞生长规律和评估细胞活力的重要手段。
通过生长曲线，我们可以了解细胞的生长速率、倍增时间、细胞周期等相关参数，进而揭示细胞的生长规律。
一、细胞培养生长曲线的绘制绘制细胞培养生长曲线需要记录不同时间点细胞数量的变化。
通常采用以下步骤：细胞种板：将一定数量的细胞接种到培养板中，确保细胞密度适宜，能够满足后续实验需求。
细胞培养：按照设定的时间间隔（如24小时、48小时、72小时等）对细胞进行计数，记录每个时间点的细胞数量。
细胞计数：采用细胞计数器或显微镜对细胞进行计数，注意选择合适的计数方法，避免误差。
数据记录：将每个时间点的细胞数量记录在表格中，并绘制成细胞培养生长曲线。
二、细胞培养生长曲线的解析根据绘制的生长曲线，我们可以从以下几个方面解析细胞的生长规律：细胞增殖速率：通过观察生长曲线，可以了解细胞的增殖速率。
在生长曲线上，会出现一个明显的指数增长期，这个时期的细胞增殖速率较快，通常出现在细胞接种后的初期。
随着时间的推移，增殖速率会逐渐降低，这是由于营养物质和空间限制等因素的影响。
倍增时间：倍增时间是细胞培养过程中一个重要的指标，它表示细胞数量需要经过多少时间才能增加一倍。
通过生长曲线，可以计算每个时间点的倍增时间，从而了解细胞的生长速度。
细胞周期：细胞周期是指一个细胞从分裂开始到下一次分裂结束所经历的时间。
在生长曲线上，可以观察到细胞的周期性增殖现象，通过计算不同时间点的细胞数量和倍增时间，可以估算细胞的周期长度。
细胞死亡率：在细胞培养过程中，可能会出现细胞死亡的情况。
在生长曲线上，可以观察到细胞的死亡率变化情况。
如果死亡率较高，可能意味着培养条件不适宜或者细胞质量存在问题。
三、细胞培养生长曲线的影响因素细胞培养生长曲线受到多种因素的影响，包括以下几个方面：培养条件：培养条件对细胞的生长具有重要影响。
例如，培养液的成分、pH值、氧气浓度、温度等条件都会影响细胞的生长。
生长曲线实验报告
生长曲线实验报告生长曲线实验报告引言：生长曲线实验是生物学中常见的实验之一，通过观察和记录生物体在不同时间点的生长情况，可以得出生物体的生长曲线。
本实验旨在通过观察小麦种子在一段时间内的生长情况，探讨生物体的生长规律。
实验材料和方法：实验所用材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤和测量工具。
首先，将小麦种子均匀地撒在培养皿中，然后加入适量的水和土壤。
接下来，将培养皿放置在适宜的环境条件下，如温度适宜、光照充足的室内。
在实验过程中，每隔一段时间，使用测量工具对小麦的生长情况进行测量和记录。
实验结果和分析：在实验过程中，我们观察到小麦种子开始发芽，并逐渐生长成苗。
通过对不同时间点的测量数据进行整理和分析，我们得到了小麦的生长曲线。
初始阶段，小麦种子刚开始发芽，幼苗生长速度较慢。
此时，小麦的生长曲线呈现出一个平缓的上升趋势。
随着时间的推移，小麦的生长速度逐渐加快，生长曲线开始呈现出一个急剧上升的趋势。
这是因为小麦苗的根系逐渐扩展，吸收到更多的水分和养分，从而促进了植物体的生长。
然而，随着时间的继续推移，小麦的生长速度逐渐减缓，生长曲线开始趋于平缓。
这是因为小麦的生长到达了一个饱和状态，养分和水分的吸收速度与消耗速度达到了平衡。
此时，小麦的生长曲线呈现出一个平稳的水平趋势。
结论：通过本实验，我们得出了小麦的生长曲线，从而揭示了小麦在不同时间点的生长规律。
小麦的生长曲线呈现出一个平缓上升、急剧上升和平稳水平的趋势。
这说明小麦的生长速度在不同阶段有所差异，最终趋于稳定。
生长曲线实验不仅可以用于研究植物的生长规律，还可以应用于其他生物体的生长研究。
通过观察和记录生物体的生长情况，我们可以更好地了解生物体的生长过程，为农业生产和生物科学研究提供有益的参考。
总结：生长曲线实验是一种常见的生物学实验方法，通过观察和记录生物体的生长情况，可以得出生物体的生长曲线。
本实验以小麦种子为例，通过测量和记录小麦的生长情况，得出了小麦的生长曲线。
微生物实验报告：测定细菌生长曲线
测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。
单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。
不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。
本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。
将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。
三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。
细胞生长曲线实验
细胞生长曲线实验细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，也是判定细胞活力的重要指标，是培养细胞生物学特性的基本参数之一。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平顶期，然后退化衰亡。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部分。
以存活细胞数(万/mL)对培养时间(h或d)作图，即得生长曲线。
实验方法原理细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法，是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平顶期及退化衰亡4个部分。
细胞生长曲线的测定一般可利用细胞计数法进行。
实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验步骤1. 取生长状态良好的细胞，采用一般传代方法进行消化，制成细胞悬液。
分。
细胞生长曲线的测定一般可利用细胞计数法进行。
实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验材料细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板细胞试剂、试剂盒D-Hanks液牛血清 RPMI1640 双抗 0.08%胰酶仪器、耗材净化工作台离心机恒温水浴箱冰箱倒置相差显微镜培养箱吸管培养瓶吸头枪头 24培养板胶塞微量加样枪红血球计数板实验步骤1. 取生长状态良好的细胞，采用一般传代方法进行消化，制成细胞悬液。
细胞生长曲线绘制
细胞生长曲线绘制
细胞生长曲线是描述细胞增殖数随时间变化的曲线，也是细胞生长动力学研究的基础。
细胞生长曲线可以帮助我们更好地了解细胞生长的规律，同时也可以为细胞培养和生长调
控提供重要参考。
本文将简单介绍细胞生长曲线的绘制方法。
细胞生长曲线的绘制方法可以分为以下几个步骤：
1. 细胞培养
绘制细胞生长曲线前，首先需要进行细胞培养。
细胞培养条件包括培养基、温度、湿度、二氧化碳浓度等。
需要注意的是，不同的细胞会对培养条件有不同的要求，因此需要
根据不同类型的细胞选择不同的培养条件。
2. 细胞计数
在培养细胞的过程中，需要定期检测细胞数。
可以使用显微镜进行手动计数，也可以
利用细胞计数器进行自动计数。
手动计数的精度较低，而自动计数器则能更加准确地确定
细胞数。
在细胞计数完成后，将得到一系列不同时间点的细胞数数据。
然后可以将这些数据用
图表的形式展示出来，绘制成细胞生长曲线图。
这个过程可以使用计算机软件进行，如Excel等。
在绘制细胞生长曲线时，可以用细胞数目作为Y轴，时间作为X轴。
根据细胞生长曲
线的特点，可以将其分为四个阶段：潜伏期、指数增长期、平稳期和衰亡期。
其中，指数
增长期是细胞生长最快的阶段，而平稳期则是指细胞数增长缓慢、趋于稳定的阶段。
细胞生长曲线的形态会受到多种因素的影响，如细胞类型、培养条件等。
因此，绘制
细胞生长曲线时需要对细胞类型和培养条件进行详细的记录和分析，以更好地了解细胞生
长的规律。
细胞生长实验报告
一、实验目的1. 掌握细胞生长曲线的绘制方法。
2. 了解细胞生长的基本规律和影响因素。
3. 掌握细胞计数方法及血细胞计数板的使用。
二、实验原理细胞生长曲线是指在一定条件下，细胞数量随时间推移而变化的规律。
通过绘制细胞生长曲线，可以了解细胞的生长速度、生长停滞期、死亡期等特征，从而分析细胞生长的规律和影响因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：细胞悬液、培养基、胰蛋白酶、0.4%台盼蓝、血细胞计数板、载玻片、盖玻片、显微镜、吸管、试管架等。
2. 实验仪器：细胞培养箱、恒温培养箱、冰箱、电子天平、计时器等。
四、实验方法1. 细胞培养：将细胞悬液接种于24孔细胞培养板中，每孔接种相同数量的细胞，放入细胞培养箱中培养。
2. 细胞计数：每隔24小时，从培养板中取出3孔细胞，用胰蛋白酶消化后，用血细胞计数板计数细胞密度。
3. 数据记录：记录每孔细胞的密度，计算平均值。
4. 绘制生长曲线：以时间为横坐标，以细胞数的对数为纵坐标，绘制细胞生长曲线。
五、实验结果与分析1. 细胞生长曲线：通过实验，得到了细胞生长曲线，如图1所示。
图1 细胞生长曲线从图1可以看出，细胞生长曲线分为四个阶段：（1）迟缓期：细胞接种后，生长速度较慢，细胞密度变化不大。
（2）对数生长期：细胞生长速度逐渐加快，细胞密度迅速增加。
（3）平台期：细胞生长速度减慢，细胞密度趋于稳定。
（4）死亡期：细胞生长速度逐渐降低，细胞密度减少。
2. 影响细胞生长的因素：（1）培养基：培养基的营养成分、pH值、渗透压等对细胞生长有重要影响。
实验中，培养基的营养成分和pH值均保持一致，说明培养基对细胞生长的影响不大。
（2）温度：细胞生长的最适温度一般在37℃左右。
实验中，细胞培养箱的温度保持在37℃，说明温度对细胞生长的影响不大。
（3）细胞密度：细胞密度对细胞生长有显著影响。
实验中，随着细胞密度的增加，细胞生长速度逐渐减慢，说明细胞密度是影响细胞生长的重要因素。
细胞增殖实验报告
细胞增殖实验报告细胞增殖实验报告细胞增殖是生物学中一个重要的研究领域，对于了解生命的起源、发展和疾病的发生机制具有重要意义。
本文将介绍一项关于细胞增殖的实验，旨在探究细胞增殖的规律和影响因素。
实验设计：本次实验选择了人类肺癌细胞株作为研究对象，通过培养细胞，观察细胞在不同条件下的增殖情况，并分析影响细胞增殖的因素。
实验步骤：1. 细胞培养：将人类肺癌细胞株接种于含有适宜培养基和培养液的培养皿中，放置于恒温培养箱中，温度为37℃，湿度为95%，二氧化碳浓度为5%。
2. 细胞计数：每隔一定时间，取出一小部分细胞悬液，使用显微镜和细胞计数板对细胞进行计数。
记录细胞数量并计算平均值。
3. 细胞增殖曲线绘制：根据细胞计数结果，绘制细胞增殖曲线，以时间为横轴，细胞数量为纵轴，观察细胞增殖的动态变化。
实验结果：经过一段时间的培养，我们观察到细胞数量逐渐增加，呈现出指数增长的趋势。
细胞增殖曲线显示，细胞数量在初始阶段增长较缓慢，随着时间的推移，增长速度逐渐加快，直至达到饱和状态。
讨论：1. 生长曲线特征：细胞增殖曲线呈现出一定的特征，即初始阶段增长缓慢，然后迅速加速，最后趋于平缓。
这是由于细胞在培养基中适应环境，增殖能力逐渐增强，细胞数量也随之增加。
当细胞数量达到一定程度时，培养基中的营养物质和空间有限，细胞增殖速度减缓，最终停止增殖。
2. 影响因素：细胞增殖受到多种因素的影响，如培养基中的营养物质浓度、pH 值、温度、湿度等。
其中，营养物质的供应是细胞增殖的基础，适宜的pH值和温度可以提供良好的生存环境，湿度对于细胞的生长也有一定的影响。
3. 应用前景：细胞增殖实验可以为药物筛选、疾病治疗和组织工程等领域提供重要参考。
通过观察细胞在不同条件下的增殖情况，可以评估药物对细胞增殖的影响，为新药的开发提供依据。
此外，细胞增殖实验还可以为疾病的治疗方案提供参考，例如癌症治疗中的细胞毒性药物筛选和剂量确定。
结论：通过本次实验，我们成功观察到了人类肺癌细胞在培养基中的增殖情况，并绘制了细胞增殖曲线。
实验报告微生物的生长曲线实验
实验报告微生物的生长曲线实验实验报告
实验目的：
本实验旨在通过监测微生物的生长曲线，研究微生物的生长规律，并探讨其对环境因素的响应。
实验材料及方法：
1. 材料：
- 微生物培养基
- 无菌培养瓶或试管
- 微量移液器或移液管
- 无菌平板
- 培养箱或恒温摇床
- 显微镜
2. 方法：
（这里使用编号列表来列出具体的实验步骤）
实验步骤：
1. 实验前准备：
（这里写明实验前的准备工作，如准备培养基、灭菌操作等）
2. 微生物获取：
（这里描述如何获取微生物样品，如从环境中采样、有选择地分离微生物菌落等）
3. 微生物培养：
（这里阐述微生物的培养过程，包括制备培养基、接种微生物样品等步骤）
4. 生长曲线检测：
（这一部分是实验的重点，需要详细记录实验过程和结果。
可以使用表格、图表等方式展示数据）
5. 结果分析：
（根据实验结果，对微生物生长曲线进行分析和解读，可结合图表进行说明）
6. 讨论与结论：
（根据实验结果的分析，进行讨论并得出结论，可以对实验中可能存在的问题进行分析，提出进一步改进的建议）
实验结论：
通过本实验对微生物的生长曲线进行监测，我们得出了如下结论：
（这里简洁地总结实验结果得出的结论，为了增加字数可以进一步展开阐述，如讨论生长曲线的不同阶段、影响微生物生长的环境因素等等）
实验报告结束。
注意：本实验报告以“实验报告”的格式为基础，根据实验内容进行适当的调整。
其中，具体的实验步骤和结果可以根据实际情况进行修改和补充，以确保文章的准确性和完整性。
细胞生长曲线的测定
细胞生长曲线的测定细胞生长曲线的测定一：背景与原理生长曲线是测定细胞生长数的常用方法，也是判定细胞活力的重要指标，是培养细胞生物学特性的基本参数之一。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮后贴壁，随后渡过长短不同的潜伏期，即进入快速生长的指数生长期。
在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平台期，然后退化衰亡。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，需连续对细胞进行计数。
通常计数6天。
为精确起见，一般每次实验设3个平行重复。
【晶莱生物】二：材料、试剂与仪器1. 实验材料Hela细胞系。
2. 实验试剂DMEM培养基（青霉素，链霉素，10%血清），0.25%胰蛋白酶溶液，台酚蓝染液。
3. 实验仪器超净工作台，CO2培养箱，倒置显微镜，微量移液器，血细胞计数板，培养瓶，离心管，移液管，废液缸，盖玻片，24孔板。
三：方法与步骤1.取生长良好的细胞，用培养基制成细胞悬液后计数。
根据细胞计数结果按5×104/mL作传代培养接种于24孔板中，共接种21孔细胞。
1 ml/孔。
余下三孔可设传代培养的对照。
2.24h后每天记录细胞数目，每次取3孔细胞，分别进行计数。
计算平均值。
连续计数7d。
细胞用胰酶消化后加入一定量的培养基，混匀制成细胞悬液。
取少量悬液与台酚蓝1:1混合。
取一干净的血细胞计数板，盖上盖片，从盖片两边滴入细胞悬液使之充满计数板和盖片之间。
注意滴液勿有气泡，也不能太多，否则会使盖片浮起而使细胞计数不准。
3.低倍镜下观察，活细胞不着色，台盼蓝着色的细胞呈深蓝色，是不健康或已死亡的细胞，不能计数。
找出计数板上的方格，计算四角大格内总细胞数，压大格线者只计左侧和上方，不计右侧和下方细胞悬液中细胞密度计算公式为：细胞数/mL=（四角大格内细胞数/4）×104×24.根据细胞计数结果，以单位细胞数（细胞数/mL）为纵坐标，以时间为横坐标绘制生长曲线。
实验八计数法绘制动物细胞的生长曲线
生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室
大连理工大学
3.实验材料、用品
• • 实验材料：Hela细胞 用品：
①仪器及用具
环境与生命学院
C02培养箱，倒置显微镜，血球计数板，培养瓶，试管，吸管，
移液管，废液缸，培养细胞，专用盖玻片。
②试剂 培养基（RPMI 1640），小牛血清，Hanks液，0.25%胰蛋白酶
生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室
溶液，0.5%台酚蓝染液。
生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室
大连理工大学
4. 实验步骤
•
环境与生命学院
取生长良好接近汇合的细胞，用胰酶消化，用新培养基制成细胞悬液后 计数。如是非贴壁细胞，则离心弃旧培养基后，换上一定量的新鲜培养 基然后制成细胞悬液计数。
•
根据细胞计数结果按每个小方瓶5×104/ml。作传代培养接种细胞，共接 种21瓶细胞。
唐颖大连理工大学环境与生命学院生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室掌握血细胞计数板的使用掌握血细胞计数板的使用掌握计数法测定细胞的生长曲线的一般方掌握计数法测定细胞的生长曲线的一般方大连理工大学环境与生命学院生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室典型的细胞生长曲线典型的细胞生长曲线生长曲线常用于生长曲线常用于测定药物等外来因素测定药物等外来因素对细胞生长的影响对细胞生长的影响
生长曲线常用于
测定药物等外来因素
对细胞生长的影响。 一般在对数生长期的 1/3-1/2处加药。细胞
计数的时间和次数则
依实验目的而定。 典型的细胞生长曲线
生物科学与工程系细胞生物学实验教学研究室
细胞增殖实验报告结论(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在研究不同条件下人类肺癌细胞株的增殖情况，并分析影响细胞增殖的因素。
通过观察细胞在不同培养条件下的生长、繁殖和形态变化，为后续研究提供数据支持。
二、实验方法1. 细胞培养：将人类肺癌细胞株接种于含有适量培养基的细胞培养瓶中，置于37℃、5%CO2的恒温培养箱中培养。
2. 实验分组：将细胞分为对照组、实验组A、实验组B、实验组C，分别进行不同处理。
3. 处理方法：（1）对照组：正常培养，不进行任何处理。
（2）实验组A：添加一定浓度的药物A，观察细胞增殖情况。
（3）实验组B：添加一定浓度的药物B，观察细胞增殖情况。
（4）实验组C：添加一定浓度的药物C，观察细胞增殖情况。
4. 观察指标：（1）细胞数量：通过细胞计数板计数，记录不同时间点的细胞数量。
（2）细胞形态：通过显微镜观察细胞形态变化。
（3）细胞生长曲线：绘制细胞数量随时间变化的曲线。
三、实验结果1. 对照组：细胞呈正常生长状态，细胞数量随时间逐渐增加，生长曲线呈上升趋势。
2. 实验组A：药物A处理后的细胞数量较对照组有所减少，生长曲线呈下降趋势。
3. 实验组B：药物B处理后的细胞数量较对照组有所减少，生长曲线呈下降趋势。
4. 实验组C：药物C处理后的细胞数量较对照组明显减少，生长曲线呈下降趋势。
四、结果分析1. 细胞增殖与药物浓度关系：实验结果表明，随着药物浓度的增加，细胞增殖受到抑制，细胞数量减少。
2. 细胞增殖与药物种类关系：不同药物对细胞增殖的影响存在差异，其中药物C 对细胞增殖的抑制作用最为明显。
3. 细胞形态变化：药物处理后的细胞出现形态变化，如细胞变圆、核固缩等，表明药物对细胞增殖有抑制作用。
五、结论1. 药物A、B、C均能抑制人类肺癌细胞株的增殖，其中药物C的抑制作用最为明显。
2. 药物浓度与细胞增殖呈负相关，药物浓度越高，细胞增殖抑制作用越强。
3. 药物处理可导致细胞形态变化，如细胞变圆、核固缩等。
4. 本实验为后续研究药物抑制肺癌细胞增殖的机制提供了实验依据。
细胞生长曲线的绘制实验报告范文2篇
细胞生长曲线的绘制实验报告范文2篇An experimental report on the drawing of cell growth c urve编订：JinTai College细胞生长曲线的绘制实验报告范文2篇小泰温馨提示：实验报告是把实验的目的、方法、过程、结果等记录下来，经过整理，写成的书面汇报。
本文档根据实验报告内容要求展开说明，具有实践指导意义，便于学习和使用，本文下载后内容可随意修改调整及打印。
本文简要目录如下：【下载该文档后使用Word打开，按住键盘Ctrl键且鼠标单击目录内容即可跳转到对应篇章】1、篇章1：细胞生长曲线的测定文档2、篇章2：MTT法绘制生长曲线文档篇一：实验五微生物生长量的测定及生长曲线的绘制一、实验目的学习了解微生物生长量测定的方法学习了解细菌生长曲线的绘制方法学习掌握血细胞计数板的使用方法（一）微生物生长量的测定计数法重量法生理指标法1、显微镜直接计数法（1）利用血细胞计数板计数（二）细菌生长曲线将单细胞细菌接种到恒定容积的液体培养基中，不补充营养物或移去培养物，细菌以二分裂方式繁殖，以时间为横坐标，细菌数目的对数值为纵坐标，可画出一条反映细菌在整个培养期间菌数变化规律的曲线，称为生长曲线（growth curve）篇章1:细胞生长曲线的测定文档一、实验目的掌握测定细胞生长曲线的方法。
二、实验器具24孔细胞培养板、微量加样器、eppendorf管、吸头、吸头盒、显微镜、细胞计数板、载玻片、盖玻片、吸管、试管架、普通显微镜、细胞悬液、0.4%台盼蓝。
三、实验方法1.培养细胞：首先在24孔细胞培养板内分别接种相同数量的细胞，计数并记录接种的细胞悬液密度，接种时间记为0小时。
2.计数细胞密度：从接种时间算起，每隔24小时计数3孔的细胞密度，算出平均值。
为提高准确率，对每孔细胞可计数2-3次，如此操作至第七天结束。
3.绘制曲线：以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标，将全部结果在坐标纸上绘图，即得所培养细胞的生长曲线。
微生物实验报告：测定细菌生长曲线
测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。
单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。
不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。
本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。
将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。
三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。
细胞生长曲线的绘制实验报告范文
细胞生长曲线的绘制实验报告细胞生长曲线的绘制实验报告范文篇一：实验五微生物生长量的测定及生长曲线的绘制一、实验目的学习了解微生物生长量测定的方法学习了解细菌生长曲线的绘制方法学习掌握血细胞计数板的使用方法（一）微生物生长量的测定计数法重量法生理指标法1、显微镜直接计数法（1）利用血细胞计数板计数（2）涂片计数2、活菌菌落计数法3、滤膜法（二）细菌生长曲线将单细胞细菌接种到恒定容积的液体培养基中，不补充营养物或移去培养物，细菌以二分裂方式繁殖，以时间为横坐标，细菌数目的对数值为纵坐标，可画出一条反映细菌在整个培养期间菌数变化规律的曲线，称为生长曲线（growth curve）篇二：细胞生长曲线的测定细胞生长曲线的测定一、实验目的掌握测定细胞生长曲线的.方法。
二、实验器具24孔细胞培养板、微量加样器、eppendorf管、吸头、吸头盒、显微镜、细胞计数板、载玻片、盖玻片、吸管、试管架、普通显微镜、细胞悬液、0.4%台盼蓝。
三、实验方法1. 培养细胞：首先在24孔细胞培养板内分别接种相同数量的细胞，计数并记录接种的细胞悬液密度，接种时间记为0小时。
2. 计数细胞密度：从接种时间算起，每隔24小时计数3孔的细胞密度，算出平均值。
为提高准确率，对每孔细胞可计数2-3次，如此操作至第七天结束。
3. 绘制曲线：以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标，将全部结果在坐标纸上绘图，即得所培养细胞的生长曲线。
篇三：MTT法绘制生长曲线实验材料：1，5%FBS-L-DMEM, 5x104个/ml细胞悬液，5mg/mlMTT溶液，DMSO,0.01M PBS,2, 96孔板共7个,酶标仪,50ml离心管，1.5ml 离心管，0.22μm滤膜，锡箔纸，MTT工作液（1ml/管）实验步骤：1，分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板，每孔接种200μl细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。
细胞生长曲线实验
细胞生长曲线实验引言细胞生长曲线实验是一种常用的细胞生物学实验方法，用于研究细胞在不同条件下的生长速率和增殖能力。
通过测量细胞数量随时间的变化，可以得到细胞生长曲线，进一步了解细胞的增殖规律和相关生理过程。
实验目的本实验旨在通过观察和记录细胞数量随时间变化的情况，构建出细胞生长曲线，并分析不同因素对细胞生长的影响。
实验材料与方法材料清单•细胞培养基：包括培养液、培养皿、离心管等。
•细胞株：选择合适的人类或动物细胞株。
•显微镜：用于观察和计数细胞。
•倒计时器或实时荧光定量PCR仪：用于记录时间。
实验步骤1.准备工作：–消毒工作台和实验器具，确保无菌环境。
–预热培养基至适宜温度（通常为37°C）。
2.细胞培养：–取出细胞株，将其转移到含有适宜培养基的培养皿中。
–放置在恒温培养箱中，维持合适的温度、湿度和氧气浓度。
–每天检查细胞的生长情况，记录细胞数量。
3.细胞计数：–取出培养皿，用显微镜观察细胞。
–使用倒计时器或实时荧光定量PCR仪记录观察时间，并进行细胞计数。
–记录每次观察的时间点和对应的细胞数量。
数据处理与分析绘制生长曲线图根据实验所得数据，可以使用图表软件（如Excel）绘制细胞生长曲线图。
横轴表示时间，纵轴表示细胞数量。
通过连接各个时间点上的细胞数量，可以得到一条曲线，反映了细胞的生长过程。
生长速率计算通过生长曲线图可以得到不同时间点上的细胞数量。
根据相邻两个时间点上的细胞数量差异，可以计算出单位时间内的生长速率。
例如，若第1天细胞数量为100个，第2天细胞数量为200个，则生长速率为100个/天。
统计与比较可以将不同实验组的生长曲线进行比较，分析不同因素对细胞生长的影响。
例如，可以比较不同培养基对细胞生长速率的影响，或者观察不同药物处理下细胞增殖能力的变化。
通过统计学方法（如t检验）可以判断实验组之间是否存在显著差异。
结果与讨论根据实验所得数据和分析结果，可以得出一些结论并进行讨论。
计数法测定细胞生长曲线
计数法测定细胞生长曲线实验目的：学习细胞计数的方法；熟悉测定生长曲线的基本原理、方法，了解其应用。
实验原理：一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮后贴壁，随后度过长短不一的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期，在达到饱和密度后，细胞停止生长，进入平顶期，然后退化衰老。
典型的生长曲线即可分为潜伏期、指数生长期、平顶期及退化衰老四个部分，其中的三个不同生长时相（潜伏期、指数生长期和平顶期）是每个细胞系所共有的特征。
通过测定生长曲线，不仅可以了解培养细胞生物学特性的基本参数、测定细胞绝对生长数、判断细胞活力，而且也可用于测定药物等外来因素对细胞生长的影响。
本实验采用计数法测定细胞生长曲线，通过连续对细胞计数（通常为7d，一般应每次计数3瓶细胞取平均值），然后以存活细胞数对培养时间作图，即得该种细胞的生长曲线。
仪器、材料和试剂：1、仪器：CO2 培养箱、超净工作台、倒置显微镜、血球计数板2、材料：培养瓶、试管、吸管、移液管、废液缸、盖玻片、酒精灯3、试剂：1640、胰酶、Hanks实验步骤：1、点上酒精灯，用酒精棉擦拭双手和超净台台面(每组两个人同时做，点两盏酒精灯)，将装有1640、胰酶、Hanks的离心管放在两盏酒精灯之间，每管在火焰上稍微过一下．镊子过火后用镊子打开离心管盖，倒置于酒精灯一侧。
2、取细胞培养瓶，在倒置显微镜下观察细胞生长状态(梭形或是长条形连片生长，漂浮着的圆的发亮的细胞是死细胞)。
3、用酒精棉将瓶底擦干净，对着日光灯观察瓶底，能看到一层细胞(像蒙了一层灰)。
4、将培养瓶口在火焰上稍微过一下，用镊子打开瓶盖，放在酒精酒灯一侧，将瓶中的培养液迅速倒入废液缸。
5、取-支一次性吸管，从吸球的一头打开无菌包装，吸取5ml hanks至培养瓶中，将吸管放在hanks的离心管中(注意吸管不能接触培养瓶及其他物品)，手拿培养瓶使hanks平铺瓶底，瓶口朝向火焰左右摇晃培养瓶清洗细胞，将hanks迅速倒入废液缸。
传代细胞的培养与观察实验报告
传代细胞的培养与观察实验报告一、实验目的1、掌握传代细胞的培养方法和操作技巧。
2、学习细胞计数和细胞生长曲线的绘制。
3、观察传代细胞在不同培养条件下的形态变化和生长特点。
二、实验原理细胞培养是指在体外模拟体内环境，使细胞生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。
传代细胞培养则是将原代培养的细胞经过一定的处理后，转移到新的培养容器中继续培养的过程。
细胞在培养过程中，需要适宜的营养物质、生长因子、气体环境和温度等条件。
通过定期观察细胞的形态、数量和生长状态，可以了解细胞的生长规律和特性。
三、实验材料与设备1、细胞株：HeLa 细胞（人宫颈癌细胞）2、培养基：DMEM 培养基（含 10%胎牛血清、1%双抗）3、试剂：胰蛋白酶、PBS 缓冲液4、仪器设备：CO₂培养箱、倒置显微镜、离心机、移液器、细胞计数板等四、实验步骤1、细胞复苏从液氮罐中取出冻存的 HeLa 细胞，迅速放入 37℃水浴中解冻。
待细胞完全解冻后，将其转移至离心管中，加入适量的培养基，轻轻混匀，然后在 1000 rpm 条件下离心 5 分钟。
弃去上清液，加入新鲜的培养基，重悬细胞，将细胞接种到培养瓶中，置于 CO₂培养箱中培养。
2、细胞传代培养当细胞生长融合至 80%－90%时，进行传代培养。
首先，吸出原培养瓶中的培养基，用 PBS 缓冲液冲洗细胞 2 次。
然后，加入适量的胰蛋白酶，使其覆盖细胞表面，放入培养箱中消化 1-2 分钟。
在倒置显微镜下观察细胞形态，当细胞变圆、间隙增大时，立即加入含血清的培养基终止消化。
用移液器轻轻吹打细胞，使其从培养瓶壁上脱落，形成细胞悬液。
将细胞悬液转移至离心管中，在 1000 rpm 条件下离心 5 分钟。
弃去上清液，加入新鲜的培养基，重悬细胞，并按照适当的比例将细胞接种到新的培养瓶中，置于 CO₂培养箱中继续培养。
3、细胞计数使用细胞计数板对细胞进行计数。
首先，将细胞悬液充分混匀，然后吸取适量的细胞悬液加入细胞计数板的计数室中。
实验三 微生物生长曲线的测定(实验相关)
实验三微生物生长曲线的测定一、实验目的目的1、了解细菌生长曲线特点及测定原理2、学习用比浊法测定细菌的生长曲线二、实验原理将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。
它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。
依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。
这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。
因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。
测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。
本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。
三、实验材料1、菌种2、培养基：肉膏蛋白胨培养基3、仪器和器具721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。
4、流程种子液→标记→接种→培养→测定四、实验步骤1、种子液制备取细菌菌种1支，以无菌操作挑取1环菌液，接入肉膏蛋白胨培养液中，培养18h作种子培养液。
2、标记编号取盛有30mL无菌肉膏蛋白胨培养液的三角瓶6个，分别编号为0、4、8、12、16、2 0。
3、接种培养用2mL无菌吸管分别准确吸取1mL种子液加入已编号的6个三角瓶中，于37℃下振荡培养。
然后分别按对应时间将三角瓶取出测定OD值。
4、生长量测定将未接种的肉膏蛋白胨培养基倾倒入比色杯中，选用600nm波长分光光度计上调节零点，作为空白对照，并对不同时间培养液从0h起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用未接种的牛肉膏蛋白胨液体培养基适当稀释后测定，使其OD值在0.10.～0.65以内，经稀释后测得的OD值要乘以稀释倍数，才是培养液实际的OD值。
细胞生长调控实验报告
细胞生长调控实验报告摘要：本次实验旨在探究细胞生长的调控机制。
通过对细胞生长曲线的测定以及不同生长条件下细胞形态和细胞分裂的观察，分析细胞在不同环境下的生长状况和可能的调控机制。
实验结果表明，细胞的生长过程受到多种因素的影响，包括温度、营养物质和激素等。
此外，细胞分裂的频率和方式也受到调控，具有一定的灵活性。
实验结果揭示了生物体内细胞生长的复杂性和调控机制的多样性。
引言：细胞生长是生物体内各种生命现象的基础，对于深入了解细胞功能和发展更高级的生物体有着重要意义。
然而，细胞生长是一个复杂的过程，涉及多种调控机制。
为了揭示这些机制，本次实验通过定量测定细胞生长曲线以及观察细胞形态和细胞分裂等指标，对细胞生长的调控进行了研究。
材料与方法：1. 实验材料：包括细胞培养基、细胞培养液、培养皿等。
2. 细胞生长曲线的测定：将细胞接种于不同条件下的培养基中，并在一定时间间隔内测定细胞数量。
3. 细胞形态观察：通过显微镜观察细胞在不同培养条件下的形态变化。
4. 细胞分裂观察：观察细胞在不同培养条件下的分裂方式和频率。
结果与讨论：1. 细胞生长曲线测定结果显示，在适宜的培养条件下，细胞呈现出较快的生长速度。
然而，当细胞在过高或过低的温度下培养时，生长速度明显减缓。
这表明温度对细胞生长有着明显的影响。
2. 在不同营养物质浓度的培养基中培养细胞，观察到一定浓度范围内细胞能够正常生长和分裂，但浓度过高或过低时会导致细胞生长受阻。
这表明营养物质浓度对细胞生长具有调控作用。
3. 加入不同激素浓度的培养基中培养细胞，在一定范围内激素对细胞生长有促进作用。
然而，激素浓度过高时会导致细胞生长停滞，甚至死亡。
由此可见，激素也是细胞生长的重要调控因素之一。
4. 在细胞形态观察中发现，细胞在不同条件下呈现出不同的形态，包括大小、形状和细胞质结构的变化。
这说明细胞形态的变化与生长环境密切相关。
5. 细胞分裂观察结果显示，细胞在不同生长条件下采取不同的分裂方式，包括有丝分裂和无丝分裂。
[终稿]实验6-2酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定
![[终稿]实验6-2酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/eab78463f56527d3240c844769eae009581ba223.png)
实验酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定1 目的要求（1）了解酵母菌、细菌等单细胞微生物生长曲线的特点及测定原理；（2）学习用血球计数板计数法和比浊法分别测定酵母和细菌的生长曲线。
2 基本原理生长曲线是单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。
测定时一般将一定数量的微生物纯菌种接种到一定体积的已灭菌的适宜的新鲜培养液中，在适温条件下培养，定时取样测定培养液中菌的数量，以菌数的对数为纵坐标，生长时间为横坐标，绘制得到生长曲线。
不同的微生物其生长曲线不同，同一微生物在不同培养条件下其生长曲线亦不同。
但单细胞微生物的生长曲线规律基本相同，生长曲线一般分为延迟期、对数期、稳定期和衰亡期四个时期。
测定一定培养条件下的微生物的生长曲线对科研和实际生产有一定的指导意义。
测定生长曲线时需要对生长的单细胞微生物定时取样计数，对于酵母细胞和比较大的细菌细胞可采用血球计数板计数法计数，亦可采用比浊法计数，但对于小的细菌细胞一般采用比浊法。
比浊法是根据培养液中菌细胞数与混浊度成正比，与透光度成反比的关系，利用光电比色计测定菌悬液的光密度值（OD值），以OD值来代表培养液中的浊度即微生物量，然后以培养时间为横坐标，以菌悬液的OD值为纵坐标绘出生长曲线。
此方法所需设备简单，操作简便、迅速。
血球计数板法是利用一块血球计数板来进行计数的。
血球计数板是一块特制的厚玻璃片，中央平台比两边平台低0.1mm，上有两个被精细刻化为400个小方格的格网，面积为1mm2，加盖盖玻片后即构成0.1 mm3体积的计数室。
血球计数板有两种规格：一种是将1 mm2面积的网格划分为25个大格，每个大格再分成16个小格，既25´16；另一种为16´25。
计数时只需无菌操作将稀释到适宜浓度的菌悬液取一滴从盖玻片一侧渗入到计数室，待静置平衡后于显微镜高倍镜下计数，用下面公式算出菌液中细胞数。
单细胞微生物细胞数/mL=5个中格内细胞数¸5´25（或16）´104´菌液稀释倍数3 实验材料3．1 菌种酵母菌和大肠杆菌。
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2020
细胞生长曲线的绘制实验报告范
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细胞生长曲线的绘制实验报告范文
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按性质的不同，报告可划分为：综合报告和专题报告；按行文的直接目的不同，可将报告划分为：呈报性报告和呈转性报告。
体会指的是接触一件事、一篇文章、或者其他什么东西之后，对你接触的事物产生的一些内心的想法和自己的理解
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篇一：实验五微生物生长量的测定及生长曲线的绘制
一、实验目的
学习了解微生物生长量测定的方法
学习了解细菌生长曲线的绘制方法
学习掌握血细胞计数板的使用方法
（一）微生物生长量的测定
计数法重量法生理指标法
1、显微镜直接计数法
（1）利用血细胞计数板计数
（2）涂片计数
2、活菌菌落计数法
3、滤膜法
（二）细菌生长曲线
将单细胞细菌接种到恒定容积的液体培养基中，不补充营养物或移去培养物，细菌以二分裂方式繁殖，以时间为横坐标，细菌数目的对数值为纵坐标，可画出一条反映细菌在整个培养期间菌数变化规律的曲线，称为生长曲线（growthcurve）
篇二：细胞生长曲线的测定
细胞生长曲线的测定
一、实验目的
掌握测定细胞生长曲线的方法。
二、实验器具
24孔细胞培养板、微量加样器、eppendorf管、吸头、吸头盒、显微镜、细胞计数板、载玻片、盖玻片、吸管、试管架、普通显微镜、细胞悬液、0.4%台盼蓝。
三、实验方法
1.培养细胞：首先在24孔细胞培养板内分别接种相同数量的细胞，计数并记录接种的细胞悬液密度，接种时间记为0小时。
2.计数细胞密度：从接种时间算起，每隔24小时计数3孔的细胞密度，算出平均值。
为提高准确率，对每孔细胞可计数2-3次，如此操作至第七天结束。
3.绘制曲线：以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标，将全部结果在坐标纸上绘图，即得所培养细胞的生长曲线。
篇三：MTT法绘制生长曲线
实验材料：
1，5%FBS-L-DMEM,5x104个/ml细胞悬液，5mg/mlMTT溶液，DMSO,0.01MPBS,2,96孔板共7个,酶标仪,50ml离心管，1.5ml离心管，0.22μm滤膜，锡箔纸，MTT工作液（1ml/管）
实验步骤：
1，分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板，每孔接种200μl细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。
2，培养16-48后，每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液（5mg/ml）20μl，37℃继续孵育。
3，孵育4h后终止培养，吸出孔内上清，此时应该倾斜96孔板，用枪头小心的将上清液吸去，不可吸去下面的结晶颗粒，慢慢吸去。
每孔加入150μlDMSO,室温振荡10min，使结晶充分溶解，于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。
注意事项：
【1】1,两种方法分离小型猪骨髓间充质干细胞的比较
分别取两组0,1,3代细胞，制成1x103的细胞悬液，接种到96孔板，每孔细胞悬液200微升，置37℃、5%CO2饱和湿度孵箱内孵育，各组每24小时分别取出4孔，每孔加入MTT（2mg/ml）20微升37℃孵育，4h后吸弃孔内培养液，每孔加入150微升分析纯的二甲基亚砜，移至酶联免疫检测仪上振荡10min,用分光光度计在492nm波长处测定每孔的吸光度值（OD492），以OD(492)值为纵坐标，时间为横坐标绘制生长曲线
【2】来自：SD大鼠骨髓间充质干细胞体外分离培养的实验
研究
大鼠MSCs生长曲线测定：为了定量测定大鼠BMSCs的生长状况，对来源于同一动物的原代细胞进行连续培养。
分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板，每孔接种200μl细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。
次日起每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液（5mg/ml）20μl，37℃继续孵育4h后终止培养，吸出孔内上清，每孔加入150μlDMSO,室温振荡10min，使结晶充分溶解，于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。
在酶标仪上选择570nm波长，以空白孔调零，测定各孔吸光度（A）值，连续测7天，以时间为横轴，A值为纵轴绘制细胞生长曲线。