常用的单克隆抗体检测方法
单克隆抗体的抗体检测原理
单克隆抗体的抗体检测原理单克隆抗体是由单个克隆细胞分泌的抗体所组成的，具有高度的特异性和亲和性。
抗体检测是一种重要的生物分析技术，它可以用于检测、定量和鉴定特定分子的存在和表达水平。
单克隆抗体的抗体检测原理主要包括特异性识别、抗原结合和信号放大等过程。
首先，单克隆抗体具有高度的特异性，可以识别并结合到特定的抗原分子上。
在抗原与抗体结合时，抗体的可变区域与抗原表面的特定区域形成互补的结合，从而实现抗原的特异性识别。
这种特异性识别可以使得单克隆抗体只与目标分子结合，而不与其他非特异性分子发生交互作用。
接下来，抗原与抗体的结合可以通过多种方式进行检测。
其中，最常用的方法是免疫荧光检测和酶联免疫吸附试验（ELISA）。
在免疫荧光检测中，抗体与荧光染料标记的二抗结合，形成复合物后通过荧光显微镜观察荧光信号的强度和分布情况，从而获得目标分子的定性和定量信息。
而在ELISA中，抗体会与酶标记的二抗结合，通过底物的化学反应产生可测量的信号，例如颜色变化。
通过比较信号的强度和标准曲线，可以确定目标分子的存在和浓度。
此外，为了增强检测信号的灵敏度和准确性，还可以采用信号放大的策略。
常用的信号放大方法有放射性同位素标记、荧光信号放大和报告基因放大等。
放射性同位素标记是将放射性同位素与抗体结合，通过放射性的衰变过程来产生可测量的信号。
荧光信号放大是将荧光染料标记于抗体上，通过扩增荧光信号的强度来提高检测的敏感度。
而报告基因放大是将报告基因与抗体结合，通过报告基因的表达来产生可测量的信号。
这些信号放大的方法可以有效提高抗体检测的灵敏度。
总结起来，单克隆抗体的抗体检测原理主要包括特异性识别、抗原结合和信号放大等过程。
通过这些过程，可以实现对目标分子的高特异性和高敏感性的检测。
抗体检测技术已经在医学诊断、生物学研究、食品安全等领域得到广泛应用，对于人类健康和生命科学研究具有重要意义。
单克隆抗体的鉴定
单克隆抗体的鉴定引言单克隆抗体是一类由单个免疫细胞分泌的抗体，具有高度特异性和亲和力。
它被广泛应用于医学诊断、药物研发和治疗等领域。
单克隆抗体的鉴定是确保其质量和效力的关键步骤之一。
本文将介绍单克隆抗体的鉴定方法和流程。
一、单克隆抗体的来源和制备单克隆抗体的制备通常分为两个阶段：免疫原注射和细胞融合。
免疫原注射是将特定抗原注射到动物体内，诱导免疫细胞产生特异性抗体。
细胞融合是将免疫细胞与肿瘤细胞融合，形成可无限增殖的杂交瘤细胞。
二、鉴定单克隆抗体的特异性特异性是评估单克隆抗体质量的重要指标。
常用的鉴定方法包括ELISA、免疫组织化学和免疫印迹等技术。
其中，ELISA是最常用的方法之一，可以通过将抗原固定在微孔板上，然后加入单克隆抗体进行检测，来评估其特异性和亲和力。
三、鉴定单克隆抗体的亲和力亲和力是指抗体与抗原结合的强度。
常用的亲和力鉴定方法包括ELISA、流式细胞术和生物传感等技术。
其中，ELISA是最常用的方法之一，可以通过变化抗原的浓度或稀释单克隆抗体的方式来评估其亲和力。
四、鉴定单克隆抗体的稳定性稳定性是评估单克隆抗体质量的重要指标之一。
常用的稳定性鉴定方法包括温度稳定性、冻融稳定性和长期保存稳定性等。
其中，温度稳定性可以通过将单克隆抗体暴露在不同温度下，然后检测其活性的变化来评估。
五、鉴定单克隆抗体的纯度纯度是评估单克隆抗体质量的重要指标之一。
常用的纯度鉴定方法包括聚丙烯酰胺凝胶电泳、高效液相色谱和质谱等技术。
其中，聚丙烯酰胺凝胶电泳是最常用的方法之一，可以通过检测单克隆抗体与其他蛋白质的分离情况来评估其纯度。
六、鉴定单克隆抗体的交叉反应性交叉反应性是指单克隆抗体与非目标抗原结合的能力。
常用的交叉反应性鉴定方法包括ELISA、免疫组织化学和免疫印迹等技术。
其中，ELISA是最常用的方法之一，可以通过将非目标抗原固定在微孔板上，然后加入单克隆抗体进行检测，来评估其交叉反应性。
七、鉴定单克隆抗体的应用单克隆抗体的应用广泛，包括医学诊断、药物研发和治疗等领域。
常用的单克隆抗体检测方法
常用的单克隆抗体检测方法单克隆抗体检测方法是一种常用的实验技术，用于检验抗体的特异性和亲和力。
以下是几种常用的单克隆抗体检测方法：1. 免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）：免疫组化是一种常见的单克隆抗体检测方法，用于检测组织学样本或细胞涂片中特定分子的表达情况。
该方法利用免疫反应来检测抗原-抗体的结合。
首先，将样品固定在载玻片上，然后用单克隆抗体特异地结合目标抗原。
通过可视化标记物，如酶或荧光标记物，可以检测到抗原-抗体的结合，从而实现对特定分子的检测。
2. 免疫印迹（Western Blotting）：免疫印迹是一种常用的单克隆抗体检测方法，用于分析蛋白质的存在和相对数量。
在这个方法中，蛋白质样本通过电泳分离，并转移到薄膜上。
然后，薄膜与特异的单克隆抗体结合，用于检测目标蛋白质的存在。
最后，通过可视化标记物实现目标蛋白质的检测。
免疫印迹可用于研究蛋白质的表达量、分子量和剪接变异等。
3. 流式细胞术（Flow Cytometry）：流式细胞术是一种常用的单克隆抗体检测方法，用于检测细胞表面标记物的存在和表达水平。
在这个方法中，通过单克隆抗体标记标记物，然后通过激光照射悬浮在流式细胞仪中的细胞。
细胞经过激光激发后，通过检测散射和荧光信号，可以确定单个细胞的性质和数量。
流式细胞术广泛应用于细胞免疫学和细胞生物学中。
4. 免疫沉淀（Immunoprecipitation，IP）：免疫沉淀是一种常用的单克隆抗体检测方法，用于富集靶蛋白及与其相互作用的蛋白质。
在这个方法中，样品中的蛋白质与特异的单克隆抗体结合形成免疫复合物。
然后，通过添加沉淀剂，如蛋白A/G琼脂糖，将免疫复合物富集并沉淀下来。
最后，通过洗涤和分离，可以得到蛋白质的纯化，并用其他方法进一步分析。
5. 酶联免疫吸附试验（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay，ELISA）：酶联免疫吸附试验是一种常用的单克隆抗体检测方法，用于测定抗原或抗体的存在和浓度。
单克隆抗体的鉴定
单克隆抗体的鉴定引言：单克隆抗体是一种重要的生物医学研究工具，可用于疾病的诊断、治疗和药物研发等领域。
单克隆抗体的鉴定是确保其特异性、亲和性和稳定性的重要步骤，以保证其在实际应用中的准确性和可靠性。
本文将介绍单克隆抗体鉴定的基本原理、常用的鉴定方法和相关的实验步骤。
一、单克隆抗体鉴定的基本原理单克隆抗体鉴定的基本原理是通过筛选和鉴定细胞克隆，确定具有特定抗原识别能力的单个细胞克隆，然后将其扩增并纯化得到单克隆抗体。
鉴定的关键在于筛选出具有高特异性、高亲和力和稳定性的单克隆抗体。
二、单克隆抗体鉴定的常用方法1. 杂交瘤技术：杂交瘤技术是最常用的单克隆抗体鉴定方法之一。
该技术通过将抗原刺激的B细胞与骨髓瘤细胞融合，形成杂交瘤细胞，然后通过限稀稀释法或酶联免疫吸附试验（ELISA）筛选出特异性抗原的单克隆抗体。
2. 胶体金法：胶体金法是一种快速、灵敏的单克隆抗体鉴定方法。
该方法利用胶体金颗粒与抗原或抗体的特异性结合，形成可见的颜色反应，通过观察颜色变化来确定是否存在特定的抗原-抗体反应。
3. 免疫组化技术：免疫组化技术是一种广泛应用于单克隆抗体鉴定的方法。
该技术通过将细胞或组织样本与单克隆抗体反应，然后通过显色剂或荧光染料来观察特定抗原的表达情况，以判断单克隆抗体的特异性和亲和力。
三、单克隆抗体鉴定的实验步骤1. 抗原制备：首先需要制备纯化的抗原，可通过基因工程技术获得重组蛋白或通过提取生物体中的抗原蛋白。
2. 免疫动物免疫：将抗原注射到小鼠等免疫动物体内，激发其免疫系统产生特异性抗体。
3. 杂交瘤细胞融合：将免疫动物的脾细胞与骨髓瘤细胞融合，形成杂交瘤细胞。
4. 杂交瘤细胞筛选：通过限稀稀释法或ELISA等方法筛选出特异性抗原的单克隆抗体。
5. 单克隆抗体扩增：将筛选出的单克隆抗体进行扩增，并经过多次培养和纯化，以获得足够的纯净抗体。
6. 单克隆抗体鉴定：通过免疫组化技术、胶体金法等方法对单克隆抗体进行鉴定，确定其特异性、亲和力和稳定性。
ELISA法测定单克隆抗体的效价的操作步骤
ELISA法测定单克隆抗体的效价的操作步骤摘要：ELISA是以免疫学反应为基础，将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。
免疫酶技术是将酶标记在抗体/抗原分子上，形成酶标抗体/酶标抗原，称为酶结合物。
该酶结合物的酶在免疫反应后，作用于底物使之呈色，根据颜色的有无和深浅，定位或定量抗原/抗体。
找产品，上生物帮>> >>一、实验目的1、深入了解ELISA法测定抗体效价的原理。
2、掌握ELISA法测定单克隆抗体效价的方法。
间接ELISA效价图二、实验原理ELISA是以免疫学反应为基础，将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。
免疫酶技术是将酶标记在抗体/抗原分子上，形成酶标抗体/酶标抗原，称为酶结合物。
该酶结合物的酶在免疫反应后，作用于底物使之呈色，根据颜色的有无和深浅，定位或定量抗原/抗体。
ELISA法是免疫酶技术的一种，其特点是利用聚苯乙烯微量反应板(或球)吸附抗原/抗体，使之固相化，免疫反应和酶促反应都在其中进行。
在每次反应后都要反复洗涤，这既保证了反应的定量关系，也避免了末反应的游离抗体/抗原的分离步骤。
在ELISA法中。
酶促反应只进行一次，而抗原、抗体的免疫反应可进行一次或数次，即可用二抗(抗抗体)、三抗再次进行免疫反应。
目前常用的几种ELISA方法有：测定抗体的间接法，测定抗原的双抗体夹心法和测定抗原的竞争法等。
本实验采用间接法测定单克隆抗体效价。
其主要过程为：首先将已知定量抗原吸附在聚苯乙烯微量反应板的凹孔内，加待测抗体，保温后洗涤以除去未结合的杂蛋白质，加酶标抗抗体，保温后洗涤，加底物保温30分钟后，加酸或碱终止酶促反应，用目测或光电比色测定抗体含量。
三、仪器、原料和试剂仪器聚苯乙烯96孔酶标板、微量移液管、酶联免疫阅读仪、水浴锅。
原料单克隆抗体试剂1、抗原及酶标记抗体①抗原：兔抗人IgG(RabbitAanti-humanIgG，CodeNo.A0423);②酶标抗抗体：兔抗鼠IgG-HRP(RabbitAnti-mouseIgG-HRP，CodeNo.P0260);均为DAKO公司产品，使用时按照说明书要求稀释。
单克隆抗体的应用及原理
单克隆抗体的应用及原理单克隆抗体是指由单一细胞株产生的、只针对特定抗原的抗体。
相对于多克隆抗体，单克隆抗体具有更高的特异性和稳定性，因此在医学、生物学、生物技术等领域有着广泛的应用。
本文将从单克隆抗体的原理、制备方法和应用三个方面进行介绍。
一、单克隆抗体的原理单克隆抗体的制备基于生物学中的免疫原理。
当机体受到外来抗原的侵袭时，免疫系统会产生对抗原的免疫应答，其中的一种反应是产生抗体。
抗体是一种由免疫细胞（主要是B细胞）合成的蛋白质，它可以结合到抗原表面的特定区域（抗原决定簇，Epitope），从而识别和中和抗原。
抗体的结构包括两个重链和两个轻链，每个链都含有一个可变区（variable region，V区）和一个恒定区（constant region，C区）。
V区是抗体分子中最为多样化的部分，它决定了抗体的特异性。
当抗原与B细胞表面的抗体结合后，B细胞会被激活并分化成浆细胞，进而产生大量的抗体分子。
单克隆抗体的制备过程中，需要先制备出特定的抗原。
然后，将该抗原注射到小鼠等动物体内，激活其免疫系统产生抗体。
接着，从动物的脾脏等淋巴组织中分离出B细胞，并将其与肿瘤细胞融合，形成一种称为杂交瘤（hybridoma）的细胞。
杂交瘤细胞既具有B细胞的抗体合成能力，又具有肿瘤细胞的无限增殖能力。
在一系列的筛选和鉴定过程中，可以筛选出只针对特定抗原的单克隆抗体细胞株，进而大规模制备单克隆抗体。
二、单克隆抗体的制备方法单克隆抗体的制备主要包括以下几个步骤：1. 抗原的制备：首先需要准备出特定的抗原，可以是蛋白质、多肽、糖类、药物等。
2. 动物免疫：将抗原注射到小鼠等动物体内，激活其免疫系统产生抗体。
注射的方式有多种，如皮下注射、腹腔注射、静脉注射等。
3. B细胞的分离：从动物的脾脏等淋巴组织中分离出B细胞，可以使用离心、梯度离心等方法。
4. 杂交瘤的制备：将B细胞与肿瘤细胞融合，形成一种称为杂交瘤的细胞。
杂交瘤细胞既具有B细胞的抗体合成能力，又具有肿瘤细胞的无限增殖能力。
辛酸-硫酸铵法纯化单克隆抗体
辛酸-硫酸铵法纯化单克隆抗体??辛酸-硫酸铵法纯化单克隆抗体(一) 原理蛋白质在溶液中的溶解度取决于蛋白质周围亲水基团与水形成水化膜的程度, 以及蛋白质分子带有的电荷。
如改变这两个因素,蛋白质就容易沉淀折出。
引起蛋白质沉淀的主要方法有(1) 盐析, 即加入大量中性盐破坏蛋白质的胶体稳定性而使其析出, 沉淀不同蛋白质所需盐浓度及pH 值不同;(2) 生物碱以及某些酸类, 在pH 值小于等电点时可以与蛋白质形成不溶的盐使其沉淀;(3) 重金属离子如隶、铅、铜、银等, 在pH 值大于等电点时可以与蛋白质结合成不溶的盐使其沉淀;(4) 有机溶剂如酒精、甲醇、丙酮等, 对水的亲和力很大, 能破坏蛋白质水化膜, 在等电点时使蛋白质沉淀。
辛酸(caprylic acid) 在偏酸条件下能与血清或腹水中除IgG外的其他蛋白质结合并将其沉淀下来,IgG 则溶于上清液中, 再用硫酸镀盐析, 即可达到纯化IgG 的目的。
辛酸-硫酸铵法是目前实验室中较常用的纯化单克隆抗体的方法, 利用该方法纯化单克隆抗体, 回收率和纯度都可达80% 以上。
(二) 试剂和器材1. 试剂(1) 小鼠腹水。
(2) 硫酸铵或饱和硫酸铵溶液。
称(NH4)2S04(AR)400~425 克, 以50 ℃~80 ℃蒸馆水500ml溶解, 搅拌2O min, 趁热过滤。
冷却后以浓氨水(15M NH40H) 调pH 值至7.4 。
配制好的饱和硫酸铵, 瓶底应有结晶析出。
(3)0.06M pH 4.8 醋酸盐缓冲液。
贮存液: A 液,0.06M NaAc: 无水NaAc0.49218g 加蒸馆水至100mlB 液,0.06M HAc: 冰醋酸0.344ml 加蒸馆水至100ml应用液: 取上述 A 液59ml 与 B 液41ml 昆合, 用5M NaOH 调pH 值至 4.80.(4)0.lM pH 7.4 磷酸盐缓冲液(PBS). 取Na2HP04 · 12H20 28.94g,KH2P04 2.61g, 加蒸馆水至100Om1(5) 含137mM NaCl 2.6mM KCl 0.2mM EDTA 的pH 7.4 磷酸盐缓冲液(PBS): 取Na2HP04 12H20 28.94g KH2P04 2.61g NaC1 8.Og 、KCl 0.2g EDTA 0.06g, 加蒸馆水至100Oml2. 器材普通冰箱、低温离心机、电磁搅拌器, 紫外分光光度计、天平; 透析袋、塑料夹、精密pH 试纸; 烧杯、量桶、吸管、滴管、小瓶等。
单克隆抗体等电点
单克隆抗体等电点
单克隆抗体（mAb）的一个重要特征是它们的等电点（pI），本质上是抗体不带净电荷时的pH值，该值取决于抗体所含的带电氨基酸。
如果周围环境的pH值低于抗体的pI，则该分子带有净正电荷，而当pH值高于pI时，抗体将带有净负电荷。
在评估治疗性抗体的药代动力学（PK）特性时，靶介导的药物处置（TMDD）与非靶标相关机制都会影响整体PK行为，pI是后者的重要因素。
由于大多数细胞表面带负电荷，抗体需要带正电荷以进行有效的液相内吞作用（胞饮作用），因此环境pH值需要低于抗体的pI。
常用的检测单克隆抗体等电点的方式有电聚焦凝胶电泳（IEF）、阳离子交换色谱（CEX）、阴离子交换色谱、毛细管等电聚焦（CIEF），以及成像毛细管等电聚焦（iCIEF）等。
等电点值反映了蛋白质药物电荷与空间构象的均一性。
在实际应用中，单克隆抗体等电点的准确测定对于抗体药物的生产和质量控制至关重要。
单克隆抗体
单克隆抗体技术单克隆抗体的克隆化方法经过抗体测定的阳性孔，可以扩大培养，进行克隆，以得到单个细胞的后代分泌单克隆抗体。
克隆的时间一般说来越早越好。
因为在这个时期各种杂交瘤细胞同时旺盛生长，互相争夺营养和空间，而产生指定抗体的细胞有被淹没和淘汰的可能。
但克隆时间也不宜太早，太早细胞性状不稳定，数量少也易丢失。
克隆化的阳性杂交瘤细胞，经过一段时期培养之后，也还会因为细胞突变或特定染色体的丢失，使部分细胞丧失产生抗体的能力，所以需要再次或多次克隆化培养。
克隆化次数的多少由分泌能力强弱和抗原的免疫性强弱而决定。
一般说，免疫性强的抗原克隆次数可少一些，但至少要3～5次克隆才能稳定。
克隆化的方法很多，包括有限稀释法、显微操作法、软琼脂平板法及荧光激活分离法等。
（一）有限稀释法1．材料（1）微量培养盘，盘内各孔于克隆化前一天培养小鼠腹腔细胞（即饲养细胞）每孔2万～4万。
（2）HT培养基2．操作方法（1）取出抗体阳性孔细胞，用HT培养液制成细胞悬液。
并取样进行台盼兰染色，计数。
（2）用HT培养液将细胞稀释成200个/ml、40个/ml、20个/ml和的悬液。
（3）用吸管将细胞悬液分别种入微量培养盘，每孔0.05ml，细胞含量分别为10个/孔、2个/孔、1个/孔和0.5个/孔。
（4）5％CO2饱和湿度，37℃培养。
（5）每天用倒置显微镜观察克隆生长情况，选择只有一个集落生长的孔，弃掉两个以上和没有细胞生长的孔。
（6）克隆大量繁殖后，布满孔底的1/3～1/2时，测培养液抗体。
（7）抗体阳性孔细胞，移到有饲养层的组织培养瓶中，并传2～4代就可以脱离饲养细胞，建成克隆株。
（二）软琼脂克隆化借助撒在软琼脂上单个细胞定位生长，而达到克隆化，具体操作如下：1．配2.5％的琼脂糖30ml，水浴溶化后，移入45℃水浴中。
2．将117ml完全DMEM液和3ml 10倍浓度的DMEM液混合，置45℃水浴预热。
3．将琼脂糖与DMEM液混合，即为含0.5％琼脂糖的完全DMEM液，并加75×108 脾细胞。
单克隆抗体制备两次筛选的原理
单克隆抗体制备两次筛选的原理一、引言单克隆抗体是一种具有高度特异性和亲和性的抗体，广泛应用于生物医学研究、临床诊断和治疗等领域。
制备单克隆抗体的关键步骤之一就是筛选，而为了获得更高亲和力和特异性的抗体，通常需要进行两次筛选。
本文将介绍单克隆抗体制备两次筛选的原理及其意义。
二、第一次筛选原理第一次筛选是为了从混合的抗体群体中筛选出特异性较高的单克隆抗体。
筛选的关键是对目标抗原进行免疫反应，然后通过适当的方法分离和检测抗体。
1. 免疫反应：通常采用的方法是将目标抗原免疫到动物体内，激发免疫反应。
免疫反应的方式可以是免疫原注射或者抗原与适当的载体融合，然后注射到动物体内。
2. 分离抗体：在免疫反应完成后，可以从动物体内采集到血清或者细胞，其中含有大量的抗体。
通过一系列的分离步骤，如离心、过滤、层析等，将目标抗原特异性较高的抗体分离出来。
3. 检测抗体：得到抗体后，需要进行检测以确定其特异性。
常用的方法有酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫组化和免疫印迹等。
这些方法可以通过检测抗体与目标抗原的结合情况来评估抗体的特异性。
三、第二次筛选原理第一次筛选得到的抗体是一种多克隆抗体，包含多个亲和力和特异性不同的抗体。
第二次筛选的目的是从第一次筛选得到的抗体中筛选出特异性和亲和力更高的单克隆抗体。
1. 单克隆化：将第一次筛选得到的抗体进行单克隆化处理。
常用的方法有杂交瘤技术和限制稀释法。
杂交瘤技术是将抗体产生的B细胞与肿瘤细胞融合，形成杂交瘤细胞，进而筛选出单克隆抗体。
限制稀释法是将抗体稀释到一定程度，使得每个孔只有一个抗体分子，然后进行培养，最终得到单克隆抗体。
2. 亲和度筛选：通过亲和层析等方法对单克隆抗体进行筛选，选择亲和度更高的抗体。
亲和层析是将抗体与亲和基质结合，然后通过洗脱的方式分离出亲和度较高的抗体。
这一步骤可以进一步提高抗体的特异性和亲和力。
四、意义与应用单克隆抗体制备两次筛选的原理可以提高抗体的特异性和亲和力，使得抗体在生物医学研究、临床诊断和治疗等领域具有更广泛的应用。
常用的单克隆抗体检测方法
通过杂交瘤技术制备单克隆抗体，在杂交瘤制备完成后，需要对抗体进行一个检测，本文介绍了几种常用的抗体检测的方法（1）免疫酶技术免疫酶技术是将抗原抗体反应的特异性和酶对底物显色反应的高效催化作用有机结合而成的免疫学技术。
由于它特异性强，灵敏度高，现已广泛用于筛选和鉴定单抗。
①器材和试剂a、包被缓冲液：碳酸盐缓冲液：取LNa2CO38ml，LNaHCO317ml混合，再加75ml蒸馏水，调PH至。
Tris-HCl缓冲液（，L）：取LTris100ml，LHCl混合，加蒸馏水至1000ml。
b、洗涤缓冲液（的PBS）：KH2PO4,KCl,Na2HPO4•12H2O,NaCl,Tween-20，加蒸馏水至1000ml。
c、稀释液和封闭液：牛血清白蛋白（BSA）,加洗涤液至100ml;或用洗涤液将小牛血清配成5—10%使用。
d、酶反应终止液（2mol/LH2SO4）：取蒸馏水，滴加浓硫酸（98%）。
e、底物缓冲液（，磷酸盐-柠檬酸缓冲液）：取LNa2HPO4,L柠檬酸，再加50ml蒸馏水。
柠檬酸溶液及配成的底物缓冲液不稳定，易形成沉淀，因此一次不宜配制过多。
f、底物使用液:OPD底物使用液（测490nm的OD值）：OPD5mg,底物缓冲液10ml,3%H2O2。
TMBS或TMB底物使用液（测450nm的OD值）：TMBS或TMB（1mg/ml）,底物缓冲液10ml,1%H2O225ul。
ABTS底物使用液（测410nm的OD值）：ABTS,底物缓冲液1ml,3%H2O22ul。
8、抗体对照：以骨髓瘤细胞培养上清作为阴性对照，以免疫鼠血清作为阳性血清。
h、抗原：可溶性抗原：尽量纯化，以获得高特异性。
病毒感染的传代细胞或全菌抗原。
淋巴细胞等悬液。
i、酶标抗鼠抗体或酶标SPA 或其他类似试剂。
j、细胞固定液：-20℃丙酮；或丙酮-甲醛固定液：Na2HPO4100mg，KH2PO4500mg，蒸馏水150ml，丙酮225ml，甲醛125ml；或丙酮-甲醛溶液（1；1）；或-20℃甲醇。
单克隆抗体筛选原理
单克隆抗体筛选原理单克隆抗体是由单一B细胞克隆产生的具有高度特异性和一致性的抗体。
在生物学研究和医学诊断中，单克隆抗体因其特异性和灵敏度被广泛应用。
本文将介绍单克隆抗体的筛选原理，包括抗原-抗体反应、筛选阳性克隆、克隆扩增、抗体纯化和抗体鉴定等方面。
一、抗原-抗体反应抗原-抗体反应是单克隆抗体筛选的基础。
抗原是指能够与抗体结合的物质，具有特异的抗原表位。
抗体是由B细胞产生的免疫球蛋白，能够识别并结合抗原表位。
抗原-抗体反应具有高度特异性和可逆性，是免疫学检测中最常用的反应之一。
二、筛选阳性克隆在单克隆抗体的制备过程中，首先需要筛选出能够产生所需抗体的阳性克隆。
通常采用有限稀释法将B细胞与骨髓瘤细胞进行融合，获得大量的杂交瘤细胞。
通过筛选，选出能够产生所需抗体的阳性克隆。
三、克隆扩增筛选出的阳性克隆需要进行克隆扩增，以获得足够数量的细胞产生抗体。
通常采用有限稀释法或连续传代法进行克隆扩增，使杂交瘤细胞在培养基中增殖，产生大量的单克隆抗体。
四、抗体纯化获得的单克隆抗体往往含有杂质，如蛋白质、DNA等，需要进行纯化。
常用的纯化方法包括蛋白质A柱层析法、凝胶过滤法和离子交换层析法等。
这些方法能够将抗体与杂质分离，获得高纯度的单克隆抗体。
五、抗体鉴定纯化后的单克隆抗体需要进行鉴定，以确保其特异性和活性。
鉴定方法包括抗原结合试验、免疫荧光法、ELISA等。
通过这些方法可以检测单克隆抗体的特异性、亲和力和生物学活性，确保其适用于生物学研究和医学诊断。
总之，单克隆抗体的筛选原理主要包括抗原-抗体反应、筛选阳性克隆、克隆扩增、抗体纯化和抗体鉴定等方面。
通过对这些过程的了解和掌握，可以制备出高质量的单克隆抗体，为生物学研究和医学诊断提供有力的工具。
常用的单克隆抗体检测方法
常用的单克隆抗体检测方法通过杂交瘤技术制备单克隆抗体，在杂交瘤制备完成后，需要对抗体进行一个检测，本文介绍了几种常用的抗体检测的方法（1）免疫酶技术免疫酶技术是将抗原抗体反应的特异性和酶对底物显色反应的高效催化作用有机结合而成的免疫学技术。
由于它特异性强，灵敏度高，现已广泛用于筛选和鉴定单抗。
①器材和试剂a、包被缓冲液：碳酸盐缓冲液：取0.2mol/L Na2CO3 8ml，0.2mol/L NaHCO3 17ml 混合，再加75ml蒸馏水，调PH至9.6。
Tris-HCl缓冲液（PH8.0，0.02mol/L）：取0.1mol/L Tris 100ml，0.1mol/L HCl 58.4ml混合，加蒸馏水至1000ml。
b、洗涤缓冲液（PH7.2的PBS）：KH2PO4 0.2g，KCl 0.2g，Na2HPO4·12H2O 2.9g，NaCl 8.0g，Tween-20 0.5ml，加蒸馏水至1000ml。
c、稀释液和封闭液：牛血清白蛋白（BSA）0.1g，加洗涤液至100ml；或用洗涤液将小牛血清配成5-10%使用。
d、酶反应终止液（2mol/LH2SO4）：取蒸馏水178.3ml，滴加浓硫酸（98%）21.7ml。
e、底物缓冲液（PH5.0，磷酸盐-柠檬酸缓冲液）：取0.2mol/L Na2HPO4 25.7ml，0.1ml/L柠檬酸24.3ml，再加50ml蒸馏水。
柠檬酸溶液及配成的底物缓冲液不稳定，易形成沉淀，因此一次不宜配制过多。
f、底物使用液：OPD底物使用液（测490nm的OD值）：OPD 5mg，底物缓冲液10ml，3% H2O20.15ml。
TMBS或TMB底物使用液（测450nm的OD值）：TMBS或TMB（1mg/ml）1.0ml，底物缓冲液10ml，1% H2O2 25ul。
ABTS底物使用液（测410nm的OD值）：ABTS 0.5mg，底物缓冲液1ml，3% H2O2 2ul。
单克隆抗体纯化过程
单克隆抗体纯化过程引言单克隆抗体是一种高度特异性的蛋白质，被广泛应用于生物医学研究、临床诊断和治疗等领域。
单克隆抗体的纯化是制备高纯度、高活性的单克隆抗体的关键步骤之一。
本文将详细介绍单克隆抗体纯化过程及其相关技术。
单克隆抗体纯化过程1. 细胞培养与收获单克隆抗体的制备首先需要进行细胞培养。
通常使用哺乳动物细胞（如CHO细胞）作为表达宿主，将表达目标单克隆抗体的重链和轻链基因转染到CHO细胞中。
经过适当的培养条件，使得CHO细胞表达目标单克隆抗体。
当细胞达到一定密度后，可以进行收获。
收获过程中，需要将培养基与细胞分离，并将细胞沉淀下来。
常用的方法有离心和滤液等。
2. 细胞破碎与抗体提取收获的细胞需要进行破碎，以释放细胞内的抗体。
细胞破碎可以通过超声波、高压均质器、刀式破碎机等方法实现。
破碎后的细胞溶液中含有目标单克隆抗体、细胞碎片和其他杂质。
为了提取目标单克隆抗体，需要进行固液分离。
常用的方法有离心和滤液等。
离心可以将细胞碎片和大颗粒杂质沉淀下来，而滤液可以去除较小颗粒的杂质。
3. 亲和层析亲和层析是单克隆抗体纯化过程中最常用的方法之一。
通过利用抗体与特定配体（如蛋白A或蛋白G）之间的特异性结合，将目标单克隆抗体选择性地吸附到固定在亲和树脂上的配体上。
亲和层析通常包括以下步骤： - 树脂平衡：将亲和树脂与缓冲液进行平衡，以确保树脂处于最佳状态。
- 样品加载：将含有目标单克隆抗体的样品加入亲和树脂中，使得抗体与配体结合。
- 洗脱：使用特定的洗脱缓冲液，将非特异性结合的杂质洗脱，保留目标单克隆抗体。
- 再生：通过使用再生缓冲液，将目标单克隆抗体从亲和树脂上解离下来，以便进行下一轮层析。
4. 尺寸排阻层析尺寸排阻层析是一种基于分子大小差异的纯化方法。
通过利用填充在柱子中的尺寸排阻树脂，较大分子（如聚合物）被排除在外，而较小分子（如单克隆抗体）则可以通过树脂。
这样可以有效去除聚合物等大分子杂质。
尺寸排阻层析通常包括以下步骤： - 树脂平衡：将尺寸排阻树脂与缓冲液进行平衡。
单克隆抗体浓度测定方法
单克隆抗体浓度测定方法单克隆抗体浓度测定单克隆抗体浓度测定是一项关键的实验技术，用于确定单克隆抗体在样本中的浓度。
本文将介绍几种常用的测定方法。
ELISA法ELISA法是最常用的单克隆抗体浓度测定方法之一。
以下是ELISA 法的步骤：1.涂覆：将抗原溶液均匀涂覆在酶标板上。
2.固定：将酶标板放置在低温环境中，使抗原固定在酶标板上。
3.阻断：加入非特异性蛋白质（如牛血清蛋白）阻止非特异性结合。
4.反应：加入待测样本和单克隆抗体试剂，并孵育一段时间。
5.洗涤：用缓冲液洗涤酶标板，去除未结合的物质。
6.显色：加入底物溶液，使酶标板上的酶催化反应发生显色。
7.停止反应：加入停止剂，停止酶催化反应。
8.测定：用酶标仪测定反应溶液的吸光度，根据标准曲线计算待测样本中单克隆抗体的浓度。
Western Blot法Western Blot法也被广泛应用于单克隆抗体浓度测定。
以下是Western Blot法的步骤：1.蛋白质电泳：将待测样本和已知浓度的单克隆抗体样品进行SDS-PAGE电泳分离。
2.转印：将电泳分离后的蛋白质转移到聚乙烯二醇膜（PVDF）上。
3.阻断：用非特异性蛋白质（如牛血清蛋白）阻止非特异性结合。
4.孵育：加入标记有特异单克隆抗体的二抗，孵育一段时间。
5.洗涤：用缓冲液洗涤膜，去除未结合的物质。
6.显色：加入底物溶液，使特定蛋白质产生显色反应。
7.测定：用图像分析系统测量显色带的强度，根据已知浓度的单克隆抗体样品构建标准曲线计算待测样本中单克隆抗体的浓度。
免疫组化法免疫组化法是通过单克隆抗体与待测样本中的特定抗原结合来测定单克隆抗体浓度的方法。
以下是免疫组化法的步骤：1.取样：采集待测样本，如血液或组织切片。
2.固定：使用适当的固定剂将样本固定在载玻片上。
3.渗透：使用适当的加热或酶处理方法，增加抗体对抗原的渗透性。
4.成像：加入标记有荧光物质或酶标记的单克隆抗体试剂，与样本中的特定抗原结合。
5.洗涤：用缓冲液洗涤载玻片，去除未结合的物质。
人用单克隆抗体质量控制技术指导原则
人用单克隆抗体质量控制技术指导原则引言：单克隆抗体（monoclonal antibody，mAb）是一种由单一细胞克隆产生的抗体，具有高度特异性和亲和力，被广泛应用于医学研究和临床治疗。
然而，为了确保单克隆抗体的质量和安全性，需要建立一套严格的质量控制技术指导原则。
本文将详细介绍人用单克隆抗体质量控制技术的原则和方法。
一、生产过程质量控制1. 细胞系的选择和鉴定选择适合的细胞系是制备高质量单克隆抗体的关键。
应选择已经鉴定并验证的细胞系，确保其稳定性和一致性。
常用的细胞系包括CHO细胞和NS0细胞等。
2. 培养条件的优化为了获得高产量和高质量的单克隆抗体，需要对培养条件进行优化。
包括培养基的配方、温度、pH值、气体环境等。
此外，还需要对培养过程中的营养物质和代谢产物进行监测和控制。
3. 细胞培养过程监测监测细胞培养过程中的关键参数，如细胞密度、细胞活力、细胞代谢产物等。
通过定期取样并进行分析，及时发现并解决问题，确保培养过程的稳定性和一致性。
4. 细胞培养过程中的污染控制细胞培养过程中的污染会对单克隆抗体的质量产生严重影响。
因此，需要采取措施防止细菌、真菌和病毒的污染。
包括严格的无菌操作、培养基和培养器具的消毒等。
二、单克隆抗体质量控制1. 抗体纯化和纯度分析单克隆抗体的纯化是确保其质量的重要步骤。
常用的纯化方法包括亲和层析、离子交换层析和凝胶过滤层析等。
纯化后，需要对抗体的纯度进行分析，如SDS-PAGE和Western blot等。
2. 抗体活性和特异性检测抗体的活性和特异性是评估其质量的关键指标。
常用的检测方法包括ELISA、流式细胞术和免疫组化等。
通过与目标抗原的结合能力和特异性进行检测，评估抗体的活性和特异性。
3. 抗体稳定性评估抗体的稳定性是其在储存和使用过程中的重要性能之一。
需要对抗体在不同条件下的稳定性进行评估，如温度、pH值和离子强度等。
通过稳定性评估，确定抗体的适宜储存条件和有效期限。
单克隆抗体的实验流程
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筛选单克隆抗体的方法
筛选单克隆抗体的方法
单克隆抗体是一种广泛应用于生物医学研究和临床诊断的重要
工具。
然而，如何从众多的抗体中筛选出具有高亲和力和特异性的单克隆抗体一直是一个具有挑战性的问题。
下面介绍几种主要的筛选单克隆抗体的方法。
1. 杂交瘤技术
杂交瘤技术是制备单克隆抗体最常用的方法。
它包括四个主要步骤：免疫动物、细胞融合、筛选和克隆化。
该方法的优点是可以制备高亲和力和特异性较好的单克隆抗体，但其缺点是制备周期长、成本高，且适用范围受到制备抗原的限制。
2. phage display技术
phage display技术是一种通过噬菌体展示抗原表位以筛选单克隆抗体的方法。
在该方法中，抗体基因库被插入到噬菌体表面的蛋白质中，然后通过筛选可以筛选出具有高亲和力和特异性的单克隆抗体。
该方法的优点是速度快、成本低，且可以制备一系列不同抗原的单克隆抗体。
但其缺点是筛选的抗体可能存在亲和力较低或特异性较差的情况。
3. 单细胞PCR技术
单细胞PCR技术是一种通过单个B细胞进行PCR扩增和测序以制备单克隆抗体的方法。
该方法的优点是可以制备高亲和力和特异性较好的单克隆抗体，且可以避免杂交瘤技术中的克隆化步骤，但其缺点是制备周期长、成本高。
总体而言，筛选单克隆抗体的方法有多种，不同方法各有优缺点，选择合适的方法需要根据具体的实验要求进行评估。
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常用的单克隆抗体检测方法通过杂交瘤技术制备单克隆抗体，在杂交瘤制备完成后，需要对抗体进行一个检测，本文介绍了几种常用的抗体检测的方法（1）免疫酶技术免疫酶技术是将抗原抗体反应的特异性和酶对底物显色反应的高效催化作用有机结合而成的免疫学技术。
由于它特异性强，灵敏度高，现已广泛用于筛选和鉴定单抗。
①器材和试剂a、包被缓冲液：碳酸盐缓冲液：取L Na2CO3 8ml，L NaHCO3 17ml混合，再加75ml 蒸馏水，调PH至。
Tris-HCl缓冲液（，L）：取L Tris 100ml，L HCl 混合，加蒸馏水至1000ml。
b、洗涤缓冲液（的PBS）：KH2PO4 ，KCl ，Na2HPO4·12H2O ，NaCl ，Tween-20 ，加蒸馏水至1000ml。
c、稀释液和封闭液：牛血清白蛋白（BSA），加洗涤液至100ml；或用洗涤液将小牛血清配成5-10%使用。
d、酶反应终止液（2mol/L H2SO4）：取蒸馏水，滴加浓硫酸（98%）。
e、底物缓冲液（，磷酸盐-柠檬酸缓冲液）：取L Na2HPO4 ，L柠檬酸，再加50ml蒸馏水。
柠檬酸溶液及配成的底物缓冲液不稳定，易形成沉淀，因此一次不宜配制过多。
f、底物使用液：OPD底物使用液（测490nm的OD值）：OPD 5mg，底物缓冲液10ml，3% H2O2 。
TMBS或TMB底物使用液（测450nm的OD值）：TMBS或TMB（1mg/ml），底物缓冲液10ml，1% H2O2 25ul。
ABTS底物使用液（测410nm的OD值）：ABTS ，底物缓冲液1ml，3% H2O2 2ul。
g、抗体对照：以骨髓瘤细胞培养上清作为阴性对照，以免疫鼠血清作为阳性血清。
h、抗原：可溶性抗原：尽量纯化，以获得高特异性。
病毒感染的传代细胞或全菌抗原。
淋巴细胞等悬液。
i、酶标抗鼠抗体或酶标SPA或其他类似试剂。
j、细胞固定液：-20℃丙酮；或丙酮-甲醛固定液：Na2HPO4 100mg，KH2PO4 500mg，蒸馏水150ml，丙酮225ml，甲醛125ml；或丙酮-甲醛溶液（1；1）；或-20℃甲醇。
k、聚苯乙烯微孔板：40孔、96孔、或条孔；硬板或软板均可使用。
l、酶联免疫阅读仪；或光镜。
m、吸管、加样器及水浴箱、离心机等。
②可溶性抗原的酶联免疫吸附试验（ELISA）a、纯化抗原用包被液稀释至1-20ug/ml。
b、以50-100ul/孔量加入酶标板孔中，置4℃过夜或37℃吸附2小时。
c、弃去孔内的液体，同时用洗涤液洗3次，每次3-5分钟，拍干。
d、每孔加200ul封闭液4℃过夜或37℃封闭2小时；该步骤对于一些抗原，可省略。
e、洗涤液洗3次；此时包被板可-20℃或4℃保存备用。
f、每孔加50-100ul待检杂交瘤细胞培养上清，同时设立阳性、阴性对照和空白对照；37℃孵育1-2小时；洗涤，拍干。
g、加酶标第二抗体，每孔50-100ul，37℃孵育1-2小时，洗涤，拍干。
h、加底物液，每孔加新鲜配制的底物使用液50-100ul，37℃10-30分钟。
i、以2mol/L H2SO4终止反应，在酶联免疫阅读仪上读取OD值。
j、结果判定：以P/，或PN+3D为阳性。
若阴性对照孔无色或接近无色，阳性对照孔明确显色，则可直接用肉眼观察结果。
③全菌抗原的ELISASa、新鲜培养的细菌用蒸馏水或PBS悬浮，并调整细菌浓度至1×108个/ml。
必须指出，对于人畜共患病病原体需注意安全操作，最好是灭活处理。
b、每孔中加100ul 5%戊二醛溶液（L NaHCO3 95ml+25%戊二醛溶液5ml），37℃作用2小时，蒸馏水洗涤3次；加上述细菌悬液50ul/孔；37-56℃烘干；每孔加200ul 封闭液4℃过夜或37℃ 2小时封闭。
c、步骤b也可采用先每孔加50ul细菌悬液，37℃-56℃烘干，然后用-20℃预冷的无水甲醇室温作用15分钟，蒸馏水洗涤3次；每孔加200ul 封闭液4℃过夜或37℃ 2小时封闭。
d、洗涤液洗3次；此时包被板可在-20℃或4℃保存备用。
e、以下步骤同上法。
④用全细胞抗原的ELISAa、按常规方法培养细胞，接种病毒，收获感染细胞和未感染细胞，进行细胞计数，用PBS制成适当浓度悬液。
b、淋巴细胞悬液的制备采用新鲜外周血加肝素抗凝后，滴加于淋巴细胞分离液之上，1500rpm离心30分钟，吸取界面细胞洗涤二次，即为新鲜淋巴细胞悬液。
该细胞悬液中若仍混有红细胞，离心后加%的氯化铵溶液，室温10分钟，洗涤一次即可。
将该细胞悬液稀释至适当浓度。
c、每孔加100ul上述a或b的细胞悬液，使每孔含细胞5×104个；1500r/min 15分钟，甩去上清；室温干燥或吹干后用丙酮-甲醇（1：1）4℃固定10分钟；可4℃或-20℃保存备用。
d、以下步骤同上法。
⑤抗体捕捉ELISA试验本法用抗BALB/c 小鼠Ig的多克隆抗体捕捉待检样品中的McAb，再依次加抗原、酶标多克隆抗体及底物显色。
该法是常用的ELISA中较理想的一种；其操作步骤如下：a、以适当浓度的纯化抗鼠Ig抗体包被酶标板，每孔加100ul，37℃ 2小时或4℃过夜。
b、洗涤、拍干后加待测的McAb样品，37℃ 1-2小时。
c、洗涤后加适量的抗原，37℃ 1-2小时。
d、洗涤后加入酶标多克隆抗体，37℃ 1-2小时。
洗涤后加底物显色，判定结果。
⑥ABC-ELISA试验ABC-ELISA是在常规ELISA原理的基础上，增加了生物素（Biotin）与亲和素（Avidin）间的放大作用。
亲和素有4个亚单位组成，对生物素有高度的亲合力。
生物素很易与蛋白质共价结合。
因此，结合了酶的亲和素与结合有抗体的生物素发生反应即起到了多极放大作用。
其操作步骤如下：a、已知抗原的包被及加待检McAb样品，同间接ELISA 试验。
b、加生物素化抗鼠Ig抗体，每孔100ul，37℃ 1小时；洗涤。
c、加酶标亲和素，每孔100ul，37℃ 30分钟洗涤；加底物显色，判定结果。
⑦Dot-ELISA试验免疫斑点试验（Dot-ELISA）是以硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜为固相载体，进行抗原抗体反应的免疫检测手段。
该法采用不溶性底物（如DAB，或4-氯萘酚或AgNO3等），其与相应标记物（HRP、AP、胶体金）作用形成不溶性产物，呈现斑点状着色，从而易于判定结果。
根据所用的标记物不同，可分为HRP免疫斑点试验、AP免疫斑点试验和免疫金银斑点法等。
其操作步骤大致如下：a、将抗原液2-5ul点加于纤维素膜上，室温37℃干燥。
b、将纤维膜浸入封闭液中，37℃ 30分钟。
c、用洗涤液洗2次，吸干后加待检McAb样品，37℃ 1小时；用洗涤液振荡洗涤三次，每次5分钟，加HRP或AP或胶体金标记的抗鼠Ig抗体，37℃作用30分钟。
d、同法洗涤，吸干，用新配的相应底物溶液显色，然后水洗终止反应，观察结果。
⑧免疫组化染色法该法主要用于检测针对细胞抗原成分的McAb，常用的方法是间接免疫过氧化物酶试验（IIP，indirect immunoperoxidase）及APAAP技术。
其结果用光镜或倒置显微镜检查。
（2）免疫荧光技术免疫荧光技术可用于多种抗原的杂交瘤抗体检测，如细胞性抗原（包括细菌和动物细胞）、感染细胞中的病毒抗原和膜抗原等。
其操作简单、敏感性高，可直接观察抗原定位等优点，在McAb的筛选与鉴定上具有重要的应用价值。
①器材和试剂a、供检测抗体用的抗原制备固定细胞片或板，活细胞悬液。
b、PBS（，L）c、待检的McAb样品。
d、冷丙酮e、FITC（异硫氰酸荧光素）或TRITC（四甲基异硫氰酸罗丹明荧光素）标记的抗鼠Ig抗体等f、荧光显微镜，磁力搅拌器，离心机，水浴箱等。
②间接免疫荧光法a、固定细胞片的制备：生长在盖片上的细胞（接种或未接种病毒），可直接收获盖片，在PBS中洗涤，用4℃丙酮固定10分钟，空气干燥，置密封容器于-20℃保存备用；单细胞悬液可在盖片上制成涂片，固定方法同上。
细胞涂片的制备：将10ul细菌悬液（1×108个/ml）涂抹7×21mm盖片上，自然干燥后，用-20℃丙酮固定10-15分钟，于-20℃保存备用。
b、盖片在去离子水中湿润后置架上滴加10-20ul杂交瘤上清或其他待检样品；设立阳性、阴性对照；置37℃水浴孵育小时。
c、取出盖片置PBS中用磁力搅拌器洗涤15分钟。
d、盖片置架上，滴加工作浓度的抗鼠Ig的荧光抗体10-20ul，37℃孵育小时。
e、同法洗涤15分钟；取出盖片，用延缓荧光碎灭的封载剂（如缓冲甘油，9份甘油加1份PBS）封于干净载玻片上。
f、光显微镜上观察，阳性结果可见特异性荧光（FITC为黄绿色荧光，TRITC 为桔红色荧光）。
g、细胞固定片的制备，也可改在培养板孔中进行，其余步骤同上，在观察结果时，将培养板翻转置于荧光显微镜下，判断标准不变。
③细胞的膜荧光染色完整的活细胞的细胞膜，抗体不能透过。
如果细胞在4℃操作，则荧光染色仅限于细胞膜。
必须注意死细胞常以非特异性方式吸附大量荧光抗体，因此试验过程中要保证细胞的高活力。
活细胞的膜荧光染色大致步骤如下：a、制备活性较好的细胞悬液，调节浓度至107个/ml。
b、在小试管（5×50mm）中加入100ul细胞悬液，再加入100ul待检McAb的样品，混匀，4℃作用30-90分钟。
c、用洗涤液（PBS 900ml，小牛血清50ml，4%NaN3 50ml）洗二次，每次加洗涤液1-5ml，1000r/min离心5分钟，弃上清。
加入100ul荧光抗体，4℃作用30-90分钟。
d、同法洗涤，将细胞重新悬于20-30ul含10%甘油和10-100ug苯二胺/ml的溶液中；滴加于载玻片上，加盖片封载。
e、立即在荧光显微镜上检查。
f、细胞也可在染色后用1%多聚甲醛生理盐水固定，立即检查，或至少在4℃可保存一周。
（3）间接血凝试验间接血凝试验又称被动血凝试验（PHA），是目前应用较广的检测方法之一。
本试验是以包被可溶性抗原的红细胞作为指示系统，当被检抗体与包被在红细胞上的抗原产生特异性反应时，导致红细胞呈凝集现象。
可见，该法具有灵敏、快速、容易操作和无需昂贵仪器等优点，而且经改用醛化红细胞以后，克服原来重复性差的缺点。
①器材和试剂a、绵羊抗凝血，或人“O”型抗凝血。
b、缓冲液：PBS（）；醋酸缓冲液。
c、甲醛，丙酮醛，NaN3，抗凝剂等。
d、血凝板，振荡器等。
②多糖抗原的间接血凝试验a、甲醛化绵羊红细胞的制备：无菌采集绵羊颈静脉血50ml，用枸橼酸钠作抗凝剂；用5倍于红细胞压积的PBS（Na2HPO4·12H2O ，KH2PO4 ，NaCl ，蒸馏水1000ml）充分洗涤5次，每次1500r/min 5-10分钟，直至上清测定无蛋白质（用饱和硫酸铵滴定上清，观察有无白色沉淀），再以相同缓冲液配成25%红细胞悬液；将25%红细胞悬液与20%甲醛以：1的比例混匀，37℃水浴作用2小时，每15分钟振荡一次，红细胞颜色逐渐由鲜红色转变为棕色；以 PBS洗涤4次，每次2000r/min 10分钟，再以同样的PBS制成25%红细胞悬液；其后，重复醛化一次，方法同前；最后配成20%醛化绵羊红细胞悬液，加甲醛至%防腐，4℃保存备用。