dna提取的各种方法介绍
提取dna方法
提取dna方法
DNA提取的方法主要有以下几种：
1. 物理法：包括机械粉碎、超声波处理和玻璃片研磨等。
这些方法可以破坏细胞结构，释放出DNA。
2. 化学法：包括碱变性法和尿素变性法等。
这些方法通过改变DNA的理化性质使其解链，从而易于被提取出来。
3. 生物酶法：包括蛋白酶K法和纤维素酶法等。
这些方法利用特定的酶来降解蛋白质和纤维素等物质，从而释放出DNA。
4. 基因工程法：通过构建表达载体并导入宿主细胞中，使目的基因在宿主细胞内得到表达，从而产生可溶性或不可溶性的DNA片段。
5. 其他方法：包括电泳分离法和超速离心法等。
这些方法可以通过分离和纯化DNA片段来实现对DNA的提取。
需要注意的是，不同的方法和材料可能存在不同的风险和注意事项，因此在提取DNA时应该遵循正确的操作规程，确保安全和有效。
提取dna的方法及原理
提取dna的方法及原理提取DNA的方法及原理DNA提取是生物学和遗传学研究中的一项基础操作，它是获取DNA样本的过程。
DNA提取的方法有很多种，下面将介绍几种常用的DNA提取方法及其原理。
1. 高盐法高盐法是一种简单且常用的DNA提取方法。
其原理是利用高盐溶液中DNA与其他细胞组分（如蛋白质）之间的亲和性差异。
在高盐环境下，DNA更容易溶解而不与蛋白质结合，从而实现DNA的提取。
具体步骤包括细胞破碎、加入高盐溶液、离心分离DNA和去除蛋白质等。
2. 酚/氯仿法酚/氯仿法是一种经典的DNA提取方法。
其原理是利用酚和氯仿两种溶剂的密度差异，将DNA从细胞中分离出来。
具体步骤包括细胞破碎、加入酚/氯仿混合液、离心分离DNA和去除蛋白质等。
3. 硅胶柱法硅胶柱法是一种高纯度DNA提取方法。
其原理是利用硅胶柱上的硅胶颗粒与DNA之间的亲和性差异。
DNA样本在经过一系列处理后，通过硅胶柱，DNA能够与硅胶颗粒结合，而杂质则被洗脱。
最后，通过洗脱DNA，即可获得高纯度的DNA。
硅胶柱法的优点是提取纯度高、操作简单，适用于分子生物学研究和临床诊断。
4. 磁珠法磁珠法是一种高效、快速的DNA提取方法。
其原理是利用带有亲和基团的磁珠与DNA之间的亲和性，实现DNA的选择性吸附和洗脱。
具体步骤包括磁珠悬浮液制备、样本加入、磁珠与DNA结合、磁珠分离、洗脱DNA等。
除了上述常用的DNA提取方法外，还有其他一些特殊的DNA提取方法，如酶解法、离心法、凝胶切割法等。
这些方法在不同的实验和应用中具有各自的特点和优势。
总结起来，DNA提取的方法多种多样，选择适合的方法取决于实验目的、样本类型和实验条件等。
无论采用哪种方法，都需要严格控制实验操作，以确保提取到高质量的DNA样本。
DNA提取的成功与否直接影响到后续的实验结果，因此在进行DNA提取时，需要注意样本的保存、细胞破碎的方式、溶解液的选择等因素，以获得可靠且高纯度的DNA。
DNA的提取方法
DNA的提取方法DNA提取是在分子生物学研究和临床诊断中非常重要的步骤。
DNA提取的目的是获取足够纯净的DNA样本，以供后续实验和分析使用。
这篇文章将介绍几种常用的DNA提取方法。
1.高盐法：高盐法是最常用的DNA提取方法之一、它通过加入高盐浓度的缓冲液来破坏细胞膜并释放DNA。
首先，待提取的细胞或组织样本被收集并转移到离心管中。
接下来，加入裂解缓冲液，通常含有高浓度的盐并对抗离子泵，从而使细胞膜破裂并释放DNA。
裂解后，使用酒精或酚/氯仿萃取法来分离DNA与其他细胞组分。
最后，通过旋转沉淀法或乙醇沉淀法从溶液中提取DNA。
2.CTAB法：CTAB法是一种适用于植物和真菌等高纤维、低DNA含量的样品提取方法。
CTAB（十六烷基三甲基溴化铵）作为一种阴离子表面活性剂，可以结合在DNA和脂质上，并形成沉淀，从而使DNA分离出来。
首先，样本被粉碎并浸泡在CTAB缓冲液中，含有CTAB、盐和EDTA等。
接下来，DNA与其他细胞组分一起沉淀，通过聚乙二醇进行沉淀，并通过离心分离。
然后，洗涤DNA沉淀并通过乙醇沉淀法或旋转沉淀法提取DNA。
3.柱式纯化法：柱式纯化法是一种用于高质量DNA提取和纯化的流程。
该方法基于DNA与硅胶膜吸附和洗脱的原理。
首先，细胞或组织样品经过裂解后，溶液经过去蛋白酶和去RNA酶处理。
然后，将样品通过柱子，DNA与硅胶膜相互作用，并形成强烈的结合，同时其他细胞组分被清除。
接着，使用洗涤缓冲液去除杂质，最后使用低盐缓冲液来释放DNA。
这种方法可以提供高纯度的DNA样本，适用于大规模DNA提取和高通量分子生物学实验。
4.磁珠法：磁珠法是一种基于磁性珠子的DNA提取方法。
该方法使用特定大小和表面修饰的磁性珠子将DNA选择性地吸附到表面上。
首先，待提取的细胞或组织样本被裂解，并加入磁珠和DNA结合缓冲液。
接下来，通过磁力将磁珠与DNA结合物分离出来，并洗涤去除杂质。
最后，通过低盐缓冲液将DNA释放出来并收集。
提取dna的方法
提取dna的方法提取DNA的方法是从一种物质中检索出DNA分子的过程，包括酶切、基因工程等。
DNA提取方法有核酸沉淀法、缓冲溶液法、植物提取法、实验室提取法等。
下面将对这些方法进行详细介绍。
1、核酸沉淀法：核酸沉淀法是一种常用的DNA提取方法，它的原理是通过pH调节使DNA沉淀，然后将DNA从溶液中收集。
步骤如下：首先，将样品用盐水或蛋白酶/胰蛋白酶消化；其次，加入超纯水、EDTA缓冲液和NaCl，调节pH至5.5；然后，加入乙醇，溶解DNA并沉淀；最后，在0℃-4℃维持1小时，收集沉淀的DNA。
2、缓冲溶液法：缓冲溶液法是通过改变溶液的pH值来提取DNA的一种方法，它利用DNA的结合能力和电性作用力，将DNA结合到某种特定的溶剂上，然后从溶剂中提取出来。
步骤如下：首先，将样品加入缓冲溶液，消化；其次，加入非离子表面活性剂，使DNA脱水；然后，加入离子表面活性剂，将DNA与其他组分分离；最后，用低温冷藏保存，以便收集DNA。
3、植物提取法：植物提取法是通过一系列物理和化学步骤，从植物细胞中提取DNA的一种方法。
步骤如下：首先，将植物细胞磨碎，用盐水悬浮；其次，加入碱性溶液，使细胞膜脱落；然后，加入非离子表面活性剂，溶解脱落的细胞膜，将DNA沉淀；最后，加入乙醇，将DNA沉淀，冷却保存，然后收集DNA。
4、实验室提取法：实验室提取法是一种基于细菌的实验室方法，它利用发酵的细菌细胞中的DNA进行提取。
步骤如下：首先，将细菌细胞加入特定的溶剂液中，使细胞膜脱落；其次，加入特定的酶和蛋白酶，将细胞内的DNA 溶解；然后，加入非离子表面活性剂，将溶解的DNA沉淀；最后，用乙醇沉淀DNA，将沉淀的DNA精细收集。
以上就是提取DNA的方法，主要有核酸沉淀法、缓冲溶液法、植物提取法和实验室提取法四种方法，它们都具有不同的优点和缺点，因此，在实际应用中，应该根据样品的不同，选择适当的提取方法。
各种DNA提取方法
各种DNA提取方法提取方法提取方法提取方法一，基因组DNA提取方法制备基因组DNA是进行基因结构和功能研究的重要步骤，通常要求得到的片段的长度不小于100-200kb。
在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素，以保证DNA的完整性，为后续的实验打下基础。
主要是CTAB方法，其他的方法还有1物理方式:玻璃珠法超声波法研磨法冻融法。
2化学方式：异硫氰酸胍法碱裂解法3生物方式:酶法。
根据核酸分离纯化方式的不同有:硅质材料、阴离子交换树脂等试验步骤：1、贴壁细胞用胰酶消化，离心收集。
2、细胞重悬于冰冷的PBS漂洗一次，离心收集。
试验步骤2再重新作一边。
3、加入5mlDNA提取缓冲液，(10mmol/%SDS)混匀。
4、加入25ul 蛋白酶K使终浓度达到100ug/ml 混匀，50℃水浴3h 5、用等体积的酚抽提一次，2500rpm离心收集水相，用等体积的（酚，氯仿，异戊醇）混合物抽提一次，2500r/min离心收集水相6、用等体积的氯仿，异戊醇抽提一次。
加入等体积的5mol/L的LiCL混匀，冰浴，10min.。
7、2500rpm离心10min.转上清于一离心管中。
加入等体积的异丙醇。
室温10min。
2500rpm离心10min。
弃上清。
8、加入倍体积3mol/L乙酸钠与2倍体积-20℃预冷无水乙醇。
-20℃20min。
9、12000r/min室温离心5min。
弃上清。
将DNA 溶于适量TE中。
二，外周血DNA提取技术分离外周血白细胞提取方法：试验步骤：1、取人肘静脉血5ml，EDTA抗凝，2500rpm 离心10min。
2、小心吸取上层血浆，分装到3个离心管中。
3、在血细胞中加入3倍体积的溶血液，摇匀，冰浴15min。
4、2500rpm离心10min，弃上清。
5、加入10ml 溶血液，摇匀，冰浴15min。
6、3000rpm离心10min，弃上清。
7、倒置离心管，去掉残液。
8、得白细胞，－80℃冻存。
DNA提取方法和步骤
DNA提取方法和步骤一、常见的DNA提取方法：1. 酚/氯仿法（Phenol/Chloroform Extraction）：通过使用酚/氯仿等有机溶剂来分离DNA分子。
2. 盐水法（Salting out）：通过使用高盐浓度来析出DNA分子。
3. 硅胶柱法（Silica-based purification）：通过与硅胶矩阵相互作用，从混合溶液中纯化DNA。
4. 高盐法（High salt method）：通过使用高盐浓度来沉淀DNA。
5. CTAB法（Cetyltrimethylammonium bromide method）：通过使用CTAB（十六烷基三甲基溴化铵）来分离DNA。
二、通用的DNA提取步骤：1.样本收集：从所需生物体（如植物组织、动物组织、血液等）中收集样本。
样本的品质对提取后的DNA质量影响很大，因此需要保证样本的新鲜度和完整性。
2.细胞破碎：将收集到的样本进行细胞破碎，使DNA从细胞的内部释放出来。
这可以通过机械方法（搅拌、刮擦等）、溶解酶或离心等方法来实现。
3. 除去蛋白质和RNA：加入蛋白酶等酶解蛋白质，使其降解分解。
同时，也可以加入RNase酶降解RNA，以免在提取过程中受到污染。
4.DNA沉淀：加入盐溶液以增加DNA的溶解性，然后加入酒精来沉淀DNA分子。
酒精的加入可以调节盐溶液中Na+和DNA的酒精沉淀剂（如异丙醇或乙醇）的比例，从而沉淀出DNA。
5.洗涤：将沉淀下的DNA溶于适当的缓冲液中，以去除沉淀剂、盐等杂质。
6. 保存：最后，将DNA保存在适当的缓冲液中，如TE缓冲液（Tris-EDTA），并在低温下存储。
三、酚/氯仿法DNA提取步骤：1.细胞破碎：将细胞或组织加入到含有裂解缓冲液的试管中，使用机械方法（高速离心、搅拌等）或酶解来破碎细胞膜。
2.调整pH值：加入适量的酚/氯仿溶液，并快速倒转试管数次，使试管中的溶液充分混合。
酚会与细胞残渣中的蛋白质结合形成亲水性复合物，而氯仿可以帮助去除蛋白质。
DNA提取的几种方法
DNA提取的几种方法DNA提取的几种方法(1).浓盐法利用RNP和DNP在电解溶液中溶解度不同，将二者分离，常用的方法是用1M氯纳提取化钠抽提,得到的DNP粘液与含有少量辛醇的氯仿一起摇荡,使乳化,再离心除去蛋白质,此时蛋白质凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA位于上层水相中,用2倍体积95%乙醇可将DNA钠盐沉淀出来.也可用0.15 MNaCL液反复洗涤细胞破碎液除去RNP,再以1MNaCL提取脱氧核糖蛋白,再按氯仿---异醇法除去蛋白.两种方法比较,后种方法使核酸降解可能少一些.以稀盐酸溶液提取DNA时,加入适量去污剂,如SDS可有助于蛋白质与DNA的分离。
在提取过程中为抑制组织中的DNase对DNA的降解作用,在氯化钠溶液中加入柠檬酸钠作为金属离子的烙合剂.通常用.15MNaCL,0.015M柠檬钠,并称SSC溶液,提取DNA.(2).阴离子去污剂法：用SDS或二甲苯酸钠等去污剂使蛋白质变性,可以直接从生物材料中提取DNA.由于细胞中DNA与蛋白质之间常借静电引力或配位键结合,因为阴离子去污剂能够破坏这种价键,所以常用阴离子去污剂提取DNA.(3).苯酚抽提法：苯酚作为蛋白变性剂,同时抑制了DNase的降解作用.用苯酚处理匀浆液时,由于蛋白与DNA联结键已断,蛋白分子表面又含有很多极性基团与苯酚相似相溶。
蛋白分子溶于酚相，而DNA溶于水相。
离心分层后取出水层，多次重复操作，再合并含DNA的水相，利用核酸不溶于醇的性质，用乙醇沉淀DNA。
此时DNA是十分粘稠的物质，可用玻璃漫漫绕成一团，取出。
此法的特点是使提取的DNA保持天然状态.(4).水抽提法：利用核酸溶解于水的性质,将组织细胞破碎后,用低盐溶液除去RNA，然后将沉淀溶于水中，使DNA充分溶解于水中,离心后收集上清液.在上清中加入固体氯化钠调节至2.6M.加入2倍体积95%乙醇,立即用搅拌法搅出.然后分别用66%٠；80%和95%乙醇以及丙铜洗涤,最后在空气中干燥,既得DNA样品.此法提取的DNA中蛋白质含量较高,故一般不用.为除蛋白可将此法加以改良,在提取过程中加入SDS.提取DNA主要有SDS和CTAB法，其实提取效果的好坏主要看提取的对象是什么样的材料，在提取之前一定要好好分析材料的特性，然后在设计实验步骤。
常见的dna提取方法及优缺点
常见的DNA提取方法及优缺点1. 概述DNA提取是分子生物学和遗传学研究中的一个重要步骤。
通过提取DNA，可以进一步研究细胞或生物个体的基因组组成和遗传信息。
本文将介绍三种常见的DNA提取方法，并分析它们的优缺点。
2. 酚-氯仿法（Phenol-Chloroform Extraction）酚-氯仿法是DNA提取的传统方法之一。
其主要步骤包括细胞或组织的裂解、DNA与酚-氯仿混合、离心分离DNA上层水相、以异丙醇沉淀DNA等。
优点•能够提取高质量的DNA，适用于进一步的分子生物学实验和定量分析。
•可以从各种生物样品（如细胞、组织、血液等）中提取DNA。
•提取的DNA可以长期保存，并可用于构建DNA文库。
•操作复杂，需要多个步骤和化学试剂。
•酚-氯仿是一种有毒物质，对操作人员和环境有一定的危害。
•提取时间较长，通常需要几小时。
3. 硅胶柱法（Silica Membrane DNA Extraction）硅胶柱法是一种快速和高效的DNA提取方法，使用了硅胶膜作为DNA的吸附载体。
其主要步骤包括裂解细胞或组织、与硅胶柱上的硅胶膜相互作用、洗脱纯化DNA等。
优点•提供高品质和高纯度的DNA，适用于PCR、测序等高灵敏度实验。
•操作简便，减少了操作步骤和所需的化学试剂。
•提取时间短，通常只需要几十分钟。
•对于某些样品，如血液、组织较多的样品，硅胶柱法可能会出现DNA吸附容量不足的问题。
•需要购买硅胶柱等专业设备和试剂。
4. 盐溶液法（Salt Precipitation）盐溶液法是一种简单和经济的DNA提取方法，利用高盐溶液沉淀DNA。
其主要步骤包括细胞或组织裂解、加入盐溶液、离心沉淀DNA、洗脱纯化DNA等。
优点•操作简单，只需要少量的化学试剂和设备。
•节约时间，通常只需要30分钟左右。
•适用于小规模和初级实验室。
缺点•提取的DNA质量和纯度较低，不适用于一些高灵敏度的实验。
•不适用于样品量较大的情况，容易出现沉淀量不足的问题。
各种检材DNA的提取
酚-氯仿法——注意事项
酚-氯仿法是目前最常用、最可靠的方法之一，无论 是血液还是血痕标本均适用 所提取的DNA纯度高，可满足各种分子生物学检测技 术的需要
但该法操作较为繁琐、耗时长，影响了其在实践工作 中的广泛应用。
（三）碱性裂解法
碱性裂解法是指在强碱作用下，使构成细胞的蛋白质 成分谷氨酸、天冬氨酸、半胱氨酸、酪氨酸残基等迅 速发生电离，从而快速破坏蛋白质的一级结构。 检材在强碱性pH条件及一定温度状况下能迅速破碎细 胞膜及核膜，使核酸酶变性及DNA释放。
Chelex-100法——步骤
取适量血痕检材置1.5ml EP管中，加入1ml 灭菌无菌 水浸泡20min，>10000rpm离心3min，用1000ul进样器 小心地吸去上清液。 加5％chelex-100 200u1，于水浴锅中56℃水浴30min， 振荡混匀。 沸水中煮10min，取出后立即置于冰上3min，>10000 rpm离心1min。上清液即为DNA提取液，可在2-6℃保 存1个月，在-20℃长期保存。
酚-氯仿法——步骤
取适量血痕检材置于1.5ml EP管中，加入1ml 无菌水 浸泡20min，>10000rpm离心3min，弃去上清。 加入500μ l STE液悬浮沉淀物，加入20μ l 10 % SDS 及10 mg/ ml 蛋白酶K 4 μ l ，54℃水浴消化3小时
离心取上清液至另一EP管中，加入500μ l苯酚/氯仿/ 异戊醇混合物，振荡到出现絮状物，>10000rpm离心 3min。
各种检材DNA的提取
夏
水
秀
一、DNA的提取方法
dna提取方法
dna提取方法DNA提取方法。
DNA提取是分子生物学实验中的一项重要步骤，它是从生物样本中分离出DNA分子的过程。
DNA提取的目的是为了获得足够纯度和浓度的DNA样本，以便进行后续的实验操作，比如PCR扩增、测序等。
在实际操作中，DNA提取的方法有很多种，下面将介绍几种常用的DNA提取方法。
1. 酚/氯仿提取法。
酚/氯仿提取法是最早的DNA提取方法之一，它利用酚和氯仿两种有机溶剂的密度差异来分离DNA。
首先，将生物样本经过细胞裂解，然后加入酚/氯仿混合溶液，混合均匀后离心，DNA会在上清液中，而蛋白质和其他杂质则会沉淀在底部。
接着将上清液转移到新的离心管中，加入等体积的异丙醇，再次离心，DNA会沉淀在离心管底部。
最后将上清液倒掉，用70%乙醇洗涤DNA沉淀，最后溶解于适量的缓冲液中。
酚/氯仿提取法简单易行，适用于各种类型的生物样本。
2. 离心柱法。
离心柱法是一种基于硅胶膜或硅胶颗粒的DNA提取方法，它利用DNA与硅胶的亲和性来实现DNA的分离纯化。
首先，将样本加入裂解缓冲液，然后加入蛋白酶和蛋白酶K进行细胞裂解。
接着将裂解液加入离心柱中，经过离心后，DNA会在离心柱上残留，而其他杂质则会通过离心柱底部的滤膜排除。
然后用洗涤缓冲液洗涤离心柱，最后用去离子水或低盐缓冲液洗脱DNA。
离心柱法操作简便，能够快速、高效地获得纯度较高的DNA样本。
3. 硝酸盐法。
硝酸盐法是一种利用硝酸盐沉淀DNA的提取方法。
首先，将生物样本进行细胞裂解，然后加入等体积的乙醇和适量的硝酸盐溶液，混合后DNA会沉淀出来。
接着用乙醇洗涤DNA沉淀，最后溶解于适量的缓冲液中。
硝酸盐法操作简单，适用于大规模DNA提取。
4. 磁珠法。
磁珠法是一种利用磁珠颗粒与DNA的亲和性来实现DNA的分离纯化的方法。
首先，将生物样本进行细胞裂解，然后加入磁珠颗粒，DNA会在磁场的作用下与磁珠结合，然后用磁场将DNA与磁珠分离出来。
接着用洗涤缓冲液洗涤磁珠，最后用去离子水或低盐缓冲液洗脱DNA。
dna提取方法的种类
dna提取方法的种类嘿，你知道吗？DNA 提取的方法那可真是五花八门啊！就好像我们生活中有各种各样的美食做法一样。
有一种方法呢，就像是细心的挖掘工人，一点点地把 DNA 从细胞这个“宝库”里慢慢挖出来，这就是酚氯仿提取法。
它虽然步骤稍微繁琐了点，但是就像老工匠的手艺，能很靠谱地把 DNA 给弄出来哟！还有一种方法呀，就像是个聪明的小助手，利用一些特殊的试剂和条件，让 DNA 乖乖地现身，这就是磁珠法。
它操作起来相对简单，就像我们走捷径一样，能快速地得到我们想要的 DNA 呢！再来看看硅胶膜法，这就好比是一个有魔力的滤网，能把 DNA 给筛选留下来。
它就像是个神奇的小工具，能把杂质都给挡在外面，只留下纯净的 DNA 呢。
另外啊，盐析法也挺有意思的。
它就像是在细胞的世界里制造一场“盐分风暴”，让 DNA 在这场风暴中沉淀下来。
是不是感觉很奇妙呀？那碱裂解法呢，就像是给细胞来一场特别的“洗礼”，让 DNA 从中解脱出来。
这种方法有时候就像是一场冒险，充满了未知和惊喜呢！不同的 DNA 提取方法都有各自的特点和适用场景呢，就像我们不同的人有不同的性格和擅长的事情一样。
有的方法适合大规模提取，有的适合少量珍贵样本，有的简单快捷，有的则更加精确。
你想想看，如果我们要研究一个很重要的生物课题，那选择合适的DNA 提取方法不就像是给这个课题找到了一把合适的钥匙吗？要是选错了方法，那不就像拿着一把不合适的钥匙去开锁，怎么都打不开呀！而且哦，在实际操作中，可不能马虎大意呢。
就像做饭一样，调料放多了或者放少了，味道可能就不对啦。
提取 DNA 也是，每个步骤都要认真对待，不然可能就得不到好的结果哦。
总之呢，DNA 提取方法的种类丰富多样，它们就像是我们探索生命奥秘的得力工具。
我们要根据不同的需求和情况，选择最适合的那一种，这样才能更好地解开生命的密码呀！所以呀，可别小瞧了这些方法哦，它们可是有着大作用呢！。
提取dna的方法
提取dna的方法提取DNA的方法。
DNA提取是分子生物学和遗传学研究中的一项基础工作，它是分析DNA序列、进行PCR扩增、测序等实验的前提。
本文将介绍几种常用的DNA提取方法，希望能为科研工作者提供一些参考。
首先，我们来介绍化学法提取DNA的方法。
化学法是最常用的DNA提取方法之一，其原理是利用蛋白酶K和盐酸胍等试剂破坏细胞膜和蛋白质，使DNA从细胞中释放出来。
具体操作步骤为，首先，将待提取的细胞样品加入含有蛋白酶K 的溶液中，经过一定时间的消化后，再加入盐酸胍等试剂，使DNA沉淀出来。
最后，用乙醇洗涤和溶解，即可得到纯净的DNA。
其次，机械法也是一种常用的DNA提取方法。
机械法主要利用机械力破碎细胞壁，释放DNA。
常用的机械法包括玻璃珠研磨法和超声波破碎法。
玻璃珠研磨法是将样品和玻璃珠一起加入管中，通过高速震荡使细胞破碎，释放DNA。
超声波破碎法则是利用超声波的高能量震荡作用，破坏细胞壁，释放DNA。
这两种方法操作简单，适用于大批量的样品提取。
另外，磁珠法也是一种高效的DNA提取方法。
磁珠法利用表面修饰的磁珠与DNA的亲和性，通过磁力场控制DNA的分离和纯化。
操作步骤为，首先，将待提取的细胞样品与表面修饰的磁珠混合，使DNA与磁珠结合；然后，通过磁力场的作用，将磁珠与结合的DNA沉淀到管底；最后，去除上清液，用洗涤缓冲液洗涤，即可得到纯净的DNA。
最后，有机溶剂法也是一种常用的DNA提取方法。
有机溶剂法利用有机溶剂与DNA的亲和性，将DNA从细胞溶液中提取出来。
操作步骤为，首先，将待提取的细胞样品加入有机溶剂中，使DNA与有机相结合；然后，通过离心将DNA沉淀到管底；最后，去除上清液，用洗涤缓冲液洗涤，即可得到纯净的DNA。
综上所述，化学法、机械法、磁珠法和有机溶剂法是常用的DNA提取方法，每种方法都有其适用的场合和特点。
在实际操作中，可以根据实验需要和样品性质选择合适的提取方法。
希望本文对DNA提取方法有所帮助，谢谢阅读！。
dna提取方法
dna提取方法
DNA提取是分离和纯化细胞内的DNA分子的过程。
以下是常用的DNA提取方法：
1. 经典的酚-氯仿提取法：将细胞裂解并溶于酚-氯仿溶液中，通过离心分离DNA上清液和蛋白质/ RNA/酚相，然后分别用异丙醇沉淀和洗涤 DNA，最后用缓冲液溶解 DNA。
2. 盐溶解法：将细胞裂解并使用盐水缓冲溶解 DNA，然后离心去除蛋白质和碎细胞碎片。
最后，通过异丙醇沉淀 DNA，洗涤和溶解 DNA。
3. 磁珠法：利用表面修饰的磁珠、离心和磁场来分离和纯化DNA。
磁珠上会吸附 DNA，然后用缓冲液洗涤和溶解 DNA。
4. 硅胶柱法：利用硅胶膜在碱性条件下与 DNA 结合，然后用缓冲液洗涤和溶解 DNA。
5. 腐蚀酶法：通过腐蚀细胞壁和细胞膜来释放细胞内 DNA，然后离心去除细胞渣。
最后，通过异丙醇沉淀 DNA，洗涤并溶解 DNA。
这些方法都可以从不同来源（如细菌、动植物组织和血液）中提取 DNA，以便分析、克隆或测序。
提取的 DNA 可用于分子生物学研究、犯罪鉴定、基因组学研究等各种应用。
提取dna的方法及步骤
提取dna的方法及步骤提取DNA的方法及步骤DNA（脱氧核糖核酸）是构成生物遗传信息的基本单位，因此，准确提取DNA样本是进行遗传研究、基因工程和犯罪侦查等领域的重要步骤。
以下将介绍几种常见的DNA提取方法及其步骤。
方法一：酚氯仿法酚氯仿法是一种常用的DNA提取方法，其步骤如下：1. 收集样本：可以是人体组织、血液、细胞培养物等。
确保样本新鲜，并避免受到污染。
2. 细胞破碎：将样本加入含有细胞破碎缓冲液的离心管中，通过离心将细胞沉淀。
3. 酚氯仿提取：将沉淀加入酚氯仿混合液中，轻轻混匀，并离心以分离DNA。
4. 沉淀DNA：将上清液转移到新的离心管中，加入冷乙醇沉淀DNA。
5. 洗涤：用70%乙醇洗涤沉淀的DNA，以去除杂质。
6. 干燥：将洗涤后的DNA在室温下晾干或用低温真空干燥器加速干燥。
方法二：盐析法盐析法是一种简单易行的DNA提取方法，其步骤如下：1. 细胞破碎：将样本加入含有细胞破碎缓冲液的离心管中，通过离心将细胞沉淀。
2. 盐析提取：加入高盐缓冲液使DNA与其他核酸和蛋白质分离。
3. 沉淀DNA：将上清液转移到新的离心管中，加入冷乙醇沉淀DNA。
4. 洗涤：用70%乙醇洗涤沉淀的DNA，以去除杂质。
5. 干燥：将洗涤后的DNA在室温下晾干或用低温真空干燥器加速干燥。
方法三：硅胶柱法硅胶柱法是一种高纯度DNA提取方法，其步骤如下：1. 细胞破碎：将样本加入含有细胞破碎缓冲液的离心管中，通过离心将细胞沉淀。
2. 硅胶柱处理：将细胞沉淀加入硅胶柱中，经过洗涤和离心，将DNA吸附在硅胶柱上。
3. 洗涤：用洗涤缓冲液洗涤硅胶柱，以去除杂质。
4. DNA洗脱：加入低盐缓冲液，使DNA从硅胶柱上洗脱出来。
5. 洗涤：用70%乙醇洗涤洗脱后的DNA，以去除杂质。
6. 干燥：将洗涤后的DNA在室温下晾干或用低温真空干燥器加速干燥。
方法四：酶解法酶解法是一种特异性较高的DNA提取方法，其步骤如下：1. 细胞破碎：将样本加入含有细胞破碎缓冲液的离心管中，通过离心将细胞沉淀。
基因组DNA的分离纯化提取方法综述
基因组DNA的分离纯化提取方法综述
1.高盐法：
高盐法是最常用的基因组DNA提取方法之一、该方法利用高浓度盐水（如NaCl）沉淀DNA，同时去除蛋白质和其他污染物。
步骤包括细胞破碎、蛋白质沉淀和DNA沉淀。
此方法简便、廉价，适用于大多数细胞类型。
2.酚酚氯仿提取法：
酚酚氯仿提取法是另一个常用的基因组DNA提取方法。
该方法利用酚
酚提取细胞组织中的DNA，并通过氯仿的添加分离DNA和蛋白质。
此方法
适用于多样的生物标本，如细菌、真菌、植物等。
3.环硅酸盐法：
环硅酸盐法基于DNA与硅颗粒间的结合原理。
在此方法中，细胞裂解后，DNA与硅颗粒结合形成复合物，复合物通过离心和洗涤步骤获得纯化
的DNA。
该方法适用于基因组DNA的高通量纯化。
4.硅基附着法：
硅基附着法也是一种利用硅颗粒的DNA分离纯化方法。
此方法常利用
硅基膜滤板或硅颗粒填充的柱子，使DNA与硅基结合，然后通过洗涤和离
心步骤分离纯化DNA。
该方法适用于小样本量或少量目标DNA的纯化。
5.磁珠吸附法：
磁珠吸附法是一种快速高效的DNA提取方法。
通过特定的磁珠与DNA
的结合，可将DNA快速提取纯化。
该方法通常结合磁力分离和洗涤步骤，
使DNA与磁珠结合，然后通过磁力将DNA分离。
此方法适用于高通量或高
效率DNA提取。
提取基因组dna的方法
提取基因组dna的方法
提取基因组DNA的方法通常分为以下几个步骤：
1. 细胞破碎（Cell lysis）：将待提取的细胞或组织样本进行破碎，使细胞膜失去完整性，释放出细胞内的DNA。
破碎可以通过机械方法（如研磨、切割、振荡等）或化学方法（如洗涤、酸碱处理等）进行。
2. DNA除去蛋白质（Protein removal）：将细胞破碎产物中的蛋白质进行去除，以防止其干扰后续的DNA提取和分析步骤。
通常使用酶处理（如蛋白酶K）或蛋白质沉淀剂（如酚/氯仿）来除去蛋白质。
3. DNA纯化（DNA purification）：通过使用某种纯化方法，将破碎产物中的DNA与其他杂质（如RNA、酶、盐等）进行分离和纯化。
常用的纯化方法包括酚/氯仿提取法、硅胶膜柱法、离心柱纯化法等。
4. DNA沉淀和洗涤（DNA precipitation and washing）：通过加入适当的盐类和酒精，使DNA以沉淀的形式析出。
沉淀后，通过洗涤来去除残留的盐和酒精。
5. DNA溶解（DNA resuspension）：将沉淀的DNA用适当的缓冲液进行溶解和复溶，使其恢复到溶液中，并得到可用于后续实验分析的DNA溶液。
这些步骤只是提取基因组DNA的一般流程，具体方法可能因实验目的和待提取样本的特性而有所差异。
基因组dna的提取
基因组dna的提取基因组DNA提取是指从生物体中分离出基因组DNA序列的过程。
提取基因组DNA的方法有多种，常用的有：一、离心法1、吸取法：利用某种化学溶剂，将原始细胞迅速破解，使细胞内的大部分物质溶解，然后将细胞中的染色体离心收集；2、膜破碎法：将原始细胞置于某种膜系统（如绝对乙醇或蛋白酶体系）中，使细胞形变造成破碎，膜系统可以有效提取出细胞内的染色体；3、超音速冲击法：利用超音速脉冲对细胞外的水进行冲击，使水的光圈扩散，从而使细胞瞬间破碎，将染色体释放到溶液之中。
二、连锁反应法1、PCR法：利用复性DNA引物，连同重复序列的特异性引物，在反转录试剂的有序作用下，可以将外源DNA 装入原核细胞内；2、QPCR法：利用反转录酶作用反转录得到DNA 并与特定序列特异性引物结合，由此凝聚出一个碱基序列，可以在任何体系里广泛检测基因；3、单核苷酸多态性（SNP）分析法：利用基因序列中碱基位点多态性突变进行基因组DNA 提取分析。
三、物理力学方法1、电精提法：通过外加电场，使基因组DNA在液体中电性扩散，最终达到提取的目的；2、毛细管电泳法：将基因组DNA 溶解后，将溶质加入到毛细管内，产生电力场在毛细管内运动，由此实现基因组DNA 的提取。
四、免疫原性法1、免疫原性抗体提取法：使用具有特定抗原性的免疫原性抗体将细胞中抗原性蛋白结合起来，再通过离心法收集；2、竞争抗体抗体提取法：先在细胞中抗原性蛋白与竞争抗体（未指定抗原性）结合，然后再进行离心收集，从而获得的抗原性蛋白；3、抗体标记抗体提取法：先将抗原性蛋白结合抗体标记抗体，然后通过离心法获取抗原性蛋白。
以上就是基因组DNA提取的常见方法。
基因组DNA提取在基因研究、生物学研究等领域有着重要的作用，所以不能忽视其重要性。
细菌dna的提取方法
细菌dna的提取方法
一、水煮模板法——主要用于PCR反应
操作Z简便，对试剂条件要求低。
缺点是纯度不够高，可能会含有RNA、蛋白等杂质。
但是作为一般检测目的的PCR反应模板已经足够了。
二、CTAB/NaCl 法
CTAB/NaCl法提取的DNA纯度较高，蛋白杂质较少，保存时间长，编者更喜欢把终浓度为20μg/ml RnaseA加在第5步温育的时候，这样Z后没有RnaseA污染。
每一步操作细致一些，得到的DNA 可用于Southern blot。
注意：长时间保存DNA可放于-20℃，但要尽量减少反复冻融，否则影响DNA质量。
三、盐析法
介于方法一和方法二之间，CTAB虽然取出糖分效果较好，但CTAB本身也是有毒的，所以此方法放弃了CTAB。
实验注意：提基因组Z好要将枪头尖剪掉（剪掉以后在酒精灯上迅速过一下，使其断口圆滑）。
以免枪头损伤基因组，抽干时Z 好是风干。
DNA实验室常用的DNA提取方法有哪些？
DNA实验室常用的DNA提取方法有哪些？DNA实验室常用的DNA提取方法有Chelex100法、有机法、磁珠法、盐析法、NaOH法等，本文详细介绍这些方法。
(一)Chelex100法原理：Chelex100是一种螯合树脂，由苯乙烯、二乙烯苯共聚体组成，含有成对的亚氨基二乙酸盐离子，起着螯合基团作用，对多价金属离子有极强亲和力。
在低离子强度、碱性及100℃煮沸条件下，可以使细胞膜裂解，并使与DNA结合的蛋白质变性，DNA游离。
检材基质中一般含有大量金属离子，在低离子强度及加热条件下，金属离子可以辅助脱氧核糖核酸酶降解DNA，也可以抑制PCR 反应，所以在提取DNA时，加入Chelex100，螯合了金属离子，防止了DNA降解，提高了PCR扩增成功率。
方法：剪取适量血斑、精斑、汗斑、鼻涕斑、指甲、毛根、软组织等等生物检材，置于0.5ml离心管内，加入适量纯水，室温浸泡，13,000rpm离心5min，上清丢弃，管底留约20μl左右液体及检材基质，加入100-200μl 5%Chelex100(有时需加适量PK)56℃15min至数10小时不等，100℃8min，13,000rpm离心5mim，上清备用。
(二)有机法原理：有机法提取DNA一般是指用平衡酚(又叫饱和酚)、氯仿等按不同比例混合，采用不同方法提取DNA。
DNA易溶于水，不溶于有机溶剂，蛋白质分子表面带有亲水性基因，很容易进行水合作用，并在表面形成一层水化层，使蛋白质分子能够顺利地进入到水溶液中，形成稳定的胶体溶液。
在有机溶剂存在的情况下，破坏了蛋白质胶体溶液的稳定性，使蛋白质变性沉淀，离心后，有机溶剂于试管底层(有机相)，DNA继续稳定的存在于上层水相，蛋白质沉淀存在于两相之间。
水相中的DNA在大量冷无水乙醇及单价阳离子存在的情况下，水会溶于乙醇中，而DNA从水相中析出，沉淀，通过离心回收。
方法：剪取适量检材，置于0.5ml离心管内，清洗方法同用Chelex100法提取DNA，加入适量纯水及终浓度为100μg/ml PK，37℃-56℃孵育15min至数10小时，有时间隔一段时间补加适量PK →13,000rpm 5min → 吸上清于另一管 → 加入等体积平衡酚 → 振荡或颠倒彻底混匀 → 13,000rpm5min →吸上清水相于另一管，加入等体积1：1混合平衡酚：氯仿 → 振荡或颠倒彻底混匀 →13,000rpm 5min → 吸上清水相于另一管 →加入等体积氯仿 → 振荡或颠倒彻底混匀 →13,000rpm 5min → 吸上清水相于另一管 →加入2.5倍体积冷无水乙醇冷冻保存10min以上 →13,000rpm 5-10min → 弃上清 → 室温凉干或100℃ 5min烤干 → 加入10-20μl纯水 → 室温溶解或100℃5min帮助溶解 → 离心上清备用(三)磁珠法原理：(异)硫氰酸胍(GuSCN)是强烈蛋白变性剂，不破坏蛋白质一级结构，能破坏细胞膜及核膜蛋白，并使核酸酶失活，释放DNA。
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天然状态的DNA 是以脱氧核糖核蛋白(DNP)形式存 在于细胞核中。要从细胞中提取DNA 时，先把DNP 抽提出来，再把P除去，再除去细胞中的糖，RNA 及无机离子等，从中分离DNA 。 DNP和RNP在盐溶液中的溶解度受盐浓度的影响而 不同。DNP在低浓度盐溶液中，几乎不溶解，如在 0.14 mol/L的氯化钠溶解度最低，仅为在水中溶解度 的1%，随着盐浓度的增加溶解度也增加，至1mol/L 氯化钠中的溶解度很大，比纯水高2倍。 RNP在盐溶液中的溶解度受盐浓度的影响较小，在 0.14mol/L氯化钠中溶解度较大。因此，在提取时， 常用此法分离这两种核蛋白。
1.为什么在低温下进行？
2.分别加柠檬酸钠和EDTA的作用 ?
3.加SDS的作用？
4.加NaCL的作用，为什么要加到1mol/L?
5.加入异戊醇有什么作用？
待测液中测得的核酸μg数 待测液中制品的μg数
×100
二苯胺显色法测定DNA含量
强酸、加热条件下，可以使DNA中的嘌呤碱基与 脱氧核糖间的糖苷键断裂，而产生嘌呤碱基，脱氧 核糖与嘧啶核苷酸。其中2ˊ脱氧核糖在酸性环境中 成为 ω― 羟基 ―γ― 酮基戊醛，此物与二苯胺反应生 成蓝色化合物，在595nm处有最大吸收。DNA在40400μg范围内光密度与DNA浓度成正比。在反应液中 加入少量乙醛可提高灵敏度，而且其他化合物的干 扰也显著降低。当样品含少量 RNA 时不影响测定， 而蛋白质、多种糖及其衍生物芳香，羟基醛都能与 二苯胺形成各种有色物质，干扰测定。
操作方法： 1. DNA标准曲线的制定： 取10支试管，分成2组，依次加入0.4、0.8、1.2、1.6 和2.0mlDNA标准溶液。添加蒸馏水，使之都成为2ml。另 取2只试管，各加2ml蒸馏水作为对照。然后各加入4ml二 苯胺试剂，混匀。于60 恒温水浴中保温1h，冷却后于 595nm处进行比色测定。取两管平均值，以DNA浓度为横 坐标，光吸收值为纵坐标，绘制标准曲线。 2. 制品的测定： 取2支试管，各加2ml待测液（内含DNA应在标准曲 线的可范围之内）和4ml二苯胺试剂，摇匀。其于操作同 标准曲线的制作。 3. 根据测得的光吸收值，从标准曲线待测上查出相应 该光吸收值DNA的含量，计算出制品中的百分含量。
（ 4）.水抽提法: 利用核酸溶解于水的性质,将组织细胞破碎后,用低 盐溶液除去RNA，然后将化钠调节至2.6M.加入2倍体积95%乙醇,立即用搅拌 法搅出.然后分别用66% ٠80%和95%乙醇以及丙铜洗 涤,最后在空气中干燥,既得DNA样品.此法提取的DNA 中蛋白质含量较高,故一般不用.为除蛋白可将此法加 以改良,在提取过程中加入SDS.
DNA的提取方法简介
为了研究DNA分子在生命代谢中的作用，常常 需要从不同的生物材料中提取DNA.由于DNA 分子在生物体内的分布及含量不同，要选择适 当的材料提取DNA。 动植物中，小牛胸腺۰动物肝脏۰鱼类精子，植 物种子的胚中都含有丰富的DNA。 微生物中，谷氨酸菌体含7%~10%，面包酵母 含4%，啤酒酵母含6%，大肠肝菌含9%~10%。
二. 从猪脾中提取DNA
1. 操作步骤: 取鲜猪脾,去脂、血,称取10g,用预冷的1×SSC溶液洗2次，剪碎。 按睥：1×SSC=1; 5W/V 加入50ml预冷的1×SSC，用高速组织 捣碎机破碎8次,每次5秒,中间间隔30秒。 将匀浆液放在烧杯中， 于冰盐浴中冷却30分钟。4000转/分钟 离心10分钟。充掉上清。沉淀物中再加2倍体积的1×SSC搅匀，离 心，弃上清，重复2次。 将所得沉淀悬于5倍体积的PH8.0、0.15MNaCL—0.1Na2MEDTA 溶液中。边搅拌边漫漫滴加5%SDS最终浓度达1%为止。然后加入 固体氯化钠使其最终浓度达1mol/L，继续搅60分钟，以确保氯化钠 全溶。所得混合液倒入磨口塞的锥形瓶中，加入同体积氯仿—异戊 醇，激烈振荡20分钟，4000r离心20分钟，上层水相取出后倒入烧杯， 以同积氯仿—异戊醇重复去蛋白2次。 取出水相于烧杯中，逐渐加入2倍体积95%乙醇，玻棒搅动， DNA纤维绕于璃玻棒上后挤干，用70%乙醇洗DNA纤维2次，用 95%乙醇洗一次，再用乙醚洗一次，取出并挤干。
3.DNA提取的几种方法 (1).浓盐法 利用RNP和DNP在电解溶液中溶解度不同，将二者分离，常 用的方法是用1M 氯 纳提取化钠抽提,得到的DNP粘液与含有少 量辛醇的 氯仿一起摇荡,使乳化,再离心除去蛋白质,此时蛋白质 凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA位于上层水相中,用2倍 体积95%乙醇可将DNA 钠盐沉淀出来.
１、二苯胺试剂：使用前称取 0.8g 二苯胺（需在70% 乙醇试 剂中重结晶 2 次 ) ，溶于 180 ml 冰乙酸中，再加入 8ml 过氯酸 （60%以上），混匀待用，临用前加入0.8ml 1.6%乙醛溶液，所 配试剂应为无色。 每组需56ml 共需2800ml ２、DNA标准溶液：（须经定磷法确定其浓度）取标准DNA 以0.01N NAOH配成200微克／毫升的标准液。 每组需12ml 共需600ml ３、1.6% 乙醛：取 47% 乙醛 3.4ml，加重蒸水定容至 100ml （放于冰箱中，一周之内可以使用）。 共需70ml ４、 ( 测样品液：准确称取猪脾 DNA 或用紫外分光法中剩下 的DNA液配成10微克／毫升的溶液。 每组需4ml 共需200ml
1、核酸的理化性质
RNA和核苷酸的纯品都呈白色粉末或结晶，DNA则 为白色类似石棉样的纤维状物。除肌苷酸、鸟苷酸具有 鲜味外，核酸和核苷酸大都呈酸味。 DNA、RNA和核苷酸都是极性化合物，一般都溶于 水，不溶于乙醇、氯仿等有机溶剂，它们的钠盐比游离 酸易溶于水，RNA钠盐在水中溶解度可达40g/L。DNA 在水中为10g/L，呈黏性胶体溶液。在酸性溶液中， DNA、RNA易水解，在中性或弱碱性溶液中较稳定。
从各种材料中提取DNA方法不同，分离提取的 难易程度也不同。 对于低等生物。如从病毒中提取DNA 比较容 易，多数病毒DNA 分子量较小，提取时易保 持其结构完整性。 从细菌及高等动植物中提取DNA难度大一些。 细菌DNA 分子量较大，一般达2×10 道尔顿。 因 此 易 被 机 械 张 力 剪 断 。 细 菌 DNA， 除 核 DNA 外，还有质粒DNA 等。
（2）.阴离子去污剂法: 用SDS或二甲苯酸钠等去污剂使蛋白质变性,可以直 接从生物材料中提取DNA .由于细胞中DNA与蛋白质之 间常借静电引力或配位键结合,因为阴离子去污剂能够 破坏这种价键,所以常用阴离子去污剂提取DNA. （3）.苯酚抽提法: 苯酚作为蛋白变性剂,同时抑制了DNase的降解作用. 用苯酚处理匀浆液时,由于蛋白与DNA 联结键已断,蛋白 分子表面又含有很多极性基团与苯酚相似相溶。蛋白分 子溶于酚相，而DNA溶于水相。离心分层后取出水层， 多次重复操作，再合并含DNA 的水相，利用核酸不溶 于醇的性质，用乙醇沉淀DNA 。此时DNA是十分粘稠 的物质，可用玻璃漫漫绕成一团，取出。此法的特点是 使提取的DNA保持天然状态 .
2.细胞的破碎
细菌有坚硬的细胞壁，首先要破碎经胞。方
法有三种： ①机械方法：超声波处理法、研磨法、 匀浆法； ②化学试剂法：用SDS处理细胞；
③酶解法：加入溶菌酶或蜗牛酶，都可
使细胞壁破碎。
由于高等动物DNA 主要存在于细胞核与线粒体 中，所以提取时有两个困难（高等植物与此类 似）： ①破碎细胞难；从处死动物۰分离组织器宫到 破碎细胞费时长。在此时期间DNA 可能会被DN ase降解，而动物组织：特别是肌肉组织很难破碎, 即使是较易破碎的肝۰肾等组织也往往使用组织 匀浆器，易造成DNA 断裂。 ②分子量大，一般比细菌的大2—3个数量级， 比病毒的大4—5个数量。对不同生物材料，要根 据具体情况选择适当的分离提取方法。
也可用0.15 MNaCL液反复洗涤细胞破碎液除去RNP,再以 1MNaCL提取脱氧核糖蛋白,再按氯仿---异醇法除去蛋白.
两种方法比较,后种方法使核酸降解可能少一些.
以稀盐酸溶液提取DNA 时,加入适量去污剂,如SDS可有助于 蛋白质与DNA 的分离。在提取过程中为抑制组织中的DNase对 DNA 的降解作用,在氯化钠溶液中加入柠檬酸钠作为金属离子 的烙合剂.通常用.15MNaCL,0.015M柠檬钠,并称SSC溶液,提取 DNA.
2. 实验材料，仪器和试剂： （1） 实验材料：新鲜猪脾： （2）仪器：量筒：1×10、3×100烧杯：2×100，2×250；磨 口锥形瓶：1×250、1×500；吸管：1×1、1×10；滴管、玻棒 离心机、电动搅拌器、台秤、剪刀、镊子。 （3） 试剂： ① 20×SSC：175.2gNaCL，88.2g柠檬酸钠•2H2O，PH=7.0加 水至1000ml； ② 1×SSC，0.1×SSC由①做相应的稀释得来； ③ NaCL-Na2EDTA液：8.77gNaCL，3.72gNa2EDTA溶于 800ml蒸馏水中，用固体NaOH调PH=8后定容至1000； ④ 5%SDS（W/V）：6gSDS溶于100ml45%乙醇中； ⑤ 氯仿-异戊醇=24：1（体积比） ⑥ 其他:95%乙醇，盐冰. 数据:DNA重,产率: DNA%=