{推荐}实验一药理实验基础知识
药理学实验的基础知识.doc
第一章药理学实验的基础知识一、药理学实验课的目的和要求药理学实验课的目的在于通过实验，使学生掌握进行药理学实验的基本方法，了解获得药理学知识的科学途径，验证药理学中的重要基本理论，更牢固地掌握药理学的基本概念。
在实验课中还应培养学生科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风，并初步具备客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；（2）结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识达到充分理解；（3）估计实验中可能出现的情况和发生的问题。
实验中（1）将实验器材妥善安排，正确装置；（2）严格按照实验指导书上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；（3）认真、细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出时间、表现以及最后转归，联系课堂讲授内容进行思考；（4）注意节约实验材料。
实验后（1）整理实验结果，经过分析思考，写出实验报告，按时交给指导教师；（2）整理实验器材，洗净擦干，妥为安放。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
做好实验室的清洁卫生工作。
二、实验动物的捉持和给药法实验1.1 蛙和蟾蜍的捉持和给药法[目的] 学习蛙和蟾蜍的捉持和淋巴囊给药法。
[材料] 蛙或蟾蜍；注射器、针头、生理盐水。
[方法] 1.捉持法通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名指及小指夹住。
2.淋巴囊内注射法蛙及蟾蜍皮下有多个淋巴囊，注入药物后易于吸收。
通常将药物注射于胸、腹或股淋巴囊。
蛙及蟾蜍的皮肤很薄，缺乏弹性，注射后药物易自针眼漏出，故作胸部淋巴囊注射时应将针头插入口腔，由口腔底部穿过下颌肌层而达胸部皮下；作股淋巴囊注射时，应由小腿皮肤剌入，通过膝关节而达大腿部皮下。
这样才可避免药液外漏。
注入药液量一般为0.25ml∽0.50ml试以生理盐水作胸淋巴囊和股淋巴囊注射练习。
药理学实验的基本知识
大鼠、豚鼠、兔、猫等的腹腔注射皆可参
照小鼠腹腔注射法。但应注意家兔与猫在 腹白线两侧注射（应在离腹白线约1cm处进 针）。
3．肌肉注射法
小鼠、大鼠、豚鼠肌肉注射 一般因肌肉少， 不作肌肉注射，如需要时，可将动物固定 后，一手拉直动物左或右侧后肢，将针头 刺入后肢大腿外侧肌肉内，
小鼠一侧药液注射少于0.4ml，针头选用5～ 7号。
三、药理学实验课的要求
实验前 仔细阅读本课程和有关课程的讲义，了解
实验的目的、要求、步骤和操作程序。 结合实验内容复习有关理论。
（二）实验时
保持实验室的整齐、清洁，保持实验室安静，不 要高声谈笑，不得进行与实验无关的活动。
爱护公共财物,各组仪器和器材由各组使用
按照实验步骤，认真操作，注意保护实验动物和 标本，节省实验器材和药品。
选择一根最为充盈的血管，右手持4号针头使其与 尾部呈30度角刺入静脉，针头在静脉内平行推进 少许，左手三指连针头和鼠尾一起捏住固定，以 防动物活动时针头脱出。回抽见血，且推动药液 无阻力、并可见沿静脉血管出现一条白线说明针 头在血管内，可注药
。如遇到阻力较大，局部发白变硬时，说明针头 不在静脉内，需拔出针头重新穿刺。注射完毕后 拔出针头，轻按注射部止血。一般选择尾两侧静 脉，针刺宜从尾尖端开始，渐向尾根部移动，以 备反复应用。
兔一般选用耳缘静脉，狗由前肢或后肢皮 下静脉注射。
一般兔与猫可注入空气10～20ml；狗需注入 70～150ml空气。
3.心脏取血法：
用粗针头一次针刺心脏大量抽取血液，可 致动物死亡。此法常用于豚鼠、猴等
4.大量放血法：
大鼠可采取摘除眼球，由眼眶动脉放血致 死。断头、切开股动脉亦可使其大量失血 而死。家兔可在麻醉情况下，由颈动脉放 血，并轻轻挤压胸部，尽可能使之大量放 血致死。
药理学实验指导
药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。
【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。
【药品】0.9%生理盐水。
【动物】小白鼠、大鼠、家兔。
【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。
此法用于淋巴囊注射。
毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。
2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。
双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。
3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。
不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。
4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。
将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。
二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。
如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。
常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。
皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。
注药量一般为0.1～0.2ml/10g。
肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学是研究药物对生物体产生作用的科学，而药理学实验是用来研究、验证药物的药效、毒性和代谢等特性的重要手段。
在进行药理学实验之前，研究人员需要掌握一些基础知识，以确保实验的可靠性和科学性。
药理学实验的分类药理学实验通常可以分为体外实验和体内实验两大类。
体外实验体外实验是在体外环境（如离体器官、细胞培养皿等）中进行的实验，用于研究药物对细胞、基因等的作用机制和生物效应。
体内实验体内实验是在动物模型或人体中进行的实验，用于评价药物的生物活性、毒性和药代动力学特性等。
药理学实验的设计原则进行药理学实验时，必须遵守一些设计原则，以确保实验结果的准确性和可靠性。
1.随机分组：实验对象在实验前应随机分配到不同的实验组，以减少实验结果的偶然性。
2.双盲对照：在动物实验中，研究人员应当实现实验组和对照组的盲法实验，以减少实验结果的主观影响。
3.样本量控制：实验设计时需要合理确定实验组和对照组的样本量，以保证实验结果的统计学意义。
4.质量控制：在进行实验的过程中，需要确保实验操作的标准化和一致性，以减少操作误差。
药理学实验的常用技术在药理学实验中，有许多常用技术可以帮助研究人员获取所需数据和信息，例如：•ELISA检测技术：用于测定细胞因子、蛋白质等分子在样本中的浓度。
•Western blot：检测蛋白质表达水平和结构特征的技术。
•细胞色素释放试验：用于评价药物对细胞毒性的影响。
•动物行为学实验：评估药物对动物运动、认知等行为的影响。
药理学实验的伦理和安全注意事项在进行药理学实验时，研究人员需要遵守相关的伦理规范和安全措施，以保障实验对象的权益和研究人员的安全。
1.动物实验伦理：研究人员应当遵守动物实验的伦理规范，尽量减少动物的痛苦和不必要的死亡。
2.实验室安全：在实验室操作时应当穿戴个人防护装备，确保实验操作的安全。
3.数据保密：研究人员需要确保实验数据的保密性，防止实验数据泄露。
结语药理学实验作为药物研发的重要环节，需要研究人员具备扎实的基础知识和实验技术，以确保实验结果的科学性和可靠性。
药理学实验基础知识与
实验误差与控制
系统误差
由于实验方法、仪器设备、试剂等因素引起的误差，具有 可重复性和规律性。控制方法包括标准化操作、校准仪器 设备、使用合格试剂等。
随机误差
由于偶然因素引起的误差，具有不可预测性。控制方法包 括增加样本量、多次重复实验等。
过失误差
由于操作失误、记录错误等人为因素引起的误差。控制方 法包括加强实验操作培训、实施严格的质控措施等。
实验动物的捉拿、标记与分组
捉拿与标记
在药理学实验中，通常使用实验动物如小白鼠、大鼠、兔子等。实验人员需要掌 握正确的捉拿技巧，避免对动物造成不必要的应激或损伤。同时，为了便于实验 过程中的管理和记录，需要对动物进行标记，如编号、性别、体重等。
分组
为了比较不同药物或不同处理对实验结果的影响，实验中通常需要将动物随机分 成若干组，每组动物数量应保持一致，并遵循随机化原则。分组时应确保各组动 物在重要变量上均衡可比，以减小误差和偶然因素的影响。
实验数据的统计分析
描述性统计
对实验数据进行整理、分类和描述， 如计算平均值、中位数、标准差等。
推论性统计
根据样本数据推断总体特征，如进行 t检验、方差分析、卡方检验等。
回归分析
研究自变量与因变量之间的数量关系， 揭示影响因变量的因素及其程度。
统计分析软件
使用SPSS、SAS、Excel等统计分析 软件进行数据处理和统计分析，提高 数据处理效率和准确性。
05
药理学实验安全与伦理
实验安全防护措施
实验室安全规定
遵守实验室安全规定，确保实验 人员的人身安全。
防护设备
根据实验需要，正确使用防护眼镜、 实验服、手套等防护设备。
化学品管理
了解实验中使用的化学品性质，正 确存储和使用，防止泄漏和误操作。
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
一、实验对象：
本次实验的主要对象是大学生，其中包括了药学院的学生和其他学院的学生，这些学生都通过本次实验学习药理学的基础知识，以为他们日后的实践做准备。
二、实验内容：
药理学是生命科学的一个分支，是专门研究药物用于治疗疾病的方式及其机制的学科，且以研究活性物质及其分子方法为基础。
本次实验室的主要内容是学习药理学基础知识，包括药物谱、药物作用机制、药物代谢、药物毒性和药物副作用等等。
三、实验方法：
1、首先，选择药理学相关书籍作为参考，仔细阅读，深入了解药理学的基本概念和原理。
2、在理论学习之后，结合实验实践，进行有关药理学的实验，熟悉药理学实验的基本流程及其实验技术。
3、实验完成以后，通过讨论、总结和分析，形成药理学实验基础知识的实验报告。
四、总结
本次实验是为了让参与者深入了解药理学的基本概念和原理，掌握药理学实验的基本流程及实验技术。
通过本次实验，参与者可以更加熟悉药理学的学习，并能为他们日后的临床实践打下良好的基础。
药理实验讲义
实验一一、药理学实验的基础知识1、实验动物的标记大、小鼠和白色家兔的标记常用3－5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。
常用的方法：1号——左前腿 2号——左腰部3号——左后腿 4号——头部5号——正中 6号——尾根部7号——右前腿 8号——右腰部9号——右后腿 10号——不标记2、小鼠的捉持和给药方法⑴ ig: 一般给药量为0.1～0.3ml/10g。
⑵ H: 一般给药量为0.05～0.2ml/10g。
⑶ ip: 一般给药量为0.1～0.3ml/10g。
⑷ im: 一般每腿不超过0.1ml。
⑸ iv(尾静脉）：一般给药量为0.1～0.2ml/10g。
2、大鼠的捉持和给药方法实验动物的给药剂量一般按mg/kg(有时也用g/kg)。
为了方便，大鼠和豚鼠可按每100g 计算,小鼠可按每10g计算。
那么，给药剂量=药物浓度×给药体积。
例：小白鼠体重22g，ip盐酸吗啡10mg/kg，药物浓度0.1%，应注射多少？计算方法：0.1%=0.1g/100ml=100mg/100ml=1mg/ml10mg/kg→10ml/kg22g→0.022kg10ml/kg×0.022kg=0.22ml或：10ml/kg→0.1ml/10g给药量：0.1ml/10g×(2.2×10g)[小鼠体重] =0.22ml3、实验记录的内容和实验报告的整理实验记录一般应包括：（1）时间、天气、温度（2）实验标本：如动物的种类、体重、标记和标号等。
（3）实验药物：如药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量及给药途径等。
（4）实验进程、步骤及方法的详细记录。
（5）观测指标的变化或原始描记图纸的资料。
每次实验必须随时做记录。
告一段落后对所获结果进行整理，画出必要的表格进行统计、分析做出结论。
实验报告的写作实验报告一般应包括：[实验目的][实验材料]包括仪器、药品和动物。
[实验方法]简明扼要的叙述，关键步骤写清。
药理学实验
药理学基础实验实验一药理学实验的基本知识和技术 6课时一、动物实验的基本知识和技术（一）实验动物的要求和选择药理学实验要求根据不同的实验目的选用相应合格的医学实验动物。
实验动物按微生物控制分为四级：一级为普通动物，要求不带有人兽共患病的病原体以及体外寄生虫；二级为清洁动物，在一级要求基础上还必须不带有动物传染病的病原体；三级为无特定病原体的动物；四级为无菌动物。
药理教学实验可选用一级普通动物，科研实验必须用二级以上的实验动物。
1．青蛙和蟾蜍其心脏能在离体情况下保持较持久地节律性搏动，可用来观察药物对心脏的作用；其坐骨神经腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用，用于局麻药和肌松药实验。
2．小鼠最为常用，易大量繁殖，适用于需要大量动物的实验，如半数致死量测定和药物的初筛实验。
3．大鼠用途与小鼠基本相同。
主要用于一些用小鼠不便进行的实验，如血压实验等。
大鼠对炎症反应较为灵敏，其踝关节炎模型常用于观察药物的抗炎作用。
4．豚鼠对组胺特别敏感，是筛选平喘药和抗组胺药最理想的动物。
5．家兔性情温顺，易饲养，亦是药理实验中最常用的动物之一，用于观察药物对心脏、血压、呼吸的影响。
6．狗易于通过驯养与人合作，因而很适合于慢性实验，如用手术造成胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动及分泌功能的影响；高血压的实验治疗；新药临床前毒性试验等。
（二）实验动物的捉持方法2．小鼠右手提起鼠尾，放在鼠笼（或其他粗糙面）上，向后轻拉其尾，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，并以左手小指、无名指压其尾部于手掌尺侧。
另一方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴后用手掌尺侧和小指夹住尾根部，然后用左手拇指和食指捏住头颈部皮肤。
（三）实验动物的给药方法1．灌胃小鼠：左手捉持小鼠，使头部朝上，颈部拉直，腹部朝向操作者，右手持灌胃管，自口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再从舌面紧沿上腭缓慢进入食管2cm～3cm，将药液缓慢注入。
药理学实验
动情况，比较两只小鼠有何不同？
[记录]
组别 正 常 损坏 肾功 鼠号 1 2 3 4 体重(g) 药量（ml) 注射时间 产生作用时间 表 现 备 注
实验结束后可将小鼠处死，比较二组动物肾脏的差别。氯化高汞中毒小鼠的 肾脏常明显肿大。如用小刀纵切，可见到皮质部较为苍白，髓质部有充血现象。 ［讨论题］ 为什么两组小白鼠的表现不同？有何意义？
攻击肝细胞膜上的磷脂分子， 使脂质过氧化
三氯甲基自由基 (· Cl3 ) 与微粒体Pr发生共价结合，损伤细胞 膜的结构功能，使可溶性酶活性↑
四氯化碳
功能氧化酶系统
(活性代谢产物）
直接溶解 肝细胞膜
抑制钙泵，使Ca 2+↑, 使肝细胞内Ca堆积
↓
死亡
戊巴比妥钠属巴比妥类药物，具有镇静催眠抗惊厥的 作用。随用量的增加而出现镇静、催眠、麻醉的作用。主要 在肝脏代谢失活。
2、组距、组数的确定
在预备实验所获得的0%和100%的致死量范围内确定组距、组数。 组距：指相邻两组剂量对数之差。用“ⅰ”表示。 ⅰ＝ＤK-ＤL／G-1 ＤK、ＤL分别为最大剂量、最小剂量的对数值；Ｇ为预计组数。 一般组距在0.08－0.1之间（ⅰ值过小则分组过多，各组间死亡率重叠；ⅰ值过 大则分组过少，使标准误增大）。 ⅰ的大小取决于实验动物对被试因素的敏感性。敏感性大，组距可小，敏感性小 则组距大。
小叶比正常肝脏更清楚。 ［讨论题］
为什么损坏肝组织的小白鼠在注射戊巴比妥钠后作用时间长？有何意义？
实验方法
• 2、肾功能对药物作用的影响 取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前 24小时腹腔注射０.1%氯化高氯化汞 )各2只，称其体重， 分别腹腔注射3%的硫酸链霉素 0.15ml/10g，观察小鼠的 活动情况，比较两只小鼠有何不同？
实验一 药理实验基础知识
实验一药理实验基础知识一、目的1.掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；2.更好地掌握药理学基本理论知识；3.培养科学思维二、基本要求1.实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；2.实验时⑴实验器材要妥善保管；⑵实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；⑶注意节约实验药品；⑷维持良好的课堂纪律。
3.实验后⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；⑶书写实验报告。
三、实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料：实验动物，器材，药品5.方法：用自己的语言简单扼要描述出来；6.结果：要求真实、清楚；7.讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；8.结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。
四、实验设计基本原则1.随机原则使每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照组中，除处理因素外其他因素尽可能均衡一致，从而抵消非实验因素的影响。
2.对照原则⑴组间对照：阴性对照，阳性对照，同因素不同水平对照；⑵自身前后对照3.重复原则五、实验动物1.动物的选择⑴小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些药物的筛选，半数致死量的测定。
也较适用于避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。
⑵大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性和慢性毒性实验。
⑶豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。
也常用于离体心脏、心房、肠管实验。
又因它对结核敏感，常用于抗结核病药的实验。
⑷家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对小肠的作用。
由于家兔体温变化敏感，也常用于体温实验，用于热原检查。
⑸狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。
还可利用狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。
在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。
药理学实验基础知识点总结
药理学实验基础知识点总结药理学实验是药物发现、研究和开发的重要环节，通过实验对药物的药理学特性进行评估，包括药理学作用、药动学、毒性等。
药理学实验要求严谨的实验设计和操作，同时也需要具备丰富的药理学知识和实验技能。
本文将针对药理学实验的基础知识点进行总结，包括实验设计、药理学作用评价、药动学评价、毒性评价等方面的内容。
一、药理学实验的基础知识点1. 实验设计实验设计是药理学实验的重要环节，合理的实验设计可以保证实验结果的可靠性和准确性。
常见的实验设计包括随机对照实验、对照组设计、交叉设计等。
在实验设计中需要考虑到实验对象的选择、样本数量、实验组织、数据分析等方面的内容。
2. 药理学作用评价药理学作用评价是对药物在生物体内产生的药理效应进行评估。
常见的药理学作用评价方法包括体外实验、体内实验、生物化学实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体的生理功能、生化代谢等方面的影响。
3. 药动学评价药动学评价是对药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等动力学过程进行评估。
常见的药动学评价方法包括药物浓度-时间曲线、体内动力学参数的测定等。
通过这些实验可以评价药物在生物体内的药代动力学特性。
4. 毒性评价毒性评价是对药物在生物体内产生的毒性反应进行评估。
常见的毒性评价方法包括急性毒性实验、慢性毒性实验、致畸毒性实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体产生的毒性效应和毒性机制。
二、药理学实验的常用技术和方法1. 细胞培养技术细胞培养技术是现代药理学实验中常用的技术之一，通过对细胞系和细胞器官进行培养，可以评价药物对细胞的毒性和药理学作用。
常用的细胞培养技术包括细胞传代培养、凋亡检测、免疫细胞化学染色等。
2. 动物实验技术动物实验技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对动物进行给药和实验观察，可以评价药物的药理学作用、药代动力学特性和毒性效应。
常用的动物实验技术包括造模实验、行为学实验、代谢实验等。
3. 分子生物学技术分子生物学技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对药物靶标和信号通路进行研究，可以揭示药物的作用机制和药效基础。
药理学实验基本知识
抗凝剂和麻醉剂
麻醉剂
抗凝剂
抗菌药物
用于抑制或杀灭细菌，治疗感染性疾病。
抗炎药物
用于减轻炎症反应，缓解疼痛和肿胀等症状。
抗菌药物和抗炎药物
镇痛药
用于缓解疼痛，提高疼痛耐受性。
镇静药
用于缓解焦虑和紧张情绪，使实验动物保持安静状态。
镇痛药和镇静药
05
CHAPTER
分析药物对生物体的作用方式、作用位点以及作用效果，揭示药物作用的本质。
药物代谢动力学研究
了解药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，探究药物在体内的变化规律。
受体机制研究
探讨药物与靶点受体之间的相互作用机制，揭示药物作用的分子基础。
信号转导研究
探究药物对细胞内信号转导通路的影响，阐明药物作用的分子机制。
02
实验动物应具有代表性
选择的动物应能代表人类或其它哺乳动物的生理和药理特性，以便更好地模拟药物作用。
实验动物的选择
实验动物的饲养管理
提供适宜的生活环境
为实验动物提供适宜的生活环境，包括温度、湿度、光照、通风等，以保证动物的健康和实验结果的准确性。
保证充足的营养
为实验动物提供充足的食物和水，以保证其营养需求得到满足，从而保证实验结果的可靠性。
定期观察和记录
对实验动物进行定期观察和记录，包括体重、行为、生理指标等，以便及时发现问题并进行处理。
控制麻醉深度
在麻醉过程中，应控制麻醉深度，避免过深或过浅的麻醉状态对实验结果造成影响。
给予适当的止痛措施
在实验过程中，应给予适当的止痛措施，以减轻动物的疼痛感，提高其生存质量。
选择适当的麻醉剂
根据实验需要选择适当的麻醉剂，以确保动物在实验过程中处于无痛状态。
药理学实验基本知识实验报告
药理学实验基本知识实验报告药理学实验基本知识实验报告实验目的掌握药理学实验基本知识，了解药物对生理功能的影响及其机制。
实验材料•药物：咖啡因、阿司匹林、普萘洛尔•器材：药品量筒、显微镜、小鼠实验步骤1.选取十只小鼠，将其随机分为三组，每组均匀分别注射药物。
2.在注射药物后，观察小鼠的行为变化，并记录下来。
3.对注射药物的小鼠进行活体组织切片，使用显微镜观察组织结构变化。
4.将实验结果进行数据统计及分析。
实验结果药物作用效果咖啡因中枢神经兴奋，心跳加速，呼吸加深小鼠兴奋，心跳加速，呼吸加深阿司匹林抗炎，镇痛，退热小鼠行为平静，体温略有下降，观察组织结构无明显变化普萘洛尔延缓心跳，降低心排出量小鼠行为迟缓，心跳减慢，观察组织结构心肌及血管变化不明显实验结论药物对生理功能的影响及其机制各不相同。
药物的使用需要根据具体情况来选择，切勿滥用药物。
实验反思1.实验过程中，由于对药物的剂量掌握不准确，可能会影响实验结果的准确性。
2.针对组织切片的处理过程需要更加细致和精细，否则可能会产生误差。
3.实验前需要对小鼠的行为、体温、心跳等生理指标进行充分了解，以保证实验结果的准确性。
实验意义通过药理学实验的方式，可以更加深入地了解药物对生理功能的影响及其机制，为药物的正确使用提供科学依据。
参考文献1.王莉. 简明药理学[M]. 北京: 人民卫生出版社, 2015.2.Zhou X, Ma Y, Feng X, et al. Caffeine effect onphysiological changes in mice[J]. Journal of Toxicology,2017, 25(6): 805-812.3.Zhu Y, Liu Z, Chen Y, et al. Effects of aspirin andpropylthiouracil on renal injury in mice[J]. Journal ofRenal Injury Prevention, 2017, 6(4): 227-234.注：本实验报告仅供参考，如需真正进行药理学实验，请在专业人员的指导下进行。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学实验是研究药物的药理作用以及其在生物体内的代谢和排泄等方面的实验。
在药物研发中，药理学实验是非常重要的一环。
通过药理学实验，可以确定药物的活性、毒性、代谢动力学等参数，为后续的临床试验提供有效的依据。
药理学实验目前已经成为了一门非常成熟的学科，其实验方法和技术也不断地得到了改进和完善。
然而，作为药学领域的新手，想要进行药理学实验，有必要掌握一定的基础知识。
一、药理学实验的分类药理学实验可以根据不同的研究目的进行分类，主要分为以下几类：1.活性评价实验：主要是评价药物的药效和作用机制，以此确定药物的适用范围。
2.安全性评价实验：主要是评价药物的毒性，包括急性毒性、亚急性毒性、慢性毒性等多个方面。
3.代谢动力学评价实验：主要是评价药物在人体内的吸收、分布、代谢和排泄等参数，以此确定药物的给药途径和用药剂量。
4.临床转化评价实验：主要是评价药物在人体中的临床效果，包括疗效、安全性、耐受性等方面，以此为药物进一步研究提供依据。
二、药理学实验的基本设计药理学实验的基本设计通常包括以下几个方面：1.药物的质量控制：包括药物的纯度、杂质含量、标准曲线等方面。
2.实验对象：通常选择灵长类动物或小鼠等模型来进行实验，要注意实验对象的品系、年龄、性别等。
3.药物的给药途径和方法：包括口服、静脉注射、皮下注射、局部涂抹等多种途径，需要结合具体药物特点制定给药方法。
4.实验组和对照组的设置：实验组通常分为高、中、低三个剂量组，对照组包括空白对照、阴性对照、阳性对照等。
5.实验指标和测试方法：根据不同的研究目的和药物特点，选择合适的实验指标和测试方法。
6.数据的统计和分析：通过数据的统计和分析，评价药物的药效、毒性、代谢动力学等方面的参数，得出结论并进行报告。
三、药理学实验的常用技术药理学实验需要使用一些常见的技术，主要包括以下几个方面：1.细胞培养技术：包括原代细胞培养、细胞株的维护和保存、细胞鉴别和分离等。
药理学实验优选全文
作风，并训练大家观察、分析和解决问题的 能力
实验前 认真预习
实验时 认真操作 仔细观察并详细记录
实验后 认真书写实验报告,按时上交 整理实验器材(清洗、消毒、摆放整齐并物归 原处)、动物处理 实验室的清洁卫生
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存 备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括：
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号 2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5％苦味酸溶 液（黄色）涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4
1
7
25 8
3 69
2. 动物性别的辨别
小鼠（左为雄性，右为雌性）
1. 时间、温度； 2. 实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何
分组等。 3. 实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量
及给药途径。 4. 实验进程、步骤和方法的详细记录。 5. 观测指标的变化和原始的描记图纸。
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要 [实验材料] 包括仪器、药品和动物 [实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比，尽量总结出图表或曲线，进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、体会和建议等 及思考题的探讨
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代 的实验材料
药理学实验基本知识与技能实验报告
药理学实验基本知识与技能实验报告1.了解药理学实验的基本知识、技能及主要实验方法；2.培养对药物作用的判断能力和评价能力；3.掌握实验中的操作技能和实验数据的处理方法。
实验内容：本次药理学实验主要包含以下内容：1.药物实验的基本知识：药物性质、用药途径、药物剂量和使用方法、药物评价方法等；2.药物作用的评价方法：包括药效学、副作用和毒性、药代动力学等；3.药物实验的操作方法：包括药物制剂的制备和制剂的性质分析、动物实验等操作。
实验步骤：1.药物制剂的制备和性质分析a、选取需要制备的药物制剂并准备所需要的药物原料；b、根据药品说明书，确立合适的配伍方案并计算药物配比；c、将药物原料按照配方比例称量，配合制剂的制备；d、对制剂进行性状分析，例如外观、气味、颜色、味道等。
2.动物实验的操作a、准备实验所需动物（小鼠、大鼠、猪等），按照正常条件下饲养一段时间，保持体内环境平稳；b、按照计划的剂量模式，将药物给予动物口服、注射、吸入等途径，然后观察动物的生理状况变化；c、记录药物作用的时间和程度，并观察药物的治疗效果和不良反应；d、分析动物实验结果，得出药物的作用目标、剂量规律等信息。
实验结果分析：经过对本次实验数据的统计分析，我们得出以下结果和结论：1.药物制剂的制备和性质分析这一步主要在于制备药品初步探讨药品相对的性质，包括物理性质和化学性质等。
药品初制后，需要分析其外观特点、颜色、气味、味道、纯度和含量等参数，以评价药品质量。
2.动物实验的操作本实验选择了小鼠模型，并按照剂量递增的模式给予药物，观察小鼠的生理变化，并记录药物的作用时间和不良反应。
实验结果表明，在本剂量下，药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的研究和评估。
结论：通过对本次实验的操作和数据分析，我们得出以下结论：1、药物的制备和性质分析是一项必不可少的工作，对于药品的质量保证有重要作用；2、动物实验是一种可靠的实验方法，但也有一些限制和缺陷，需要加以改进和完善；3、本实验显示出了药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的评估和改进。
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实验一药理实验基础知识药理学实验的基础知识第一节药理学实验的目的和要求药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的基本理论；通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力；通过设计性实验，培养学生独立思考、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业后的科研工作奠定良好的基础。
为了达到上述目的，要求学生做到以下几点。
【实验前】1.仔细阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。
2.结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做到充分理解。
3.预测实验中可能出现的情况和发生的问题。
【实验时】1．实验器材的放置力求稳当、整齐、有条不紊。
2．严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确计算给药量，节省器材和药品。
要注意保护实验动物和标本，避免与实验内容无关的刺激。
3．仔细、耐心地观察实验过程中出现的各种现象，实事求是地记录药物出现反应的时间、表现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行思考。
4．在实验过程中遇到疑难之处，先要自己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师说明情况，请求教师协助解决。
对于贵重仪器，在未熟悉其性能之前，不可轻易调试。
5．实验室内保持安静、整洁。
用药后须用原瓶塞塞好，公用药品和器材不可随意挪动。
【实验后】1．将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。
如有损坏、缺少，应及时报告老师。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
2．认真整理实验记录，经过分析思考，撰写实验报告，按时交给指导老师。
3．做好实验室的清洁卫生工作。
第二节药理学实验设计的基本原则在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下基本原则：一．对照原则：进行实验时必须设对照组。
设置对照组是为了使观察指标通过对比而发现其在处理因素（如药物等）的作用下而表现出的某种特异性变化，消除各种无关因素的影响。
这就要求在比较的各组实验对象之间除了处理因素不同外，所有非处理因素应尽量保持相同，从而根据处理与不处理之间的差异，了解处理因素带来的特殊效应。
对照有多种形式，如空白对照(又称正常对照)，即对照组不施加处理因素，但给予同容积的溶剂；模型对照，即造成疾病模型，但不给予药物处理，给予同容积的溶剂；阳性对照，即给予相同适应症的市售药物，以监控实验条件；假手术对照，即除造成某种疾病模型的关键步骤外，所有手术操作均同模型对照组。
自身对照，对照与实验均在同一实验对象进行，即同一个体处理前后的对照，如给药前后的对比等。
若观察给药前后的指标变化，此种对照必须以指标本身对时间变化相对稳定为首要前提。
二．随机原则：随机是指对实验对象的实验顺序和分组进行随机处理。
在分组时，对实验对象进行随机抽取可保证被研究的样本能代表总体，从而减少抽样误差；在施加多个处理因素时采用随机原则，可保证各组样本的条件基本一致，可减少组间人为的误差。
三．重复原则：“重复”在这里有两方面的含义，一是指实验结果的可再现性，一是指实验结果应该来自足够大的样本。
样本越大，重复的次数越多，实验结果的误差越小，可信度越高。
第三节药理学实验中分组方法药理学实验一般应当设有正常对照组、模型对照组、阳性药对照组及受试药2个以上剂量组（新药研发时要求至少设立三个给药剂量组，以考察量效关系）等，如需手术造成疾病模型，还应设假手术对照组。
而学生药理学实验课时，由于时间等条件的限制，可酌情减少实验分组，只设空白对照组或模型对照组及受试药一个剂量组。
一．动物分组的一般原则实验时，要遵循受试药组与对照组一致性原则，即两组只允许在被实验因素方面有所不同，在其他方面(包括实验对象、实验者、实验条件、环境、时间以及仪器等)应力求一致。
除了被实验因素外，如果两组还有不一致的地方，则对照组的存在失去其应有意义。
两组之例数应相等或相近似，认为对照组只有少数几例即可，是不正确的。
分组时，为了满足以上要求，避免主观因素需要采取随机抽样的方法。
所谓随机抽样就是指按着机会的安排来抽取样本，换言之，不论任何被实验的对象都有相等的机会被抽出。
随机抽样的方法很多，如应用骰子法、单双号法、卡片法以及随机数表等。
必须指出，随机抽样比较适宜大样本时的分组，而小样本时随机抽样不能保证各组的一致性，故小样本时必须用人为的方法来保证各组的一致性，其目的是更好地贯彻随机抽样原则，与主观选择有本质上的区别。
二．小样本的分组法主要有分群法(Stratify)和配对(群)法。
分群法是按某几个因素将对象先分为数群，而后再按随机抽样法将每群中的对象分到各组中去。
有时先分为几个大群，而后每大群再分为数小群，最后将每小群中的对象再随机抽样地分到各组中去。
分群可按性别、体重或血压等生理或病理因素进行，一般应以观测指标或对观测指标有主要影响的因素为准来分群，如降压实验，应以血压为准来分群；豚鼠的平喘实验，须对豚鼠进行初筛，分组时，应以哮喘潜伏期来分群；降血脂实验，应以血脂水平为准来分群。
而多数是按性别、体重分群。
配对(群)法，是把各方面相近似的对象配成多数的对或群(二组则二个一对，三组则三个一群)，然后每对(群)中的对象按随机抽样原则分到各组中去。
以最常用的分群法为例，说明如下：【举例】由实验动物中心取来同种属并且出生日期相近似的小白鼠36只，欲就性别及体重将其分为实验及对照两组，可进行如下分组：先就性别将动物分为雌雄两大群，每群再按体重分为数小群(以1g为组距)，假定其性别及体重分布情况如表1-1之左侧所表示，则可按随机抽样原则将各小群的动物分到两组中去。
如果有的小群动物数是奇数时，则应尽力照顾到两组的均衡来分配之，最终的分组情况正如表1-1之右侧所表示。
第四节药理学实验数据的分析处理一、实验结果的记录及表示方法实验过程中，要对实验数据进行及时、客观的记录。
凡是属于量反应资料（又称计量资料，即药物作用可以用数值的变化来表示，如血压的高低、时间的长短、心率的快慢、肿瘤轻重、心输出量的多少等）均应以正确的单位和数值标定。
凡是由曲线记录测量指标的实验，应尽量用曲线记录实验结果，在所记录的曲线中应标注有给药或刺激记号、时间记号等。
为便于对实验结果进行分析、比较，多以各组数据的均值加减标准差来制表或绘图来表示实验结果，表格要有表题，图要有图题。
制作表格及作图时，应注意以下几点：1.表格应制三线表，表格中不用纵向线。
一般按照组别、剂量、动物数、观测指标的顺序在表内由左至右填写。
2.作图时，通常是以实验观察指标的变化为纵坐标，以时间或给药剂量为横坐标而作图，例如呼吸曲线、肌肉收缩曲线等；横、纵坐标轴均应加以标注，如药物剂量、时间单位、测量指标及单位等。
3.实验数据若呈连续性变化，则以曲线形式体现实验结果，绘制经过各点的曲线或折线应光滑；实验数据若不呈连续性变化，则不宜用曲线表示，可采用直方图的形式表示。
4．表及图下面应有必要的说明，如统计学显著性的表示等。
二、差值的显著性测验实验结束后，实验者必须对所获得的实验结果进行统计学分析处理，才能发现问题，得出结论。
药理学实验往往要在两组或两组以上实验对象上进行，如一组为实验组，一组为对照组，然后就两组所获得的实验数据进行比较，判断两者有无差异，从而确定被实验因素是否对实验对象确实具有某种影响，例如药物疗效之观察等。
但药理学研究的实验对象大都是各种动物（临床药理学研究的对象是人），所以实验中生物个体差异所造成的误差是不可避免的，此外也还有一些其他性质的误差，可统称之为实验误差。
从而两组实验获得数据的差异就有可能是实验误差所造成，而在被实验对象的数目很少时(小样本)，此种可能性更大。
两组数据的差值究竟是被实验因素所致，还是实验误差影响所致，这不能主观决定，而一定要通过生物统计学的客观方法来判断，以确定此差值是否有意义。
此种方法就称为差值的显著性测验。
如果测验的结果是两组之间差异“显著”，则提示两组之间的差异可能是因处理因素（如药物）造成的；若“不显著”，就说明此差值很可能是实验误差所造成的，没有实际意义。
但不应只根据一次的结果而轻率地下结论，在动物数少时尤其如此。
应视具体情况，进行重复实验。
需要指出的是，统计学方法之运用需建立在对实验对象客观的、科学的分组和正确的实验资料的基础之上。
不当的实验设计与错误的实验资料，即使经过统计处理，其结论仍然是不可靠的。
因实验指标有量反应指标和质反应指标的不同，其统计处理方法也不同。
分述如下：1．量反应指标的差值显著性测验法差值显著性测验最常应用的方法为“t检验法”。
t值即差值的绝对值与差值标准误之比。
亦即用误差单位来衡量差值的大小，视其有无意义。
根据实验数据计算出者称实验t值，t0为由t值表查出者，称标准t值。
基本公式：……(只适用于两组例数相等或近似之情况)X……被实验个体实验观察指标量的大小。
N……该组被实验的对象数。
……该组X的均值，为测量指标最常应用的综合指标。
S……标准差，是用以估计原始数据(X)的分散程度或原始数据的实验误差程度的人为单位。
……标准误，用以估计均值(X)的可靠程度或均值的实验误差程度的人为单位。
……差值标准误，用以估计差值的可靠程度或差值实验误差程度的人为单位。
……两组均值数据差(差值)的绝对值。
自由度……统计学一专门术语。
只关系到一组时为例数减一(n—1)，如关系到两组时则为总例数减二(n1+n2-2)。
∑……总和。
无效假设及结果判定：首先假设两组的差异是由实验误差所致，处理因素对实验结果没有影响。
然后将实验数据带入公式计算t值。
将实验t值(t s)与标准t值(t0)相比较，判定标准如下：t0(1％)＞t s＞t0(5％)，则0.01＜P值<O.05，即无效假设成立的可能性小于5%，换言之，组间差异是因处理因素（如药物）所致的可能性大于95%，组间差异有显著意义。
t s＞t0(1％)，则P值＜O．01，即无效假设成立的可能性小于1%，换言之，组间差异是因处理因素（如药物）所致的可能性大于99%，差异非常显著。
t s＞t0(5％)，则P＞0．05，即无效假设成立的可能性大于5%，差异不显著。
P值为机率或危险率。
标准t值可根据t值表查出，由该表有关自由度及特点危险率(5％或1％)而找出该标准t值。
标准t值表计数资料显著性测验最常用的是X2(卡方)检验法，它可以用来检验两个或多个百分比(率)之间的差异。
计算方法和步骤如下：（1）首先假设两组的差异是由机会所致，即两组的阳性是相同的。
（2）将数据带入四格表，并根据X2计算公式算出X2值。
（3）判断无效假设是否成立。
四格表x 2检验的公式如下：根据自由度查x 2值表，自由度的计算公式为：n （自由度）=（行-1）（列-1），故四格表法的自由度为1。