蛋白质水解度测定方法综述
蛋白质水解度的简易测定方法
蛋白质水解度的简易测定方法蛋白质水解度是指蛋白质在特定条件下被水解的程度。
测定蛋白质水解度的主要方法之一是采用“肽键长度”测定法。
以下是测定蛋白质水解度的简易方法及步骤:一、准备相关试剂和器材1.蛋白质溶液:你需要准备一定浓度的蛋白质溶液,以便进行后续的测定。
2.氢氧化钠溶液:用于中和蛋白质溶液中的酸。
3.茚三酮溶液:用于与肽键发生反应,生成紫色产物。
4.醋酸溶液:用于调节溶液的pH值。
5.滴定管和滴定剂:用于滴定蛋白质溶液中的游离氨基。
二、测定步骤1.调节溶液的pH值:用醋酸溶液调节蛋白质溶液的pH值至4.5~5.0之间。
这个pH范围是蛋白质中肽键与茚三酮反应的最佳条件。
2.加入茚三酮:向蛋白质溶液中加入一定量的茚三酮溶液,充分混合后静置10~15分钟。
3.加热:将混合液加热至100℃左右,保持加热状态数分钟,使反应完全。
4.中和:待混合液冷却后,用氢氧化钠溶液调节pH值至9~10之间,使混合液呈现碱性。
此时,未水解的氨基与茚三酮反应生成的产物会转变为黄色。
5.滴定:使用滴定管,用已知浓度的盐酸滴定混合液中的游离氨基,直至颜色变化为粉红色。
这个过程需要耗费一定的时间。
6.计算肽键长度:通过滴定所消耗的盐酸浓度和体积,可以计算出混合液中游离氨基的浓度。
再根据蛋白质中氨基酸的结构通式,可以计算出肽键长度。
三、注意事项1.在调节pH值时,要注意细致地使用精密的pH试纸或酸度计进行测量,以保证结果的准确性。
2.在加入茚三酮后,要充分混合并静置一段时间,以确保反应完全。
3.在加热过程中,要确保混合液受热均匀,并保持适当的加热时间以确保反应完全。
4.在滴定过程中,要保证滴定管的清洁度,避免因滴定剂污染而影响结果的准确性。
同时,需要多次摇晃混合液,以确保滴定剂与游离氨基充分反应。
5.在计算肽键长度时,需要考虑到蛋白质中不同氨基酸的构象和结构通式。
同时,还要注意温度和离子强度等因素对肽键长度的影响。
综上所述,测定蛋白质水解度的简易方法是可行的。
蛋白质水解度测定方法综述
蛋白质水解度测定方法综述
徐英操;刘春红
【期刊名称】《食品研究与开发》
【年(卷),期】2007(028)007
【摘要】对目前国内外常用的蛋白质水解度测定方法进行了综述,其中pH-state 方法是通过滴定水解过程中释放的质子测定DH;OPA、TNBSCLOt内常用的水合茚三酮和甲醛等测定方法是利用游离氨基的反应测定DH.
【总页数】4页(P173-176)
【作者】徐英操;刘春红
【作者单位】东北农业大学理学院应用化学系,黑龙江,哈尔滨,150030;东北农业大学理学院应用化学系,黑龙江,哈尔滨,150030
【正文语种】中文
【中图分类】TS2
【相关文献】
1.核桃蛋白水解物水解度测定方法比较 [J], 周慧江;朱振宝;易建华
2.蛋白水解物水解度测定方法的研究 [J], 罗艳华;王全杰;陈沛海;高翔
3.蛋白质水解度的测定方法研究 [J], 杨文博;张英华
4.蛋白质水解度的简易测定方法 [J], 袁斌;吕桂善;刘小玲
5.氨基酸配方及蛋白质水解配方特殊医学用途婴儿配方食品中氯测定方法的比较研究 [J], 田洪芸; 李恒; 任雪梅; 张海红; 王文特; 傅俊青; 吴鸿敏
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蛋白质水解物水解度的测定
蛋白质水解物水解度的测定
蛋白质水解物水解度是指蛋白质的分解能力,反映其特定化学和物理状态的能力。
它是饮食营养研究,氨基酸、肽链分离研究,腺体功能研究以及蛋白质工程及其他各种研究的重要指标。
因此,测定蛋白质水解物水解度对科学技术和医药卫生研究有着重要的意义。
蛋白质水解物水解度的测定主要是利用蛋白质的有机化学性质,用吡咯烷醇法、酸碱回流法或乙溴脩乙腈法等有效分析方法进行测定,因而在分析中不仅要测定蛋白质溶液中含有量有多少,还要根据技术参数判断抽样物质的水解情况。
吡咯烷醇法测定蛋白质水解物水解度通常是先用乙酸乙酯将抽取物中粗品脂肪
酯化,然后用硫酸银电泳池分别测定溶液中的可混溶蛋白和不混溶蛋白,最后利用其峰图的光谱图所显示的结论,来评定蛋白质水解物的水解度。
酸碱回流法测定蛋白质水解物水解度,主要是用恒定pH值的溶液将抽取物溶解,通过混合溶液中可溶蛋白和不溶蛋白,在紫外分光光度计上测定混合液中可溶性蛋白含量,来评价蛋白质水解物的水解度。
乙溴脩乙腈法测定蛋白质水解物水解度,主要是先使抽取物经过乙溴脩乙腈处理,将不溶性蛋白和其有机混合物分流,再用阴离子交换树脂将其树脂柱状分离,最后通过吸光度光谱测定乙溴脩乙腈处理后,抽样物质的可混溶蛋白含量,以评定其水解度。
以上是蛋白质水解质水解度测定方法,它是检测蛋白质结构及其分解情况的有
效方法,是蛋白质工程与医药生物技术研究的重要参考。
因此,正确准确的测定技术必须被正确使用,以确保研究成果的可靠性。
蛋白质水解度的测定
参考文献
[ 1] Alder- Nissen J. Determination of the Degree of Hydrolysis of Food Protein Hydrolysates by T rinitrobenzenesulfonic Acid [ J] . J. Agric Food Chem. , 1979, 27: 1256) 1262
[ 4] Qin- yun Chen. Effect of Amide contents in wheat gluten hydrolysates on the thermal flavor generation, ph. D. thesis, Rutgers university, U. S. A, 1995: 54) 56
茚三酮比色法( 完全水解液做标准) 1715 2413 2816
附图 不同方法测定的水解度
3 结果和讨论
311 结果 为了验 证此 种 方法 的可 行性, 本 研 究用 Fla-
vorzyme 对菜籽蛋白进行水解, 用同一种水解液采用 10% 三氯乙 酸沉淀法、甲醛滴 定法[ 2] 、茚三 酮比色 法[ 2] 和本文所介绍的方法分别进行测定, 结果见附 图和附表。 312 讨论
蛋白质水解度的简易测定方法_袁斌
文章编号:10083464(2002)02011303蛋白质水解度的简易测定方法袁斌1,吕桂善2,刘小玲2(1深圳市成业冷冻有限公司,广东深圳518019;2广西大学生物技术与糖业工程学院,广西南宁530004)摘要:介绍了一种比较简单可行的蛋白质水解度的测定方法,该方法基于国外通用的pH ST A T 法,不需要特别的仪器,化学试剂耗量少,测定结果可靠,便于实验室和工业化生产使用。
关键词:蛋白质;水解度;pH ST A T 法中图分类号:T Q 936.1 文献标识码:AThe simple method of determining for the degree ofhydrolysis of proteinsYU ANG Bin 1,LU Gui shan 2,LIU Xiao ling2(1Shenzhen Cheng ye Freeze Cor por ation Limited,Shenzhen 518019,China;2Biotechnolog y and Sug ar Engineering Colleg e ,Guangx i U niv .,Nanning 530004,China )Abstract :A simple and w orkable method ,w hich w as based o n pH STAT method ,fo r deter-mining the deg ree of hydr olysis o f pro tein ,was intr oduced in the present paper.This metho d can be used in lab and food industry w ith g ood results and little reagents consumptions.Key words :pro tein;deg ree of hydr olysis;pH ST AT Method蛋白质是人体必不可少的营养素,在人体的代谢和生长过程中起着十分重要的作用。
蛋白水解度测定方法
蛋白水解度测定方法蛋白水解度(Protein Hydrolysis)是指蛋白质在特定的水解条件下被分解的程度。
测定蛋白水解度的方法有很多种,以下是其中几种常见的方法:1.肽图分析法(Peptide Mapping)肽图分析法是一种通过蛋白质在特定条件下水解得到的肽片段的分离和鉴定,来推断蛋白质序列和结构信息的方法。
该方法的原理是,不同的肽片段与固定相的结合能力不同,从而可以在色谱柱上分离出不同的肽片段。
通过对这些肽片段的分析,可以得到蛋白质的一级结构信息,进而计算出蛋白质的水解度。
2.游离氨基含量法(Free Amino Acid Content)游离氨基含量法是通过测定蛋白质水解液中游离氨基的含量,来计算蛋白质的水解度。
该方法的基本原理是,蛋白质水解后生成的游离氨基酸与某些特定的试剂反应,生成有色产物,通过测定有色产物的吸光度,可以得出游离氨基酸的含量。
根据游离氨基酸的含量,可以计算出蛋白质的水解度。
3.肽谱法(Peptide Mass Spectrometry)肽谱法是通过分析蛋白质水解液中肽片段的质量,来推断蛋白质的序列和结构信息。
该方法的基本原理是,不同的肽片段在质谱仪中碎裂后产生不同的离子峰,通过对这些离子峰的分析,可以得出肽片段的质量。
根据肽片段的质量,可以推断出蛋白质的序列和结构信息,进而计算出蛋白质的水解度。
4.生物化学法(Biochemical Methods)生物化学法是通过研究蛋白质在生物体内的代谢过程,来推断蛋白质的水解度。
该方法的基本原理是,蛋白质在生物体内的代谢过程受到许多因素的影响,如酶的活性、底物的浓度、代谢途径等。
通过对这些影响因素的研究,可以推断出蛋白质的水解程度。
5.免疫学法(Immunological Methods)免疫学法是通过检测蛋白质在生物体内的免疫原性,来推断蛋白质的水解度。
该方法的基本原理是,蛋白质在生物体内的免疫原性与其分子量、构象等因素有关。
乳清蛋白水解物水解度3种 测 定 方法的比较
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蛋白质水解度测定方法综述_徐英操
白的分子量,d 指稀释因数,ε 指 340 nm 处的摩尔消 光系数(6 000/mol·cm),C 指蛋白浓度(g/L)。
Kang S. Lee 等 利 [10] 用荧光法测定游离氨基酸原 理,针对半胱氨酸与胱氨酸与邻苯二醛反应生成的
1/α 为 2.26;Mp:蛋白质的质量(g);htot:每克原料蛋白 质中肽键的毫摩尔数,对于酪蛋白,该值取 8.2 mmol/g。 2.2 三 硝 基 苯 磺 酸 法 (Trinitrobenzenesulfonic Acid
b1)
pH- state 法的优点在于操作简单、快速、可重复
2.3 邻苯二甲醛(Ortho- phthalaldehyde,OPA)法 Church 等[9]人首先于 1983 年应用 OPA 测定了蛋
性高,通常被用于水解度的连续测定。然而这种方法 白质水解度,OPA 是在碱性介质中与游离氨基反应生
录下所用的碱液的量即可。具体方法如下:水解开始 表每个蛋白分子的肽键总数。n 可用以下公式表示:
时,调节反应体系的 pH 为 7.0,反应结束后测定反应 体系的 pH 值,用 0.5 mol/L 的 NaOH 将反应体系的 pH
n=
ΔAbs×M×d ε×C
调到原来的 pH,记录下所用的碱液的量,按下式即可 计算出酪蛋白的水解度:
计算如下:DH=
1
A 000×W
×V1×1V020
×100
式中:A:查表得蛋白质的毫克数;W:称样重(g); V1:水解液的总体积(mL);V2:显色时所用稀释液的体 积(mL)。 2.5 甲醛滴定法
[2] Adler- Nissen.Enzymatic Hydrolysis of proteins [J]. Elsevier Applied science. 1986a London
食用蛋白质水解度的改良测定方法
食用蛋白质水解度的改良测定方法摘要:当制备水解蛋白的时候,测定水解度(DH)是至关重要的。
已建立的三硝基苯磺酸(TNBS)发被认为是测定酶水解度的常用方法。
然为,三硝基苯磺酸法费时费力,不能连续的测定水解反应程度,并且需要使用有危险不安全的化学试剂。
本文阐述了一种基于基本氨基酸与邻苯二甲醛(OPA)反应的水解度测定方法。
结论是使用OPA法测定蛋白质的水解度更准确,方便,迅速,有更为广泛的使用范围,并且较之TNBS方法更环保。
关键词:水解度,食用蛋白,水解,蛋白质水解,测定介绍在蛋白质水解物当中,检测反应的一个关键参数就是水解度(DH)。
DH值呗定义为断开的肽键的百分比:DH=h/h tot*100%试中htot是每蛋白质当量中肽键总数,h是被水解的肽键数。
Htot是取决于原料的氨基酸组成。
在各种文献中,人们已经建立了几种测定蛋白质水解物DH值的方法,例如pH-stat法,渗压法,可溶性氮法以及三硝基苯磺酸(TNBS)法。
pH-stat法(Jacobsen 等,1957)测定DH值是基于一种基准物(或是由于水解物pH值变化产生的酸)来保持水解过程中的pH值。
基准物质的使用量与DH值是成比例的。
在实际的蛋白质水解试验中,Ph-stat法的使用仅限于pH略高于7的条件下(Adler-Nissen,1986)。
当水解反应的DH值达到约30%时,采用Ph-stat法来测定水解度并不经济可行,在pH>7的单一酶反应系统中使用该方法是不可取的。
这将使最适pH值低于7的酶不适用Ph-stat法。
另外,在水解反应当中添加基准物可能会导致最终产物的使用不尽如人意。
在水解反应当中,混合物冰点的降低值可以通过渗压计(冰点测定器)来测得。
这与DH值是相关的(Adler-Nissen,1984).渗压法是一种可以在多种反应当中使用的快速方法。
这种方法的限制之处就在于它不能测定粘度大的溶液及溶质溶解度高的溶液,例如在长期反应当中作为防腐剂的盐。
蛋白质水解度的测定方法研究
蛋 白质是一种高营养化合物, 但是从对人体作用
来说, 它不 如氨基 酸利 于 人 体 的 吸收 , 因此 , 为 了提 高 蛋 白质 的功 效 , 往 往 需要 将 其 水 解 。蛋 白质 这种 高 分
子 化合 物是 由无 数个 氨 基 酸通 过 肽键 缩 合 而成 , 它 可 以通 过化 学方 法水解 , 也 可 以通过 蛋 白酶 进 行 催化 水
S O t h i s me t h o d i s n o t d e s i r a b l e .Ac i d - s o l u b l e p r o t e i n c o n t a i n s t h e p r o t e i n b e f o r e h y d r o l y s i s b y t r i c h l o —
关 键词 : 甲醛滴定 法 ; 茚三 酮法 ; 三氯 乙酸法
中图分 类号 : T S 2 0 1 . 2 1 文献 标志码 : A d o i : 1 0 . 3 9 6 9 / j . i s s n . 1 0 0 0 - 9 9 7 3 . 2 0 1 4 . 0 3 . 0 2 2 文章编 号ห้องสมุดไป่ตู้: 1 0 0 0 - 9 9 7 3 ( 2 O 1 4 ) O 3 一 o 0 8 8 一 O 3
( F o o d S c i e n c e Co l l e g e ,No r t h e a s t Ag r i c u l t u r a l Un i v e r s i t y ,H a r b i n 1 5 0 0 3 0 ,Ch i n a )
蛋白水解度测定方法
蛋白水解度(DH测定方法—OPA法一、定义水解度(DH是指蛋白质中被水解的肽键占总肽键的百分比。
其基本计算公式如下:DH=被水解的肽键数蛋白质总肽键数×100%=hhtot×100%h tot的值根据不同的底物蛋白会有所不同,h是用等价serine NH2表示的。
ℎ=Serine NH2−βαmeqv/g protein更多α,β,htot的精确数值请参见备注。
此处的DH是指样品相对于原始底物的水解度,如果要计算水解反应前后的水解度,需要使用如下公式:DH=h1−h0htot×100%h0: 水解反应前样品相对原始底物的水解度;h1: 水解反应后样品相对原始底物的水解度。
二、原理OPA(邻苯二甲醛法测定蛋白质水解度的原理是OPA在β-巯基乙醇的存在下会与自由α-氨基形成黄色化合物,其在340nm处有特征吸收,用分光光度计可检测其OD值。
实际使用中1,4二巯基苏糖醇(DTT比β-巯基乙醇更易使用。
三、试剂测试所需试剂及设备如下:硼砂(CAS 1303-96-4 AR十二烷基硫酸钠(SDS, CAS 151-21-3 AR邻苯二甲醛(OPA,CAS 643-79-8,纯度97%(sigma1,4-二巯基苏糖醇(DTT,CAS 3483-12-3,纯度99%(sigma丝氨酸(serine标准品(CAS 302-84-1(sigma紫外可见分光光度计(可测340nm吸光值容量瓶100ml,200ml,500ml各数个10ml测试管数个3.1 OPA试剂A1. 将7.620g硼砂(CAS 1303-96-4和200mg十二烷基硫酸钠(SDS溶解于150ml去离子水中。
溶解完全后方可加入其他试剂。
A2. 将160mg邻苯二甲醛(OPA,纯度97%溶解于4ml无水乙醇中。
溶解完全后将此OPA溶液转移至上述A1溶液中,并用去离子水冲洗,转移。
A3. 将176mg 1,4-二巯基苏糖醇(DTT,纯度99%加入到A1溶液中,去离子水冲洗,转移。
大豆蛋白水解物水解度测定的研究
大豆蛋白水解物水解度测定的研究引言:大豆蛋白是一种重要的植物蛋白资源,具有丰富的营养价值和广泛的应用前景。
而大豆蛋白水解物作为大豆蛋白的加工产物,其水解度对其功能性和应用性能起着重要影响。
因此,本研究旨在通过测定大豆蛋白水解物的水解度,探究其在食品、医药等领域的应用潜力。
一、大豆蛋白水解物的定义与性质大豆蛋白水解物是通过蛋白水解酶对大豆蛋白进行水解得到的产物。
其主要成分是多肽和游离氨基酸,具有良好的营养价值和生理功能。
二、大豆蛋白水解物水解度的测定方法1. 琼脂糖电泳法:利用琼脂糖凝胶电泳技术,根据不同水解程度的大豆蛋白水解物在电泳板上的迁移距离差异,来评估其水解度。
2. 高效液相色谱法:通过对大豆蛋白水解物中不同分子量多肽的分离和检测,来确定其水解度。
3. 紫外吸收光谱法:根据大豆蛋白水解物在特定波长下的吸光度变化,来推测其水解程度。
三、大豆蛋白水解物水解度的影响因素1. 水解酶种类和用量:不同种类和用量的水解酶对大豆蛋白的水解效果有显著影响。
2. pH值和温度:适宜的pH值和温度可提高水解酶的活性,进而影响大豆蛋白的水解度。
3. 反应时间:较长的反应时间有助于提高大豆蛋白的水解程度。
4. 大豆蛋白浓度:适宜的大豆蛋白浓度可以提高水解酶的利用率和水解度。
四、大豆蛋白水解物水解度的应用1. 食品领域:大豆蛋白水解物可作为功能性食品添加剂,提高食品的营养价值和口感。
2. 医药领域:大豆蛋白水解物具有抗菌、抗氧化、降血压等多种生理功能,可以应用于药物的研发和制备。
3. 养殖领域:大豆蛋白水解物在动物饲料中的应用可以提高饲料的蛋白质利用率和动物的生长性能。
结论:通过测定大豆蛋白水解物的水解度,可以评估其在食品、医药等领域的应用潜力。
水解酶种类和用量、pH值和温度、反应时间以及大豆蛋白浓度等因素都会对大豆蛋白的水解度产生影响。
大豆蛋白水解物在食品、医药和养殖等领域具有广阔的应用前景,可以为人们的生活和健康带来积极的影响。
蛋白质水解度的测定方法研究
蛋白质水解度的测定方法研究一、本文概述蛋白质作为生命活动的重要物质基础,其水解度的测定对于理解蛋白质的结构与功能、评估蛋白质在生物体内的代谢状态以及优化蛋白质的加工利用等方面具有重要意义。
本文旨在探讨蛋白质水解度的测定方法,包括其定义、影响因素、测定原理以及常用的测定方法,并对各种方法的优缺点进行比较分析。
通过本文的阐述,旨在为相关领域的研究者提供一套全面、系统的蛋白质水解度测定方法参考,推动蛋白质水解度研究的深入发展。
本文将明确蛋白质水解度的定义,即蛋白质在特定条件下被水解成氨基酸或多肽的程度。
接着,分析影响蛋白质水解度的主要因素,包括水解条件、酶的种类和活性、底物浓度等。
在此基础上,探讨蛋白质水解度测定的基本原理,涉及水解反应的速率控制和产物分析等方面。
本文将详细介绍常用的蛋白质水解度测定方法,包括滴定法、色谱法、电泳法以及近年来新兴的光谱法等。
每种方法都将从其原理、操作步骤、适用范围以及优缺点等方面进行阐述。
同时,通过对各种方法在实际应用中的案例分析,为研究者提供具体、实用的参考。
本文将对各种蛋白质水解度测定方法进行综合评价,比较它们的优缺点,并提出针对性的改进建议。
展望蛋白质水解度测定方法的发展趋势,以期为相关领域的研究提供新的思路和方法。
通过本文的论述,希望能够为蛋白质水解度测定方法的研究提供有益的参考和借鉴,推动相关领域的研究和发展。
二、蛋白质水解度测定方法概述蛋白质水解度的测定是了解蛋白质在特定条件下的降解程度,对食品、医药、饲料等领域的产品质量控制和工艺优化具有重要意义。
目前,蛋白质水解度的测定方法主要包括化学法、光谱法、色谱法以及电化学法等。
化学法是最早用于测定蛋白质水解度的方法之一,主要利用水解产生的氨基酸与特定试剂反应,通过比色或滴定等方式确定水解程度。
这类方法操作简便,但准确性受多种因素影响,如反应条件、试剂纯度等。
光谱法利用蛋白质或其水解产物在特定波长下的吸光性质,通过测定吸光度值来计算水解度。
蛋白水解物水解度测定方法的研究
蛋白水解物水解度测定方法的研究一、本文概述本文旨在深入研究并探讨蛋白水解物水解度的测定方法。
蛋白水解物,即蛋白质经过水解反应后的产物,其水解度的测定对于了解蛋白质的结构与功能、优化蛋白质水解工艺以及评估蛋白质水解产物的营养价值具有重要意义。
因此,本文将从多个方面对蛋白水解物水解度的测定方法进行系统研究,以期为提高蛋白水解物质量评价和工业生产过程的优化提供理论依据和技术支持。
具体而言,本文将首先综述现有的蛋白水解物水解度测定方法,包括化学法、光谱法、色谱法等,并分析其优缺点和适用范围。
在此基础上,本文将重点研究基于现代分析技术的水解度测定新方法,如高效液相色谱法、质谱法等,以提高测定的准确性和灵敏度。
本文还将关注水解度测定过程中的影响因素,如温度、pH值、水解时间等,以揭示其对水解度测定结果的影响规律。
通过本文的研究,期望能够为相关领域的研究人员和技术人员提供一套系统、全面的蛋白水解物水解度测定方法,以推动蛋白质水解技术的不断发展和应用领域的拓展。
二、蛋白水解物水解度测定方法概述蛋白水解物水解度的测定对于了解蛋白质在生物体内的消化、吸收和代谢过程,以及优化蛋白酶的催化效率具有重要意义。
水解度是描述蛋白质被水解成氨基酸或多肽的程度,其测定方法主要基于水解产物的分析。
目前,常用的蛋白水解物水解度测定方法主要包括化学法、光谱法和色谱法。
化学法主要利用氨基酸与某些化学试剂的特异性反应来测定水解产物的量,如茚三酮法和甲醛滴定法。
这些方法操作简便,但精度相对较低,且易受干扰。
光谱法如紫外-可见光谱法和荧光光谱法,通过测定水解产物在特定波长下的吸光度或荧光强度来推算水解度。
这种方法灵敏度高,但需要对样品进行预处理,且可能受到其他物质的干扰。
色谱法如高效液相色谱法(HPLC)和氨基酸自动分析仪,能够对水解产物进行分离和定量分析。
这些方法准确性高,但操作复杂,成本较高。
近年来还出现了一些新的测定方法,如基于酶联免疫吸附试验(ELISA)的方法,以及利用近红外光谱、拉曼光谱等现代光谱技术的方法。
蛋白质水解度快速定性测定
蛋白质水解度快速定性测定
一、原理
具有两个或两个以上的肽键的化合物都具有双缩脲反应。
肽黄金中小分子蛋白与铜离子结合形成紫红色复合物,豆粕及大豆浓缩蛋白中的大分子蛋白质则与铜离子形成紫色复合物。
本方法适合于大豆蛋白,能够快速的比较肽黄金与大豆浓缩蛋白以及原豆粕中蛋白质分解度的差异。
二、试剂
1、10%NaOH溶液
2、0.1g/ml硫酸铜溶液
三、测定步骤
1、样品处理:将样品碾碎,称取过200目筛样品50mg,装入
比色管;
2、加1ml蒸馏水,摇匀;
3、加10%NaOH溶液1ml,混合均匀;
4、加1滴0.1g/ml硫酸铜溶液,迅速摇匀,对着目光灯观察颜
色变化。
四、判定
大豆浓缩蛋白或豆粕:蓝色或兰紫色
肽黄金:紫红色。
蛋白质水解度的简易测定方法
蛋白质水解度的简易测定方法1.实验原理:蛋白质水解度的测定方法通常基于蛋白质中的特定氨基酸残基(如酪氨酸)在酸性和碱性条件下发生水解产生的特定产物的定量测定。
本实验基于酸性条件下酪氨酸的水解反应,通过测定水解后产生的酪氨酸相关物质的含量来计算蛋白质水解度。
2.实验步骤:步骤1:样品制备称取适量的待测蛋白质样品,加入一定体积的适宜浓度的酸性溶液(如6MHCl),并通过搅拌使蛋白质样品均匀分散。
将样品置于恒温水浴中,在一定的酸性条件下进行水解反应。
步骤2:样品处理在水解反应结束后,取出样品并进行处理。
将样品中的酸成分中和,通常使用适量的氢氧化钠溶液进行中和。
同时,可添加适量的酸性指示剂进行中和状态的可视化判断。
步骤3:产物分析将处理后的样品转移至分析容器中,并适当稀释。
利用合适的分析方法,如紫外可见光谱法、高效液相色谱法(HPLC)或毛细管电泳等分析方法,测定样品中特定产物(如酪氨酸)的含量。
步骤4:计算水解度根据上一步骤中测得的特定产物的含量,结合待测蛋白质的初始浓度和水解反应的体积等参数,可计算蛋白质的水解度。
水解度的计算公式如下:水解度(%)=(水解产物浓度/总蛋白质初始浓度)×100%3.实验注意事项:-实验中的酸性条件需要根据待测蛋白质的特性和水解反应的要求进行调整,确保水解反应的有效进行。
-在中和步骤中,应严格控制中和剂的用量,以避免影响产物浓度测定的精确性。
-在产物分析步骤中,要选择合适的分析方法,并注意样品预处理的影响,以确保分析结果的准确性和可靠性。
-实验过程中需要进行严格的操作控制,避免误差的引入,影响实验结果的准确性。
4.结论:本实验介绍了一种简易测定蛋白质水解度的方法。
通过在酸性条件下进行水解反应,并测定水解产物的含量,可以计算蛋白质的水解度。
这种方法具有简单、快速、准确的特点,适合于大规模的蛋白质水解度测定。
但需要注意实验操作的精确性和条件的合理性,以确保实验结果的可靠性和准确性。
一种测定大豆蛋白质水解度的简易方法_邹险峰
第20卷第6期长春大学学报V o.l20N o.6 2010年6月J OU RNAL OF CHANGCHUN UN I VER SI TY June2010一种测定大豆蛋白质水解度的简易方法邹险峰,陈星,高长城(长春大学农产品深加工吉林省普通高校重点实验室,吉林长春130022)摘要:介绍了一种新的测定大豆蛋白质水解度的方法,G-25色谱层析法。
该方法利用快速蛋白纯化系统将大豆蛋白水解多肽溶液进行G-25色谱层析,根据蛋白峰和肽峰面积计算蛋白质的水解度,并与甲醛滴定法进行了比较。
结果表明,G-25色谱层析法测定的大豆蛋白水解度略低于甲醛滴定法。
该方法快速、简便,可以普遍适用于各种蛋白质水解度的测定。
关键词:大豆蛋白质;水解度;G-25色谱层析中图分类号:S56511;Q51文献标志码:A文章编号:1009-3907(2010)06-0025-04大豆蛋白质是目前最重要的植物蛋白源,含有人体需要的全部8种必需氨基酸,且比例合理,氨基酸含量与动物蛋白相似,特别是赖氨酸含量可达到动物蛋白水平。
但是,大豆蛋白质分子量大,溶解度低,含有腹胀因子、胰蛋白酶抑制剂、血球凝集素等抗营养因子,易受温度、酸碱度等理化因素影响,且有一定的抗原性,消化率和生物利用率都远远不及鸡蛋和牛奶等动物蛋白质。
大豆多肽是大豆蛋白质经蛋白酶水解而成的多种低分子量多肽混合物,通常由3~6个氨基酸组成,其分子量主要分布在1000Da左右。
大豆多肽具有与大豆蛋白质相同的氨基酸组成,消除了对人体有害的各种抗营养因子,抗原性更低,溶解性极佳,易吸收,还具有提高免疫力、抗疲劳、降低胆固醇等多种生理功能。
因此,大豆多肽正在被广泛研究并应用。
在实际生产过程中,采用水解度(Degree ofH ydrlysis,DH)来反映大豆蛋白质的水解程度,作为重要的产品质量检定标准。
水解度通常定义为:DH=h/h tot@100%式中h为水解后每克蛋白质被裂解的肽键毫摩尔数(m#m o l/g),h to t为每克蛋白质的肽键毫摩尔数(m#m o l/g)。
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使用荧光光度计在吸收波长为 340 nm 条件下测
法,采用本方法测定蛋白质水解度时,不需要经典的 定衍生物的荧光度。水解度的计算公式:
pH- state 法那样,对反应体系的 pH 值进行在线控制,
DH=100n/N
而只需在水解结束后将反应体系的 pH 调至 7.0,并记
式中:n 代表牛乳蛋白水解后肽键的平均数,N 代
原料大豆中游离氨基酸进行测定,计算如下:
4 小结
DH= 水解蛋白质的7-.8(NHm2m含ol量/g)- 0.33(mmol/g)×100 %
其中:0.33 是原料大豆样品中游离氨基含量,可根 据自己样品测定值代入。
但是由于不同氨基酸和水合茚三酮显色不同,对 测量结果有部分偏差,例如脯氨酸和羟脯氨酸与茚三 酮反应产生黄色物质,因其 α- 氨基被取代,所以产生 不同的衍生物。郭兴凤[13]利用待水解原料的完全水解 液作为标准, 消除了由于不同氨基酸与茚三酮结合产
蛋白质由不同的氨基酸通过肽键相连所组成,在 这些氨基酸中一部分可以由人体自己合成,称为非必 需氨基酸;而另外约有八种氨基酸必需由食物供给, 称为必需氨基酸。食物中如含有全部的必需氨基酸, 而且数量又多,这种食物蛋白质营养价值就高。但是, 存在一个问题,就是如何使蛋白质或氨基酸更有利于 人体的吸收,因此国内外通过对此进行大量的研究表 明:蛋白质通过水解,水解为二肽或三肽的产物在人 体内要比自由氨基酸易于吸收,比没有水解的蛋白质 更易于吸收[1]。因此在用不同的蛋白质酶对蛋白质进 行水解时,必须要对水解度进行测定。
在水解过程中,当肽键断裂后,就会有一个新的 - COOH 和 - NH2 形成,因此,水解肽键的数,就可以根 据水解后测定新形成的末端 - COOH 或 - NH2 基团的 量确定。
2 水解度测定方法
2.1 pH- state 法
pH- state 法主要是基于蛋白质水解过程中,总是
要伴随质子的释放或吸收,质子化的多少,依赖于溶液
b1)
pH- state 法的优点在于操作简单、快速、可重复
2.3 邻苯二甲醛(Ortho- phthalaldehyde,OPA)法 Church 等[9]人首先于 1983 年应用 OPA 测定了蛋
性高,通常被用于水解度的连续测定。然而这种方法 白质水解度,OPA 是在碱性介质中与游离氨基反应生
了详细的描述,水解样品的光密度可由下式求得:
340 nm 处有吸收峰的物质。反应是在弱碱性环境中, 在酸性中终止。水解度的计算公式下:
DH=
AN2- AN1 Npb
×100
式中:AN1 指蛋白水解前氨基氮的含量[mg/g(pro- tein)];AN2 指 蛋 白 水 解 后 氨 基 氮 的 含 量 [mg/g(pro- tein)];Npb 指蛋白底物中肽键的氮含量。AN1 和 AN2 的 值可由标样在 340 nm 时的吸收曲线得知(标样一般采 用 L- 亮氨酸)[7]。
Y.L. Xiong 等[8]引用 Adler- Nissen TNBS 法测定了 酶水解 WP(I whey protein isolate)的水解度,计算如下:
m(0 a0- a)+m1a+m2a=Dx 其中:α0 为底物的初始浓度,α 为每个水解产物 的浓度,m0 为光密度对底物浓度的直线关系的斜率, m1 和 m2 为两种水解产物的斜率。Dx 任一水解样品的 光密度。 水解度可由下列方程求得: DH=κ(Dx- DO) κ等同于 100(/ α(0 m1+m2- m0)),D0 初始底物浓度 的光密度。 水合茚三酮与 α- 氨基酸一起在水溶液中加热, 可发生反应生成蓝紫色物质。首先是氨基酸被氧化分
物的呈色度不同对测定结果造成的误差, 并依据 QinYun Chen[14]的方法和现行的方法进行改进,使测定 结果更接近真实值。
参考文献:
[1] Di Pasquale,M.G. (1997)Amino acids and proteins for the athlete: The anabolic edge. Boca Raton,FL: CRC Press
一是在研究中需要用其他的方法进行校正;二是这种 成具有荧光性的异吲哚衍生物,其反应如下:
方法仅适用于中性及碱性(pH>7)或 pH<3 的酸性溶
液中进行的水解,并且需要特别的仪器控制水解过程
中的 pH。
袁斌等人[5]在基于国外通用的 pH- state 法基础上,
介绍了一种比较简单可行的蛋白质水解度的测定方
174 2007.Vol.28.NO.07
食品研究与开发
综述
α- 氨基的解离度可以用下面的公式计算:
1 a
=1+10 pK- pH
因为蛋白中亮氨酸游离的氨基的量与碱液的量成
正比关系,斜率用 b 表示,那么分别在 pH1 和 pH2 下进 行水解,就可以利用下面的公式计算 pK 值[4]:
DH=
hs- ht-
的 pH,通过加入的用于维持体系 pH 的碱或酸的量直
接计算出水解度[3]。计算公式如下:
DH=
h htot
×100
%=B×Nb
1 a
×M1p
1 htot
×100 %
Hale Waihona Puke 式 中 :B: 是 碱 液 的 体 积 mL;Nb 是 碱 液 的 浓 度
mol/mL;α:是氨基的离解度;Mp 是底物中蛋白质总含
量 g;htot 是底物中蛋白质中肽键的总数 mmol/g(protein)。
ho ho
×100
式中:hs 和 ho 分别代表 WPI 水解产物中和没进行
水解的 WPI 中氨基酸浓度;ht 代表用 6 mol/L 盐酸完全
水解 WPI 产物中总的氨基酸的浓度。没有酶的没水解
的蛋白质溶液视为 0 %DH。
pK=pH2+log(b2-
b1)-
log(10
pH - 2
pH1×b2-
根据水解度的定义如果直接用水解后游离氨基总 增加及可溶性蛋白的含量也可以用来表征蛋白质水解
含量计算水解度,由于用水合茚三酮显色法无法判断 的程度。测定水溶性蛋白质的方法很多,有福林 - 酚
水解后的游离氨基是原样品中本来就含有的还是经水 法、双缩脲法、考马斯亮蓝等。
解产生的,因此,赵新淮,冯志彪[12]对此进行研究,并对
录下所用的碱液的量即可。具体方法如下:水解开始 表每个蛋白分子的肽键总数。n 可用以下公式表示:
时,调节反应体系的 pH 为 7.0,反应结束后测定反应 体系的 pH 值,用 0.5 mol/L 的 NaOH 将反应体系的 pH
n=
ΔAbs×M×d ε×C
调到原来的 pH,记录下所用的碱液的量,按下式即可 计算出酪蛋白的水解度:
肽键数,这里的 h 和 htot 单位经常用 mmol/g 表示。对于 一个特定的蛋白质,htot 是一个常数,一般采用文献中 的经验值,比如:大豆蛋白质的 htot 值为 7.8 mmol/g,酪 蛋白质的 htot 值为 8.2 mmol/g,也可以根据蛋白质中氨 基酸的组成成分计算得到[2]。
综述
食品研究与开发
2007.Vol.28.NO.07 175
解,放出氨和二氧化碳,氨基酸生成醛,水合茚三酮则 3.2 水溶性蛋白质的测定
生成还原型茚三酮。在弱酸性溶液中,还原型茚三酮、
蛋白质通过酶水解,形成易溶解的小分子的多肽
氨和另一分子茚三酮反应,缩合生成蓝紫色物质。
溶液,使得溶解性增加,因此在一定程度上,水解度的
1 水解度的定义
蛋白质的水解度 DH(Degree of hydrolysis)代表蛋
白质在水解过程中,肽键被裂解的程度或百分比,数学
表达式为:
DH=
h htot
×100 %
式中:h 是被裂解的肽键数,htot 是原蛋白质中的总
作者简介:徐英操(1978- ),男(汉),助教,研究方向:食品蛋白质及酶 水解。
在以上的方法中,pH- stat 方法是通过滴定水解过 程中释放的质子测定 DH,OPA、TNBS、水合茚三酮测 定方法及甲醛滴定法都是利用游离氨基发生化学反应 进行测量的,其中用 OPA 和 TNBS 测定 DH 会有很高 的相关性,更精确些,但时间较长。水合茚三酮法测定 的 DH 一般都很低[15]。OPA 法优于 TNBS,因为更快速 更精确。在用游离氨基显色反应进行测定时,必须要考 虑到,水解后测定的游离氨基含量包括水解释放的游 离氨基和水解前本来就含有的游离氨基。
衍生物具有低荧光性的缺陷,进行研究,建立了通 用、高灵敏度的利用 OPA/2- ME 进行蛋白质微量氨 基酸分析。
TNBS) 这个方法由 Jens Adler- Nissen[6]于 1979 年进行了
详 细 描 述 ,TNBS 能 与 游 离 的 氨 基 酸 反 应 生 成 能 在
2.4 水合茚三酮(ninhydrin)法 早在 1949 年 Theodore B.Schwart z[11]就已经对此做
计算如下:DH=
1
A 000×W
×V1×1V020
×100
式中:A:查表得蛋白质的毫克数;W:称样重(g); V1:水解液的总体积(mL);V2:显色时所用稀释液的体 积(mL)。 2.5 甲醛滴定法
[2] Adler- Nissen.Enzymatic Hydrolysis of proteins [J]. Elsevier Applied science. 1986a London
白的分子量,d 指稀释因数,ε 指 340 nm 处的摩尔消 光系数(6 000/mol·cm),C 指蛋白浓度(g/L)。
Kang S. Lee 等 利 [10] 用荧光法测定游离氨基酸原 理,针对半胱氨酸与胱氨酸与邻苯二醛反应生成的
1/α 为 2.26;Mp:蛋白质的质量(g);htot:每克原料蛋白 质中肽键的毫摩尔数,对于酪蛋白,该值取 8.2 mmol/g。 2.2 三 硝 基 苯 磺 酸 法 (Trinitrobenzenesulfonic Acid