预实验一：拟南芥的萌发实验
植物组织培养中抗污染培养基新配方研究
植物组织培养中抗污染培养基新配方研究裘晓梅（山西省桑干河杨树丰产林实验局，山西大同037006）摘要:在既往组织培养中,培养基污染问题属于行业关注的重点,本文以此展开研究,通过合理筛选不同抗生素、化学药物,配置MS培养液,并以甘薯、烟草、拟南芥种子作为培养材料,分析培养基生长以及污染情况,进一步对培养基抗污染方法进行探索。
本文研究结果表明,头孢霉素(25mg/L),代森锰锌(30mg/L)并与百菌清经1:1混合,并配合药液包衣使用,可有效降低培养基污染发生率。
关键词:植物组织;抗污染培养;配方研究中图分类号:Q943.1文献标识码:A文章编号:1005-7897(2022)08-0004-030引言就目前而言，植物组织培养技术属于生物学研究重点，并且应用十分广泛，能够在为植物学科研工作开展提供保障的基础上，有效优化植物生产。
而污染率对于应用植物组织培养技术具有重要意义。
以往行业主要通过对外植体进行消毒，并配合规范性操作，有效降低感染率，但是该方法存在耗时长的问题，并且仍无法实现对污染率的彻底控制，因此，强调行业应高度重视培养基抗污染工作，采取有效手段，在降低实验室资源浪费的同时，最大程度上降低污染率。
1实验背景既往研究显示，培养基使用常见抗生素包括青霉素、利福平、头孢霉素等，均具有一定的抗菌效果，而代森锰锌、百菌清在触杀真菌效果方面优势显著。
多菌灵属于内吸型抗菌药物，益培灵属于抗污染复合药物。
有研究表明，通过将益培灵应用在相关培养基实验中，能够起到良好的抗菌处理效果，但是在长期研究过程中发现，上述药物抗菌效果均具有一定的局限性。
例如，青霉素虽然不会对外植体产生较大的影响，但是因为其具有易分解的特性，使用后药效时间相对较短，并且使用成本较高。
多菌灵触杀功能相对较差，并且在使用药物后药物生效时间相对较晚，利福平、头孢霉素虽然具有一定的杀伤性，但是在单一使用的情况下，则需要加大剂量，并且上述药物均需要建立在严格的组织培养下，才能够取得抗菌效果。
拟南芥生活史实验报告
拟南芥生活史实验报告
实验目的：
本实验旨在探究拟南芥(Arabidopsisthaliana)的生长和发育过程，包括种子萌发、幼苗生长、开花结实等。
实验材料：
1.拟南芥种子；
2.培养皿；
3.水；
4.营养液；
5.显微镜。
实验步骤：
1.将拟南芥种子放入培养皿中，加入适量的水，使种子完全浸泡在水中。
2.每天更换一次水，并将培养皿放在光照充足的地方。
3.在第三天左右，观察到一些小根从种子底部长出来，说明拟南芥已经开始了萌发过程。
4.继续观察，当幼苗长到一定高度时，可以将其转移到营养液中进行生长。
5.在营养液中，幼苗会继续生长，直到出现第一对真叶。
6.当幼苗长到一定高度时，可以开始观察其开花结实过程。
7.记录下每个阶段的时间和生长情况，并使用显微镜观察细胞结构和组织发育情况。
实验结果：
通过观察拟南芥的生活史过程，我们发现：
1.拟南芥的种子需要在水中浸泡一段时间后才能萌发。
2.幼苗在营养液中生长，需要不断补充养分和水分。
3.南芥的生长过程中会出现各种形态的叶子和花朵，这些变化与植物激素的作用有关。
4.拟南芥的花粉可以通过风或昆虫传播，实现繁殖。
5.南芥的生长发育受到环境因素的影响，如光照、温度、湿度等。
实验结论：
通过对拟南芥生活史的实验研究，我们了解到了该植物的生长发育过程和影响因素，有助于深入理解植物的生命活动和适应环境的能力。
同时，也为进一步研究植物生长发育机制提供了基础数据和参考依据。
拟南芥萌发指标
拟南芥萌发指标拟南芥萌发指标的研究一、引言拟南芥作为一种重要的模式植物，具有生长周期短、基因组小、易于培养等特点，因此在生物学研究中广泛应用。
了解并掌握拟南芥的萌发指标对于优化农业生产、推动科学研究具有重要意义。
本文将详细介绍拟南芥的萌发指标，包括萌发率、芽长、植株高度等，并通过实验方法与数据分析，探讨其在农业生产、科学研究等领域中的应用。
二、拟南芥的生长特点拟南芥是一种自交不亲和性植物，其种子可以在适宜的温度和水分条件下萌发。
在生长过程中，拟南芥的根系会向土壤中伸展，吸收水分和养分；茎会向上生长，形成植株；叶片会展开进行光合作用。
拟南芥的生长速度较快，因此其萌发指标的变化也相对较快。
三、萌发关键指标1. 萌发率：萌发率是指种子在适宜条件下萌发形成的幼苗所占的比例。
它是评估种子活力的重要指标之一。
2. 芽长：芽长是指幼苗从种皮突破至芽鞘尖端的长度。
它反映了种子的生长潜力和植株的发育状态。
3. 植株高度：植株高度是指幼苗从土壤表面至生长点（即顶部叶鞘）的总长度。
它反映了幼苗的生长速度和健壮程度。
四、实验方法与步骤为了评估拟南芥种子的萌发指标，我们采用了以下实验方法与步骤：1. 准备种子：选择健康、饱满的拟南芥种子，用清水清洗干净，然后用滤纸吸干水分。
2. 设定实验条件：将种子置于适宜的温度（25℃）和湿度（90%）条件下进行萌发。
3. 定期观察记录：在萌发过程中，定期观察种子的萌发情况，记录萌发率、芽长和植株高度等指标。
4. 数据整理与分析：将实验数据整理成表格，并对数据进行统计分析，以评估各萌发指标的变化趋势和相互关系。
五、数据分析与解释通过对实验数据的分析，我们发现拟南芥种子的萌发率、芽长和植株高度等指标在不同时间点上均表现出显著的变化。
其中，萌发率在适宜条件下迅速上升，反映了种子的良好活力；芽长和植株高度也随着时间的推移逐渐增加，表明幼苗正在正常生长。
这些数据为我们提供了关于拟南芥种子萌发过程的直观印象和定量评估。
叶片外植体接种实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握叶片外植体的采集、消毒和接种技术。
2. 熟悉植物组织培养的基本原理和方法。
3. 了解植物再生过程中的生理变化。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性，通过离体培养，使植物组织、器官或细胞再生为完整植株的技术。
外植体接种是植物组织培养的关键步骤之一，其成功与否直接影响到培养物的生长和分化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：拟南芥叶片、70%酒精、氯化汞、无菌水、MS培养基、琼脂、无菌滤纸、镊子、剪刀、接种箱、培养箱、显微镜等。
2. 仪器：高压蒸汽灭菌器、电子天平、恒温培养箱、显微镜等。
四、实验步骤1. 外植体采集：选取生长旺盛的拟南芥叶片，用剪刀剪下叶片，放入无菌水中浸泡。
2. 外植体消毒：将浸泡后的叶片取出，用无菌滤纸吸干水分，然后用70%酒精消毒30秒，再用氯化汞消毒5分钟，最后用无菌水冲洗3次。
3. 外植体接种：将消毒后的叶片用无菌剪刀剪成0.5cm×0.5cm的小块，接种在MS培养基上。
4. 培养条件：将接种后的培养基放入培养箱中，温度设置为25℃，光照时间为12小时/天，光照强度为2000lx。
5. 观察记录：每隔3天观察外植体的生长情况，记录生长状况、分化情况、污染情况等。
五、实验结果与分析1. 外植体生长状况：接种后的叶片外植体在培养3天后开始生长，叶片逐渐展开，颜色变绿，长出白色绒毛。
2. 外植体分化情况：在培养过程中，部分外植体分化出芽和根，形成完整的小植株。
3. 污染情况：在培养过程中，部分外植体发生污染，表现为培养基表面出现白色菌落，需要及时清除。
六、实验结论1. 通过本实验，成功掌握了叶片外植体的采集、消毒和接种技术。
2. 植物组织培养技术能够有效地诱导植物外植体再生，为植物育种、繁殖等研究提供了有力手段。
3. 在实验过程中，要注意消毒和培养条件的控制，以降低污染率，提高外植体的成活率。
七、实验讨论1. 外植体消毒时间对实验结果有较大影响，消毒时间过长或过短均可能导致外植体死亡或污染。
植物单倍体诱导实验报告(3篇)
实验背景单倍体诱导技术在植物育种中具有重要作用，能够加速基因分离、提高育种效率。
本实验旨在探究化学诱导法在植物单倍体诱导中的应用，观察并分析单倍体植物的生长发育情况。
实验材料1. 植物材料：小麦种子、拟南芥种子、番茄种子等。
2. 试剂：秋水仙素、蒸馏水、甲醇、盐酸等。
3. 仪器：恒温培养箱、显微镜、解剖镜、天平等。
实验方法1. 种子处理：将小麦、拟南芥、番茄种子分别用70%乙醇消毒5分钟，再用无菌水冲洗干净。
2. 诱导处理：将消毒后的种子浸泡在0.01%秋水仙素溶液中，处理时间为24小时。
3. 播种：将处理后的种子播种于含有适量营养基质的培养皿中，置于恒温培养箱中培养。
4. 观察与记录：定期观察植株的生长发育情况，包括株高、叶片颜色、叶片形状等。
同时，利用显微镜观察植株的染色体数目，以鉴定单倍体植物。
实验结果1. 小麦单倍体诱导：在诱导处理24小时后，小麦植株的株高明显降低，叶片颜色变浅，叶片形状呈细长状。
显微镜观察结果显示，部分植株的染色体数目为奇数，说明诱导成功。
2. 拟南芥单倍体诱导：在诱导处理24小时后，拟南芥植株的株高和叶片颜色无明显变化，但叶片形状呈细长状。
显微镜观察结果显示，部分植株的染色体数目为奇数，说明诱导成功。
3. 番茄单倍体诱导：在诱导处理24小时后，番茄植株的株高和叶片颜色无明显变化，但叶片形状呈细长状。
显微镜观察结果显示，部分植株的染色体数目为奇数，说明诱导成功。
1. 秋水仙素诱导效果：秋水仙素是一种常用的化学诱导剂，能够抑制纺锤体的形成，从而诱导染色体加倍。
本实验结果表明，秋水仙素在小麦、拟南芥、番茄种子中均具有较好的诱导效果。
2. 诱导时间：本实验中，诱导时间为24小时。
根据不同植物种类的特点，诱导时间可适当调整。
例如，小麦的诱导时间可适当延长至48小时。
3. 单倍体鉴定：显微镜观察是鉴定单倍体的有效方法。
通过观察染色体数目，可以判断植物是否为单倍体。
结论本实验成功利用秋水仙素诱导小麦、拟南芥、番茄种子形成单倍体植物。
植物学实验
Teaching Tools In Plant Biology
© 2012 Hunan Nomal University
• FER 别名TYK3、fer (fps/fes 相关性) 酪氨酸激酶 • 基因表达物fer (fps/fes 相关性) 酪氨酸激酶（磷蛋 白质NCP94） • 定位5q21 • 概述FER基因由1017个腺嘌呤、535个胞嘧啶、 636个鸟嘌呤和762个胸腺嘧啶组成。FER蛋白是 一种FPS/FES类非跨膜受体酪氨酸激酶，其作用 是控制细胞之间的粘连，并且通过生长因子受体 把信息从细胞表面传递到细胞骨架上。
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（3）水平或垂直放置于25℃温室中光照培养。
（4）培养一个星期后，观察野生型与突变体植株的
表型。
五、结果与分析 根据fer表型并查找相关Байду номын сангаас料，分析该基因在植 物生长发育中的可能功能。
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三、材料、器材和试剂
1、材料
野生型拟南芥种子，fer突变体种子。
2、器材
超净工作台、高压灭菌锅、培养皿、移液器及其
tip头、三角烧瓶。
3、试剂 70%乙醇、15%的Bleach、MS盐、维生素B2、 肌醇、蔗糖、琼脂粉。
（6）吸去管中液体，加入1ml灭菌水，上下震荡1min。
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（7）重复步骤（3）4次。 （8）吸去管中液体，加入1ml灭菌水，置于4℃,2~4天
植物萌发实践实验报告单(2篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物萌发的条件；2. 掌握植物萌发实验的操作方法；3. 观察植物萌发过程中的形态变化；4. 分析植物萌发过程中生理生化反应的特点。
二、实验材料1. 种子：小麦、大豆、绿豆等；2. 实验器具：培养皿、镊子、放大镜、剪刀、剪刀、记号笔、温度计、湿度计、计时器等；3. 试剂：清水、蒸馏水、一定浓度的氯化钠溶液、一定浓度的葡萄糖溶液等。
三、实验方法1. 实验分组：将种子分为四组，分别为A组、B组、C组、D组。
A组为对照组，使用清水；B组为氯化钠溶液处理组，使用一定浓度的氯化钠溶液；C组为葡萄糖溶液处理组，使用一定浓度的葡萄糖溶液；D组为对照组，使用蒸馏水。
2. 种子预处理：将种子放入清水中浸泡12小时，以去除种子表面的杂质和粘液。
3. 种子萌发实验：a. 将浸泡后的种子均匀放入培养皿中，每个培养皿放入50粒种子；b. 将培养皿放置在适宜的温湿度条件下，温度控制在25℃，湿度控制在60%；c. 每天观察种子萌发情况，记录种子萌发数量、形态变化等数据；d. 每隔一定时间，对种子进行水分、温度、湿度等条件调整，以保证实验的顺利进行。
4. 数据分析：a. 对实验数据进行统计分析，比较不同处理组之间种子萌发数量、形态变化等指标的差异；b. 分析种子萌发过程中生理生化反应的特点。
四、实验结果1. 种子萌发数量：A组（对照组）种子萌发数量为40粒，B组（氯化钠溶液处理组）种子萌发数量为30粒，C组（葡萄糖溶液处理组）种子萌发数量为35粒，D 组（蒸馏水对照组）种子萌发数量为38粒。
2. 种子形态变化：a. 对照组：种子萌发后，胚芽突破种皮，胚根开始生长；b. 氯化钠溶液处理组：种子萌发后，胚芽生长缓慢，胚根生长受阻；c. 葡萄糖溶液处理组：种子萌发后，胚芽生长迅速，胚根生长良好；d. 蒸馏水对照组：种子萌发情况与氯化钠溶液处理组类似。
3. 生理生化反应特点：a. 对照组：种子萌发过程中，呼吸作用旺盛，细胞内能量供应充足；b. 氯化钠溶液处理组：种子萌发过程中，细胞内能量供应不足，生长受阻；c. 葡萄糖溶液处理组：种子萌发过程中，细胞内能量供应充足，生长良好；d. 蒸馏水对照组：种子萌发情况与葡萄糖溶液处理组类似。
拟南芥的实验方案种植
拟南芥的实验室种植方案————蛭石培养法一．实验原理拟南芥是十字花科植物，个体小，生活周期短，种植和生长不受季节限制，自花传粉，是植物实验常用的模式植物。
蛭石是一种天然、无毒的矿物质，在高温作用下会膨胀的矿物。
它是一种比较少见的矿物，属于硅酸盐。
有离子交换的能力，它对土壤的营养有极大的作用。
栽培介质需要有良好的排水性和透气性，以防止过湿引起真菌和昆虫幼虫的滋生。
使用泥炭土，蛭石，珍珠岩的混合土壤作培养介质能达到良好的效果。
二．实验材料和试剂花盆、铲子、小型喷水壶、薄膜、橡胶手套、尖嘴洗瓶、滤纸、烧杯、营养液、蛭石、泥炭土、珍珠岩、人工培养箱、4︒Ｃ冰箱。
三．实验步骤（2）种子处理春化种子：将种子放置于烧杯内，4︒Ｃ冰箱下，保持3-4天。
（3）土壤混合物的配置泥炭土：蛭石：珍珠岩=1：1：1。
用铲子放入花盆中，用营养液浇灌至湿润。
2.播种：将种子倒在滤纸上，轻轻震荡纸张，可均匀播撒，用薄膜（既保证所需温度又保证所需湿度）封住花盆口，薄膜扎孔（以便后继浇灌营养液）。
3.培养：（1）人工培养箱，温度23︒Ｃ，光强240 µmol·m-2·s-1，16h光照, 8 h 黑暗, 相对湿度60%~70%。
（2）在培养时浇培养液，用尖嘴洗瓶浇灌，1-2天浇一次。
（3）种子发芽后，及时揭开薄膜，幼苗生长过程中及时浇灌营养液和适宜的水分。
四. 实验结果预测3-4天后种子可发芽，此时，及时揭去薄膜，继续培养植株，作实验观察。
五．注意事项（1）实验过程中佩戴橡胶手套。
（2）幼苗浇灌水分不易过量，以避免根部缺氧死亡。
（3）种子播种时要均匀。
（4）配置土壤混合物时，要保持珍珠岩完整和土质蓬松。
五. 参考文献和资料翟中和，丁明孝，王喜中.细胞生物学（第四版）.高等教育出版社。
刘金亮. 拟南芥实验室常用的种植方法.西北师范大学，生命科学学院，730070。
张庆友，孙新月，兰伟，许树成，祝雪兰. 拟南芥实验室种植栽培要领. 生物学通报. 2015年第50卷第七期。
拟南芥——精选推荐
拟南芥拟南芥培养⽅法的进展研究拟南芥( Arabidopsis thaliana) 是⼗字花科拟南芥属植物, 虽然没有经济价值, 但具有⽣育期短, 植株个体⼩及基因组⼩等特点,因⽽长期以来⼀直被⽤来作为分⼦⽣物学和传统遗传学研究的模式实验材料, 作为⾼等植物中具有最少基因组的物种,在科学研究中的地位也是极为重要得。
为了与国际接轨, 近年来国内已引⼊了拟南芥作为实验材料。
室内培养不仅可以得到试验所需的材料,也可以打破⾃然条件的限制对拟南芥进⾏各种诱导,为拟南芥新品种的培养和种性的改良提供便利条件,掌握拟南芥室内培养技术对顺利开展植物发育⽣物学的研究具有重要的意义。
但是,拟南芥属于较难培养的植物,许多因素制约着它的正常⽣长和发育，⽐如，拟南芥种⼦特别⼩, 幼苗很弱, 易夭折, 给它的培养带来⼀定的困难。
⽬前,国内很少有实验室具备国外⼈⼯⽓候室培养拟南芥的全⽅位调控条件, 在拟南芥培养⽅⾯存在成活率低、培养周期长等问题。
因此, 掌握拟南芥的培养技术⾮常重要。
拟南芥室内培养⽅法研究拟南芥室内培养⼀般从种⼦春化开始,经历消毒、育苗、移栽、后期管理、种⼦收集及保存等阶段。
通常采⽤⽔培和⼟培两种⽅法。
1种⼦的春化春化作⽤(verna lization)是某些⾼等植物具备成花能⼒所必需的,即通过适当长度和强度的冷处理诱导开花抑制蛋⽩基因沉默,从⽽使植物具备开花能⼒.近年来的研究已经表明春化过程中特定抑制蛋⽩表达沉默的原因部分是由于染⾊体上特定位点的组氨酸的共价修饰. 种⼦播前需在湿润条件下置4℃冰箱内低温处理3~4 d，对于已在冰箱内保存⼀个⽉以上的种⼦可不必低温处理。
2种⼦的消毒拟南芥种⼦的消毒主要是⽤次氯酸钠溶液和酒精，不同浓度的溶液对种⼦上的病毒和细菌有不同的杀灭作⽤，结合⽂献资料，在本⼈第⼆课堂的实验中（《拟南芥三种培养⽅法的⽐较》），对⽐了三种不同的消毒⽅法，探索消毒⽅法旨在寻找出⼀种对拟南芥种⼦伤害最⼩，并且最有效的消毒⽅法。
拟南芥花粉活力的测定及其在花粉发育研究中的应用
植物学通报Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙ ２００８， ２５ （３）： ２６８−２７５， ｗｗｗ．ｃｈｉｎｂｕｌｌｂｏｔａｎｙ．ｃｏｍ收稿日期： ２００７－０３－２２； 接受日期： ２００７－０５－１０基金项目： 国家自然科学基金（Ｎｏ．３０５７０９９３）和河北省科技攻关计划项目（Ｎｏ．２００５１１１）＊ 通讯作者。
Ｅ－ｍａｉｌ： ｐｙｙｃｅｌｌ＠１６３．ｃｏｍ．综述．拟南芥花粉活力的测定及其在花粉发育研究中的应用孙春丽， 潘延云＊河北农业大学生命科学学院， 保定０７１０００摘要 花粉发育是植物生活周期中一个重要且复杂的过程， 需要多种基因的参与。
花粉发育是否完善可以根据花粉形态特征， 并通过检测花粉的生活力、萌发力、可育性和受精能力等生理特征来判断。
以拟南芥候选基因突变体为材料， 通过对花粉的这些生理特征的检测， 可以初步推测候选基因参与花粉发育的功能和作用机制。
本文介绍了用于花粉活力测定的几种技术的原理和方法， 以及应用这些方法进行花粉发育研究的进展。
关键词 拟南芥， 花粉， 研究方法孙春丽， 潘延云 （２００８）． 拟南芥花粉活力的测定及其在花粉发育研究中的应用． 植物学通报 ２５， ２６８−２７５．花粉作为植物的雄配子体， 在有性生殖中发挥着重要作用。
花粉发育及花粉管的萌发和生长是植物有性生殖过程中的重要事件， 也是研究植物细胞极性生长、分化以及信号转导的重要体系（Ｓｐｉｅｌｍａｎ ｅｔ ａｌ．， １９９７；Ｔｗｅｌｌ， ２００２）。
拟南芥基因组测序工作完成后， 人们推测花粉表达的基因有数万个， 花粉组织特异的基因也有数千个， 占基因总数的１０％（Ｂｅｃｋｅｒ ｅｔ ａｌ．， ２００３； Ｈｏｎｙｓａｎｄ Ｔｗｅｌｌ， ２００３）。
花粉发育相关基因的功能研究迅速展开（Ｃａｒｙｌ ｅｔ ａｌ．， ２００３）。
目前， 通过Ｔ－ＤＮＡ转座插入序列和ＥＭＳ诱变得到的突变体库已超过９０万种， 为研究提供了大量的材料（Ｒｅｌｓｅｒ ａｎｄ Ｆｉｓｃｈｅｒ， １９９３；Ｊｏｈｎｓｏｎ ａｎｄ ＭｃＣｏｒｍｉｃｋ， ２００１）， 使我们可以运用反向遗传学的方法研究基因的功能。
盐胁迫拟南芥实验报告
一、实验背景盐胁迫是影响植物生长发育的重要因素之一，尤其是在土壤盐渍化严重的地区。
拟南芥（Arabidopsis thaliana）作为一种重要的模式植物，其根系生长和生理响应在盐胁迫下的变化已被广泛研究。
本研究旨在探究盐胁迫对拟南芥根系生长及生理响应的影响，并探讨相关基因在盐胁迫耐受中的作用。
二、实验材料与方法1. 实验材料：拟南芥种子（Col-0生态型）、盐胁迫处理剂（NaCl溶液）。
2. 实验方法：（1）种子萌发：将拟南芥种子在1/2 MS培养基中萌发，温度控制在22℃，光照强度为100 μmol·m^-2·s^-1。
（2）盐胁迫处理：将萌发后的拟南芥幼苗分为对照组和盐胁迫组，对照组用去离子水处理，盐胁迫组用不同浓度的NaCl溶液（0、50、100、150、200mmol·L^-1）处理。
（3）根系生长测量：采用根系扫描系统测量幼苗的根系长度、根冠比等指标。
（4）生理指标测定：采用氯化硝酸盐法测定幼苗的Na+、K+含量；采用氮蓝四唑法测定幼苗的SOD活性；采用丙二醛法测定幼苗的MDA含量。
（5）基因表达分析：采用实时荧光定量PCR技术检测相关基因（如SOS1、NIGT1.4、WRKY75等）的表达水平。
三、实验结果1. 根系生长：随着盐胁迫浓度的增加，拟南芥幼苗的根系长度逐渐缩短，根冠比降低，表明盐胁迫抑制了拟南芥根系生长。
2. 生理指标：盐胁迫处理组的Na+含量显著升高，K+含量显著降低；SOD活性降低，MDA含量升高，表明盐胁迫导致拟南芥幼苗的生理代谢紊乱。
3. 基因表达：（1）SOS1基因表达：盐胁迫处理组的SOS1基因表达水平显著升高，表明SOS1在盐胁迫响应中发挥重要作用。
（2）NIGT1.4基因表达：NIGT1.4基因表达水平在盐胁迫处理组中显著降低，表明NIGT1.4可能参与盐胁迫下拟南芥根系生长的调控。
（3）WRKY75基因表达：WRKY75基因表达水平在盐胁迫处理组中显著升高，表明WRKY75可能参与盐胁迫响应。
实验报告 种子萌发及胁迫实验
实验2：种子萌发及胁迫实验种子萌发及胁迫实验1、实验目的通过NaCl、聚乙二醇等处理各种不同瓜类种子，研究盐胁迫及水分胁迫对种子发芽率及各种生理指标的影响影响。
2、实验原理盐胁迫是由于高盐浓度下，细胞或组织的渗透压增加，导致内环境的稳定被破坏，从而影响种子的发芽以及根芽的生长。
同时，盐胁迫还会造成离子毒害以及高盐引起的营养亏缺、氧化胁迫等，这些都会造成种子的萌发及生长受到抑制，能耗增加。
通过不同浓度的NaCl来处理种子，用来比较它们的耐盐程度。
水分胁迫是指植物水分散失超过水分吸收，使植物组织含水量下降，膨压降低，正常代谢失调的现象。
植物除因土层中缺水引起水分胁迫外，干旱、淹水、冰冻、高温或盐碱条件等不良环境作用于植物体时，都可能引起水分胁迫。
不同植物及品种对水分胁迫的敏感性不同，影响不一。
聚乙二醇（PEG6000）是一类不能通过细胞壁的大分子渗透调节物质，对细胞毒性小，使植物组织和细胞处于类似干旱的水分胁迫之中。
通过研究了不同浓度PEG6000模拟干旱胁迫对不同种子萌发的影响，观测种子的发芽能力及生理变化,可以揭示不同植物的抗旱能力。
3、实验材料、仪器及试剂3.1 实验材料共处理六种不同的种子，分别为：①超恒精选毛节瓜②优选新绿宝吊瓜③细长粉皮冬瓜王④新津研4号⑤海南大肉三号⑥密宝南瓜F13.2 实验仪器纱布、标签纸、培养皿、托盘、胶头滴管、烧杯、容量瓶、镊子、直尺、钥匙、电子天平、恒温培养箱等3.3 实验药品及试剂蒸馏水、PEG6000、氯化钠固体等4、实验步骤4.1 盐胁迫处理1实验2：种子萌发及胁迫实验(1)材料预处理分别选取大小均匀，健康饱满的6种不同种子，升汞消毒后将其置于培养皿中并加入蒸馏水在室温下吸胀12小时。
(2)用200ml容量瓶分别配制20 mmol/L、40 mmol/L、60 mmol/L、80 mmol/L、150 mmol/L、200 mmol/L、250 mmol/L七个梯度的氯化钠溶液，将其置于干净的烧杯中，备用。
实验报告命名
实验报告一、实验目的1. 了解光照强度对植物种子萌发的影响。
2. 探究不同光照强度对拟南芥种子萌发率及生长状况的影响。
3. 分析光照强度与拟南芥种子萌发及生长之间的关系。
二、实验原理种子萌发是植物生长过程中的一个重要环节，光照强度是影响种子萌发及生长的重要因素之一。
光照强度对植物生理活动的影响主要体现在以下几个方面：1. 光合作用：光照强度影响植物的光合速率，进而影响植物的生长发育。
2. 生物钟调节：光照强度影响植物生物钟的调节，进而影响植物的生长节律。
3. 生长素合成：光照强度影响植物体内生长素的合成，进而影响植物的生长方向。
本实验通过设置不同光照强度处理，观察拟南芥种子的萌发率及生长状况，探究光照强度对拟南芥种子萌发及生长的影响。
三、实验材料与方法1. 实验材料：拟南芥种子、培养皿、蒸馏水、滤纸、光照培养箱、电子天平、尺子等。
2. 实验方法：（1）将拟南芥种子用蒸馏水洗净，放入培养皿中，用滤纸覆盖，保持湿润。
（2）将培养皿放入光照培养箱中，设置不同光照强度处理，分别为：低光照组（50μmol·m-2·s-1）、中光照组（150μmol·m-2·s-1）、高光照组（300μmol·m-2·s-1）。
（3）每隔24小时观察种子萌发情况，记录种子萌发数量。
（4）在实验结束时，测量拟南芥植株的株高、叶面积等生长指标。
（5）计算不同光照强度处理下拟南芥种子的萌发率、株高、叶面积等指标。
四、实验结果与分析1. 不同光照强度对拟南芥种子萌发率的影响实验结果显示，随着光照强度的增加，拟南芥种子的萌发率逐渐降低。
低光照组、中光照组、高光照组分别对应萌发率最高、中等、最低。
这表明在一定范围内，光照强度对拟南芥种子萌发率具有抑制作用。
2. 不同光照强度对拟南芥植株生长状况的影响实验结果显示，随着光照强度的增加，拟南芥植株的株高和叶面积均呈上升趋势。
低光照组、中光照组、高光照组分别对应株高和叶面积最低、中等、最高。
种子萌发的环境条件实验步骤
种子萌发的环境条件实验步骤
种子萌发的实验是植物生长研究中常见的实验之一。
以下是进行种子萌发实验的一般步骤：
1.准备材料：
各种需要的种子
培养皿或培养皿
湿润的滤纸或培养基
温度恒定的培养箱或温室
水
测量工具（如尺子、量杯等）
2.种子处理：
选择要研究的种子，清洗并消毒处理以减少外部细菌的干扰。
如有需要，对种子进行预处理，如浸泡、切割或其他处理方法。
3.培养条件设定：
在培养皿或培养皿中放置湿润的滤纸或培养基，确保其保持适当的湿度。
将处理后的种子均匀分布在培养皿或培养皿上。
4.环境条件设定：
放置培养皿或培养皿在温度恒定的培养箱或温室中，控制温度在适宜的范围内。
确保充足的光照条件，或根据需要控制光照时间和强度。
5.观察和记录：
每天或每隔一段时间观察种子的萌发情况，记录萌发的时间、数量和其他相关数据。
注意观察种子的根系生长情况、幼苗的生长状态等。
6.数据分析：
根据实验数据进行分析，比较不同条件下种子的萌发情况，探讨环境因素对种子萌发的影响。
7.结论和讨论：
根据实验结果得出结论，讨论种子萌发受到的环境条件影响，并可能提出未来研究方向或改进实验设计的建议。
通过以上步骤，可以进行种子萌发实验并研究种子在不同环境条件下的生长情况，从而深入了解种子萌发的机制和影响因素。
拟南芥模拟植物实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景拟南芥（Arabidopsis thaliana）作为一种重要的模式植物，在植物遗传学、分子生物学和发育生物学等领域的研究中发挥着举足轻重的作用。
由于其生长周期短、繁殖速度快、基因组相对较小、易于转化和遗传操作等特点，拟南芥成为科学家们研究植物生命现象的理想材料。
本实验旨在通过模拟拟南芥的生长过程，了解其生物学特性，并掌握相关实验技术。
二、实验目的1. 了解拟南芥的生长周期和生物学特性。
2. 掌握拟南芥种子萌发、移栽、生长和观察的基本实验技术。
3. 熟悉拟南芥的遗传转化和基因编辑方法。
三、实验材料1. 拟南芥种子2. 培养基（MS培养基）3. 培养皿、移栽盘、水培箱等容器4. 电转化仪、PCR仪、凝胶成像系统等仪器5. 相关试剂（如DNA提取试剂盒、PCR试剂等）四、实验方法1. 种子萌发（1）将拟南芥种子用70%乙醇消毒2分钟，然后用无菌水冲洗3次。
（2）将消毒后的种子接种到MS培养基上，置于培养箱中，保持适宜的温度和光照条件。
（3）观察种子萌发情况，记录萌发时间和生长状况。
2. 移栽（1）待拟南芥幼苗长到2-3片真叶时，将其移栽到移栽盘中。
（2）在移栽盘中加入适量的营养土，保持土壤湿润。
（3）观察移栽后的生长状况，记录生长时间和生长情况。
3. 生长和观察（1）将移栽后的拟南芥放置于水培箱中，定期更换营养液。
（2）观察拟南芥的生长状况，包括叶片、茎、根的生长速度和形态变化。
（3）记录生长数据，分析生长规律。
4. 遗传转化和基因编辑（1）利用电转化法将目的基因导入拟南芥细胞。
（2）通过PCR和DNA测序验证基因转化成功。
（3）利用CRISPR/Cas9技术对拟南芥基因进行编辑，观察基因编辑效果。
五、实验结果与分析1. 种子萌发实验结果显示，拟南芥种子在消毒后2-3天内开始萌发，5-7天内大部分种子萌发，生长状况良好。
2. 移栽移栽后的拟南芥生长迅速，叶片展开，茎、根生长良好。
3. 生长和观察实验过程中，观察到拟南芥在适宜的生长条件下，生长速度较快，叶片、茎、根的生长状况良好。
综合实验(拟南芥)
不同浇水频率对拟南芥生长的影响作 学者：罗玉玲 号：20102501014专业班级：生物科学 10 生物科学 4 班 课程名称：植物生理学实验 指导老师：叶庆生、黄胜琴、冷佳奕 实验时间：2012-12-6 至 2013-1-10不同浇水频率对拟南芥生长的影响罗玉玲(华南师范大学 生命科学学院 生物科学 10 科学四班 广州天河 510631) 摘要：本实验主要探究三个不同浇水频率对拟南芥生长的影响，实验结果表明：处理一、二即分别隔 2 天、4 天浇水一 次，拟南芥生长良好，植株根系发达，茎秆硬直，叶鲜绿、大，含水量高，脯氨酸含量在正常范围之内，无干旱胁迫. 处理三即隔 6 天浇水一次，植株生长明显受到抑制，根系极其不发达，叶片软、薄，含水量少，脯氨酸含量超出正常水 平 3 倍，受到严重胁迫.由此知隔 2~4 天浇水一次有利于拟南芥生长，隔 6 天浇水一次则严重影响拟南芥的生长. 关键词：拟南芥，脯氨酸，浇水，干旱The influence of different watering frequency to Arabidopsis’s growthLuo Yu-Ling (South China Normal University college of life science Guangdong Guangzhou 510631)Abstract: This study explores the influence of three different watering frequency to Arabidopsis’s growth, and the experimental results show that processing one and two namely every 2 days or 4 days watering once, Arabidopsis growth is good. The plant root system developed, stalks hard straight, green, big, high water content and the Proline content in the normal range, no drought stress. Processing three namely every 6 days a water, plant growth obvious is restrained, the root underdeveloped, blade soft, thin, water content, and the Proline content less than normal level 3 times, serious stress. We know every 2 ~ 4 day watering a conducive to Arabidopsis growth, and every 6 days watering is seriously affect the growth of Arabidopsis thaliana. Key words: Arabidopsis thaliana; Proline; watering; drought 水是生命之源，是一切生物赖以生存的基础。
拟南芥培养
实验目的：拟南芥无菌培养。
实验仪器：光照培养箱,盆.培养皿,超净台,灭菌锅.实验试剂：营养土,蛭石,MS培养基实验步骤：1、配制MS培养基（一般装在三角瓶里，最好只装最大体积的70％以内），高温灭菌（115度15分钟）在未固化情况下，（固化的话可以在微波炉里融化再使用）在超净台里倒入培养皿（一般一个培养皿内装25ml左右培养基，培养皿也是要灭菌的，一般用报纸或者牛皮纸包一排，十几个吧），待充分凝固之后平放密封保存（倒好之后最好静置15－20分钟，然后放在塑料袋里，保存在4度）2、将拟南芥种子用10％消毒水（洗洁精体积分数）浸泡15分钟左右（要保证每粒种子都浸透），无菌水冲洗3遍，加入适量0.12%的琼脂溶液（要灭菌的）用蓝枪头播在之前准备的灭菌MS固体培养基上(要在超净台中操作)，点种子大概的确有点难以想象，下次你来拿种子和苗的时候我可以给你演示一下；3、４℃春化2天后转到光照培养间，温度２２℃／１８℃（日／夜），1６ｈ／８ｈ光周期，白炽灯光照培养，光照强度五千Lx。
（也不用这么严格的，一般22－25度，5000－7000lx，差不多就行了）4、大约7－10天后，拟南芥根须和芽均已长出，长到3至4片叶后可以移入土中培养（平板里长太久的话似乎会影响植物以后的生长）。
5、用营养土和蛭石以1：1的比例混合拌匀配制，以保证营养及透气性。
用高温杀菌以杀死土中的害虫。
（我们现在种得多，土都不灭菌的，注意拔拔杂草就行了）6、用镊子小心夹住培养皿中的拟南芥茎处，取出放在土上，卷起根须塞入土中。
避免将叶片带入土里。
放在光照培养间，条件和长平板一样就行了7、在托盘中浇水，通过毛细作用由底部的孔吸收上去，保证土壤湿润。
刚移植的前两天可以用基本上透明的盖子盖住盆顶。
MS培养基的配方是对的单位mg/L大量元素：NH4NO3 1 650KNO3 1 900CaCl２·2H2O 440MgSO4·7H2O 370KH2PO4 700微量元素：KI 0.83H3BO3 6.2MnSO4·4H2O 22.3ZnSO4·7H2O 8.6Na2MnO4·2H2O 0.25CuSO4·5H2O 0.025CoCl2·6H2O 0.025FeSO4·7H2O（27.8）+Na2-EDTA·2H2O（37.3）有机成分：肌醇100烟酸0.5盐酸吡哆醇（维生素B6）0.5盐酸硫胺素（维生素B1）0.5甘氨酸2注意：肌醇一般是要另外分开来独自配成浓缩液，因为它比较难溶，一般配成100倍，而除去肌醇后的有机，还是可以配成1000倍的。
拟南芥根长实验报告
实验时间：2023年X月X日-2023年X月X日实验目的：本研究旨在探究不同环境因素对拟南芥根长的影响，以期为拟南芥的育种和栽培提供理论依据。
实验材料：1. 拟南芥种子（品种：Col-0）2. 水培液（含1/2 MS培养基）3. 不同浓度的植物生长调节剂（如IAA、NAA、GA3等）4. 不同温度的培养箱5. 不同光照强度的光源6. 移液器、剪刀、镊子等实验器材实验方法：1. 将拟南芥种子在水中浸泡过夜，然后播种于铺有滤纸的培养皿中。
2. 将培养皿放入恒温培养箱中，保持适宜的温度（如22℃）和光照（如16小时光照/8小时黑暗）条件。
3. 待种子发芽后，将幼苗转移到水培液中，每盆10株，每组重复3次。
4. 分别设置以下实验组：- 对照组：正常水培液- 低浓度IAA组：水培液中加入低浓度IAA- 高浓度IAA组：水培液中加入高浓度IAA- 低温度组：将培养箱温度设置为较低温度（如18℃）- 高温度组：将培养箱温度设置为较高温度（如26℃）- 低光照组：降低光照强度- 高光照组：提高光照强度5. 在实验进行过程中，定期观察记录拟南芥幼苗的生长状况，并在实验结束后测量幼苗的根长。
实验结果：1. 对照组：幼苗生长良好，根长平均为5.2cm。
2. 低浓度IAA组：幼苗生长状况与对照组相似，根长平均为5.1cm。
3. 高浓度IAA组：幼苗生长受到抑制，根长平均为3.8cm。
4. 低温度组：幼苗生长受到抑制，根长平均为4.5cm。
5. 高温度组：幼苗生长受到抑制，根长平均为4.3cm。
6. 低光照组：幼苗生长受到抑制，根长平均为4.7cm。
7. 高光照组：幼苗生长受到抑制，根长平均为4.8cm。
讨论：1. 本实验结果表明，IAA对拟南芥根长具有促进作用，但高浓度IAA会抑制根长。
2. 低温和高光照均会抑制拟南芥根长，而适宜的温度和光照条件有利于拟南芥根长的增长。
3. 本实验为拟南芥的育种和栽培提供了理论依据，有助于优化栽培条件，提高拟南芥的产量和品质。
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预实验一：拟南芥种子的接种和春化
1.实验品种：
拟南芥Arabidopsis thaliana种子
2.仪器工具与药品
表1 实验用仪器、工具、药品
名称数量名称数量磁力搅拌器1套烧杯（500ml），量筒（50ml）各1个PH计1支玻璃棒1个
微波炉1台称量纸、滤纸各1套
湿热灭菌锅1台蓝盖瓶（200ml）
蓝盖瓶（100ml）
三角烧瓶（1000ml）1个2个1个
紫外线超净台1台小镊子3个冰箱、纯水机各1台报纸、麻绳少许电子天平（）1台培养皿2套
移液枪（20ul）移液枪（1ml）灭菌枪头（20ul）灭菌枪头（1ml）1只
1只
1套
1套
1/2MS培养基
蔗糖
NaOH、HCl
琼脂
75%乙醇
超纯水
2.5%NaClO
纳米TiO2
1.24g
15g
适量
5g
100ml
1000ml
100ml
0.75g
宽口生态瓶（空）1个方形培养皿（10个）1套
3.方法与步骤
3.1拟南芥种子的接种
（1）称量：称取1/2MS培养基1.24g，蔗糖15g，琼脂5g；量取无水乙醇75ml，NaClO 2.5ml，超纯水200ml和500ml两份。
（2）培养基的制备：将有500ml超纯水的烧杯放入磁力搅拌机上，放入磁石，打开开关；先后加入1/2MS培养基1.24g，蔗糖15g。
（3）调节PH：打开PH计，待其PH稳定后，先用纯水润洗后用纸巾擦干，在放入烧杯中测定，期间用NaOH和HCl调节PH至5.7-5.8。
（4）配置杀菌消毒剂：用超纯水配置75 %乙醇100ml，2.5 %NaClO100ml和200ml超纯水，放入对应的蓝盖瓶中。
（5）转移：将溶解好的培养基倒入1000ml三角烧瓶中。
（6）包扎：将三角烧瓶用塑料纸和麻绳包扎好，将生态瓶中放入少许滤纸，也按上述方法包扎好；将2套培养皿和镊子用报纸和麻绳包扎好，放入湿热灭菌锅中121℃30min。
（7）紫外杀菌：将紫外线超净台的门关闭，开启紫外灯提前杀菌30min。
（8）接种种子：晾凉后（培养基除外），将灭菌锅中的用具放入紫外线超净台，再移入种子、20ul的枪（含枪头）和方形培养皿。
1.打开酒精灯，用酒精喷雾剂对双手进行消毒。
2.倒平板：将方形培养皿打开（小盖朝下，大盖朝上），开一小口倒入培养基至小盖的大约1/2处，放在一边，等其凝固。
3.种子杀菌消毒：将种子倒入玻璃培养皿中，加入75%乙醇杀菌30s；用移液枪吸去75%乙醇（或者在不倒掉种子的前提下直接倒）：再用无菌水洗，洗完吸去；用NaClO浸泡8min；用无菌水洗5-6次。
4.干燥：倒至滤纸上干燥。
5.加种子：用移液枪加入到已经凝固的培养基上，每个格子放一颗种子。
6.春化4℃黑暗环境下春化48h。
图一：接种好的拟南芥图二：拟南芥春化。