一片叶子的成长史1
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状态良好的不定芽作为不
定芽伸长的材料
试剂 Sucrose(g/L) MS(g/L) NAA(mg/L) BAP(mg/L) pH Agar(g/L) 5.8 6
0.5mg/L 0.5mg/L
5.8 6
Total(L)
1
1
6、不定根诱导(再分化)
切取已伸长至3~4cm、生长
状态良好的不定芽作为不定根诱
导的材料,直立插入不定根诱导 培养基中,于相同条件下培养3
Medium No.
试剂 Sucrose(g/L) MS(g/L) NAA(mg/L) BAP(mg/L) pH Agar(g/L)
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E、 加入琼脂放入微波炉溶解;
F、培养基的分装和高压灭菌,条件:101.3kPa,121℃时保持15-20分钟即可; G 、需要加入激素的培养基,在高压灭菌后冷却到合适温度再加入。 2、培养条件:温 度 25℃、每天光照时间16h。
3、样本的采集与处理
准备器材:剪刀、镊子、保鲜袋、手套
样本处理:
A、将苗木上的侧芽(约3~4cm)切下; 2、用1%次氯酸钠溶液浸泡、消毒15分
(一)生长素类
生理作用:促进细胞伸长和细胞分裂,形成愈伤组织(2,4-D) ;促
进生根(IBA) ;促进植物性别分化;防止落花、落果、促进无
籽果实的形成;与细胞分裂素配合共同诱导不定芽的分化、侧芽
的萌发与生长,诱导胚状体的产生。
种类:IAA(吲哚乙酸)、NAA(萘乙酸)、2,4-D(2,4-二氯苯氧乙 酸)、IBA(吲哚丁酸)。 药性: 2,4-D> NAA = IBA >IAA 溶解性:一般溶于95%酒精或0.1mol/LNaOH中。用量在0.01-5mg/L。
6、不定根诱导
7、再生植株的移栽和炼苗
二、植物组织培养的技术基础
1、基础培养基的配制 A、准备器材:烧杯、量筒、药匙、三角瓶(平底试管)、天平、pH计、锡 纸、镊子 试剂:蔗糖、琼脂、MS培养基、0.1M KOH、0.1M HCl、蒸馏水
B、计算培养基各成分用量并称量;
C、溶解MS培养基和蔗糖并定容。; D、pH的调整(5.8);
2、分类 (一)依不同培养材料分为:
1、愈伤组织培养
愈伤组织:植物组织培养过程中,在人 工培养基上由外植体的表面细胞恢复分裂 能力而形成的一团无序的薄壁细胞。 2、悬浮细胞培养 4、原生质体培养 3、器官培养 5、分生组织培养
(二)依培养介质不同分为液体培养和固 体培养
3、原理-植物细胞全能性
植物细胞全能性:指任何具有完 整细胞核的植物细胞(不论是性 细胞还是体细胞)都具有全套的 遗传信息,在离体培养情况下, 这些信息仍能进行表达而产生一 个独立完整的植物个体。
(二)细胞分裂素类
生理作用:促进细胞分裂与扩大,可使茎增粗,而抑制茎伸长;
诱导芽的分化,促进侧芽萌发与生长。
种类:6BA(6-苄腺嘌呤)、KT(糠基腺嘌呤)、ZT (玉米
素)、2ip(异戊烯基腺嘌呤)、激动素(呋喃氨基嘌呤)
等。常用的是6-BA和KT。其与生长素配合使用控制器官的 分化。 溶解性:溶于0.5 或 1mol/L HCL或稀薄的NaOH中。用量为0.110mg/L。
Medium No. 试剂 Sucrose(g/L) MS(g/L) pH Agar(g/L) Total(L)
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钟;
B、无菌水5次洗净后,直立扦插于添加3 %蔗糖的 MS基本培养基上培养;
C、每隔1 个 月以同样的方法继 代 1次。
取连续继代6个月以上的无菌苗叶片为材 料。
4、愈伤组织和不定芽诱导(脱分化)
取无菌苗顶部的前4对叶,切 取叶基部5mm 长度的叶片作 为外植体 在培养箱中培养30d后,观 察愈伤组织和不定芽的生长状 态
分化的细胞在一定 条件下,可以转变 Medium 为胚性细胞,重新 No. 获得分裂能力。 Phfree
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绿 叶 的 “ 凤 凰 涅 坛
植物组织培养
——以康乃馨“白雪公主”组培为例
一 、植物组织培养的基本概念
二、植物组织培养的具体实验操作流程
一 、植物组织培养的基本概念
1.植物组织培养的定义
2.植物组织培养的分类
3.植物组织培养的原理
4.营养成分
5.植物生长调节物质
1、定义 植物组织培养:离体的植物细胞、组织、器官以及 原生质体在适宜的光照、温度、湿度等环境条件下被 培养在含多种养分的无菌培养基中使其增殖、生长、 发育而形成完整的植株的过程。 外植体:指活植物体上切取下来以进行培养的那部 分组织或器官。
体培养基可用于诱导愈伤组织,也可用于胚、茎段、茎尖及花药的培养,其液体培
养基用于细胞悬浮培养时能获得明显的成功。MS培养基的无机养分的数量和比例 比较合适,足以满足植物细胞在营养上和生理上的需要。因此,一般情况下,不用
再添加氨基酸、酪蛋白水解物、酵母提取物及椰子汁等有机附加成分。和其它培养
基的基本成分相比,MS培养基中的硝酸盐、钾和铵的含量高,这是它的显著特点。
度以及较高的光强并进行自养, 分钟,移栽至盛有土壤基质的花盆中。
必须要有一个逐步锻炼和适应的 B、土壤基质的配比为珍珠岩∶营养土=
1∶1。
过程。这个过程叫驯化或炼苗。
C、移栽后用透明 的塑料杯 罩 住幼苗以 保
持水分。在遮阴下培养7d左右,待再生 幼苗完全成活去掉塑料杯,转移至光照条 件下培养。
悬浮培养
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பைடு நூலகம்
试剂 Sucrose(g/L) MS(g/L) NAA(mg/L) TDZ(mg/L) BAP(mg/L) pH Agar(g/L) 5.8 6 15 2.21
0.5mg/L 0.5mg/L 0.5mg/L
5.8 6
Total(L)
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5、不定芽伸长(再分化)
将诱导培养30d、生长
脱分化以后的分生 细胞在一定条件下 重新分化为各种类 Medium No. 型的细胞。
MS培养基
• MS是人名Murashige and Skoog的缩写。 • MS培养基是目前使用最普遍的培养基。其具有较高的无机盐浓度,能够保证组织 生长所需的矿质营养还能加速愈伤组织的生长。由于配方中的离子浓度高,在配制、 贮存和消毒等过程中,即使有些成分略有出入,也不会影响离子间的平衡。MS固
1.维生素类:硫氨素(VB1)、烟酸(VB3)、吡多醇(VB6)泛酸、叶酸等。
2.氨基酸: 甘氨酸(2-3mg/L), 丝氨酸、 水解酪蛋白(CH)、水解乳蛋白(LH)(3002000mg/L),促进胚状体或不定芽的分化。 3.添加物:大多含氨基酸、激素、酶等的复杂化合物。
(1)椰乳(CM):CM是椰子的液体胚乳,一般使用浓度在10%-20%;
薄壁细胞
• 薄壁细胞是多数植物体内数目最多的细胞,成熟后继续存活,只有很薄的初生壁,没有次
生壁,一般为直径近乎相等的多面体,但也可以分化为星芒、分枝以及臂状等。薄壁细胞
的功能很多,如贮存营养物质、进行光合作用和需氧呼吸等。 • • • • • • • 基本薄壁组织 同化薄壁组织 贮藏薄壁组织 贮水薄壁组织 通气薄壁组织 轴向薄壁组织 吸收薄壁组织
(三)赤霉素类—GA3 生理作用:诱导茎的细胞伸长生长;促进开花;打破 休眠;对生长素和分裂素的活性有增效作 用。 溶解性:溶于水中不稳定,不耐热,应采用过滤灭菌 法加入,或用95%酒精溶解再用水定容配成母 液。
二、植物组织培养的具体实验操作流
程 1、基础培养基的配制 2、培养条件 3、样本的采集与处理 4、愈伤组织和不定芽诱导 5、不定芽伸长
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5d,观察不定根分化情况。
0.1mg/L 0.5mg/L
5.8 6
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Total(L)
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7、再生植株的移栽和炼苗 A、将已生根的再生幼苗用镊子从培养基中
轻轻拔出,用毛笔在流水下将根部粘附的
试管苗为了适应移栽后的较低湿 培养基洗净后,放入生根粉溶液中浸泡五
4、营养成分
(一)大量元素(0.5mmol/L以上)
碳(C)、氮(N)、磷(P)、钾(K)、钙(Ca)、镁(Mg)和硫(S)等元素。
(二)微量元素(0.5mmol/L以下) 铁(Fe)、铜(Cu)、钼(Mo)、锌(Zn)、钠(Na)、锰(Mn)、钴(Co)、 硼(B)和碘(I)等。
(三)有机营养
(2)香蕉:用量为100-200g/L,主要应用于兰花的组织培养中,缓冲pH,促进发育;
(3)马铃薯:用量为150-200g/L,具壮苗的作用; (4)酵母提取液(YE):用量约0.5%;麦芽提取液(ME),用量为0.0l%—0.5%; 苹果汁、蕃茄汁(TJ)、柑桔汁等。
5、植物生长调节物质——植物激素