包覆脂质体的研究进展
包覆脂质体的研究进展
・综述・包覆脂质体的研究进展吕青志,翟光喜*,王海刚,黄兴刚(山东大学药学院,山东济南250012)摘要:包覆脂质体是一种新型的膜修饰脂质体,与普通脂质体相比,提高了脂质体体内外稳定性,延长了体内循环时间,增加了药物的靶向性。
现对各种包覆材料的特点予以评价,并对包覆脂质体的国内外研究进展作一综述。
关键词:脂质体;包覆脂质体;壳聚糖;多糖中图分类号:Q946.4文献标识码:A文章编号:1672-979X(2007)02-0045-04Research Advance on Coated LiposomesLV Qing-zhi,ZHAI Guang-xi*,WANG Hai-gang,HUANG Xing-gang( School of Pharmaceutical Sciences, Shangdong University,Jinan 250012, China)Abstract:Coated liposomes are a kind of surface modified liposomes which can improve the stability of liposomeseither in vivo or in vitro, prolong the circulation time in vivo by reducing the uptake of the phagocytic cells in the reticuloen-dothelial system (RES) and increase the target detection. The advance of coated liposomes and the characters of coatingmaterials are reviewed in this paper.Key words:liposome; coated liposome; chitosan; polysaccharide收稿日期:2006-11-28作者简介:吕青志(1983-),女,山东烟台人,硕士研究生,药剂学专业*通讯作者:翟光喜,男,博士,副教授Tel:(0531)88382015E-mail:zhaiguangxi@yahoo.com.cn脂质体(liposome)作为药物载体,具有一定的靶向性和缓释性,能降低药物给药剂量,减轻药物毒性,提高药物的稳定性[1]。
脂溶性药物脂质体包封率研究进展
综述脂溶性药物脂质体包封率研究进展——王淑娟【摘要】脂质体的质量研究是脂质体研究中最为重要的一部分,其中一个重要的指标是包封率的测定。
本文主要对脂溶性药物脂质体包封率测定方法及方法的可行性研究等近期研究进行了综述,并分析了现存的一些问题及适当的解决方法。
为脂溶性药物脂质体的研究提供参考。
【关键词】脂质体;脂溶性药物;包封率几十年来,脂质体作为新型药物载体以及生物膜模型的研究受到热切关注。
这主要是基于脂质体既有亲水性又有疏水性,且作为药物载体与其他剂型相比,脂质体因其磷脂可生物降解、无毒、无免疫原性,生物相容性非常好,且结构上自我封闭,具有保护药物生物活性、有效的控制药物释放、提高稳定性、延长半衰期、提高疗效及降低药物毒副作用等诸多优点,被广泛研究,并用于动物体外和体内药物实验。
很多脂溶性药物因其生物利用度低、毒性大或水中不稳定等特点,临床应用受到限制[1]。
脂质体作为一个优良的药物载体,脂溶性药物可溶解于磷脂双分子层的夹层中,动态地增加难溶性药物的溶解度。
药物的理化性质、脂质双分子层的构成及制备方法也会影响药物的溶解度[2]。
脂溶性药物因其理化性质不同,脂质体的制备和检测方法多种多样,选择合适的制备方法和检测手段成为载药脂质体制备研究的一个重要部分。
本文主要对脂溶性药物脂质体包封率测定方法及方法的可行性研究等近期研究进行了综述,并分析了现存的一些问题及适当的解决方法。
为脂溶性药物脂质体的研究提供参考。
一脂溶性药物脂质体制备方法当磷脂分散在水中形成多层囊泡,每一层都是磷脂双分子层,各层之间被水隔开,这种由脂质双分子层构成,内部为水相的闭合囊泡称为脂质体。
无论何种方法制备,脂质体的形成都是由于磷脂-磷脂分子、磷脂-水分子之间亲水与疏水相互作用的结果。
而引起磷脂分子重排,形成双分子层进而达到热力学平衡,最终形成脂质体的这一过程必须要有能量的供应[1]。
传统脂质体的制备一般包括以下基本步骤:①磷脂、胆固醇等脂质及脂溶性药物先溶于有机溶剂,在一定条件下去吃出溶解脂质的有机溶剂使脂质干燥形成脂质薄膜;②使脂质分散在水溶液(或含有水溶性药物的水溶液)中水化形成脂质体。
脂质体的研究新进展
杨鹏 波
张华
山东 中医药 大学
济南
2 5 0 3 5 5
摘要: 1 日的1 综述 脂 质 体 的 应 用 和研 究进 展 , 为 药物 制 成 脂质 体 提 供 更 多的 选择 f 方法】 查 阅 近 几年 国 内相 关 的 文献 资料 并 总结 脂 质 体 在 各 方面 的 应 用、 新 的 制备 方法 和 修 饰 方 法及 其 各 自的 优 点 . 【 结 果l 从脂质体的的应用、 制备方法 、 修饰 、 质 量评 价 等 方面 , 可 看 脂质 体 与生 物 膜 有 着极 好 的 相
容性, 作为载体有很 大的优势 , 修饰后 , 能增强靶向性, 提 高药物的疗效 , 降低毒副作用 f 结论 1 随着新材料 的产生和新技术的发展 , 脂质体 的优势 将更加显现脂质体作 为一种新型的药物 载体 , 与生物膜具有相似性 , 具有 多种优 良特性 , 改 变了传统的给 药方式 经过近 4 ( ) 年的研 究, 已到广泛 的
c h mo 【 1 l L i p ( ) 、 【 ) l m h a s t h e b r o a d a p p l i c a t i o n a f t e r n e a r l y f o r t y y e a r s o f r e s e a r c h
行 比较 发现 , 姜黄素 脂质 体在皮 肤 中的滞 留量 和皮肤 累积透过量都 比较大 , 提 高 了疗效 , 降低 了毒性 。 1 . 2 . 2 眼用 载药脂 质体 目前 主要应 用 F滴 眼剂 、 玻 璃体 内注射 给药 及眼用 喷雾 剂等 。作用机 制 : 与生物 膜融合 作用 、 通过 角膜细 胞实 现跨 角膜转 运和 脂质体 与眼 角膜 的吸附 作用 。郑建 灵i I 等 采用 无膜溶 出法研 究 西 罗莫 司壳 聚 糖包 覆 脂 质 体 一 原 位 凝 胶 的 释放 机 制, 对释放 曲线进 行拟 合分析 , 与传 统 眼用 药 物相 比 ,
脂质体研究进展.
脂质体研究进展脂质体是一种人工制备的磷脂类生化物质,属携有双层包膜的脂质小囊。
它作为药物的人工膜和赋形剂,可将治疗药剂准确地命中病变部位、组织和细胞。
脂质体包裹药物可用于肿瘤、免疫等方面的治疗。
关键词脂质体、膜、人工、赋形剂脂质体是一种人工制备的携有双层包膜的磷脂质小囊,可作为各类治疗药剂的人工膜和赋形剂。
通过各种给药途径,它可使所包裹的药物具有打靶作用,准确地击中病变部位、组织和细胞,从而增强药物的疗效。
1 脂质体的主用途主用途有:作为疫苗的包膜;作为NDA片段的输送赋形剂以治疗各种皮肤病;以含脂质体的药物治疗哮喘所致支气管缩窄;脂质体包裹的药物可用于缓解或预防手术后伤口粘连;这类药用化合物可应用于肿瘤治疗;此类药物在用于基因治疗时免用病毒载体;作为化妆品软膏可促进皮肤神经酰胺生长等。
脂质体抗肿瘤药可准确击中靶器官胰腺[1],亦可用来治疗头颈部鳞癌[2]。
脂质体药物具有对体内硬肿瘤打靶的功能[3],用于治疗胃或结直肠癌的肝转移或人乳头状瘤病毒的感染[4,5]。
脂质体及其包裹的药物可在体内外渗,进入硬瘤组织[6]。
投给脂质体进行体内动力疗法时,可观察到大鼠RR1022肿瘤模型的荧光变化[7]。
这类药物可用于治疗艾滋病并发的Kaposi肉瘤[8]。
脂质体能促进药物输入人白血病细胞[9]。
脂质体复合物可用于人树突状细胞的基因转移和介导DNA接种[10,11]。
它还被用于对肺泡巨噬细胞的药物打靶和白喉毒素A基因的介导[12,13]。
有关脂质体药物使激活的单核细胞凋亡的问题曾展开过争论[14,15]。
据报道,以脂质体包裹HBsAg经淋巴结传送可获致免疫性[16]。
此外,脂质体还可用作加速伤口愈合药物的包膜及基因疗法的佐料。
2 所使用的药物和脂质体类型2.1抗肿瘤药剂2.1.1各类脂质体包裹阿霉素(ADR)Sadzuka等报道了聚乙烯甘醇阿霉素脂质体(PEC-LADR)的抗肿瘤活性和副作用[1]。
脂质体组合可使ADR活性增强。
包覆脂质体作为药物载体的研究进展
包覆脂质体作为药物载体的研究进展包覆脂质体以其优良的特性,逐渐成为药物载体领域研究的热点。
本文综述了近几年出现的7类包覆脂质体作为药物载体的研究进展,讨论了不同包覆材料包覆脂质体的可行性和包覆前后脂质体载药特性的变化,介绍了包覆脂质体在药物载体领域内的应用,探讨了其独特优点,展望了其应用前景。
[Abstract] Coated liposome is a kind of surface modified liposome, it is a combination of the polymer-based drug delivery system and the lipid-based drug delivery system, experiments showed coated liposome integrated the advantages and avoided the disadvantages of the two systems, improved the stability of liposome both in vivo and in vitro, reduced the uptake of the phagocytic cells in the reticuloendothelial system, and prolonged the circulation. The Research progress of coated liposome as a new drug carrier is reviewed in this paper.[Key words] Coated liposome; Drug carrier; Research progress現有的药物载体可分为两大类:基于高分子聚合物的药物载体和基于脂质的药物载体[1]。
脂质体(liposome)作为基于脂质的药物载体,受到广泛的重视和研究,不仅因为其主要制备原料磷脂是人体细胞的固有组分,使脂质体有良好的生物相容性而没有免疫原性,而且脂质体可制备为纳米级的颗粒,使其更容易透过血管壁和细胞膜等生物屏障。
脂质体药物载体的研究进展
图3 受体介导脂质体药物的细胞毒性
1.2 长循环脂质体
脂质体在血液中的稳定性是发挥药物载体作用的关键。血液中有多种破坏因素:高密度
脂蛋白(BCD)是破坏脂质体的主要成分,载脂蛋白易从BCD 上脱落并与脂质体磷脂结合,
且BCD 和脂质体易发生, 与磷脂的互换,脂质体膜形成孔洞;同时脂质体在血液中激活
补体系统,最终形成攻膜复合体,脂质体膜出现亲水性通道,引起药物渗漏和水、电解质的
图7 不同脂质体的抑制率
3 脂质体作为药物载体的控释
图8 不同脂质体包覆药物在组织中的浓度
药物缓释是通过控制药物的释放速率使药物可以长时间保持在相对高的浓度 ,相比于 非缓释药物有以下优点:1,可以减少药物在体内的降解和消除,保持长时间高浓度;2,减 少对正常组织的毒害;3,减少给药次数为病人提供方便13。 接下来本文会描述一些常见的 药物控释脂质体载体。 3.1 pH敏感脂质体
大量进入,最终渗透裂解脂质体;血清白蛋白与脂质体磷脂结合形成复合物,降低其稳定性;
血液中的磷脂酶可水解磷脂,该反应强弱由磷脂结构决定;脂质体进入循环系统后,未经修
饰的脂质体大部分运转至肝脏和脾脏等单核吞噬细胞系统丰富的部位,少量被肺、骨髓及肾
摄取;肝细胞膜受体对直接暴露于表面的磷脂负电基进行识别,因而脂质体首先被肝细胞吞
图10 不同药物载体小鼠肿瘤体积变化和存活时间,倒三角表示纯的OVA溶液组,正方形表示未修饰 的脂质体组,三角形和圆形都表示MGlu-Dex修饰的脂质体组,只是是不同的衍生物。
3.2 温度敏感脂质体 脂质体在由凝胶态转变到液晶结构的相变温度(Tm)时,其磷脂的脂酰链紊乱度及活动
度增加,膜的流动性也增大,这种结构的变化导致脂质体膜的通透性发生改变,脂质体内部 包封的药物借助于跨膜浓度梯度而大量扩散到靶器官中,在靶部位形成较高的药物浓度,对 周围的肿瘤细胞产生较强的杀伤作用,从而达到局部化疗的作用;而偏出相变温度时药物释
药物分析中的药物脂质体薄膜研究
药物分析中的药物脂质体薄膜研究药物分析是药学领域的一项重要研究内容,它旨在通过分析和检测药物的成分和性质,从而确定药物的质量和有效性。
在药物研究过程中,脂质体薄膜作为一种重要的药物输送系统逐渐得到广泛应用。
本文将探讨药物分析中药物脂质体薄膜的研究进展和应用前景。
一、药物脂质体薄膜的定义和性质脂质体是一种由磷脂和胆固醇等脂质组分组成的微粒,具有良好的生物相容性和生物可降解性。
药物可以通过脂质体作为载体,实现其在体内的稳定输送和控制释放。
然而,脂质体粒径较大,不利于直接应用于体外的药物分析。
因此,研究人员将重点放在了药物脂质体薄膜上。
药物脂质体薄膜是一种由脂质体构筑的薄膜结构,具有较小的粒径和较高的表面积。
相较于传统的脂质体,薄膜的形态更有利于药物的分析和检测。
薄膜的性质可以通过调控脂质成分和制备工艺来实现。
二、药物脂质体薄膜的制备方法药物脂质体薄膜的制备方法多种多样,常见的有膜法、离子交换法和沉淀法等。
下面将介绍其中两种常用的制备方法。
1. 膜法膜法是通过脂质体薄膜片层叠加的方式来制备药物脂质体薄膜的方法。
首先,将脂质体分散在溶剂中,并通过旋涂或浸渍的方式将脂质体溶液均匀地涂覆在硅片或玻璃片上。
然后,利用蒸发或干燥等方法去除溶剂,形成药物脂质体薄膜。
2. 离子交换法离子交换法是利用阳离子交换树脂或阴离子交换树脂来制备药物脂质体薄膜的方法。
树脂呈球形颗粒状,具有交换活性基团,可以与脂质体中的阴离子或阳离子发生交换反应,形成药物脂质体薄膜。
这种制备方法可通过调节树脂类型和交换条件来实现薄膜的调控。
三、药物脂质体薄膜在药物分析中的应用药物脂质体薄膜在药物分析领域有着广泛的应用。
下面将介绍其中几个重要的应用领域。
1. 药物释放性能研究药物脂质体薄膜具有可控释放的特性,可以通过调节薄膜的成分和结构来实现对药物释放速率的调控。
研究人员可以通过浸泡薄膜样品在适当溶液中,然后通过测定药物在溶液中的浓度变化来研究药物在薄膜中的释放性能。
脂质体的制备方法及研究进展_曹宁宁
第19卷第1期2003年3月天津理工学院学报JOURNAL OF TIANJIN INSTITUTE OF TECHNOLOGYVol.19N o.1M ar.2003文章编号:1004-2261(2003)01-0030-06脂质体的制备方法及研究进展*曹宁宁,羡菲,刘金鹏(天津理工学院生物与化学工程学院,天津300191)摘要:脂质体是磷脂自聚集而形成的双分子层结构,作为药物载体具有减少药物毒副作用及靶向作用的特点.主要介绍:脂质体3种制备方法物理分散法、两相分散法和表面活性剂增溶法的原理,制备出的脂质体的结构及包封性能和各自的优缺点;脂质体作为药物载体在抗癌、抗菌药物上的应用及其在药物载体方面应用的研究进展.关键词:脂质体;制备方法;药物载体中图分类号:R94文献标识码:APreparation methods of liposome and prospectsCAO Ning-ning,XIAN Fei,LIU Jin-Peng(Colleg e of Biotechnolog y and Chemical Eng.,T ianjin Institute of T echnolog y,T ianjin300191,China)Abstract:Liposomes made from phospholipid sel-f aggregat ion can deduce the drug toxit y and have the same target property as drug delivery system.T he form principles,propert ies,structure and advantages of main three methods are reviewed.T he application prospects of liposome as drug delivery system are mainly introduced.Keywords:liposome;preparation methods;drug delivery syst em自1965年由英国的Bang ham首先发现磷脂在水中可以自发形成脂质体(liposomes)以来[1],对其实验研究日渐广泛,已遍及生命科学及膜工程学等领域,并逐渐向临床应用发展.脂质体是由脂质双分子层组成,内部为水相的闭合囊泡.它的结构类似生物膜,又称人工生物膜,在水中平衡后具有亲水性和疏水性两性性质.脂质体具有以下特征[2~3]:1)脂质体是一种囊泡,2)脂质体的囊泡壁是两层磷脂分子构成,3)脂质体很小一般在1L m以下(1000L m= 1mm),4)磷脂在一定条件下才能形成脂质体,并非把磷脂放在水中就产生脂质体,磷脂在水中或甘油中搅拌只能形成乳化颗粒,5)脂质体包裹其他物质则形成不同内容物脂质体.脂质体的应用范围非常广泛,由于它的磷脂双分子膜与细胞膜结构类似,并且可以通过对其进行修饰,使其具有某些与生物体相似的性质,从而脂质体作为细胞模型,在生物体结构功能研究和模拟等方面具有重要意义[4~5].它的另一个重要的应用是作为药物载体[1].将药物包裹在脂质体的水相和膜相内,控制脂质体的靶向作用使其富集于病变部位将药物释放,从而可以减少所需药物的剂量,也大大避免了药物对人体正常部位的损害.近年来立体稳定脂质体[6]的研制大大提高了脂质体在体内的稳定性,使得脂质体作为药物载体在治疗癌症等疾病方面正在走向实用阶段[7~9].另外脂质体还在太阳能转换、超细微粒制备等方面得到了应用.1脂质体作为药物载体的应用1.1作为抗癌药物的载体由于脂质体对淋巴系统的定向性和对癌细胞的亲*收稿日期:2002-07-05基金项目:天津市高等学校科技发展基金资助项目(20010404)第一作者:曹宁宁(1972)),女,讲师,博士研究生和性,改变了药物在组织中的分布,使药物选择性的杀死癌细胞或抑制癌细胞的繁殖,从而提高疗效,减少剂量,降低毒性,减轻变态和免疫反应.研究表明[10]脂质体猪苓多糖能显著减少黑色素瘤肝转移癌生成作用而空白脂质体和游离态猪苓多糖则无明显作用.1.2作为抗菌,抗寄生虫的药物载体利用脂质体和生物细胞膜亲和力强的特点,将抗生素包裹在脂质体内可增强抗菌效用.如消炎痛制成脂质体后,其抑制角膜穿孔伤炎性反应的作用较混悬水剂明显增强[11].同时由于脂质体和脂复合物或脂分散体的粒子相对于游离的药物来说主要聚集于网状内皮系统,因此可以用来治疗利什曼病等网状内皮系统疾病.同时由于脂质体可以很大程度的降低肾脏的摄取,当二性霉素B制成脂质体后,能显著降低在治疗过程中对真菌感染患者引起的急性肾毒症[12].1.3作为抗病毒药物载体抗病毒药物制成脂质体可显著提高抗病毒疗效,降低了用量和毒副作用.无环鸟苷[13]是一种核苷类抗病毒剂,其水溶性差,将其制成脂质体混悬液后,大大提高其水溶度,降低了用量.2脂质体的制备方法脂质体的制备方法可分为三大类:物理分散法;两相分散法;表面活性剂增溶法.2.1物理分散法物理分散法的基本原理都是将类脂材料干燥成薄膜,然后加入水溶性介质分散,工艺也不复杂,但他们都有一共同的缺点)包封率都较低(微乳化法除外).下面简述一下这些方法.1)手摇法(也称薄膜法):手摇法是脂质体制备方法中最原始,但也是至今为止最基本和应用最广泛的方法[14].类脂材料溶解在有机溶剂中,然后在旋转蒸发器上,在真空下蒸除溶剂,加入缓冲液,再加入一些小玻璃球帮助分散,这样就形成了一个奶白色的分散液.这里应注意的一点是所用的烧瓶应尽量的大些,以便使类脂干燥后形成一层均匀的薄膜,并且使包封体积达到最大值.2)非手摇法:这是一个慢慢水合的方法以提高其包封率[15].在类脂膜形成后,首先将湿的氮气流通过薄膜15m in,然后再加水膨胀、水合,并慢慢搅拌形成脂质体.它的直径可达几百微米,但是只有在无离子和蛋白质时才可形成.3)超声波分散法[16]:水溶性药物溶于磷酸盐缓冲液,加入磷脂与胆固醇及脂溶性药物共溶于有机溶剂的溶液,搅拌蒸发除去有机溶剂,残留液经超声波处理,然后分离出脂质体.本法制备的大多为单室脂质体,如维生素E脂质体[17]、5-氟脲嘧啶脂质体等[18].4)法兰西加压法:这个方法是用非常高的压力将大的类脂球(M LV)通过一个膜.此法避免了像超声波所引起的降解和不均匀的问题[19].一般这种方法制备的脂质体的粒径在30nm~80nm.将M LV经过1400大气压的法兰西压力筒一次,约600Þ0左右的颗粒直径达25nm~50nm,而通过4次后,约940Þ0的脂质体直径到31.5nm~52.5nm.这个方法比超声波法形成的脂质体粒径稍大些,但与此相比,包封率上升,而渗透性有所下降.5)膜挤压法:降低脂质体的颗粒也可在低压下(小于7个大气压)通过一个滤膜[20].这个方法的优点是可选择膜的孔径,已决定颗粒的大小.而且在经过几次后也较均匀.6)微乳化法:梅赫(M ay hew)等报告了用一个高压均质器从浓的类脂悬浮液中制备小的M LV(也有称为SUV)的方法[21].这个装置可用空气泵或电力/水压增强泵产生非常高的液体压力(可到2100at).利用高压流经过精确规限的微细通道,流体立刻被加速到极高速度,并在特制的专利反应室内产生强大的剪切、冲击及空化作用,形成预期的精细密集及极为均一的脂质体.类脂材料可用MLV悬浮液也可用未水合的类脂浆加入到微乳化其中,经过几次循环,直到达到满意的尺寸为止.一般来说,循环一次后平均直径在100nm ~200nm,确切的方法分布取决于膜的成分及水和介质.这个方法有以下几个优点:重复性好,能大规模生产;微粒均匀稳定性好;包封率高能达到750Þ0.7)预脂质体法:这个方法是通过减少水的量来增加干燥类脂的表面积而发展起来的.将类脂干燥到一个多孔的支持体上(如粉状氯化钠、山梨醇或多糖等[22])然后搅拌下加入少量水以湿润被粉末包覆的干燥类脂.当支持体溶解后,就形成了一个M LV悬浮液.一般这个过程是一点点加水,待水蒸发后再加剩余的水.最后形成一个干燥的类脂.(预脂质体).2.2两相分散法这个方法的基本原理是将类脂剂溶解在有机溶剂中,然后这个油相与水相接触.同时将溶剂蒸发,以变成脂质体.又可分为3种类型:溶剂和水可互溶,(如乙醇注入法);溶剂和水不溶解,但水相过量,(如乙醚注#31#2003年3月曹宁宁,等:脂质体的制备方法及研究进展入法);溶剂和水不溶解,但溶剂过量,(如逆相蒸发法).1)乙醇注入法[23]:将磷脂与胆固醇等类脂质及脂溶性药物溶入乙醇,该溶液经注射器迅速注射到磷酸盐缓冲溶液(或含水溶性药物)中,形成脂质体.直径约25nm.其主要缺点是包封率低,且乙醇很难除去. 2)乙醚注入法[24]:将磷脂与胆固醇等类脂质及脂溶性药物溶入有机溶剂中(多用乙醚),该溶液经注射器缓缓注入加热至50e (并用磁力搅拌)的磷酸盐缓冲溶液(或含水溶性药物)中,不断搅拌至乙醚除尽为止,即得大的多孔脂质体.将其混悬液通过高压乳均机两次,所得成品大多为单室脂质体,少量为多室脂质体,粒径绝大多数在2um 以下.优点是方法较温和,包封率高且被氧化的可能性小,缺点是速度慢不适合大量制备.如头孢菌类脂质体[26]可用此法制得. 3)逆相蒸发法[27]:将磷脂等膜材溶于有机溶剂如氯仿、乙醚等,加入待包封药物的水溶液进行短时超声,直至形成稳定的W/O 型剂,然后减压蒸发除去有机溶剂,达到胶态后,滴加缓冲液,旋转帮助器壁上的凝胶脱落,然后,在减压下继续蒸发,制得水性混悬液,通过凝胶色谱法或超速离心法,除去未包封的药物,即得到大单层脂质体.此法适用于包裹水溶性药物、大分子生物活性物质如各种抗生素、胰岛素免疫球蛋白、碱性磷脂酶、核酸等.2.3 表面活性剂增溶法脂质薄膜、多层脂质体或单层脂质体与胆酸盐、脱氧胆酸盐等表面活性剂混合[27],通过离心法或凝胶过表1 脂质体的制备方法及参数Table 1 Preparation methods and parameters of liposome类别方法直径(L m)包裹体积(l/mol)包裹效率(0Þ0)M LV 手摇法0.4~3.5 3.55~15UVL逆相蒸发法0.2~1.011.735~65乙醚注入法0.1~0.423~3138~46膜挤压法0.2 1.3824.9洗涤剂除去法0.1 2.412.0钙离子熔化法0.2~1.07.010~15S UV超声波法0.025~0.050.8)乙醇注入法0.03~0.110.5 1.0法兰西挤压法0.03~0.08))高压乳化法-0.10.6970滤法或透析法除去表面活性剂,就可获得中等大小的单层脂质体此法适用于制备脂溶性蛋白类药物的脂质体,但这个方法并不作为脂质体的主要制备方法.它的优点是:方法温和,并不产生水解和氧化;表面活性剂/类脂比随意变化,以得到满意的尺寸. 它的缺点是:除去表面活性剂时需要渗析,这一过程需要几个甚至几十个小时.3 脂质体形成原理和脂质的组成3.1 脂质组成各种脂质和脂质混合物均可用于制备脂质体,而磷脂是最常用的[28].磷脂的主要成分是磷脂酰胆碱,磷脂酰乙醇胺,磷脂酰丝氨酸,磷脂酰甘油,磷脂酸等.其结构可简述为有一个离子型(至少是强极性链)的/极性头0和两条疏水性的高级脂肪烃长链(非极性尾部)组成,在某一特定浓度条件下,其极性头与极性头部分相结合,非极性尾部与非极性尾部相结合,而形成一个稳定的双分子层结构.构成脂质的另一类物质是胆固醇,它在膜中主要起着改变纯磷脂层性质的作用,它像/缓冲剂0一样起着调节膜结构/流动性0的作用.3.2 结合超声波分散法和离心法说明脂质体形成原理如图1所示,加入到磷脂和胆固醇的有机溶剂的水溶液在超声作用下分散为小水滴.磷脂、胆固醇吸附在水滴表面形成一层单分子膜,从而生成油包水(W/O)微乳液.将微乳液转移到缓冲水溶液上后,有机溶剂中多余的磷脂、胆固醇在与缓冲液的油水界面迅速生成一层单分子膜,在离心作用下,油相中的小水滴穿过油水界面的单分子膜并被其包围,在水相中形成脂质体.图1 脂质体的形成原理Fig.1 Formation principle of liposome#32#天 津 理 工 学 院 学 报 第19卷 第1期4脂质体作为药物载体的优点及对其表面修饰的目的脂质体作为一种内层含有水相的封闭的圆球型双层膜,用于药物释放系统,具有两个独特的优点:1)可以在其内水相包封水溶性药物,也可以在外层双层膜包封脂溶性药物;2)它和天然生物膜的生物相溶性比较好,在药物学应用中,安全性可靠.然而,脂质体不论其组成、尺寸大小和表面所带电荷如何,它都能够在静脉给药1h 后被网状内皮系统(RES)截留[29].因此,对脂质体进行表面修饰的主要目的是:(1)延长脂质体的半衰期和提高它在血液循环中的稳定性;(2)改变脂质体的生物学分布;(3)产生靶向效应;(4)使脂质体具有独特的性能,如使它具有对pH、温度和光等外界刺激产生敏感性.5种新型脂质体1)温度敏感脂质体:脂质膜在由/凝胶态0转到液晶结构时,其磷脂的脂酰链紊乱度及活动度增加,膜的流动性也增大,此时包封的药物的释放速率亦增大,此温度称为脂质体的相变温度.根据这一原理制备的脂质体成为温度敏感脂质体.2)pH敏感脂质体:根据肿瘤附近的pH值比周围正常组织低的事实,设计了pH敏感脂质体.其原理是pH低时可导致脂肪酸羧基的质子化而引起六方晶体(非相层结构)的形成.而它的形成则是膜融合的主要机制.如白喉霉素A pH敏感脂质体,DNA pH敏感脂质体.3)免疫脂质体:免疫脂质体是机体修饰的脂质体的简称.近年来,将癌细胞当作抗原细胞,使产生对抗这种癌细胞的单体,然后将这种抗体结合到脂质体上,从而使这种脂质体能够将药物定向输送到癌细胞,起到良好的疗效.4)掺入糖脂的脂质体:将糖脂链的一部分用棕榈酰或具有适当间隔基的胆淄醇基取代得到糖类衍生物,再与含药脂质体混合,在适当的条件下孵育,即得到掺入糖脂的脂质体.这种脂质体可改变其在组织内的分布,且稳定性好.5)前体脂质体:前体脂质体通常为干燥,具有良好流动性能的颗粒或粉末,贮存稳定,应用前与水水合可分散或溶解成等张的脂质体,这种脂质体解决了稳定性和高温灭菌等问题,为工业生产奠定了基础.6)聚合脂质体:聚合脂质体是构成脂质体的每个类脂分子通过共价键的形式连接起来的一种新型脂质体,通过共价键把脂质体的双分子膜与表面活性剂分子连接起来.可显著提高其稳定性,降低粒子的融合与聚集,使脂质体中药物渗漏显著降低,延长了有效期.7)磁性脂质体:磁性脂质体是在脂质体中掺入铁磁性物质制成.8)声振波敏感脂质体:将含有声振波敏感分子的脂质体药物给予患者,在其体外施声振波于所选择的靶位区域,使药物在脂质体内释放出,以增加组织细胞对药物的摄取,使靶位的药物浓度升高,从而降低全身毒性.9)光敏脂质体:光敏脂质体是将光敏物质的药物包裹在脂质体内,用来进行光学治疗,当在一定波长的光照射时,脂质体膜与囊泡物质间或脂质体之间发生融合作用而释放药物.无论是何种脂质体,都可分为3种类型:小单层状囊;大单层状囊和多层状囊.这3种类型的脂质体各有优缺点.各种类型脂质体的性能比较见表2.表2不同类型脂质体的性能比较结果Table2Performance of different type of liposome 脂质体种类优点缺点多层状囊的包封体积大,包封性能好,稳定相当好形状大小不均匀,难包封聚合物;很难有效地将包封物输送入皮肤细胞小单层状囊的形状大小均匀包封的有效体积较小,难包封聚合物,容易出现互溶现象.大单层状囊的能包封聚合物,包封的性能好,包封的体积大大小不均匀6脂质体研究展望研究证实,利用神经甘酯[30]或者聚乙二醇(PEG)衍生物对脂[31~34]质体进行表面修饰可以提高其稳定性.另外,Sunamoto等人[35~37]也利用多糖衍生物包覆脂质体,能够有效地延长脂质体的体内循环时间.除此之外,一系列的生物相容性合成高分子,无论是中性的或是荷电的,都已被用于提高脂质体的稳定性而得到较多的研究.近期的研究工作证实,高分子作为脂质体的包覆材料不仅只是扮演一个被动的保护角色,而且可能在实际上通过接受外来的刺激而参与控制药物的#33#2003年3月曹宁宁,等:脂质体的制备方法及研究进展释放过程.今后随着科学技术的发展和脂质体生产工艺研究的深入,相信会创造出更多更好的新型脂质体,使脂质体得到更广泛的应用.参考文献:[1]Bangham A D,Standish M M,Watkins J C.Diffussion ofunivalent inos across the lamella of swollen phospholipids [J].J.M ol.Biol.1965,13:238)252.[2]M artin C,Woodle,Danilo D L asic.Sterically stabilizedliposomes[J].Biochimica et Biophysica Acta,1992,1113:171)199.[3]王闻珠,邓英杰.脂质体肺部给药研究进展[J].沈阳药科大学学报,2000,17(3):226)229.[4]Lasic D D.L iposomes.From Physics to Application[M].Elvev ier:Amsterdam,1993.[5]Gregoriadis G.Liposome T echnology[M].Boca Rato n:CRC Press;1984.[6]牛荣丽,李志良.阿苯达唑免疫脂质体的制备[J].新疆医科大学学报,2001,24(1):659)661.[7]陈忠斌,王升启,王弘,等.pH敏脂质体对反义寡核苷酸康流感病毒活性的影响[J].中国生物化学与分子生物学报,1999,15(4):553)557.[8]石丽萍,颜光涛,李英丽,等.酸敏脂质体的制备及其在肠缺血-再灌注小鼠体内重要脏器中的分布[J].中华危重病急救医学,2001,13(11):659)661.[9]邹一愚,顾学裘,崛越勇.肝动脉注射阿霉素温度敏感脂质体的制剂研究[J].药学学报,1991,26(8):622)626. [10]张中冕,段方龄,张明智.脂质体猪苓多糖抗肝转移癌作用的研究[J].白求恩医科大学学报,1999,8(3):180)182.[11]吕延长,母敬郁,王友联,等.消炎痛脂质体对兔角膜穿孔伤的疗效观察[J].白求恩医科大学学报,1997,23(2):139)140.[12]郭宁如,吴绍熙.二性霉素B脂质体的研究与应用[J].中国新药杂志,1996,5(4):264)265.[13]周青.无环鸟苷脂质体混悬液的分析[J].中国医院药学杂志,1997,17(3):115)116.[14]W ang C Y,Yughes K W,Huang L.Improvedcytoplasmic delivery to plant protoplasts via PH-sensitiveliposome[J].Plant Physiol,1986,82:179)186.[15]Ropert C,M alvy C,Couvreur P.Inhibit ion of the fr iendretrovirus by antisense oligonucleot ide encapsulat ed inliposome:mechamism of action[J].P harm Res,1993,10(10):1427)1433.[16]郭健新,平其能,黄罗生.柔性环孢素纳米脂质体的制备及其变行性[J].中国药科大学学报,1999,30(3):187)191.[17]李国锋,周日红,曾抗,等.维生素E脂质体的制备[J].中国应用药学,1997,14(4):18)20.[18]肖旭.5-氟脲嘧啶温度敏感性脂质体制备方法的优化[J].药学实践杂志,1998,16(6):344)346.[19]T ari A M,T ucher S D,Deisser oth A,et al.Liposomedeliv er y of methyphosphonate antisenseoligo deoxynucleotide in chromic myelogenous lerkemia[J].Blood,1994,84(2):601)607.[20]M a D D F,Wei A Q.Enhanced delivery of syntheticoligonucleotides to huaman leukaemic cells by liposomesand immunoliposomes[J].L eukemia Research,1996,20(11~12):925)930.[21]K remer J M H.V esicles of variade diameter by a modifiedinject ion method[J].Biochemistry,1977,16(17):3932)3935.[22]阎家麟,童岩,王九一.紫杉醇脂质体的制备即其抑瘤作用的研究[J].药物生物技术,1996,3(3):1) 5. [23]Szoka F,O lsom F.Preparation of liposo me o f inter mediasize by a combination of reverse phase evaporation andextr usion through polycarnonate membranes[J].BiochemBiophys Acta,1980,601:559)571.[24]全东琴,苏德森,顾学裘.药物载体空白脂质体前体的制备及性质的研究[J].沈阳药科大学学报,1999,16(3):160)164.[25]张根旺,刘晓见.脂质体化妆品及其应用[J].郑州工程学院学报,2000,21(12):4)8.[26]Senior J H.Fate and behavior of liposomes in vivo:ar ev iew of co ntrolling factors[J].T her.Drug Carr ierSyst.,1987,3:123)193.[27]Allen T M,Chonn rge unila mellar liposomes w ith lowuptake into the reticuloendothelial system[J].FEBS L ett.,1987.223:42)46.[28]K libanovA l,M ar uyama K,T orchilinV P,et al.Amphipathic polyethyleneglycols effectively prolong thecirculation time of liposomes[J].FEBS L ett.,1990,268:235)237.[29]M or i A,K libannov A L,T o rchilin V P,et al.Influence ofster ic barrier activity of amphipathic poly(ethyleneglycol)and ganglioside GM1o n the circulat ion time of liposomesand on the target binding of immunoliposomes in v ivo[J].F EBS L ett.,1991,284:263)266.[30]Woodle M C,Lasic D D.Ster ically stabilized liposomes[J].Biochim.Biophys Acta,1992,1113:171)199. [31]T orchilin V P,K libanov A L,Huang L,et al.T ar getedaccumulation of poly ethyleneg lycol-coatedimmunoliposomes in infr acted rabbit myocardium[J].FASEBJ,1992,6:2716)2719.[32]SunamotoJ,Sato T,T aguchi T,et al,N aturally o ccurr ingpolysacchar ides deriv at ives w hich behave as an artificial cell#34#天津理工学院学报第19卷第1期wall on an ar tificial cell liposome[J].M acromolecules,1992,25:5665)5670.[33]Baszkin A,Rosilio V,A lbrecht G,et al.Cholesteryl-pullulan and cholesteryl-amylopectin interact ions w ithegg phosphatidy lcholine monolayers[J].J.ColloidI nterface Sci.,1991,145:502)511.[34]Sunamo to J,Sato T,Hiro ta M,et al.A newly developedimmunoliposomes an egg phosphatidylcholine liposomecoated w ith pullulan bearing both a cholesterol moiety andan IgM s frag ment[J].Biochim.Biophys.Acta,1987,898:323)330.[35]Ozden M Y,Hasir ci V N.Enzy me im mobilizatio n inpolymer-coated liposomes[J].Br itish Poly m.,J.,1990,23:229)234.[36]Ishihara K,Nakabayashi N.Specific interaction betw eenwate-r soluble phospholipi polymer and liposome[J].J.Polm.Sic:Po lym.chem.,1991,29:831)835.[37]T omas J L,Y ou H,T irrell D A.T uning the response o f apH-sensit ive membrane switch[J].J.Am.Chem.Soc.1995,117:2949)2950.(上接第12页)5结论通过在终端系统建立一种高效的、扩展性好的、能够支持数据密集和通信密集应用的底层基础结构,并在上层网络系统将CORBA与Web的结合,大大方便了WWW应用的开发、发布和维护,有助于在WWW 上建立分布式对象环境,推动WWW进入动态的应用阶段,从而极大地提高了WWW的发布能力,实现各种高级服务策略.基于该混合模式的系统将实现资源的管理和分配、通信、安全机制、统一的资源信息服务、提供远程数据访问等功能,使传统诊断技术能够在网络上得到充分发挥,并为故障诊断技术开创了新的研究方向.参考文献:[1]季立明.基于网络的设备监测诊断开放平台的研究[D].天津:天津大学,2002.43)67.[2]胡春华,朱庆华,张智勇,等.基于COR BA的分布式网络化制造系统建模[J].机电一体化,2001,(2):16)20. [3]吴伟蔚,杨叔子.故障诊断Ag ent研究[J].振动工程学报,2000,13(3):393)399.#35#2003年3月曹宁宁,等:脂质体的制备方法及研究进展。
复方双参注射液的研究及脂质体包封工艺探索的开题报告
复方双参注射液的研究及脂质体包封工艺探索的开题报告一、研究背景随着现代医学的发展,人们对于药物的疗效和安全性要求越来越高,因此药物的制剂也需要不断地创新和改进。
复方双参注射液作为常用的治疗心脑血管疾病的药物,具有较好的疗效和安全性。
但是,由于其药效成分双参和人参的水溶性较低,故难以达到良好的稳定性和生物利用度。
近年来,脂质体技术作为一种新型的药物制剂,受到广泛的关注。
脂质体是指由一种或多种磷脂、胆固醇等成分组成的微小球形结构,可以用于包封药物,提高药物的水溶性和生物利用度。
因此,采用脂质体包封技术来改进复方双参注射液的制剂工艺,具有一定的意义。
二、研究目的本研究旨在探索脂质体包封技术对于复方双参注射液制剂的影响,并比较不同工艺条件下的稳定性和生物利用度。
三、研究内容1. 研究复方双参注射液的药物成分和药物学性质。
2. 探究脂质体包封技术对于复方双参注射液制剂稳定性和生物利用度的影响。
3. 构建脂质体包封复方双参注射液的最佳工艺参数。
4. 对比不同工艺条件下的复方双参注射液的稳定性和生物利用度。
四、研究方法1. 对复方双参注射液进行组成分析,测定药物含量、溶解度和pH值等。
2. 利用脂质体制备技术,包封复方双参注射液。
3. 测定不同工艺条件下脂质体包封复方双参注射液的粒径分布、稳定性、药物释放度和生物利用度等指标。
4. 通过对比分析,得出最优的脂质体包封复方双参注射液制剂工艺参数。
五、预期成果1. 确定复方双参注射液的药物成分和药物学性质。
2. 探究脂质体包封技术的优化工艺条件。
3. 比较不同工艺条件下的复方双参注射液的稳定性和生物利用度。
4. 提出脂质体包封技术改进复方双参注射液制剂的建议。
六、研究进度安排1. 第一周:阅读相关文献,收集并整理资料。
2. 第二周:对复方双参注射液的药物成分进行分析。
3. 第三周:采用脂质体包封技术制备复方双参注射液。
4. 第四周:对不同工艺条件下脂质体包封复方双参注射液的稳定性和生物利用度进行测定。
脂质体包载技术在化妆品中的应用
脂质体包载技术在化妆品中的应用摘要:脂质体包载技术是将功效成分包裹于脂质体囊泡内的制备技术,由此制成的化妆品脂质体具有皮肤护理和功能性成分载体的作用,有着非常重要的实际研究和应用价值,是目前功效性化妆品的研究热点。
本文将对脂质体包载技术在化妆品中的研究现状和应用做一下概括,并对其发展前景做一下展望。
引言:脂质体最初是1965年英国学者Banyhanm和Standish将磷脂分散在水中进行电镜观察时发现的.1976 年Gregoriadis等鉴于脂质体的特殊结构和磷脂生物相容性好等特点,研究用脂质体作为载体包裹药物,发现载药脂质体体内分布与单纯药物有所不同、在血循环中半衰期延长、药物的毒副作用明显改善,药物的溶解性也发生了变化。
后经多年研制,人们发现各种脂质和脂质混和物均可用来制备脂质体,而磷脂最为常用,如卵磷脂、丝氨酸磷脂和神经鞘磷脂以及合成的二棕榈酰磷脂酰胆碱、二硬脂酰磷脂酰胆碱等,且脂质体具有粒径小、剂量小、稳定性强、靶向性高、缓释可控和安全无毒等特点,便将脂质体广泛用于多个领域。
1986 年,Dior为法国Lancome公司开发了世界上第一个叫做“capture”的脂质体化妆品,随后在各个国家逐渐推广。
目前,含各种脂质体的化妆品已经得到广泛应用.一:脂质体的结构和性能1.1 脂质体的结构脂质体是一种人工制备的类脂质小球体,由一个或多个酷似细胞膜的类脂双分子层包裹着水相介质组成.当磷脂分散在水中时形成多层囊泡,而且每一层均为脂质双分子层,各层之间被水相隔开,这种由脂质双分子层组成,内部为水相的闭台囊泡称为脂质体,由于它的结构类似生物膜,故又称为人工生物膜.脂质体的这种结构使其能够携带各种亲水的,疏水的和两亲性物质;它们分别被包人脂质体内部水相,插入类脂双分子层或吸附连结在脂质体的表面。
脂质体是一种封闭的双分子层(或单分子层)膜的空心小球。
它在结构上类似于人体细胞,对人体细胞具有高度的亲和性.不同的表面活性剂构成的脂质体和不同的制备方可以制成不同大小的脂质体。
包覆脂质体作为药物载体的研究进展
包覆脂质体作为药物载体的研究进展包覆脂质体作为药物载体的研究进展随着药物的不断研究,越来越多的药物需要通过封装技术来实现有效的传输和治疗。
在这种情况下,包覆脂质体作为一种新型的药物载体,已经得到了广泛的关注。
脂质体是由磷脂或其衍生物组成的液态结构,具有天然的通透性和生物相容性。
通过选择不同的磷脂和其他成分,可以制备出不同的脂质体,如单层脂质体、多层脂质体、超分子脂质体和多膜脂质体等。
本文就对包覆脂质体作为药物载体的研究进展进行综述。
一、包覆脂质体的构建包覆脂质体一般由内置核心、包覆层和外壳三部分组成。
核心可以是水溶性或油溶性药物,包覆层和外壳为磷脂和其他成分的混合物。
磷脂可以选择天然的或合成的,如,卵磷脂、磷脂酰胆碱、cephalin、糖脂等。
包覆层和外壳可以根据药物的特性和需要来进行调整,以提高包覆效率和增强载体的稳定性。
二、包覆脂质体的优点和适用范围1. 增加溶解度: 很多药物都有低溶解度问题,无法充分溶解于水中,而脂质体中的成分是油性和水性的混合物,可吸收和释放不同极性的药物。
将药物封装到脂质体中,有效地增加了溶解度,从而提高了药物的生物利用度和治疗效果。
2. 改善药物的生物分布和组织靶向性:针对在药物输送中出现的问题,如药物在输送过程中的分解、分散和失活,脂质体的使用可以更好地加以解决。
脂质体具有包覆性和较小的粒径,可以很大程度上避免药物在输送过程中被破坏,所以在药物的靶向性方面也更好地实现。
3. 提高疗效和减少剂量:由于脂质体可以保护药物免受生物环境的破坏,增加药物的活性,可以后减少药物剂量,降低药物的毒性和副作用。
三、包覆脂质体的应用包覆脂质体的主要应用是作为药物载体,为靶向输送和改善生物利用度的药物完成输送服务,特别适用于水溶性药物。
另外,包覆脂质体的应用有以下方面:1. 包覆脂质体的应用在研究中已经发现,它可以用于分子医学。
2. 包覆脂质体的技术是新型疫苗的研究方向之一。
通过包覆脂质体将抗原和佐剂结合起来,形成一种新的疫苗。
脂质体的研究新进展
脂质体的研究新进展杨鹏波;张华【摘要】[目的]综述脂质体的应用和研究进展,为药物制成脂质体提供更多的选择。
[方法]查阅近几年国内相关的文献资料并总结脂质体在各方面的应用、新的制备方法和修饰方法及其各自的优点。
[结果]从脂质体的的应用、制备方法、修饰、质量评价等方面,可看脂质体与生物膜有着极好的相容性,作为载体有很大的优势,修饰后,能增强靶向性,提高药物的疗效,降低毒副作用。
[结论]随着新材料的产生和新技术的发展,脂质体的优势将更加显现脂质体作为一种新型的药物载体,与生物膜具有相似性,具有多种优良特性,改变了传统的给药方式。
经过近40年的研究,已到广泛的应用。
%[Objective]This paper summarizes the latest literature,which can offer more choices for making liposomedrug.[Methods]This article summarizes the application of liposomes in al aspects and new preparation methods and modification methods and their respective advantages. [Results]Liposome as a new type of drugcarrier,which has similarity with biological membrane,has many good qualities and changes the traditional way to give medicine. [Con-clusion]Liposome has the broad application after nearly forty years of research.【期刊名称】《浙江中医药大学学报》【年(卷),期】2013(000)007【总页数】4页(P936-939)【关键词】脂质体;分类;制备方法;联用技术;质量评价【作者】杨鹏波;张华【作者单位】山东中医药大学济南 250355;山东中医药大学济南 250355【正文语种】中文【中图分类】R282.71脂质体是由脂质双分子层 (由磷脂和胆固醇组成)构成的封闭囊泡,它具有很多的优良性质,如具有细胞的亲和性和靶向性、缓释性、减低药物毒性、提高药物稳定性、透皮吸收效率高、可以携带药物进入细胞、避免耐受性、改变给药途径等[1]。
脂质体研究进展
・医学前沿・JMedRes,Dec2009。
V01.38No.12脂质体研究进展孙欣欣金楠脂质体(1iposome)亦称类脂小球,是指将药物包封于类脂质双分子层内而形成的微型泡囊,由不溶性的具有极性的磷脂质为主要膜材并加入胆固醇等附加剂组成。
脂质体具有类似生物膜的双分子层结构囊泡,可长时间吸附于靶细胞周围,使药物充分被靶细胞、靶组织吸收。
将药物做成脂质体后,具有靶向性、缓释性、组织相容性与细胞亲和性、降低药物毒性、提高药物稳定性等特点。
脂质体作为新型的药物剂型可以达到提高药品安全性、有效性、稳定性和患者顺应性,降低药品不良反应的目的,所以日益受到国内外医药界的广泛重视。
近年来,相关人员对脂质体做了大量的研究,并取得较大进展,现以脂质体的制备方法分类将有关最新研究作如下综述。
一、脂质体的类型根据脂质体结构中所包含的类脂质双分子层的层数,可分为单室脂质体和多室脂质体。
单室脂质体粒径通常0.02~1¨m,多室脂质体粒径l一5肛m。
根据脂质体本身的特殊性,分为普通脂质体和特殊性能脂质体。
普通脂质体是由一般脂质组成的脂质体,包括小单层脂质体、大单层脂质体和多层脂质体;特殊性能脂质体是指利用某些特殊的脂质材料赋予脂质体某些特殊性能,包括长循环脂质体、热敏脂质体、pH敏感脂质体、免疫脂质体、磁性脂质体、前体脂质体。
=、脂质体的制备方法目前,制备脂质体的方法较多,常用的有薄膜法、逆相蒸发法、注入法和超声波分散法等,这些方法一般称为被动载药法,而pH梯度法,硫酸铵梯度法~般被称为主动载药法。
1.薄膜分散法:将类脂质及脂溶性药物溶于氯仿或其他有机溶剂中,然后将氯仿溶液在烧瓶中旋转蒸发,使在烧瓶内壁上形成薄膜;加入含有水溶性药物的磷酸盐缓冲液,不断振摇或搅拌,即可生成脂质体,其粒径为l~5“m。
穆筱梅…采用薄膜分散法制备黄芩苷脂质体,以大豆磷脂(Epikumn200)为原料,作者单位:450001郑州大学药学院・20・制得脂质体平均粒径为168nm,包封率为63.25%,并且体外释放具有缓释的特点。
聚乙二醇包覆的维生素C脂质体的制备及性质研究
聚乙二醇包覆的维生素C脂质体的制备及性质研究作者:陈婷婷, 曹光群, 杨成作者单位:江南大学化学与材料工程学院,无锡 214122本文读者也读过(10条)1.杨瑞.梅丹宇.杨媛.梅兴国紫杉醇长循环肝靶向脂质体的制备和靶向性初步评价[会议论文]-20072.陈新梅.CHEN Xin-mei不同粒径的人参总皂苷脂质体的制备[期刊论文]-齐鲁药事2011,30(4)3.净家麒.王悦.王九一紫杉醇隐形脂质体的制备及其在小鼠体内的组织分布[会议论文]-20004.黄文.毛汉颖.陈华新机械剪切超声空化复合乳化装置的研制[期刊论文]-广西民族学院学报(自然科学版)2004,10(4)5.严文伟.齐宪荣.魏来.费然.丛旭.王宇阳离子脂质材料和聚乙二醇对脂质体细胞转染率及膜流动性的影响[期刊论文]-药学学报2003,38(9)6.钟金莲.罗序中.余建平.Zhong Jinlian.Luo Xuzhong.Yu Jianping聚乙二醇包覆的TiO2粉体的光催化活性[期刊论文]-精细石油化工进展2009,10(2)7.刘玉梅.宗成中.杨慧.王春芙.LIU Yumei.Zong Chengzhong.Yang Hui.Wang Chunfu超声波乳化法制备核壳型纳米丁苯胶乳[期刊论文]-合成橡胶工业2005,28(3)8.张煊.张华.王桂玲.张大卫.王静.蔺伟.张强.ZHANG Xuan.ZHANG Hua.WANG Gui-ling.ZHANG Da-wei.WANG Jing. LIN Wei.ZHANG Qiang正常大鼠静脉注射PEG包裹胰岛素脂质体的降血糖作用[期刊论文]-中国药学(英文版) 2004,13(1)9.张修宇.邓英杰.王秀敏.郝艳丽.魏圆圆.高晓非.ZHANG Xiu-yu.DENG Ying-jie.WANG Xiu-min.HAO Yan-li.WEI Yuan-yuan.GAO Xiao-fei PVP包覆β-榄香烯脂质体的处方与工艺优化[期刊论文]-中国新药杂志2006,15(3)10.张阳德.李湘斌.张宗久.赵明钢.张浩伟.李钧.ZHANG Yang-de.LI Xiang-bin.ZHANG Zong-jiu.ZHAO Ming-gang .ZHANG Hao-wei.LI Jun PEG化壳聚糖纳米粒介导的hTERT反义寡核苷酸对HepG2细胞的抑制作用[期刊论文]-中国现代医学杂志2007,17(18)本文链接:/Conference_6726681.aspx。
包覆脂质体的研究进展
L n —h ,Z V Qigz i HAI u n —i,WAN Ha—a g UANG Xigg n a gx’ G G i n ,H g n -a g
( co lfP amaet a cecsS a go gU i ri ,Jnn2 0 1, hn ) Sh o h r cui l i e, hn dn nv st ia 5 0 2 C ia o c S n e y
关 键 词 :脂 质 体 ;包 覆 脂 质 体 。 壳 聚 糖 ; 多 糖
中图分类号 :Q 4 . 9 64
文献标识码 : A
文章编号:1 7 —7 x(0 70 - 0 50 6 29 9 2 0 )20 4 — 4
Re e r hAd a c nCo tdLi o o e s a c v n eo ae p s m s
散 制剂 ,存 在粒 径 变 大 、絮 凝 、药物 渗漏 等 问题 , 酰 基产 物 ,是 自然界 中唯一 的碱 性 多糖 ,无 毒 ,具
口服后 胃蛋 白酶 易吸 附于 磷 脂表 面 ,降解 酸敏 感 的 有 生 物 黏 附 、 吸 收促 进 、酶 抑 制 和 生 物 可 降解 性 。
大 分 子药 物 l静 注给 药 后 网状 内 皮系 统 对 其 识 别 、 在 酸性 条件 下 ,壳 聚糖 带正 电荷 易 与 黏膜 发 生静 电
maeil ae e iwe i tip p r tl s r rve d n hs a e ̄ a Ke r s i o o ; o td l o o ; hts n p l s c h rd y wo d :l s me c ae i s me c i a ; oy a c aie p p o
Ab ta t sr c :Co tdl oo e l akn f u a emo i e io o s ihc li rv h a it fio o s ae i sm s e ido sr c p a f df dl sme whc a mpo etes bl yo l sme i p l t i p ete i ioo i vt , rln hec c lt nt i iob d cn heu tk o tep a o yi el i tert uo n i rnvv r h n io poo gt i uai i nvv yr u igt pa e fh h g c t r r o me e ccl n h ei le - s c
PAMAM包覆脂质体的制备、表征及作为眼部递药载体的评价
N . o4
刘 毅等 :P MA 包覆 脂质体的制备、表征及作 为眼部递 药载体 的评 价 A M
物 的载体备受 关注 .脂质 体可 以增 加药 物在角 膜前 的滞 留时 问 ,提高 眼部 药物 的生物 利用 度 .包 覆 脂质体 ( ot psme) 一种新 型 的膜 修饰脂 质体 ,同时具 有脂 质体 和包 覆材 料 的特性 , 改 变 C a dl oo s是 e i 并
了脂质体 的 电性 和不稳 定性 .聚酰胺 一 [ o (miom n ) A M] 胺 P l a d a ie ,P MA 为树 枝 状 聚合 物 中的一 个 特殊 y 家族 ,具有结 构精细 , 高度 分支 , 拥有 可容 纳客体 分 子 的 内部空 腔 和大 量 可供 修饰 的表面 官 能 团 , 生 物相 容性 良好 ,细胞毒性 较低 , 并且 无免疫 原性等 优点 .整代 的 P M M 在生 理 条件 下末端~ N , A A H 可以完全质 子化成 为带正 电荷 的- N 3,表 面正 电荷 密 度 很 高.研究 结 果 表 明E ,P MA 可 以影 响 - H+ 6 A M ]
Vo . 1 13
21 0 0年 4月
高 等 学 校 化 学 学 报
CHEMI CAL J OURNAL OF CHI NES UNI RS T ES E VE I I
No. 4
8 o一8 o O5
P MA 包 覆 脂 质 体 的 制 备 、表 征 及 A M 作 为 眼 部 递 药 载 体 的 评 价
收稿 : 0 90 - . 日期 20 - 2 70 基 金 项 目 :国家 自然 科 学 基 金 ( 准 号 : 07 4 7 资 助 . 批 3 83 4 )
联系人简介 :孙考祥 ,男 , 博士 , 教授 , 主要从事药物新剂型和新 型药物载体的研究.Ema : uk oin@ly.n - i snax g ue c l a
包覆脂质体作为药物载体的研究进展
2
脂质体大小和组成多样化,可以针对特定疾病 和药物进行定制。
3
脂质体具有较好的生物相容性和低免疫原性, 可用于药物输送和释放。
包覆脂质体的概念与分类
01
包覆脂质体是指通过包裹不同材料来改变其表面特性和功能的 一种新型药物载体。
02
根据包覆材料的不同,包覆脂质体可分为蛋白质包覆脂质体、
多糖包覆脂质体、核酸包覆脂质体等。
拓展应用领域
包覆脂质体在药物载体领域的应用已经取得了一定的成果,未来 可以拓展到其他领域,如基因治疗、疫苗研发等。
面临的挑战
质量控制和标准化
包覆脂质体的质量控制和标准化是工业化生产的难点之一,需要建立完善的质量控制体系和标准化操作流程。
体内安全性
包覆脂质体的生物相容性和安全性是关键的挑战之一,需要对其体内安全性进行深入研究和评估。
体内药代动力学
包覆脂质体的体内药代动力学特征是影响其疗效和安全性的关键因素之一,需要对其在体内的吸收、分布、代谢和排泄等 过程进行深入研究。
THANKS
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材料选择
磷脂
胆固醇
磷脂是构成细胞膜的主要成分,也是制备包 覆脂质体的主要材料,其种类和浓度对包覆 脂质体的性能有很大影响。
胆固醇是细胞膜的重要成分,可以调节膜的 流动性,通常与磷脂一起用作制备包覆脂质的膜修饰剂,可以增加 包覆脂质体的稳定性,降低药物泄漏和免疫 原性。
抗肿瘤药物载体的磷脂双层膜还可以 对肿瘤细胞进行靶向识别和内吞,提 高药物的肿瘤细胞内分布和摄取效率 。
抗炎与免疫药物载体
包覆脂质体在抗炎和免疫药物载体方面也有广泛 应用。
免疫药物载体可以将免疫调节剂或免疫抑制剂包 裹在磷脂双层膜中,保护药物在体内的稳定性, 同时实现药物的定向输送和控释。
包封5-FU的变形脂质体、乙醇脂质体透皮、透瘢痕的实验的研究
包封5-FU的变形脂质体、乙醇脂质体透皮、透瘢痕的实验研究摘要研究目的制备包封5-FU的变形脂质体、乙醇脂质体,利用改良Franz扩散池进行体外透鼠皮、透人皮、透瘢痕实验,检测透鼠皮的脂质体的累积渗透量,分析人皮肤瘢痕组织中的荧光深度和荧光面积,阐述这两种脂质体渗透能力之间的差异,为经皮给药治疗瘢痕提供实验依据。
研究方法1采用薄膜水化法制备5-FU变形脂质体,利用正交实验探索最佳处方,考察脂质体的形态、粒径分布、包封率等特性。
2 用逆相蒸发法制备5-FU乙醇脂质体,通过改进乙醇脂质体的制备处方,在制备过程中加入不同量的胆固醇,以脂质体粒径的大小、包封率的高低、表面电荷的改变等为考察指标来寻找最佳制备方法。
3 采用改良Franz扩散池进行体外透皮透瘢痕实验,测量透析液中的药物含量,计算累积渗透量;制备皮肤、瘢痕冰冻切片,用荧光显微镜观察脂质体在皮肤、瘢痕中的分布并计算渗透深度和荧光面积。
研究结果1 薄膜水化法制备的5-FU变形脂质体为圆球形,多分散性指数PDI为0.215,粒径分布均匀,平均粒径为(90±5)nm,包封率高达82.14%。
逆相蒸发法制备的乙醇脂质体为圆球形,分散均匀。
多分散性指数0.147,平均粒径(102±7)nm包封率可达到62.16%。
2 透鼠皮实验累积渗透率:5-FU变形脂质体组高于空白变形脂质体+5-FU 组、 5-FU 的PBS溶液组、空白变形脂质体组,P<0.05;5-FU乙醇脂质体组高于空白乙醇脂质体+5-FU组、 5-FU 的PBS溶液组、空白乙醇脂质体组,P<0.05;5-FU乙醇脂质体组高于5-FU变形脂质体组,P<0.05。
3 透人皮实验结果:荧光显微镜观察显示脂质体主要集中在皮肤的浅层,荧光深度检测:5-FU变形脂质体组高于罗丹明PBS组,P<0.05;5-FU乙醇脂质体组高于罗丹明PBS组,P<0.05;5-FU乙醇脂质体组高于5-FU变形脂质体组,P<0.05。
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・综述・包覆脂质体的研究进展吕青志,翟光喜*,王海刚,黄兴刚(山东大学药学院,山东济南250012)摘要:包覆脂质体是一种新型的膜修饰脂质体,与普通脂质体相比,提高了脂质体体内外稳定性,延长了体内循环时间,增加了药物的靶向性。
现对各种包覆材料的特点予以评价,并对包覆脂质体的国内外研究进展作一综述。
关键词:脂质体;包覆脂质体;壳聚糖;多糖中图分类号:Q946.4文献标识码:A文章编号:1672-979X(2007)02-0045-04Research Advance on Coated LiposomesLV Qing-zhi,ZHAI Guang-xi*,WANG Hai-gang,HUANG Xing-gang( School of Pharmaceutical Sciences, Shangdong University,Jinan 250012, China)Abstract:Coated liposomes are a kind of surface modified liposomes which can improve the stability of liposomeseither in vivo or in vitro, prolong the circulation time in vivo by reducing the uptake of the phagocytic cells in the reticuloen-dothelial system (RES) and increase the target detection. The advance of coated liposomes and the characters of coatingmaterials are reviewed in this paper.Key words:liposome; coated liposome; chitosan; polysaccharide收稿日期:2006-11-28作者简介:吕青志(1983-),女,山东烟台人,硕士研究生,药剂学专业*通讯作者:翟光喜,男,博士,副教授Tel:(0531)88382015E-mail:zhaiguangxi@yahoo.com.cn脂质体(liposome)作为药物载体,具有一定的靶向性和缓释性,能降低药物给药剂量,减轻药物毒性,提高药物的稳定性[1]。
但脂质体属微粒分散制剂,存在粒径变大、絮凝、药物渗漏等问题,口服后胃蛋白酶易吸附于磷脂表面,降解酸敏感的大分子药物;静注给药后网状内皮系统对其识别、吸收,导致体内循环时间缩短;磷脂与血中高密度脂蛋白发生脂交换并与白蛋白、调理素、抗体等作用,使脂质体破裂,包封的药物快速渗漏。
包覆脂质体(coated liposome)是一种新型的膜修饰脂质体,与普通脂质体相比,它可增加脂质体双层膜的稳定性,提高脂质体的体内外稳定性,延缓脂质体中的药物释放;能够给脂质体外层周围提供一个亲水性屏障,阻止血浆蛋白对脂质体表面的吸附,静注给药可延长脂质体在体内的循环时间,增加药物的靶向性。
常用的包覆材料有多糖(如壳聚糖、藻酸盐)及其衍生物、聚乙烯醇衍生物(PVA-R)、胶原蛋白、右旋糖苷衍生物等[2,3]。
1壳聚糖及其衍生物1.1壳聚糖壳聚糖(chitosan,CS)是甲壳素的部分脱乙酰基产物,是自然界中唯一的碱性多糖,无毒,具有生物黏附、吸收促进、酶抑制和生物可降解性。
在酸性条件下,壳聚糖带正电荷易与黏膜发生静电吸附,能打开消化道上皮间的紧密连接,增加药物的透膜吸收。
用壳聚糖包覆脂质体,阳离子型的壳聚糖与阴离子脂质体发生电荷作用,壳聚糖未完全脱乙酰化的酰基插入脂质体的脂膜中,使分子镶嵌在脂质体的表面,形成壳聚糖脂质体复合物,增加了脂质体的稳定性和药物的靶向性[4-6]。
魏农农等[7]用旋转蒸发法制备氟尿嘧啶前体脂质体,然后用氟尿嘧啶前体脂质体0.5 g,加 pH 7.2的磷酸盐缓冲液(PBS)5 mL,缓慢振摇静置,即得脂质体混悬液,将2.5 mL置于10 mL玻璃离心管中,在漩涡搅拌器上缓慢滴加质量浓度为5 g/L的壳聚糖溶液,持续搅拌10 min,得混悬状壳聚糖包覆脂质体。
该给药系统在人工胃液和人工肠液中的累积药物释放量仅为13.1%。
动物体内实验表明,壳聚糖包覆氟尿嘧啶脂质体灌胃后在结肠部位符合一级吸收一室动力学模型,与普通脂质体相比,氟尿嘧啶药浓度-时间曲线下面积(AUC)由 45.1μg-1・h提高到 546μg・g-1・h,达峰时 tmax 由 1.14 h延长到8.6 h,峰浓度 Cmax 由2.13μg-1提高到 33.5μg・g-1,基本具有口服后在结肠释药、吸收的特征。
这是由于壳聚糖包覆脂质体防止了脂质体在胃肠道被破坏,而在结肠处细菌的多聚糖酶数量充足,专属的β-糖苷酶作用于壳聚糖,导致壳聚糖降解和药物释放,做到口服结肠定位释放。
壳聚糖广泛用于多肽类药物的口服给药。
Takeuchi等[8-11]将摩尔比 8∶2∶1 的L-α-二硬脂酰卵磷脂(DSPC)、磷酸鲸蜡脂(DCP)、胆固醇(Chol)与含降钙素的PBS(pH 6.8)水合制备降钙素脂质体混悬液。
将混悬液稀释、超声、超速离心后得脂质体小丸,加入壳聚糖溶液,涡旋,得壳聚糖包覆降钙素脂质体。
大鼠灌胃给药实验表明,包覆后的降钙素脂质体显著降低了大鼠血钙浓度(相对于降钙素溶液和未包覆脂质体),延长低血钙的时间可达 8 h。
实验表明,这种具有黏膜黏附性的包覆脂质体能延长多肽类药物的体内滞留时间,抑制酶活性,促进多肽类药物的口服吸收。
1.2N-三甲基壳聚糖盐酸盐(N-trimethyl chitosanchloride,TMC)壳聚糖是一种碱性多糖,需一定量的酸才能使葡糖胺结构单元展开并转变为带正电荷的溶液状态。
在pH中性时,壳聚糖分子失去电荷并从溶液中沉淀,因此,其吸收促进剂的作用在大肠、结肠和直肠等碱性环境中受到限制。
TMC具有与壳聚糖相同的生物学性质,即使在pH中性时也能溶解和降低跨上皮细胞电阻,打开肠上皮细胞间的紧密连结,通过细胞旁路增加亲水性大分子的转运[4,12-14]。
吴正红等[15]用逆相蒸发法制备胰岛素脂质体,加入TMC溶液在水浴中旋转孵化,得包覆胰岛素脂质体混悬液。
将TMC包覆胰岛素脂质体给大鼠、小鼠灌胃后,最大降血糖值分别为35.25%和82.83%。
大鼠维持28.58%以上的降血糖作用达2 h;小鼠维持52.32%以上的降血糖作用达4 h。
实验表明,TMC包覆的胰岛素脂质体与未包覆脂质体和胰岛素醋酸缓冲液相比,具有较好的降血糖作用。
1.3壳聚糖-EDTA结合物(chitosan-EDTAconjugates,CEC)CEC与壳聚糖相比有较强的生物黏附性,在水及碱性水溶液中更易水合,能有效地抑制肠道酶对多肽及蛋白质类药物的降解。
Na2-EDTA 通过络合作用能消耗肠道中Ca2+,从而影响细胞的紧密连接,增加药物的细胞旁路转运[16-18]。
吴正红等[19]用逆相蒸发法制备胰岛素脂质体,与CEC溶液在水浴中旋转孵化,得包覆的胰岛素脂质体混悬液。
实验表明,CEC对胃蛋白酶和胰蛋白酶都有抑制作用,并可促进胰岛素口服吸收,CEC修饰度和浓度对其包覆的胰岛素脂质体降血糖作用有一定的影响。
1.4氯化壳聚糖(chitosan chloride,CS-Cl)将壳聚糖加入稀盐酸后,经超声脱气、溶胀、过滤等操作,得CS-Cl。
CS-Cl是壳聚糖的水溶性衍生物。
生理条件下,肿瘤细胞表面带有较多的负电荷,用带正电荷的亲水性氯化壳聚糖溶液包覆脂质体,由于静电作用可增加药物对肿瘤细胞的靶向性。
周本宏等[20]用薄膜分散法制备羟基喜树碱(HCPT)脂质体,并用氯化壳聚糖包覆,经高压均质机多次乳匀得到纳米脂质体(平均粒径小于100nm)。
体外释药实验表明,HCPT注射液10 h体外累积释药量将近90%,普通脂质体48 h累积释药达60% 以上,CS-Cl包覆纳米脂质体48 h后累积释药不足20%。
可见脂质体有一定的缓释作用,而亲水性高分子化合物壳聚糖作为包覆材料能显著延缓纳米脂质体中的药物释放,长效作用比未包覆脂质体更明显。
2聚乙二醇-二硬脂酰磷脂酰乙醇胺(PEG-DSPE)PEG-DSPE是聚乙二醇的磷脂衍生物,为两性高分子化合物,既含有亲水的聚乙二醇又含有疏水的脑磷脂,在水中的性质近似于表面活性剂,以胶束的形式存在。
当PEG-DSPE与脂质体混合时,其疏水端插入脂质体双分子膜,使PEG-DSPE亲油的羧基嵌入脂质体形成稳定的聚乙二醇保护层,避免了网状内皮系统对它的吞噬作用,延长了脂质体在血液中的循环时间。
Zhang等[21]以胰岛素为模型药物,评价PEG-DSPE包覆胰岛素脂质体的降血糖药效学作用。
用逆相蒸发法制备PEG-DSPE包覆胰岛素脂质体。
正常Wistar大鼠分别静脉注射胰岛素溶液、胰岛素脂质体及PEG-DSPE包覆的胰岛素脂质体,血糖降低的最低百分率分别为(25.26±5.75)%,(33.92±12.42)%和(42.39±10.5)%;达到最低百分率的时间分别为(0.7±0.3)h,(1.2±0.4)h和(2.3±0.7)h。
胰岛素脂质体和PEG-DSPE包覆的胰岛素脂质体的相对生物利用度分别为98.03% 和 99.70%。
表明PEG包覆的胰岛素脂质体具有较强的缓释作用,降血糖作用更加明显。
3聚乙二醇单甲醚(2000)胆固醇琥珀酸酯(PEGCHS)PEGCHS具有生物可降解性,有利于所载药物的释放,发挥药效。
邓意辉等[22]用聚乙二醇单甲醚(2000)胆固醇琥珀酸酯包覆脂质体,以钙黄绿素(CF)为荧光探针,考察了不同PEGCHS加入量对脂质体包封率的影响。
结果表明,随PEGCHS量的增加,包封率降低。
还比较了包覆前后脂质体的体外、体内释放性。
小鼠尾静脉分别注射CF溶液、普通脂质体和PEGCHS包覆脂质体,测得3种制剂消除半衰期分别为38.06,134.66和206.94 min,AUC比值分别为1,6.5和17.5,证明PEGCHS包覆脂质体体内循环时间极大地延长。
4藻酸盐(alginate)藻酸盐是从褐藻中提取的天然多糖,在多价阳离子(如Ca2+)存在时能形成凝胶。
将海藻酸钠溶液逐滴加入CaCl2溶液中,即形成有规则形状和粒径的球形凝胶,称为“藻酸盐串珠”(alginate bead)。
藻酸盐口服低毒,在正常生理条件下可降解或溶解,膨胀后可保护多肽类药物免于胃酸和酶降解,增加药物吸收。
Liu等[23]用蜂毒作为模型药物,模拟胃、小肠、结肠环境,研究口服藻酸盐凝胶串珠包覆脂质体结肠定位给药系统的体外释药特性。