2.FluorCam叶绿素荧光成像技术
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STF光强度
120,000 µmol(photons)/m².s ，100µs 脉冲(QA 再氧化版)
辅助光源
远红光源
• 用于：1.激发PSI，测量真实F0’；2.测量叶片的真实吸光系数（ETR）
额外的紫外光源
• 用于：1.多色荧光，UV可以激发蓝F440、绿F520、红F680、远红 F740；2.作为wtGFP，DAPI的激发光源
多光谱植物荧光成像系统
多光谱植物荧光成像系统可以为一系列应用到绿色荧光 蛋白的分子和细胞生物学研究提供服务。在封闭式荧光成像 系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一 系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、YFP、 BFP或者其它波段荧光蛋白和荧光素进行检测和成像。
仪器的硬件配置使得荧光蛋白与荧光素和叶绿素荧光的 检测和成像间的功能变换成为可能并易于操作。
多色荧光测定配置（转基因等，荧光蛋白与荧光素酶）：特殊光 源+8位滤波轮（请根据实验设计事先咨询）。
不同荧光蛋白的测量：
• wtGFP 主激发峰 395-397nm，发射峰504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420nm短通，532/28 or 530/25 nm检测.
• EGFP 主激发峰 中心波长488nm，发射峰507-509nm. 滤波器建议设置:激发光480nm短通，532/28 or 530/25nm 检测.
FluorCam叶绿素荧光成像技术
北京易科泰生态技术有限公司* info@eco-lab.cn
叶绿素荧光成像
• 直观、无损、非接触 • 测量区域即足够小又足够大 • 代表性强，荧光仪测量存在取样盲目的问
题。（光纤、微光纤荧光仪）测量点越 小，则盲目性越大。 • 拟南芥等小植物及不规则区域测荧光用成 像更方便
的不足
（二）先进的测量技术
• fm
• mfm
• mfmsub
并非只有一幅图片， 优于其他荧光成像 设备
示意mfmsub
一个典型的NPQ测量过程
318
共 进 行 次 测 量 ， 产 生 幅 图 片
318
（三）优越的硬件配置
基本LED 光源：
一组光源提供测量光和光化光1 (618 nm) 另一组光源提供光化光2和饱和光——需根据实际需求选择红（稳定）、
• 成像面积：3X3cm；13X13cm；20X20 cm • 单像素代表最小面积：21.6X28.8 um；93.4X125 um；
144X192 um 曝光时间可达10μs，可选20 μs、33 μs，以及更长 ——适用于慢速过程与荧光蛋白或荧光素成像；高空间分 辨率研究；成像面积大时更需要
（四）Fluorcams的功能特点
• 可直接测量快速过程，而这些过程以现有的相机技术是无法捕获的。 例如直接测量QA再氧化过程（非pump-and-probe技术），天线连通 性与天线大小。
技术参数
• 快速荧光动力学测量控制单元FL3500, 显微版的双调整荧光仪,可与 荧光成像同步化。
• SM9000光谱仪精细选调不同波长的测量光、光化学光和饱和光源，光 源进口 70 µm x 1400 µm (optical entrance) ，光波范围200980nm，波长精确度 < 0.5nm，色素数量1044 x 64，色素大小24 x 24mm2，16比特模数转换。
叶绿素荧光成像+ 荧光标记发光成像
现在多为GFP成像或叶绿素荧光成像，无功能重叠仪器
配置&功能
标准配置：
• 高分辨率CCD镜头 • 光源：4组 LED 发光板：
4 X 470 nm
2 X 447 nm + 2 X 470 nm
2 X 627 nm + 2 X 470 nm • 8位滤波轮 • 条形码识别
功能：
• 叶绿素荧光淬灭 • 荧光诱导过程 • GFP表达成像 • 条形码识别标记
可选配置与功能
额外的紫外光源
• 用于：1.多色荧光，UV可以激发蓝F440、绿F520、红 F680、远红F740；2.作为wtGFP，DAPI的激发光源
额外的青/蓝/绿/黄光源
• 安装在系统上部的额外LED发光板，低于相机，相机物镜 从LED板中间穿过。该光源提供了特殊研究中使用多色激 发光的可能。可用光色：紫外，蓝，青，绿，黄，橙，或 远红。
Fluorcams荧光成像技术
（一）适用性 （二）测量技术 （三）硬件配置 （四）功能特点 （五）Fluorcam软件功能（下午演示） （六）Fluorcams系列产品 （七）Fluorcams在各领域的应用
（一）Fluorcam的适用性
适用于各种复杂情况 • 测量面积（显微视野到样带成像） • 适用范围（叶绿体——群落） • 从二维成像到三维成像 • 样品大量筛选（条码识别） • 可用于荧光蛋白与荧光素成像 • 弥补普通荧光成像对荧光瞬变过程在时间分辨上
蓝（能量高&气孔）或白光（贴近自然光照）
光化光强度
标准配置：2,500 µmol(photons)/m².s
升级配置：5,000 µmol(photons)/m².s （光胁迫）
饱和光强度
标准配置：3,000 µmol(photons)/m².s（多次翻转） 升级配置：10,000 µmol(photons)/m².s（单次翻转）
额外的青/蓝/绿/黄光源
• 安装在系统上部的额外LED发光板，低于相机，相机物镜从LED板中 间穿过。该光源提供了特殊研究中使用多色激发光的可能。可用光色： 紫外，蓝，青，绿，黄，橙。
• 青色光源：1.用于气孔功能研究， 2. 作为EGFP的激发光源
• 绿色光源：用于YFP的激发光源 （紫外激发的荧光亮度高但持续时间短， 可见光激发的荧光亮度低但持续时间长）
• TR2000温度调节器,包括控制单元和温度控制器两部分，温度调节范 围 0°C－70°C，精确度0.1°C。可实现测量室的温度控制。
• 可进行PAM活体荧光测wk.baidu.com，Kautsky荧光动力学、光化学荧光淬灭、非 光化学荧光淬灭等可以以光谱分辨率测量分析，可以通过选调不同波 长的光源激发天线色素的不同部位。
单细胞&亚细胞水平？
单细胞水平？
FC 2000显微叶绿素荧光成像系统将GFP和叶绿素荧光动力学 成像的全部功能扩展到了单细胞和亚细胞结构水平。所有传统的荧 光参数都可以以测微计的分辨率成像，因此对单个细胞、单个叶绿 体甚至基粒-基质类囊体片段的研究都可以实现。
典型样品
叶片切片 绿藻 藻青菌 叶绿体 类囊体 其它
高品质LED光源
光源排列与组合
高性能CCD
高速成像镜头： • A/D：12 bit (4096 灰度) • 分辨率：512 x 512像素 • 像素大小：8.2 µm x 8.4 µm • 拍照速度：每秒50幅 • 成像面积：3X3cm；13X13cm；20X20 cm • 单像素代表面积：60X60um；0.25X0.25mm；
• BFP 主激发峰 384nm，发射峰近448nm. 滤波器建议设置: 激发光400nm短通，469/35nm检测.
（五）Fluorcam软件功能（下午演示）
软件优越性 • 更理想的数据图像（时间分辨率&清晰度） • 测量对象选取（自动&手动，ROI&MASK） • 可选实验过程（Protocol丰富性） • 结果处理的便捷性（视频、图、表、曲线、
显微叶绿素荧光成像
从结构到功能与封闭式荧光成像系统类似，区别仅在于增加了一台显 微镜：
• 1. Micro-FluorCam FC 2000-ST 内含: CCD 相机; 简单显微镜架;光学组件;控制单元;高性能PC;激发光源;软件 包;使用手册.
• 2. Micro-FluorCam FC 2000-EN 内含: CCD 相机;带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40); 机械强化光学组件;控制单元;高性能PC;激发光源;软件包;使用手册.
0.4X0.4mm 曝光时间可达10μs，可选20 μs、33 μs，以及更长 ——适用于快速过程记录 时间分辨率概念：单张曝光时间（远高于50幅每秒）与连 续测量记录（动力学过程连续记录50幅每秒）
高性能CCD
高分辨率镜头
• 可选模式： - 2x2 - 696 x 520 像素, 25幅每秒 - 3x3 - 464 x 344 像素, 20幅每秒 - 4x4 - 348 x 256 像素, 50幅每秒
QY局部放大图
分辨率512X512 成像面积3X3cm 单像素代表面积：60X60um
理想的仪器是什么样子？
• 适用性（宏观&微观，室内&室外，光合生 理&基因工程）
• 测量结果（可靠，时间分辨率&空间分辨率） • 功能（越强越好） • 软件（人性化、便于操作） • 携带（方便） • 耐用（维护量低） • 科研界认可度（文献）
Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)
光谱分辨的荧光成像！
——FKM多功能荧光动态显微观测系统
功能特点：
• PAM脉冲调制模式的叶 绿素荧光动力学测量及 其成像。
• 通过选择不同激发光波 段，对捕光天线的各部 分（如各种不同的藻胆 蛋白vs叶绿素蛋白复合 物）进行选择性激发。 捕光天线的不同部分可 在同一次测量中通过不 同激发波段的自动切换 进行激发和测量。
• 青色光源：1.用于气孔功能研究， 2. 作为EGFP的激发光源
• 绿色光源：用于YFP的激发光源
叶绿素荧光成像部分可选配置
• PAR吸收模块 • QA再氧化过程分析 • 高达1µs时间分辨率的快速荧光诱导（OJIP）分
析
注：多光谱植物荧光成像系统配置选择较复杂，如 果不是标准配置，请提前咨询。
基本参数 • Fo、Fm、Fv/Fm • Fo’、Fm、Fm’、Fs、QY(II)、ETR、Rfd、qP、
NPQ（qN） 基本测量过程 • Kautsky诱导过程 • 荧光淬灭过程 （整个过程都以图像记录，而非只有几个特定时间
点的荧光参数图像）
强化功能与配置选择
PAR致于吸荧非收光正模值常块错状—误态—，，测进公量而式真导推实致导F的E0T’，FR0P’、和AR经Rf吸d验、收吸q系P光、数系N（数P植Q可（物能q经完N历全）胁不等迫适重处用要理，参后会数处导计 算错误）
• 单细胞光谱解析荧光动力学，在细胞水平上解析空间异质性和和荧光 光谱异质性。
统计学分析、多样品比较、区域性分析） • 高级功能（Protocol编辑、checkpoint编辑） • 易于操作（软件设置人性化）
（六）Fluorcams系列产品
封闭式荧光成像
不同使用环境要求
开放式
便携式
移动式
光合联用
不同使用环境要求
3D成像
大通量成像 样带成像
转基因工程？
转基因定位与表达情况 GFP、YFP、BFP、荧光素酶s
光谱分辨的荧光成像
• 整个kautsky诱导过程，包括光化学荧光淬灭和非光化学荧光淬灭过 程都可以进行光谱分辨分析。这种方式可以确定光系统中的哪一个 色素蛋白复合物对光化学淬灭或非光化学淬灭贡献最多，可以用于 光合作用过程中光合机构变化的分析。
• 其它非叶绿素荧光动力学过程分析，可原位监测其它生理学过程， 并与同一细胞的光合作用过程和表现进行比较。与常规显微叶绿素 荧光成像相比，超高灵敏度相机与调制光测量过程使得成像可在不 干扰细胞正常生理代谢的极弱光情况下进行。
• 3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW 内含: 6位滤波轮; CCD相机;带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架 (Olympus BX40);机械强化光学组件;控制单元;PC高性能PC;激发光源;软件包; 使用手册.
• 4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW 内含：6位完全软件控制的滤波轮; CCD相机;带可更换可扩展组件的 机械强化显微镜架(Olympus BX40); 机械强化光学组件;控制单元; 高性能PC;激发光源;软件包;使用手册.
OJIP模块——进行OJIP快速荧光动力学分析（对环境胁迫非常敏感，精 细反映电子激发与传递过程，PI等参数直接反映植物活性）
QA再氧化模块——QA再氧化动力学测定的高级配置，以pump-andprobe 方式工作, 例如以可变的时间延迟测定闪光后的荧光发射情 况，并重复进行。（反映QA-向QB的电子传递过程及其变化：快相、 中相和慢相组分分析，其中慢性组分与反应中心的失活情况密切相关）
120,000 µmol(photons)/m².s ，100µs 脉冲(QA 再氧化版)
辅助光源
远红光源
• 用于：1.激发PSI，测量真实F0’；2.测量叶片的真实吸光系数（ETR）
额外的紫外光源
• 用于：1.多色荧光，UV可以激发蓝F440、绿F520、红F680、远红 F740；2.作为wtGFP，DAPI的激发光源
多光谱植物荧光成像系统
多光谱植物荧光成像系统可以为一系列应用到绿色荧光 蛋白的分子和细胞生物学研究提供服务。在封闭式荧光成像 系统上安装了完全由软件控制和电动驱动的滤波轮，以及一 系列的滤光片组，可以来对GFP，EGFP、wtGFP、YFP、 BFP或者其它波段荧光蛋白和荧光素进行检测和成像。
仪器的硬件配置使得荧光蛋白与荧光素和叶绿素荧光的 检测和成像间的功能变换成为可能并易于操作。
多色荧光测定配置（转基因等，荧光蛋白与荧光素酶）：特殊光 源+8位滤波轮（请根据实验设计事先咨询）。
不同荧光蛋白的测量：
• wtGFP 主激发峰 395-397nm，发射峰504 nm. 滤波器建议设置: 激发光420nm短通，532/28 or 530/25 nm检测.
• EGFP 主激发峰 中心波长488nm，发射峰507-509nm. 滤波器建议设置:激发光480nm短通，532/28 or 530/25nm 检测.
FluorCam叶绿素荧光成像技术
北京易科泰生态技术有限公司* info@eco-lab.cn
叶绿素荧光成像
• 直观、无损、非接触 • 测量区域即足够小又足够大 • 代表性强，荧光仪测量存在取样盲目的问
题。（光纤、微光纤荧光仪）测量点越 小，则盲目性越大。 • 拟南芥等小植物及不规则区域测荧光用成 像更方便
的不足
（二）先进的测量技术
• fm
• mfm
• mfmsub
并非只有一幅图片， 优于其他荧光成像 设备
示意mfmsub
一个典型的NPQ测量过程
318
共 进 行 次 测 量 ， 产 生 幅 图 片
318
（三）优越的硬件配置
基本LED 光源：
一组光源提供测量光和光化光1 (618 nm) 另一组光源提供光化光2和饱和光——需根据实际需求选择红（稳定）、
• 成像面积：3X3cm；13X13cm；20X20 cm • 单像素代表最小面积：21.6X28.8 um；93.4X125 um；
144X192 um 曝光时间可达10μs，可选20 μs、33 μs，以及更长 ——适用于慢速过程与荧光蛋白或荧光素成像；高空间分 辨率研究；成像面积大时更需要
（四）Fluorcams的功能特点
• 可直接测量快速过程，而这些过程以现有的相机技术是无法捕获的。 例如直接测量QA再氧化过程（非pump-and-probe技术），天线连通 性与天线大小。
技术参数
• 快速荧光动力学测量控制单元FL3500, 显微版的双调整荧光仪,可与 荧光成像同步化。
• SM9000光谱仪精细选调不同波长的测量光、光化学光和饱和光源，光 源进口 70 µm x 1400 µm (optical entrance) ，光波范围200980nm，波长精确度 < 0.5nm，色素数量1044 x 64，色素大小24 x 24mm2，16比特模数转换。
叶绿素荧光成像+ 荧光标记发光成像
现在多为GFP成像或叶绿素荧光成像，无功能重叠仪器
配置&功能
标准配置：
• 高分辨率CCD镜头 • 光源：4组 LED 发光板：
4 X 470 nm
2 X 447 nm + 2 X 470 nm
2 X 627 nm + 2 X 470 nm • 8位滤波轮 • 条形码识别
功能：
• 叶绿素荧光淬灭 • 荧光诱导过程 • GFP表达成像 • 条形码识别标记
可选配置与功能
额外的紫外光源
• 用于：1.多色荧光，UV可以激发蓝F440、绿F520、红 F680、远红F740；2.作为wtGFP，DAPI的激发光源
额外的青/蓝/绿/黄光源
• 安装在系统上部的额外LED发光板，低于相机，相机物镜 从LED板中间穿过。该光源提供了特殊研究中使用多色激 发光的可能。可用光色：紫外，蓝，青，绿，黄，橙，或 远红。
Fluorcams荧光成像技术
（一）适用性 （二）测量技术 （三）硬件配置 （四）功能特点 （五）Fluorcam软件功能（下午演示） （六）Fluorcams系列产品 （七）Fluorcams在各领域的应用
（一）Fluorcam的适用性
适用于各种复杂情况 • 测量面积（显微视野到样带成像） • 适用范围（叶绿体——群落） • 从二维成像到三维成像 • 样品大量筛选（条码识别） • 可用于荧光蛋白与荧光素成像 • 弥补普通荧光成像对荧光瞬变过程在时间分辨上
蓝（能量高&气孔）或白光（贴近自然光照）
光化光强度
标准配置：2,500 µmol(photons)/m².s
升级配置：5,000 µmol(photons)/m².s （光胁迫）
饱和光强度
标准配置：3,000 µmol(photons)/m².s（多次翻转） 升级配置：10,000 µmol(photons)/m².s（单次翻转）
额外的青/蓝/绿/黄光源
• 安装在系统上部的额外LED发光板，低于相机，相机物镜从LED板中 间穿过。该光源提供了特殊研究中使用多色激发光的可能。可用光色： 紫外，蓝，青，绿，黄，橙。
• 青色光源：1.用于气孔功能研究， 2. 作为EGFP的激发光源
• 绿色光源：用于YFP的激发光源 （紫外激发的荧光亮度高但持续时间短， 可见光激发的荧光亮度低但持续时间长）
• TR2000温度调节器,包括控制单元和温度控制器两部分，温度调节范 围 0°C－70°C，精确度0.1°C。可实现测量室的温度控制。
• 可进行PAM活体荧光测wk.baidu.com，Kautsky荧光动力学、光化学荧光淬灭、非 光化学荧光淬灭等可以以光谱分辨率测量分析，可以通过选调不同波 长的光源激发天线色素的不同部位。
单细胞&亚细胞水平？
单细胞水平？
FC 2000显微叶绿素荧光成像系统将GFP和叶绿素荧光动力学 成像的全部功能扩展到了单细胞和亚细胞结构水平。所有传统的荧 光参数都可以以测微计的分辨率成像，因此对单个细胞、单个叶绿 体甚至基粒-基质类囊体片段的研究都可以实现。
典型样品
叶片切片 绿藻 藻青菌 叶绿体 类囊体 其它
高品质LED光源
光源排列与组合
高性能CCD
高速成像镜头： • A/D：12 bit (4096 灰度) • 分辨率：512 x 512像素 • 像素大小：8.2 µm x 8.4 µm • 拍照速度：每秒50幅 • 成像面积：3X3cm；13X13cm；20X20 cm • 单像素代表面积：60X60um；0.25X0.25mm；
• BFP 主激发峰 384nm，发射峰近448nm. 滤波器建议设置: 激发光400nm短通，469/35nm检测.
（五）Fluorcam软件功能（下午演示）
软件优越性 • 更理想的数据图像（时间分辨率&清晰度） • 测量对象选取（自动&手动，ROI&MASK） • 可选实验过程（Protocol丰富性） • 结果处理的便捷性（视频、图、表、曲线、
显微叶绿素荧光成像
从结构到功能与封闭式荧光成像系统类似，区别仅在于增加了一台显 微镜：
• 1. Micro-FluorCam FC 2000-ST 内含: CCD 相机; 简单显微镜架;光学组件;控制单元;高性能PC;激发光源;软件 包;使用手册.
• 2. Micro-FluorCam FC 2000-EN 内含: CCD 相机;带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架(Olympus BX40); 机械强化光学组件;控制单元;高性能PC;激发光源;软件包;使用手册.
0.4X0.4mm 曝光时间可达10μs，可选20 μs、33 μs，以及更长 ——适用于快速过程记录 时间分辨率概念：单张曝光时间（远高于50幅每秒）与连 续测量记录（动力学过程连续记录50幅每秒）
高性能CCD
高分辨率镜头
• 可选模式： - 2x2 - 696 x 520 像素, 25幅每秒 - 3x3 - 464 x 344 像素, 20幅每秒 - 4x4 - 348 x 256 像素, 50幅每秒
QY局部放大图
分辨率512X512 成像面积3X3cm 单像素代表面积：60X60um
理想的仪器是什么样子？
• 适用性（宏观&微观，室内&室外，光合生 理&基因工程）
• 测量结果（可靠，时间分辨率&空间分辨率） • 功能（越强越好） • 软件（人性化、便于操作） • 携带（方便） • 耐用（维护量低） • 科研界认可度（文献）
Micro-FluorCam FC2000-EFW: 6-位滤波器 (插入式)
光谱分辨的荧光成像！
——FKM多功能荧光动态显微观测系统
功能特点：
• PAM脉冲调制模式的叶 绿素荧光动力学测量及 其成像。
• 通过选择不同激发光波 段，对捕光天线的各部 分（如各种不同的藻胆 蛋白vs叶绿素蛋白复合 物）进行选择性激发。 捕光天线的不同部分可 在同一次测量中通过不 同激发波段的自动切换 进行激发和测量。
• 青色光源：1.用于气孔功能研究， 2. 作为EGFP的激发光源
• 绿色光源：用于YFP的激发光源
叶绿素荧光成像部分可选配置
• PAR吸收模块 • QA再氧化过程分析 • 高达1µs时间分辨率的快速荧光诱导（OJIP）分
析
注：多光谱植物荧光成像系统配置选择较复杂，如 果不是标准配置，请提前咨询。
基本参数 • Fo、Fm、Fv/Fm • Fo’、Fm、Fm’、Fs、QY(II)、ETR、Rfd、qP、
NPQ（qN） 基本测量过程 • Kautsky诱导过程 • 荧光淬灭过程 （整个过程都以图像记录，而非只有几个特定时间
点的荧光参数图像）
强化功能与配置选择
PAR致于吸荧非收光正模值常块错状—误态—，，测进公量而式真导推实致导F的E0T’，FR0P’、和AR经Rf吸d验、收吸q系P光、数系N（数P植Q可（物能q经完N历全）胁不等迫适重处用要理，参后会数处导计 算错误）
• 单细胞光谱解析荧光动力学，在细胞水平上解析空间异质性和和荧光 光谱异质性。
统计学分析、多样品比较、区域性分析） • 高级功能（Protocol编辑、checkpoint编辑） • 易于操作（软件设置人性化）
（六）Fluorcams系列产品
封闭式荧光成像
不同使用环境要求
开放式
便携式
移动式
光合联用
不同使用环境要求
3D成像
大通量成像 样带成像
转基因工程？
转基因定位与表达情况 GFP、YFP、BFP、荧光素酶s
光谱分辨的荧光成像
• 整个kautsky诱导过程，包括光化学荧光淬灭和非光化学荧光淬灭过 程都可以进行光谱分辨分析。这种方式可以确定光系统中的哪一个 色素蛋白复合物对光化学淬灭或非光化学淬灭贡献最多，可以用于 光合作用过程中光合机构变化的分析。
• 其它非叶绿素荧光动力学过程分析，可原位监测其它生理学过程， 并与同一细胞的光合作用过程和表现进行比较。与常规显微叶绿素 荧光成像相比，超高灵敏度相机与调制光测量过程使得成像可在不 干扰细胞正常生理代谢的极弱光情况下进行。
• 3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW 内含: 6位滤波轮; CCD相机;带可更换可扩展组件的机械强化显微镜架 (Olympus BX40);机械强化光学组件;控制单元;PC高性能PC;激发光源;软件包; 使用手册.
• 4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW 内含：6位完全软件控制的滤波轮; CCD相机;带可更换可扩展组件的 机械强化显微镜架(Olympus BX40); 机械强化光学组件;控制单元; 高性能PC;激发光源;软件包;使用手册.
OJIP模块——进行OJIP快速荧光动力学分析（对环境胁迫非常敏感，精 细反映电子激发与传递过程，PI等参数直接反映植物活性）
QA再氧化模块——QA再氧化动力学测定的高级配置，以pump-andprobe 方式工作, 例如以可变的时间延迟测定闪光后的荧光发射情 况，并重复进行。（反映QA-向QB的电子传递过程及其变化：快相、 中相和慢相组分分析，其中慢性组分与反应中心的失活情况密切相关）