1-全血处理为血清或血浆注意事项
血液标本知识
血液标本知识血液标本是在临床医学中常见的检查方法之一，它可以提供很多关于人体健康状况的重要信息。
掌握血液标本知识对于医学工作者和患者来说都是非常必要的。
本文将深入探讨血液标本的采集、处理和常见检测项目等相关内容。
一、血液标本的采集1.采集前准备在进行血液标本采集之前，需要进行一系列的准备工作。
首先，采集器械和试剂应事先准备齐全，包括一次性采血针、采血管、试剂盒等。
其次，采集现场应做好消毒，以确保采集的血液样本的无菌和洁净。
另外，也需要确认患者的身份和相关的病史信息。
2.采集方法常见的血液采集方法包括静脉采血和指尖采血。
静脉采血通常在掌静脉或肘静脉处进行，这需要使用一次性采血针和采血管。
指尖采血一般用于无法采集足够量静脉血的情况，例如测血糖。
在采血过程中，要注意采集血液的体积和流速，避免不必要的疼痛和并发症。
3.采集后处理采集后的血液标本需要进行适当的处理，以确保准确可靠的检测结果。
首先，采集管要进行标示，包括患者的信息和采集时间等。
其次，应将采集的血液标本送往实验室进行检测，或按照检测项目的要求进行前处理。
二、血液标本的处理1.分离血清与血浆血液采集后，可以通过离心的方法将血液分离为血清和血浆。
血清一般是采用干净的离心管，在离心后，管中的血液上层变为血清。
血浆则是整个血液离心后得到的，它含有凝血因子。
对于不同的检测项目，选择合适的血液形式进行检测是非常重要的。
2.保存血液标本保存血液标本需要注意一些基本的原则和方法。
首先，血液标本的保存温度应在合适的范围内，通常是2-8℃。
其次，应避免血液标本的震荡和污染，以免影响检测结果的准确性。
最后，为了方便管理和诊断，每个血液标本都应有清晰的标示，包括患者的信息和采集的时间等。
三、常见检测项目血液标本可以进行多项不同的检测项目，下面介绍几个常见的检测项目。
1.血常规血常规是临床上最常用的一项检测项目，它包括血红蛋白、红细胞计数、白细胞计数、血小板计数等指标。
全血处理为血清或血浆注意事项培训
离心后阶段
指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出一定量之前的 一段时间。 1. 血清或血浆与接触的血细胞和凝块的分离应在采血后尽快 （2h内）完成。 2. 分离的血清或血浆的贮存：实验室的室温和血清或血浆的 贮存温度、时间，是分析物稳定性和测定结果准确性的重要 参数。
离心后阶段
（1）于22℃～25℃血清或血浆的保存不超过8h； （2）实验于8h内不能完成时，血清或血浆应置2℃～8℃保 存； （3）48h内不能完成的实验项目，或分离的血清或血浆需贮 存48h以上时，应于-20℃保存； （4）标本不可反复冻融（只能冻融一次）； （5）离心后分离凝胶（凝胶屏障）上面的血清可保存2～5 天（亦有报道4℃可贮存24h） ，但必须保证凝胶的完整性； 但应用非凝胶分离物质时，离心后必须立即将血清或血浆移 出。 （6）血清或血浆必须保存于密闭的试管中。
如果标本出现洒溢，如何 处理？
4)然后再用消毒剂（健之素：有效氯含量 2000mg/L）擦拭污染区域；（2016院感要求）
5)在上面倒上消毒剂（健之素：有效氯含量 2000mg/L），取另一块布或纸巾由外向内进行处 理，并覆盖其上，使其作用30分钟后，将布、纸 巾弃于医疗垃圾桶中；
6)然后再用消毒剂擦拭污染区域；
如果标本出现洒溢，如何 处理？
1)做好个人防护，戴手套，穿防有消毒液（金属物品表面用75%的酒精、其 他物品用健之素：有效氯含量2000mg/L）的布或 纸巾覆盖受感染性物质污染或受感染性物质溢洒 的破碎物品；
3)如无破碎物，用覆盖的布或纸巾擦去溢酒的污染 物质并弃于医疗垃圾桶中；如有破碎物，用镊子 将覆盖的布或纸巾擦去溢洒的污染物质并弃于锐 器盒中，同时用镊子小心将碎物放入锐器盒中；
血液样本的处理及生物危害注 意事项
血清血浆分离步骤
血清血浆分离步骤血清和血浆是医学研究和临床诊断中常用的生物样品，用于检测血液中的生物化学指标，诊断疾病以及监测治疗效果。
血浆分离是从全血中分离出液体部分，而血清则是从血浆中去除了凝血因子。
血浆和血清分离的步骤可以分为以下几个步骤：1.标本采集和处理：首先需要采集血液样本。
血液样本可以通过多种方式获得，包括静脉采血和指尖采血。
采集后，要将血液放置在试管中，并稍微静置一段时间以允许血液凝结。
2.凝血：在放置血液样本一段时间后，血液会凝结。
凝血是为了分离血浆和血清部分与细胞成分。
凝血的过程涉及到凝血因子的活化，形成血块。
为了加速凝血，试管中的血液样本可以轻轻地摇晃或倾斜，以促使血液迅速凝结。
3.离心：凝血后的血液样本需要进行离心过程以分离血浆和血清。
离心是通过旋转样品试管使其快速旋转，产生离心力，使红细胞沉淀。
这样，血浆或血清可以在上层液体中收集。
4.分离：离心后，可以使用特定技术和器具将血浆或血清从其他成分分离出来。
这可以通过使用移液管或专用的离心试管来完成。
移液管被用来轻轻地吸取上层液体，以避免把红细胞或其他成分带入血浆或血清。
在这个过程中，需要注意一些技巧和注意事项：1.采集全血时，在采血前要将采血器和其他试验器具事先消毒，以确保无菌环境。
2.凝血时间可以根据需要调整。
对于一些实验或应用来说，较长的凝血时间可能更加合适，而对于其他实验或应用来说，较短的凝血时间可能更合适。
3.离心过程中，试管或离心管通常是倒置放置的，使红细胞沉到底部。
这样，可以更容易地分离血浆或血清。
4.分离后的血浆或血清应该储存在适当的容器中，以避免交叉污染或样品污染。
总结起来，血清和血浆的分离是通过凝血和离心的过程完成的。
这两个过程结合使用，可以分离出红细胞和其他细胞成分，从而提取出血浆或血清。
血浆和血清是医学和临床诊断中的重要生物样品，可用于检测和分析血液中的生物化学指标，对于疾病的诊断和治疗具有重要意义。
全血、血清和血浆，你能分得清吗？
健康域公卫人体血液成分可较好地反应机体生理情况与病理改变，在多种疾病的诊断、治疗及疗效评估中发挥着重要作用。
在血液检验过程中，我们通常会遇到全血、血清、血浆这3种医学概念。
那么，什么是全血、血清、血浆？如何鉴别？它们三者的作用又分别是怎样的呢？全血、血清、血浆是一种物质吗全血、血清、血浆并不是同一种物质。
全血指的是血液采集到采血袋内形成的混合物，人体血液通常是不凝固的全血状态，包含了液态血浆（55%）与血细胞（45%）的全部成分。
全血的保存以红细胞为主，保存液不同，全血的保存期也具有差异，例如使用CPD-A保存液需保证处于2℃~6℃的环境，保存时间可达35天。
全血保存期间所含的免疫球蛋白、纤维蛋白、白蛋白等活性会处于稳定状态，但粒细胞、血小板等其他成分会失去活性。
所以红细胞是库存全血的有效成分，其次为白蛋白、球蛋白。
血浆是血液经常规抽血离开血管后，通过抗凝、离心、沉淀处理得到的上清液（淡黄色）。
血浆约占全部血液的55%，其余45%为血细胞。
血浆中的纤维蛋白原是血液中尤为重要的基质蛋白，血浆蛋白质、无机盐等在保证血浆胶体渗透压、维持酸碱平衡等中发挥着重要作用。
通常情况下，人体血浆内的化学成分在一定范围内维持着动态平衡，但激素、脂肪、葡萄糖、蛋白质等会随着机体营养状态、活动状态发生较大变化，但是无机盐波动范围较小。
血清是血液经常规抽血离开血管后，自然凝固，通过离心、沉淀处理得到的上清液，少了较多凝血因子，不含纤维蛋白原，但是含有游离Ca2+，含有较多凝血产物。
血清是一种由多种化学成分与水组成的混合物，其含量与组成会随着性别、营养条件、年龄、生理条件等发生一定变化。
血清在维持血液渗透压、黏度、酸碱度方面具有重要作用。
简言之，血清、血浆都是血液中的组成部分。
全血加抗凝剂离心析出来的上层淡黄色液体为血浆；全血不加抗凝剂，自然凝固后离心析出来不含纤维蛋白原的上层淡黄色液体为血清。
如何鉴别全血、血清、血浆全血、血清、血浆是血液样本的3种基本分类，可以简单表示为：全血=血清+血浆。
生物等效性实验生物样品处理注意事项严
生物等效性实验生物样品处理注意事项一、样品采集后的的处理和贮存鉴于生物样本的特点，为了避免样品中被测药物发生分解或产生其他化学变化，取样后最好立即进行分析测定，但实际工作中几乎无法做到，常需将收集到的样品冷藏、冰冻，临用前再融化并放至室温后使用。
在样本冷冻贮藏前，需及时进行处理。
1.1血液样本处理注意事项1.1.1. 在肌肉注射或静脉输含有葡萄糖或电解质(含钾、钠、氯离子)的液体时，建议3小时以后采集静脉血样本进行这些项目的检验，以防止上述检验项目因输液引起的假性升高。
1.1.2保定非麻醉状态的动物时应尽量避免用力挤压动物头颈和胸腹，以免引起血液淤滞，局部组织缺氧，造成血液某些成分的改变，特别是测定乳酸，血液含氧量等指标时。
1.1.3血液中红细胞内外成分有很大差异，溶血可造成红细胞内的物质向细胞外转移，如K+、Mg2＋和某些酶类(LD、AST、ALT、ACP)；另外，溶血还可干扰某些化学项目(TBil、DBil、TC等)的测定，严重影响结果的准确性，血样本应防止溶血。
引起溶血的原因有：注射器采血时抽吸力太大；血液与抗凝剂比例失调；混匀样本时过度振荡；注射器或采血容器带水或容器污染；全血放置时间长或突然受冷或受热；注射器中的血沫注入采血容器；真空采血时如未采满至相应刻度，残存负压造成红细胞破裂；不拔针头直接注入采血容器；样本离心时离心力过大等。
为避免溶血，取血时应注意：①、抽拉注射器时应尽量避免注射器内产生大量真空；②、添加抗凝剂后的容器在除必要干燥流程后应及时密封；③、混匀样本时避免用力过度，切勿产生泡沫；④、避免重复使用注射器、针头、采血管、毛细玻璃管等一次性用品，手术刀片和剪刀等器材取材时尽量洗去残留血液；⑤、采血时的室温应控制在22℃至25℃，采取的血液容器在需要放入冰盒时，切勿紧贴冰袋，冰水；⑥、当注射器内因吸入空气产生血沫时，注意弃掉血沫，在将血液注入采血容器时勿将血沫一并注入；⑦、使用真空采血管需抽取负压时切勿过量；⑧、将血液注入采血容器时要除去针头，轻柔推入；⑨、离心带有血细胞的血样时，按照规格设定离心参数；1.1.4. 正确选择采集管。
补充生物化学检验的标本
补充生物化学检验的标本生物化学检验在临床诊断和治疗中起到非常重要的作用，通过对人体内各种物质的检测，可以提供临床医生判断疾病状况、辅助诊断和指导治疗的依据。
为了实现准确、可靠的生物化学检验结果，需要收集合适的标本进行分析。
本文将重点介绍补充生物化学检验的标本，并提供一些相关的注意事项。
1. 血液标本血液标本是生物化学检验中最为常见的标本之一。
通常使用的血液标本有全血、血浆和血清。
•全血：全血标本是指采集血液后没有经过离心分离的样品。
全血标本主要用于红细胞计数、白细胞计数和血液凝固功能等检测项目。
采集时应避免氧化损伤，需添加适当的抗凝剂来防止凝固。
•血浆：血浆是指采集血液后通过离心分离后得到的液体部分。
血浆标本主要用于生化检验，如血糖、肝功、肾功等项目。
采集时需使用抗凝剂，常用的抗凝剂有肝素和EDTA。
•血清：血清是指采集血液后经离心分离后得到的液体部分，同时还需要经过凝固后再离心分离得到。
血清标本常用于免疫学检验，如免疫球蛋白、肿瘤标志物等项目。
2. 尿液标本尿液标本在生物化学检验中也非常常见。
尿液标本的采集较为简便，不仅可以提供一些生化检验参数，还可以反映肾脏和泌尿系统的功能状态。
•早晨尿液：早晨尿液常用于尿蛋白定量、尿胆红素和尿酮体等检测项目。
•24小时尿液：24小时尿液是指患者在连续24小时内收集所有排泄的尿液，主要用于测定尿量、尿蛋白定量和尿碘等项目。
3. 粪便样本粪便样本在生物化学检验中主要用于消化功能的评估。
通过检测粪便中的潜血、胆红素、酶活性和某些微生态指标，可以判断胃肠道疾病和功能障碍。
•新鲜粪便：采集新鲜粪便样本时需避免污染、掌握采集时间，并储存在规定的容器中。
•粪便标本处理：粪便样本处理需要在采集后迅速进行，避免令样本干燥，同时需要遵循标本运输和储存的规范。
4. 体液标本除了血液、尿液和粪便外，还有一些其他体液标本也可用于生物化学检验。
•空腹胃液：用于检测胃酸分泌功能，可以帮助诊断胃酸过多或过少等疾病。
检验科血液标本采集的注意事项
检验科血液标本采集的注意事项检验科血液标本采集的注意事项在医院看病时，通常医生会开具一些检查单，如查血常规、尿常规、肝功、血脂等，以便为相关疾病诊断提供依据。
要想获得可靠、准确的检测结果，除了实验室本身执行严格的质量控制体系以外，正确的采集、留取标本也起到至关重要的作用。
下面是yjbys店铺为大家带来的关于检验科血液标本采集的注意事项的知识，欢迎阅读。
一、静脉血采集方法的注意事项：1、止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。
2、采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨空腹采集静脉血，应尽可能避免在输液同时采血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。
3、避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净，避免用力抽吸和推注、避免化学污染和细菌污染引起的溶血。
因为红细胞的某些成分与血清(浆)不同，样本溶血可使红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。
4、血样的采集：血样要求在每一天的同一时间采集，理想的`时间是早晨7：00到8：00，尤其是以监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。
最后一次食物和液体摄入应在前一天下午6：00 到7：00 (急诊检验例外)。
血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。
血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。
5、标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。
当取血不顺利时,切忌在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。
6、采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。
7、微量元素测定采集标本的注射器和容器不能含游离金属。
二、临床化学、免疫检验标本：临床化学、免疫检验多用非抗凝血标本, 一般用无添加剂(普通采血管-红帽管)。
标本采集主要注意事项有：1、化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采 l管血;2、采血量视检查项目多少不同而异，通常为3～4ml;3、多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：血培养→无添加剂管→凝血管→有添加剂管，有添加剂管的顺序为：枸橼酸盐管→肝素管→EDTA管→草酸盐/氟化钠管;4、不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本采集后，应尽快送检，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。
血清和血浆
血清和血浆血清和血浆是两种常见的生物体液，它们在临床和科研领域中起着重要的作用。
血清和血浆都是从全血中分离出来的成分，但它们在组成和功用上略有区别。
本文将对血清和血浆进行详细解析，包括它们的定义、制备方法、用途以及在临床中的应用。
血清是指在全血凝固后，将凝结的纤维蛋白和血小板去除后得到的液体。
它主要是血浆在凝固过程中释放出来的液体部分，不包含纤维蛋白原、凝血因子和血小板。
血清中含有丰富的蛋白质、激素、抗体、酶等生物活性物质，可以通过离心分离全血后收集血清得到。
血清可以用于诊断疾病、研究生物学过程、评估病情和药物治疗的有效性等。
血浆是指在抗凝剂的作用下，将离心后的全血中的红细胞、白细胞和血小板等固体成分去除后得到的液体。
血浆是血液的非细胞部分，它约占据全血的半数以上。
血浆是通过离心分离全血后收集得到，可以用于血型鉴定、输血、制备血浆制品等。
血浆中含有水、蛋白质、营养物质、激素、细胞因子等，它们在维持正常生理功能和免疫应答中起着重要的作用。
血清和血浆的制备方法有所不同。
血清的制备过程中需要对全血进行离心，去除凝固物质和血小板，然后将液体部分分离收集。
而血浆的制备中，在全血中加入抗凝剂，离心后直接将非细胞部分的液体收集。
制备血清和血浆的离心参数和离心时间也会因实验目的和设备不同而有所差异。
血清和血浆在医学临床中有着广泛的应用。
首先，它们可以用于诊断疾病。
通过检测血清和血浆中的生物标志物、抗体和激素水平，可以帮助医生了解患者的病情和病因，并进行合理的治疗。
其次，血清和血浆还可以应用于疾病预防和控制。
通过研究血清和血浆中的抗体水平，可以评估人群对某种病原体的暴露和免疫情况，为疫苗接种和流行病防控提供依据。
此外，血清和血浆还可以通过蛋白质组学和基因组学等技术用于生物医学研究，以揭示疾病发生机制和药物作用机理。
然而，血清和血浆在应用中也存在一些限制和注意事项。
首先，采集和处理血清和血浆的过程需要严格的操作技术和标准，以确保样品质量和可靠性。
血液样本的采集、运输、处理、保存
血液样本的采集、运输、处理、保存血液样本的采集、运输、处理与保存是临床医学和生物研究中至关重要的环节。
正确的操作流程不仅能够确保样本的质量，还能为后续的检测和分析提供可靠的数据支持。
以下是对血液样本的采集、运输、处理与保存的详细阐述。
一、血液样本的采集1. 采集前的准备（1）选择合适的采集时间：根据检测项目的要求，选择最佳采集时间，如空腹、餐后等。
（2）患者沟通：向患者说明采集目的、过程及注意事项，取得患者配合。
（3）采集工具准备：包括采血管、采血针、消毒棉签、止血带等。
2. 采集过程（1）选择合适的静脉：一般选择患者前臂的肘静脉，也可根据患者情况选择其他部位。
（2）消毒：在采血部位消毒，待消毒液干燥后进行采血。
（3）穿刺：操作者持采血针，以30°45°角度进针，见回血后降低角度，沿血管方向前进。
（4）采血：待采血量达到所需量后，拔出采血针，用消毒棉签压迫止血。
（5）止血：观察无活动性出血后，用消毒棉签覆盖穿刺部位，指导患者按压510分钟。
3. 采集后的处理（1）采血管标记：将采集到的血液样本放入采血管，并在采血管上标明患者姓名、采集时间等信息。
（2）采血管运送：将采血管放入专用的运送箱内，避免震荡和碰撞。
二、血液样本的运输1. 运输条件（1）温度：根据血液样本的类型和检测项目，选择适当的运输温度，如室温、4℃、20℃等。
（2）时间：尽快将血液样本送至实验室，最长不超过24小时。
2. 运输过程（1）包装：将采血管放入专用的运送箱内，确保采血管稳固，避免震荡和碰撞。
（2）运输：采用冷链物流或专业运送车辆，确保运输过程中的温度控制。
三、血液样本的处理1. 样本分类根据检测项目的要求，将血液样本分为血清、血浆、全血等。
2. 样本处理方法（1）血清：将采血管放置于室温下，待血液凝固后，以3000 r/min的速度离心10分钟，分离出血清。
（2）血浆：将采血管放入4℃冰箱，待血液凝固后，以3000 r/min的速度离心10分钟，分离出血浆。
非洲猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒(一步法)说明书和内包装标签(2022版)
非洲猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒（一步法）说明书和内包装标签（一）非洲猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒（一步法）说明书【兽药名称】通用名非洲猪瘟病毒荧光PCR检测试剂盒（一步法）商品名无英文名African Swine Fever Virus Real - time PCR Test Kit （One - step）汉语拼音Feizhouzhuwenbingdu Yingguang PCR Jiance Shijihe （Yibufa）【主要成分与含量】编号试剂盒组分装量用法ASFV01 -qf50缓冲液Bl5ml/瓶直接使用ASFV 02 - qf50缓冲液B25ml/瓶直接使用ASFV 03 - qf50PCR反应液900叱管直接使用ASFV 04 - qf50阳性对照1ml /管直接使用ASFV 05 - qf50阴性对照1ml /管直接使用【作用与用途】用于全血、血清、血浆、淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体和肌肉等样品中的非洲猪瘟病毒核酸的检测。
【用法与判定】1用法1.1样品处理1.1.1全血、血清、血浆直接进行下一步试验。
淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体、肌肉等组织样品取0.1〜0.2g,置研钵充分研磨，加入10倍体积约1〜2ml生理盐水，混匀；或置研磨管中，加入10倍体积约1〜2ml生理盐水及研磨珠，用组织研磨仪匀浆。
以5000转/分钟离心5分钟，留上清，即为组织匀浆液。
1.1.2取1.5ml离心管加入100川缓冲液B1,每管分别加入10可全血（EDTA抗凝剂）或20m组织匀浆液、血清、血浆样品、阳性对照和阴性对照混匀。
室温3分钟内涡旋混匀3〜5次。
1.1.3每管加入100W缓冲液B2,涡旋混匀，12000转/分钟离心1分钟，上清为待检核酸。
1.2扩增试剂准备取18WPCR反应液至PCR反应管；依次分别加入2囚阴性对照、样品和阳性对照待检核酸，盖紧管盖，每个反应管内反应体积为20N。
1.3将PCR反应管瞬时离心，置荧光PCR仪内，进行如下反应：1） 95℃预变性20秒；2）95c变性10秒，58c延伸20秒，共40个循环；设置58c收集FAM 荧光信号。
肌钙蛋白-I(cTNI)标准操作规程
肌钙蛋白-I（cTNI）标准操作规程1.【实验目的】为了保证肌钙蛋白测定结果的准确性，以及可靠性。
2.【职责】2.1 实验室工作人员均应熟知并严格遵守本SOP，室负责人监督落实。
2.2 本SOP的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：室负责人、科主任。
3.【样品类型及实验前准备】3.1 样本类型：不容血的血清、肝素抗凝的血浆或全血。
稳定性： 2－8℃可保存1天，如需存放大于6天时，请于－20℃或更低的温度下保存。
3.2 患者准备：实验前正常饮食，晨起空腹，安静状态下抽取静脉血，条件特殊情况下可非空腹抽血检测。
3.3 容器，添加剂类型：血清（包括在血清分离器管中采集的血清），血浆（EDTA三钾、肝素锂、肝素钠），使用玻璃管或塑料管分离样本。
3.4 仪器设备:中元生物免疫定量分析仪，低速离心机3.5 实验试剂：肌钙蛋白I、肌酸激酶同工酶、肌红蛋白联合检测试机卡、干燥剂、铝箔袋、4.【实验原理】本实验采用免疫层析及双抗体夹心原理快速定量检测人血清/血浆/全血样本中的cTNI、CK-MB、Myo的含量。
试机卡检测线（T）处包被有抗cTNI、抗CK-MB、抗Myo的单克隆抗体，质控线处包被多克隆抗体，测试时样本中的待测物于胶体金标记的单克隆抗体形成抗原抗体复合物，借助毛细作用移行至检测线（T）及质控线（C）形成有色条带。
配合免疫定量分析仪使用，通过采集检测线及质控线图像进行分析处理，计算出样本中相应项目的含量。
5.【操作步骤】5.1 撕开铝箔袋取出试剂卡，置于平整台面上，请立即使用，避免长时间暴露吸潮。
5.2 以血清/血浆为样本时，样本量为70 ul ,以全血为样本时，样本量为100ul 。
5.3 加样后立即置于免疫定量分析仪，选择“孵化检测”，仪器将自动在15 min时读取定量结果；或加样15 min时，选择“快速检测”读取定量结果。
6.【质控程序】同做样本一样，用质控品进行室内质控检测。
临床常用检验项目血标本采集的注意事项
临床常用检验项目血标本采集的注意事项1 临床检验标本采集与处理1.1 患者准备标本采集前患者的状态对检验结果会有一定的影响，因此，各种不同检测项目对标本采集前患者的状态有不同的要求。
如：血脂测定须患者禁食12~14 h后采血(否则出现脂血)；情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可卡因可使淀粉酶升高；吃香蕉能使尿液5-羟吲哚乙酸升高等。
所以，在患者要做某些化验检查之前，必须嘱咐患者做好相应的准备。
1.2 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养。
→②无添加剂管。
→③凝血管。
→④有添加剂管的顺序为：①枸橼酸盐管。
→②肝素管。
→③EDTA 管。
→④草酸盐/氟化钠管1.3 实验室接受标本后的处理应注意以下事项。
1.3.1 时间实验室接受标本后应尽快予以分类和离心。
①促凝标本可采血后5~15 min尽早处理。
②抗凝标本可采血后立即离心。
③非抗凝(无促凝)标本采血30~60 min后离心。
④抗凝全血标本(测Li、Zn、原孢菌素)可以不离心。
1.3.2 温度一般标本为室温(最好是22~25℃)放置；冷藏标本(对温度依赖性分析物)应保持2~8℃直到温度控制离心。
1.3.3 采血管放置应管口(盖管塞)向上，保持垂直立位放置。
1.3.4 采血管必须封口管塞移去后会使血pH改变，影响结果，如可使pH、Ca2+增高，使ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。
2 临床常用检验项目血标本采血的注意事项2.1 血常规检验标本一般用EDTA-2K(EDTA-K2-2H2O)1.5~2.2 mg/ml抗凝(EDTA抗凝管)采血。
①采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用力震荡。
②应按抗凝管刻度准确采血。
③采血后应尽快送检(需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2hWBC形态会发生改变)。
2.2 红细胞沉降率(血沉)测定标本静脉采集枸橼酸钠(109 mmol/L即32.06 g/L)抗凝血(枸橼酸钠抗凝管)采血。
(完整word版)1-全血处理为血清或血浆注意事项
全血处理为血清或血浆血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清（浆）从与血细胞接触的全血中分离出来。
一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。
全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。
（一）离心前阶段即指标本采集到离心处理前的一段时间。
1.血清：标本离心前一般应令其自行凝集，不可用木棍等剥离凝血块。
通常于室温（22～25℃）放置30～60 min 血标本可自发完全凝集；冷藏标本凝集缓慢；加促凝剂时凝集加快（标本采集后应轻轻颠倒混合5～10次，以确保促凝剂作用）。
2.血浆：需用血浆标本时，必须使用含抗凝剂的血液标本收集管，而且采血后必须立即轻轻颠倒采血管混合5～10次（以确保抗凝剂发挥作用），5～10 min 后即可分离出血浆。
3.冷藏标本：标本冷藏可抑制细胞代谢，稳定某些温度依赖性成分，但全血标本一般不能冷藏；血钾测定标本冷藏不得超过2h。
血液中儿茶酚胺、pH ／血气、氨、乳酸、丙酮酸、胃泌素、甲状腺激素等检测时需用制冷的标本。
标本需要冷藏（2～8℃）时，标本采取后应立即将标本置于冰屑或冰水混合物（不可用大冰块），并且必须保证标本与制冷物充分接触，保证制冷物达到标本的高度。
4.代谢抑制剂和防腐剂：某些添加剂加入血液标本中能抑制细胞代谢，可以防止血液标本贮存时分析物浓度的变化。
血液葡萄糖测定时，如在血液中加入氟化钠，在血细胞未分离的情况下，葡萄糖在22～25℃时可稳定24h，2～8℃时可以稳定48h；但在新生儿和儿童标本，由于红细胞压积高，用氟化钠难以控制细胞的糖酵解作用；甲醛－草酸钾抗凝保存剂不适合血糖测定；氟化钠－麝香草酚混合剂因能抑制酶活性，不适用于酶学测定。
5.标本采集现场：（1）标本采集后应尽快送往实验室，尤其当收集区温度超过22℃时此点更为重要；（2）血液标本采集后血管必须加塞、管口向上、垂直放置，以减少管中内容物振动，促进凝血完全，防止标本蒸发、污染和外溅等；（3）已收集的血液标本应温和地处理，要防止标本管振荡所造成的溶血；溶血可影响测定结果。
血浆分离注意事项
血浆分离注意事项
血浆分离是一种常见的医学操作，用于分离血液中的血浆成分。
以下是一些血浆分离的注意事项：
1. 设备和材料准备：确保使用的血浆分离设备经过适当的清洁和消毒。
使用一次性的采血针、采血器和输血器等，以避免交叉感染。
2. 采血和分离过程：在采血过程中，严格遵守无菌操作原则，避免污染采血部位。
确保采血容器密封良好，以防止血浆泄漏或受到污染。
3. 抗凝剂的使用：根据需要，选择适当的抗凝剂，并按照规定的比例添加到采血容器中。
抗凝剂的使用可以防止血液凝固，但要注意正确的使用剂量和混合均匀。
4. 分离速度和时间：根据设备的操作说明和血浆分离的要求，控制分离速度和分离时间。
过快或过慢的分离速度可能会影响血浆的质量。
5. 血浆的保存和处理：分离出的血浆应尽快保存到适当的温度下，并遵循相关的保存要求。
血浆可以在冷藏条件下保存一段时间，但要注意保存温度和时间限制。
6. 安全和感染控制：在血浆分离过程中，要严格遵守感染控制措施，如正确洗手、戴手套和口罩等。
对于使用过的采血设备和废弃物，应按照规定进行妥善处理。
7. 患者监测：在血浆分离过程中，要密切监测患者的生命体征和身体状况。
如出现异常情况，应及时停止操作并采取适当的措施。
8. 专业人员操作：血浆分离应由经过培训和授权的专业人员进行操作，以确保操作的安全性和正确性。
需要注意的是，具体的血浆分离注意事项可能会因不同的设备、操作目的和患者情况而有所差异。
在进行血浆分离操作之前，应详细阅读设备操作手册和相关的操作指南，并遵循医疗机构的规定和流程。
临床检验标本保存规范
临床检验标本保存规范一、血液标本的保存血液标本是临床检验中最常见的类型之一。
根据检测项目的不同，血液标本又可分为全血、血清和血浆。
1、全血标本全血标本常用于血常规检查。
采集后的全血标本应尽快送检，一般在室温下保存不超过 4 小时。
如果不能及时检测，可将其置于 4℃冰箱中保存，但保存时间也不应超过 24 小时。
需要注意的是，低温保存可能会影响某些细胞的形态和功能，因此在保存和运输过程中要避免剧烈震动。
2、血清标本血清标本常用于生化检验，如肝功能、肾功能、血糖、血脂等检测。
血液采集后，待其自然凝固（一般需要 30 分钟至 1 小时），然后通过离心分离出血清。
分离后的血清应尽快检测，若不能立即检测，可在 4℃冰箱中保存 3 7 天。
如需长期保存，应置于－20℃以下的冰箱中，可保存数月至数年，但应避免反复冻融，以免影响检测结果。
3、血浆标本血浆标本常用于凝血功能检测和部分激素检测。
采集血液时需加入抗凝剂，如肝素、枸橼酸钠等。
血浆标本在采集后应立即颠倒混匀，避免凝血。
在室温下，血浆标本应在 4 小时内完成检测；在 4℃冰箱中可保存 24 小时。
二、尿液标本的保存尿液标本的保存方法取决于检测目的。
1、常规尿液检查用于尿常规检查的尿液标本，最好采集新鲜尿液，并在 2 小时内送检。
如果不能及时送检，可在 4℃冰箱中保存，但保存时间不应超过 8 小时。
2、 24 小时尿液标本用于尿蛋白定量、尿肌酐等检测的 24 小时尿液标本，采集后应加入适量的防腐剂（如甲苯、浓盐酸等），以防止尿液变质。
在保存过程中，应将尿液置于阴凉处，温度控制在 2 8℃。
三、粪便标本的保存粪便标本主要用于寄生虫卵、细菌培养等检查。
1、一般检查用于一般性状和显微镜检查的粪便标本，应采集新鲜粪便，在 1 小时内送检。
2、细菌培养用于细菌培养的粪便标本，采集后应立即送检。
如果不能立即送检，可将其置于 CaryBlair 运送培养基中，在 4℃冰箱中保存不超过 24 小时。
样本前处理规范(人)
样本前处理规范(人)采集好的样本应尽快在采集处或者转移至处理中心进行前期处理。
不同类型、不同研究目的的样本前处理的方法不同，处理人员应严格按照标准操作规程进行。
1.血液样本血液样本采集完毕，需要尽快对样本进行前期处理。
样本处理前的冷藏最好不超过4h，以尽量降低凝血反应的影响。
不能在采集地点立刻进行前期处理的样本也应低温冷藏尽快转移至处理中心处理。
采集的全血经过分离后成为血清、血浆和血沉棕黄层等血液成份进行样本储存或继续进行提取DNA、蛋白质等样本制备。
1.1全血1.1.1采集的血液样本如不进行成分的分离，直接用于全血的储存，也需要稍作前期处理。
抗凝的血液应被快速地冷冻上。
如果需要完整的血细胞，则需要使用二甲基亚砜(DMSO)以确保在冷冻时细胞是存活的。
1.1.2血液按要求分装到统一规格的无菌冻存管中，加入DMSO混合均匀后将冻存管放入冷冻冰箱中。
在至少4小时候后，才能转移到-80℃或更低温条件下储存。
1.2血浆、血沉棕黄层和红细胞1.2.1用途用EDTA管和ACD管采集的血液，经离心后可以分为三层：上层的血浆，中层的血沉棕黄层，下层的红细胞。
血浆可以用于生物鉴定，DNA提取，蛋白质组学分析和生物标志物发现等研究。
血沉棕黄层是一层很薄的、灰白色的白细胞和血小板层，可以用于DNA的提取和细胞系的产生。
1.2.2处理方法1)4℃下离心真空采血管(大约5ml)，使血浆从血细胞中分离；2)用70%的酒精对采血管顶端和管盖进行清理消毒后，取出上层血浆(约3ml)，分至5-6个标记好的冻存管中，每管500ul(每管分装的体积可视具体情况而定)；3)取出中层的血沉棕黄层(约200ul)，平均分至2个标记好的冻存管中；4)将下层红细胞转移至标记好的冻存管中；5)将上述冻存管放入液氮中快速冷冻，对于白细胞层最好使用程序降温法进行冷冻；6)冷冻好的样本储存在-80℃或液氮环境中。
1.3血清、血凝块采集到没有抗凝血剂离心管中的血液室温下会在30分钟内自动分成两相，固相含有纤维蛋白和细胞，液相则含有血清。
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全血处理为血清或血浆
血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清（浆）从与血细胞接触的全血中分离出来。
一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。
全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。
（一）离心前阶段
即指标本采集到离心处理前的一段时间。
1.血清：标本离心前一般应令其自行凝集，不可用木棍等剥离凝血块。
通常于室温（22～25℃）放置30～60 min 血标本可自发完全凝集；冷藏标本凝集缓慢；加促凝剂时凝集加快（标本采集后应轻轻颠倒混合5～10次，以确保促凝剂作用）。
2.血浆：需用血浆标本时，必须使用含抗凝剂的血液标本收集管，而且采血后必须立即轻轻颠倒采血管混合5～10次（以确保抗凝剂发挥作用），5～10 min 后即可分离出血浆。
3.冷藏标本：标本冷藏可抑制细胞代谢，稳定某些温度依赖性成分，但全血标本一般不能冷藏；血钾测定标本冷藏不得超过2h。
血液中儿茶酚胺、pH ／血气、氨、乳酸、丙酮酸、胃泌素、甲状腺激素等检测时需用制冷的标本。
标本需要冷藏（2～8℃）时，标本采取后应立即将标本置于冰屑或冰水混合物（不可用大冰块），并且必须保证标本与制冷物充分接触，保证制冷物达到标本的高度。
4.代谢抑制剂和防腐剂：某些添加剂加入血液标本中能抑制细胞代谢，可以防止血液标本贮存时分析物浓度的变化。
血液葡萄糖测定时，如在血液中加入氟化钠，在血细胞未分离的情况下，葡萄糖在22～25℃时可稳定24h，2～8℃时可以稳定48h；但在新生儿和儿童标本，由于红细胞压积高，用氟化钠难以控制细胞的糖酵解作用；甲醛－草酸钾抗凝保存剂不适合血糖测定；氟化钠－麝香草酚混合剂因能抑制酶活性，不适用于酶学测定。
5.标本采集现场：（1）标本采集后应尽快送往实验室，尤其当收集区温度超过22℃时此点更为重要；（2）血液标本采集后血管必须加塞、管口向上、垂直放置，以减少管中内容物振动，促进凝血完全，防止标本蒸发、污染和外溅等；（3）已收集的血液标本应温和地处理，要防止标本管振荡所造成的溶血；溶血可影响测定结果。
有严重影响（使结果升高）的项目有：乳酸脱氢酶、血清门冬氨酸氨基转移酶、血清钾和血红蛋白；引起值得注意的影响的项目有：血清铁（↑）、血清丙氨酸氨基转移酶（↑）和血清甲状腺素（↓）；轻度受影响（增加）的有：总蛋白、白蛋白、血清磷、血清镁、血清钙和酸性磷酸酶；（4）应避免对光线敏感的分析物暴露在人造光或太阳光（紫外线）照射下。
如VA 、VB6 、β－胡萝卜素、卟啉、胆红素等测定时，标本管应该用铝箔或类似物质包裹保护起来。
6.标本运送：全血标本应尽快从采血现场运送至实验室，如果运送距离较远，特别是因分析物稳定性有影响，必要时可于采血现场分离出血清或血浆后，再送往实验室；标本运送过程中要注意标本的包装、温度要求、处理方法等，要确保分析成分的稳定性；标本管在运送过程中要保持管口封闭、向上垂直放置。
7. 实验室接受标本及离心标本准备：（1）要有标本收取记录（应认真核对检验中清单，对有关情况要认真记录，标本接收及处理应签字登记）；（2）对接受的标本要予以分类准备离心；（3）实验室接受标本后应仍保持标本管于密闭封口、管口向上，垂直位放置。
管塞移去后血中CO2丢失，会造成pH增加，离子钙和酸性磷酸酶减少，尤其pH 变化会影响某些检测结果的准确性；（4）标本凝集时间要充分；加抗凝剂的血液标本可以立即离心；加促凝剂的标本可于采血后5～15 min 尽早离心；抗凝的全血标本（锌、锂、原卟啉等测定时）可以不离心；（5）冷藏（2～8℃）标本应保持这个温度直到准备离心。
推荐用温度控制离心机；（6）离心标本前不主张用小木棒或类似器材去剥离附着于试管壁和管塞上的凝块，人为剥离会诱导溶血。
如果必须露出试管壁或取下管塞时，一定要十分注意，动作一定要轻柔。
（二）离心阶段
即指标本处于离心机里的一段时间。
1. 离心时间和相对离心力（RCF）：临床化学分析血液标本离心时，RCF（1000～1200）×ｇ，离心时间为5～10 min.
2. 温度控制离心：离心时产热不利于分析物稳定，临床化学分析血液标本离心时必须采用温度控制离心机。
一些温度依赖性分析物（如促肾上腺皮质激素、环腺苷酸、儿茶酚胺等）应在4℃分离；无特殊温度要求的分析物，离心温度应设定在20℃～22℃；温度低于15℃可以人为地使血钾测定值增高；冷藏运送的标本必须在要求的温度下离心。
3. 关于再离心：标本离心最好一次完成，若需再次离心，应距上次离心相隔时间很短；对于含有分离物质的血标本绝不可以再离心。
（三）离心后阶段
指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出一定量之前的一段时间。
1. 血清或血浆与接触的血细胞和凝块的分离应在采血后尽快（2h内）完成。
2. 分离的血清或血浆的贮存：实验室的室温和血清或血浆的贮存温度、时间，是分析物稳定性和测定结果准确性的重要参数。
（1）于22℃～25℃血清或血浆的保存不超过8h；医.学教育网整理（2）实验于8h内不能完成时，血清或血浆应置2℃～8℃保存；（3）48h
内不能完成的实验项目，或分离的血清或血浆需贮存48h以上时，应于-20℃保存；（4）标本不可反复冻融（只能冻融一次），且不可贮存于无霜冰箱（可造成样品温度变化）；（5）离心后分离凝胶（凝胶屏障）上面的血清可保存2～5天（亦有报道4℃可贮存24h），但必须保证凝胶的完整性；但应用非凝胶分离物质时，离心后必须立即将血清或血浆移出。
（6）血清或血浆必须保存于密闭的试管中。