血球计数板的使用
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血球计数板的使用
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1
①血球计数板的原理和构造 ②方法与步骤
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①血球计数板的原理和构造
Ⅰ构造 血球计数板是一种专门用于计算较大单细
胞微生物的一种仪器,由一块比普通载玻 片厚的特制玻片制成的。玻片中有四条下 凹的槽,构成三个平台。
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4
中间的平台较宽,其中间又被一短横槽隔 为两半,每半边上面刻有一个方格网。方 格网上刻有9个大方格,其中只有中间的一 个大方格为计数室。这一大方格的长和宽 各为1mm,深度为0.1mm,其容积为 0.1mm3,即1mm×1mm×0.1mm方格的计数 板。
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29
如果规格为25格×16格的计数板统计计数池中央 大方格内四角及中央中格内(即80个小方格)的单 胞藻数,并记录。
计数时,小心移动载物台,从上到下,由左及右 又由右及左依次计数各小格内的细胞数。一般可 采取“数上线不数下线,数左线不数右线”的原则 处理。凡压方格的上线和左线的细胞,统一算此 方格内的细胞,而压方格的下线和右线的细胞, 统一不算此方格内的细胞。
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31
如果一个小方格内单胞藻过多,难以数清,应当 对培养液进行稀释以便于单胞藻的计数。
具体方法是:摇匀试管,取1mL单胞藻培养液, 加入成倍的无菌水(消毒海水)稀释,稀释n倍后, 再用血球计数板计数,所得数值乘以稀释倍数。 以每小方格内含有4—5个单胞藻细胞为宜。特别 是在培养后期的样液需要稀释后计数。
12
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算,
对每个样品计数三次,再取其平均值。
N1=(n1-1+n1-2)/2 N2=(n2-1+n2-2)/2 N3=(n3-1+n3-2)/2
N=(N1+N2+N3) /3
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13
N1=(n1-1+n1-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
N小格平均每小格内的细胞数=N/(5×16) 设每毫升中有x个单胞藻
x个 1cm3
N小格×16×25个 (1mm × 1mm × 0.1mm÷1000)cm3
x个 = N/(5×16) ×16×25个
1cm3
(1mm × 1mm × 0.1mm÷1000)cm3
x = N/(5×16) ×16×25个× 1cm3 × 1000÷ (1mm × 1mm × 0.1mm)
=50000 N
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18
②用血球计数板对藻细胞进行计数 的方法与步骤:
ⅰ检查计数室 先用显微镜对计数板的计数室进行镜检是否干净。
若有污物,则需用清水清洗,吹干,用擦镜纸擦 拭干净。
盖玻片使用前浸在75%的酒精溶液中,使用时用 眼科镊取出,放在滤纸上吸水,用擦镜纸擦拭干 净。
将盖有盖玻片的计数板放在显微镜的载物台上, 调焦,用低倍镜找到计数区检查是否干净。
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8
把中央大方格的中方格再分 成小方格的分割线并不只 局限于中央大方格内,而 是一直延伸到正方形凹槽 的边缘,所以在其延长线 上的4个大方格中分割线 显得密集。
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10
25×16型的计数板一般 计数四个角和中央的 五个中方格(5×16=80 个小方格)的细胞数。
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11
Ⅱ血球计数板的原理
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21
将计数板连同盖玻片一起取下,用细口胶 头滴管吸取稀释后的摇匀的单胞藻悬液, 迅速将吸管尖靠在计数池上盖玻片的边缘, 略挤胶头滴管让培养液利用液体的表面张 力,自行渗入。
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27
样品流入的量以充满盖玻片下面的空间为 宜,盖玻片下面不能有气泡存在,否则会 造成计数不准。多余的藻液会流入H形的凹 沟中。
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32
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算,将计数板及盖玻片用流水 冲洗,吹干,擦净,重复上述步骤,对每 个样品计数三次,再取其平均值。
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33
N1=(n1-1+n1-2)/2
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19
从试管中吸出培养液Baidu Nhomakorabea行计数之前,要将 试管轻轻震荡几下,这样使单胞藻分布均 匀,防止单胞藻凝聚沉淀,提高计数的代 表性和准确性,求得的培养液中的单胞藻 数量误差小。
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20
注意,当藻液浓度高时,为了便于计数,可 将藻液用消毒海水稀释后进行计数。
在计数有鞭毛或有运动性的藻类时,可先吸 取定量的藻液,滴加鲁哥氏碘液(1000毫升 藻类用15毫升的鲁哥氏液固定)进行固定, 然后添加消毒海水稀释后计数。
n1-1
n1-2
N1=(n1-1+n1-2)/2
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14
N2=(n2-1+n2-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
n2-1
n2-2
N2=(n2-1+n2-2)/2
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15
N3=(n3-1+n3-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
n3-1
n3-2
N3=(n3-1+n3-2)/2
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16
将计数板及盖玻片用流水冲洗,擦干,重 复上述步骤,对每个样品可计数三次,再 取其平均值。
N1=(n1-1+n1-2)/2 N2=(n2-1+n2-2)/2 N3=(n3-1+n3-2)/2
N=(N1+N2+N3) /3
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17
将同一样品的计数结果,取平均值。代入下式, 求算单胞藻的密度:
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28
样品添加到计数池后,静置5min。使藻细胞沉降, 否则,细胞呈悬浮状态,不处于同一平面上,给 计数造成不便。待单胞藻全部沉降到计数室底部 后,将计数板放在载物台的中央,先在低倍镜下 找到计数室所在位置后,再转换高倍镜观察,仔 细调焦,同时调节光栅,必要时调节光源和反光 镜角度,直至细胞和纵横格线都清楚。计数并记 录。
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5
1mm×1mm×0.1mm=0.1mm3
20mm×20mm×0.25mm=100mm3
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6
25×16型的计数板
计数池中央的大格又 被双线划分成25个中 格,其中的每个中格 又被单线划分成16个 小格,中央大方格由 25×16=400个小方格 组成。
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7
在血球计数板上,刻 有一些符号和数字(见 图一),其含义是: XB-K-25为计数板的型 号和规格,表示此计 数板分25个中格; 0.10mm为盖上盖玻片 后计数室的高; 1/400mm2表示计数室 面积是1mm2,分400 个小格,每小格面积 是1/400 mm2。
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①血球计数板的原理和构造 ②方法与步骤
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①血球计数板的原理和构造
Ⅰ构造 血球计数板是一种专门用于计算较大单细
胞微生物的一种仪器,由一块比普通载玻 片厚的特制玻片制成的。玻片中有四条下 凹的槽,构成三个平台。
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中间的平台较宽,其中间又被一短横槽隔 为两半,每半边上面刻有一个方格网。方 格网上刻有9个大方格,其中只有中间的一 个大方格为计数室。这一大方格的长和宽 各为1mm,深度为0.1mm,其容积为 0.1mm3,即1mm×1mm×0.1mm方格的计数 板。
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如果规格为25格×16格的计数板统计计数池中央 大方格内四角及中央中格内(即80个小方格)的单 胞藻数,并记录。
计数时,小心移动载物台,从上到下,由左及右 又由右及左依次计数各小格内的细胞数。一般可 采取“数上线不数下线,数左线不数右线”的原则 处理。凡压方格的上线和左线的细胞,统一算此 方格内的细胞,而压方格的下线和右线的细胞, 统一不算此方格内的细胞。
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如果一个小方格内单胞藻过多,难以数清,应当 对培养液进行稀释以便于单胞藻的计数。
具体方法是:摇匀试管,取1mL单胞藻培养液, 加入成倍的无菌水(消毒海水)稀释,稀释n倍后, 再用血球计数板计数,所得数值乘以稀释倍数。 以每小方格内含有4—5个单胞藻细胞为宜。特别 是在培养后期的样液需要稀释后计数。
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计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算,
对每个样品计数三次,再取其平均值。
N1=(n1-1+n1-2)/2 N2=(n2-1+n2-2)/2 N3=(n3-1+n3-2)/2
N=(N1+N2+N3) /3
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N1=(n1-1+n1-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
N小格平均每小格内的细胞数=N/(5×16) 设每毫升中有x个单胞藻
x个 1cm3
N小格×16×25个 (1mm × 1mm × 0.1mm÷1000)cm3
x个 = N/(5×16) ×16×25个
1cm3
(1mm × 1mm × 0.1mm÷1000)cm3
x = N/(5×16) ×16×25个× 1cm3 × 1000÷ (1mm × 1mm × 0.1mm)
=50000 N
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②用血球计数板对藻细胞进行计数 的方法与步骤:
ⅰ检查计数室 先用显微镜对计数板的计数室进行镜检是否干净。
若有污物,则需用清水清洗,吹干,用擦镜纸擦 拭干净。
盖玻片使用前浸在75%的酒精溶液中,使用时用 眼科镊取出,放在滤纸上吸水,用擦镜纸擦拭干 净。
将盖有盖玻片的计数板放在显微镜的载物台上, 调焦,用低倍镜找到计数区检查是否干净。
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把中央大方格的中方格再分 成小方格的分割线并不只 局限于中央大方格内,而 是一直延伸到正方形凹槽 的边缘,所以在其延长线 上的4个大方格中分割线 显得密集。
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25×16型的计数板一般 计数四个角和中央的 五个中方格(5×16=80 个小方格)的细胞数。
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Ⅱ血球计数板的原理
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将计数板连同盖玻片一起取下,用细口胶 头滴管吸取稀释后的摇匀的单胞藻悬液, 迅速将吸管尖靠在计数池上盖玻片的边缘, 略挤胶头滴管让培养液利用液体的表面张 力,自行渗入。
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样品流入的量以充满盖玻片下面的空间为 宜,盖玻片下面不能有气泡存在,否则会 造成计数不准。多余的藻液会流入H形的凹 沟中。
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计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算,将计数板及盖玻片用流水 冲洗,吹干,擦净,重复上述步骤,对每 个样品计数三次,再取其平均值。
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N1=(n1-1+n1-2)/2
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从试管中吸出培养液Baidu Nhomakorabea行计数之前,要将 试管轻轻震荡几下,这样使单胞藻分布均 匀,防止单胞藻凝聚沉淀,提高计数的代 表性和准确性,求得的培养液中的单胞藻 数量误差小。
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注意,当藻液浓度高时,为了便于计数,可 将藻液用消毒海水稀释后进行计数。
在计数有鞭毛或有运动性的藻类时,可先吸 取定量的藻液,滴加鲁哥氏碘液(1000毫升 藻类用15毫升的鲁哥氏液固定)进行固定, 然后添加消毒海水稀释后计数。
n1-1
n1-2
N1=(n1-1+n1-2)/2
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N2=(n2-1+n2-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
n2-1
n2-2
N2=(n2-1+n2-2)/2
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N3=(n3-1+n3-2)/2
计数一个样品要从两个计数室中计得的平 均数值来计算。
n3-1
n3-2
N3=(n3-1+n3-2)/2
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将计数板及盖玻片用流水冲洗,擦干,重 复上述步骤,对每个样品可计数三次,再 取其平均值。
N1=(n1-1+n1-2)/2 N2=(n2-1+n2-2)/2 N3=(n3-1+n3-2)/2
N=(N1+N2+N3) /3
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将同一样品的计数结果,取平均值。代入下式, 求算单胞藻的密度:
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样品添加到计数池后,静置5min。使藻细胞沉降, 否则,细胞呈悬浮状态,不处于同一平面上,给 计数造成不便。待单胞藻全部沉降到计数室底部 后,将计数板放在载物台的中央,先在低倍镜下 找到计数室所在位置后,再转换高倍镜观察,仔 细调焦,同时调节光栅,必要时调节光源和反光 镜角度,直至细胞和纵横格线都清楚。计数并记 录。
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1mm×1mm×0.1mm=0.1mm3
20mm×20mm×0.25mm=100mm3
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25×16型的计数板
计数池中央的大格又 被双线划分成25个中 格,其中的每个中格 又被单线划分成16个 小格,中央大方格由 25×16=400个小方格 组成。
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在血球计数板上,刻 有一些符号和数字(见 图一),其含义是: XB-K-25为计数板的型 号和规格,表示此计 数板分25个中格; 0.10mm为盖上盖玻片 后计数室的高; 1/400mm2表示计数室 面积是1mm2,分400 个小格,每小格面积 是1/400 mm2。