大肠杆菌检验记录
大肠杆菌检测实验报告
大肠杆菌检测实验报告大肠杆菌检测实验报告引言：大肠杆菌是一种常见的细菌，存在于人体和动物的肠道中。
尽管大肠杆菌在正常情况下对人体无害，但某些菌株可能会引起严重的食物中毒。
因此，对食品和饮用水中的大肠杆菌进行检测至关重要。
本实验旨在通过不同的检测方法，了解大肠杆菌的存在和浓度。
材料与方法：1. 食品和饮用水样本：我们选择了市场上常见的食品和饮用水样本，包括蔬菜、水果、肉类和瓶装水。
2. 大肠杆菌培养基：我们使用了含有大肠杆菌特异性营养物质的培养基。
3. 培养皿和培养试管：用于培养大肠杆菌。
4. 显微镜和染色剂：用于观察和鉴定大肠杆菌。
实验步骤：1. 样本准备：我们将食品和饮用水样本分别取样，并放入培养皿或培养试管中。
2. 培养：将样本放入预先准备好的大肠杆菌培养基中，然后将培养皿或培养试管放入恒温培养箱中，以促进大肠杆菌的生长。
3. 观察：在培养一段时间后，我们使用显微镜观察培养皿或培养试管中的样本。
为了更好地观察大肠杆菌，我们使用染色剂对样本进行染色。
4. 记录：记录观察到的大肠杆菌数量和形态特征。
结果与讨论：通过对不同食品和饮用水样本进行大肠杆菌检测，我们观察到了以下结果：1. 蔬菜和水果样本中的大肠杆菌数量较高。
这可能是因为蔬菜和水果在生长和加工过程中接触到了土壤或污染的水源。
2. 肉类样本中的大肠杆菌数量较低。
这可能是因为肉类在加工过程中经过了高温处理，杀死了大部分的细菌。
3. 瓶装水样本中没有观察到大肠杆菌。
这是因为瓶装水在生产和包装过程中经过了严格的卫生控制。
通过本实验，我们可以得出结论：大肠杆菌在食品和饮用水中的存在是普遍的，但其浓度和数量因样本类型而异。
这提醒我们在选择和处理食品和饮用水时要格外注意卫生和安全。
结论：本实验通过采用大肠杆菌检测方法，对不同食品和饮用水样本进行了分析。
结果表明，大肠杆菌在食品和饮用水中存在普遍，但其浓度和数量因样本类型而异。
这对我们提醒了食品安全和卫生的重要性。
【报告】大肠杆菌培养实验报告
【关键字】报告大肠杆菌培养实验报告篇一：大肠杆菌检测实验报告国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数实验目的实验原理：国标法操作的原理实验器材：培养箱，10只移液管，1只250ml锥形瓶，5只大试管，试管架，4个平皿，500ml大烧杯1个，电子天平，纱布，脱脂棉，灭菌锅，PH计或PH试纸，100ml量筒，橡皮手套，超净台实验药品：磷酸盐缓冲液，蒸馏水，LB培养基，琼脂，5%NaOH，5%HCl实验步骤：一：10只移液管，1只250ml锥形瓶，5只大试管，4个平皿，500ml大烧杯1个，100ml 量筒进行洗涤，然后一起放入高压蒸汽灭菌锅中在121摄氏度条件下灭菌20min。
灭完菌后烘干，完成后放入超净台中。
用酒精擦拭超净台，紫外消毒30min二：1：用电子天平称取成品LB 3.1241g和琼脂1.8756g放入250ml的洁净锥形瓶中。
2：用量筒量取125ml的蒸馏水加入该锥形瓶中，制成培养基。
3：用棉花堵住该锥形瓶的瓶口，用牛皮纸包住瓶口，用橡皮筋扎牢，再将培养基放入灭菌锅中在121摄氏度之下灭菌20min。
4：灭完菌后放入超净台中备用。
三：1：取1只无菌250ml锥形瓶，用量筒向其中加入49ml PBS2：将1ml样品加入到该锥形瓶中，摇匀制成1:50的细菌溶液。
3：取4只试管，编号1—44：用无菌移液管分别向4只试管中加入9ml的PBS5：用1ml无菌移液管从样品中移取1ml菌液加入到1中.震荡试管使菌液均匀。
6：用1ml无菌移液管从1号试管中移取1ml的细菌溶液加入2号试管中，摇匀7：用另一只1ml无菌移液管从2号试管中移取１ｍｌ细菌溶液，加入3中，摇匀．．．．．．以此类推直至4只试管中均加入了细菌溶液。
9：取4只平皿，编号1—410：分别用4只无菌移液管从这4只试管中移取１ｍｌ的菌液置于4只平皿中，加入４５—５０摄氏度温度下的培养基，约１５ｍｍ厚度。
缓慢旋转平皿使菌液与培养基混合均匀；待培养基冷凝后倒置。
粪大肠菌群检验记录
取9ml生理盐水于标签为1:100的50ml锥形瓶中。
（2）LST溶液的配制：取LST7.1g加水100ml（双料），溶解至透明，
倒入10ml于3只标有1g的并放有聚气管的试管中;剩余溶液加一倍水配成单料倒入标有0.01g，0.001ml的6只试管中，每只10ml,并放有聚气管(试管要求180×18mm)。
粪大肠菌群检查实验记录
品名
批号
物料编码
规格
来源
取样日期
代表量
检验日期
报告日期
检验编号
检验依据
1、粪大肠菌群检验记录
仪器设备名称：电热恒温培养箱仪器设备型号：DHP-500
生理盐水的配制：8.5g氯化钠加1000ml蒸馏水溶解待用（121℃灭菌30min）。
（1）恒温培养箱：36℃±1℃。
（2）冰箱：2℃～5℃。
（5）初发酵试验：每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐蛋白胨（LST）肉汤。
取1:10的稀释样1ml于标有0.1g的3只试管中，
取1:100的稀释样1ml于标有0.01g的3只试管中，
取1:1000的稀释样1ml于标有0.001g的3只试管中，
（6）BGLB溶液复发酵试验：配制BGLB溶液，称取BGLB 4g溶液100ml水中，均分倒入对应产气标号的标有标示并放有聚气管的试管中，放入灭菌锅灭菌15min。用接种针粘一环产气管液于标有对应的以灭菌的BGLB溶液的试管中，于36℃的培养箱中培养48h
稀释度
接种量
产气情况
BGLB肉汤培养后产气情况
阴性对照
原液
0.1g（ml）
0.01g（ml）
0.001g（ml）
大肠菌群检验原始记录
二、大肠菌群（MPN/100ml）
蛋白发酵管（10-i）
10-1
10-2
10-3
试管中加入LST肉汤10ml
每管中接入样
品量1ml
产气管数
发酵结果
标准要求
MPN/100g
检验结果MPN/100g
检验起始时间
年月日至年月日
主检：校核：
大肠菌群检验检验原始记录
共页第页
样品名称
放入时培养箱温度
℃
设备名称
取出时培养箱温度
℃
检验依据品放入盛有225ml灭菌的生理盐水中，制成1：10的样品匀液，用1ml无菌吸管吸取1：10的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：100的样品均液，用1ml无菌吸管吸取1：100的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：1000的样品均液。
二、初发酵试验：大肠菌群每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤），36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内产气情况。如未产气，培养至48h±2h。
三、复发酵试验：（大肠菌群的测定）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（GBLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气怦况。
微生物检验原始记录
名称 稀释度 样品1 样品2 样品3 样品4 样品5 产气情况
菌落总数
大表人：
微生物检验原始记录
样品名称 样品规格 检验依据 检测仪器名称 检测仪器型号 检验记录和结果： 一、样品的制备:将检样 （ml）于 （ml）灭菌生理盐水中， 充分摇匀制成0.1的稀释液，再做10倍的递增稀释：制成 的稀释样品。 二：实验步骤： 1.菌落总数：根据样品污染情况，选择 个稀释度，分别吸取1ml于 2个无菌平皿中，倾注46℃±1℃左右平板计数琼脂，同时做空白对照，于 36℃±1℃,48h±2h培养计数。 2、大肠杆菌：根据样品污染情况，选择 个稀释度，分别吸取1ml 于2个无菌平皿中，倾注46℃±1℃左右结晶紫中性红胆盐乳糖琼脂，同时 做空白对照，于36℃±1℃,24h±2h培养计数。每个稀释度接种3管于36℃ ±1℃,24h±2h培养。观察产气情况。 生产日期 检测日期
实验七大肠杆菌检测
1
1
750
140
2300
3
1
2
1200
300
3800
3
1
3
1600
3
2
0
930
150
3800
3
2
1
1500
300
4400
3
2
2
2100
350
4700
3
2
3
2900
3
3
0
2400
360
13000
3
3
1
4600
710
24000
3
3
2
11000
1500
48000
3
3
3
≥24000
大肠菌群测定
产酸判断：紫色培养液变成黄色
细菌学检验程序
细菌总数
水样稀释或不稀释
倾注平板培养 37 ℃ 24小时
样品
大肠菌群
水样稀释或不稀释
第一步------ 初步发酵试验 （乳糖发酵）
37℃ 24小时
菌落计数 （取平均数报告）
第二步------ 平板分离培养 （转种鉴别培养基） 37℃ 24小时 革兰染色镜检
第三步------- 乳糖复发酵试验
①以无菌操作将检样1mL放于含有9mL灭菌生理盐水 或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内，经充分振摇或研磨做 成1：10的均匀稀释液。
②用1ml灭菌吸管吸取1：10稀释液1mL，注入含有 9mL生理盐水或其他稀释液的试管内，振摇试管混匀， 做成1：100的稀释液。
③另取1ml灭菌吸管，按上述操作依次作10倍递增稀释 液。
2
1
大肠菌群检验原始记录表
从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管内，36℃±1℃培养24-48h，观察产气情况
。凡是BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
操作依据
GB4789.3-2010
稀释倍数
a-10倍
b-100倍
c灭菌生理盐水对照
/6.1
VRBA平板
操作依据 GB4789.3-2010
检验日期：
2016 年 月 日
采样依据 GB4789.12010/4.1、 4.2.1二级 采样方案 (n、c、m值 5、0、0)
10的均匀稀释液，编号a 灭菌生理盐水，编号c做
、b2、c1。向上述5个平 ，依次置于36℃±1℃培
养24-48h，观察产气情况
操作依据 B4789.3-2010
/6.1 操作依据 B4789.3-2010
/8.2 操作依据 B4789.3-2010
/8.3
实试验及观察结果 依据
B4789.3-2010 /8.4
肠菌群数的计算 据GB4789.3-2010
/8.5 数据修约依据 789.来自-2010/7.2报告依据 B4789.3-2010
/8.5
培养基）
年月日
。用灭菌吸管取1mla，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀做成1:100的均匀稀释液，编号b。取1ml灭菌生理盐水，编号c做
为空白对照。
从a、b、c液中，分别前后2次，各吸取1ml移液到2个灭菌平皿中，平皿编号分别为a1、a2、b1、b2、c1。向上述5个平
皿中分别注入凉至46℃的VRBA15ml，混匀待VRBA凝固后，再加3mlVRBA覆盖平板表层，翻转平板后，依次置于36℃±1℃培 养箱中，培养20h。
检验原始记录菌落总数及大肠菌群表格
检验原始记录
共页第页
样品名称样品编号
检验环境温度℃相对湿度% 菌落总数的测定（依据GB4789.2－2010检验）
主用仪器：培养箱
检验项目检测结果
样品稀释度10 10 10
菌落数，个
两稀释液之比
空白对照
菌落总数cfu/g
培养温度36℃±1℃培养时间：48 h±2h
主检校核日期
大肠菌群的测定（依据GB4789.3－2010检验）
主用仪器：培养箱
接
种量0.1g×3
初发酵试验LST肉汤管
复发酵试验BGLB肉汤管0.01g×3
初发酵试验LST肉汤管
复发酵试验BGLB肉汤管
0.001g×3
初发酵试验LST肉汤管
复发酵试验BGLB肉汤管
查大肠菌群最可能数（MPN）检索表[MPN/ ]:：
培养温度36℃±1℃培养时间：48 h±2h
备注：‘＋’表示阳性；‘－’表示阴性。
主检校核日期。
细菌,大肠杆菌的检验记录
10-2
10-3
10-3
10-4
10-4
10-5
10-5
空白
结果
结果报告
菌落总数个/Ml(g)
报告
备注
审核：检验者：年月日
嘉峪关市龙虎健饮料厂检验原始表
微生物检验原始记录
样品名称：样品编号：日期：检验方法：GB/T4789.2 GB/T4789.3
水分
空铝锅编号
空铝锅恒重m1,g
样品质量m,g
烘后样品加锅重m2,g
水分%=100（m1+m-m2）/m
平均值%
细菌总数
大肠菌群
36℃48h/72
条件
36℃48h
验证试验
BGLS肉汤
36℃48h
产气管数：
平板计数琼脂
LST肉汤管
菌落总数个/Ml(g)
平均数
两稀释液之比
稀释液
产气管数
原液
10-1
10-2
10-3
10-4
10-5
结果
菌落总数个/Ml(g)
微生物检验原始记录
样品名称：样品编号：日期：检验方法：GB/T4789.2 GB/T4789.3
细菌总数
大肠菌群
条件
36℃48h/72
条件
36℃48h
验证试验
BGLS肉汤
36℃48h
产气管数：
培养基
平板计数琼脂
LST肉汤管
稀释液
菌落总数个/Ml(g)
平均数
两稀释液之比
稀释液
产气管数
原液
原液
1ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ-1
10-1
报告
食品致泻大肠埃希氏菌检验原始记录
食品致泻大肠埃希氏菌检验原始记录
样品编号：检验开始时间：年月日
样品名称：检验完成时间：年月日检测项目：致泻大肠埃希氏菌检测依据：GB4789.6-2016
无菌操作称（量）取固体或半固体样品25g加入225ml营养肉汤均质杯中；液体量取25mL 装入225mL营养肉汤的无菌锥形瓶中（可加适量玻璃珠），36±1℃培养6h；取10μL接种于肠道增菌肉汤管内，于42±1℃培养18h。
将增菌液划线接种于MAC和EMB营养琼脂平板，于36±1℃培养18~24h
观察菌落形态，挑取可疑菌落在做生化鉴定及PCR确认试验。
注：+生长或有可疑菌落；-未生长或无可疑菌落。
电子天平编号：使用状况试验前：试验后：培养箱编号：使用状况试验前：试验后：检测人：校核人：审核人：。
大肠菌群检测原始记录表(多管发酵法)
检验程序
样品编号
大肠菌群检测原始记录表（多管发酵法）
项目编号
检测日期
检测方法
多管发酵法
检测环境
温度： ℃，相对湿度： %
生化培养箱 菌落计数仪 生物安全柜 超净台 电子秤
固体和半固体样品：无菌称取 10g±1g，剪碎后加入到 200mL 无菌生理盐水中，充分混匀。 □涂抹样品：将采样后棉拭子的试管充分振摇后，吸原液检验。 □液体样品：直接吸原液检验。
1 10g 样品+200mL 稀释液混匀（或原液直接检验）；
2
乳糖胆盐发酵试验：将试样 ml 倒入 乳糖胆盐发酵管中 35℃±2℃培养 24h 观察：是否产酸产气，如有进行下步
3
分离培养，将产酸产气发酵管转种伊红美蓝琼脂平板，于 35℃±2℃培养 24h 观察菌落形态。
4 挑选可疑菌落进行革兰氏镜检，阴性（-），阳性（+）。
5
证实试验，上述镜检阴性菌接种乳糖蛋白胨培养液，置 35℃±2℃培养 24h观察：是否产酸产气 Nhomakorabea6 结果报告
样品接种量 （ml）
第一次发酵
检测结果
EM 平板生长情 况
革兰氏染色
第二次发酵
结果报告
“-”表示不产酸也不产气；“+”表示只产酸不产气，培养基变黄色；“ ”表示产酸又产气，培养基变黄，并有气泡
检测人：
复核人：
审核人;
微生物检验原始记录范本
所选稀释度的平均菌落数（ ）X稀释倍数（ ）=
根据证实为大肠菌群阳性的管数，查大肠菌群（MPN）检索表，MPN值为=
3.霉菌和酵母计数
选择接种3个稀释度，平行接种2个平皿，每皿1ml检样或稀释样；注入46℃孟加拉红琼脂约15ml，凝固，26℃培养=d（ / :~/ : ）;空白对照菌数灭菌水对照菌数=
微生物检验原始记录范本
样品名称：生产日期：样品规格：产品批号：抽样数量：
检测依据：□ GB□GB□GB使用仪器：天平□ 电热恒温培养箱 □ 水浴箱 □ 环境条件：室温℃
实验地点：无菌室检测日期：20年月日~月日检测项目：□菌落总数、□大肠杆菌、□霉菌计数、□酵母计数、□霉菌和酵母计数
样品处理：1.□以无菌操作将检样25注入225ml灭菌□磷酸盐缓冲液或□生理盐水或□蒸馏水中均质或混匀，□用灭菌吸管吸取检样1ml注入9ml灭菌稀释液中充分振摇，做成1：10的均匀稀释样；2. □用灭菌吸管吸取1：10稀释样1ml注入9ml灭菌稀释液中，混匀做成1：100稀释样；3. □同样方法做成10倍递增稀释样。
1.菌落总数
2．大肠杆菌
接种2~3个稀释度各2的平皿，每皿1ml检样或稀释样，注入46℃平板计数琼脂约15ml，凝固，℃培养h（时分~时分）。
选择接种3个稀释度
10
x
1
x
x
x
x
稀释度
10-
10-
所选稀释度平均值
空白对照
稀释液对照
乳糖胆盐发酵管经36℃h
（时 分~时分）后产气管数
菌落数
转 种 在 伊 红 美 蓝 琼 脂 平 板上36℃h，革兰氏蓝色发酵管经36℃h（时分~时 分）后产气管数
稀释度
10-
38食品中大肠埃希氏菌计数(MPN法)原始记录
食品中大肠埃希氏菌计数（MPN法）原始记录
编号： WJK/JL-W-
061
共页第页
样品名称批
号：样品编
号：
样品性
状数
量
收样日
期年月日检测日期年月日
检测项
目
检测地点：微生物洁净室检测环境（温、湿度等）
检测依据（方法）： GB/T4789.38-
2012
检测仪器编
号：
检验记录与结果
自总大肠菌群LST肉汤试验中的阳性管(产气)中取1滴培养物转种于EC肉汤管中，置44.5℃水浴箱内，培养24±2h～48±2h，如有产气者分离EMB平板培养。
经36℃±1℃培养18～24h，有典型菌落生长，进行革兰氏染色和生化试验，根据鉴定LST肉汤阳性管数查MPN表，报告每克（或毫升）样品中大肠杆菌MPN 值。
大肠杆菌计数
EC培养基（产气管数）
EMB平板
革兰氏染色镜检
靛基质（阳性管数）
甲基红（阳性管数）
VP试验（阳性管数）
柠檬酸盐（阳性管数）
结果
检测人：复核人：
年月日年月日。
大肠杆菌噬菌体检测记录
2 样品培养：新鲜培养好的菌液ml加入到ml肉汤培养基中，再分别加供试品、阴性和阳性对照血清，置37℃振荡培养箱培
养至。
3 重新培养新鲜菌液：ml肉汤培养加mlC3000菌液，置37℃振荡培养箱内培养至。
三、 结果判定
在阴阳性对照都成立的前提下，培养皿中供试品处无噬菌斑为阴性，有噬菌斑为阳性。
阳性对照
阴性对照
供试品
结果
注：阳性用符号+表示，阴性用符号—表示
四、结论：
检测者：复核者：
判定日期：年月日
批号
送检日期
检测日期
试验类型
□初试 □复试□重试
重（复）试原因
□初试不合格,□初试不成立，□稳定性检验
检定依据：《中华人民共和国药典》现行版
检定方法：见《大肠杆菌噬菌检验操作SOP》SOP-ZL007-00
一、材料和设备
设备名称
编号
运行状态良好
确认者
生物安全柜
是□ 否□
LRH－150Z振荡培养箱
是□否□
用具名称
规格
生产（灭菌）日期/批号
有效期（）
吸管
1ml
一次性无菌滤器
0.45μm
一次性无菌注射器
菌种名称
数量
批号
代次
大肠杆菌C3000
试剂名称
数量
制备日期
有效期（至）
普通肉汤培养基
阳性血清
阴性血清
营养琼脂培养基
二、 程序
操作步骤
操作人
复核人
1菌液培养：将大肠杆菌C3000用ml 肉汤培养基溶解后，