植物组织培养精品PPT课件
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植物的组织培养技术ppt课件
答案：(1)灭菌 消毒 (2)外植体 真菌(霉菌) 细菌 (3)果胶 (4)萃取(浸取) 水浴
无菌箱
后进
1．被子植物的花粉发育过程
花粉母细胞 小孢子母细胞⇒
四分体时期
⇒ 单核期
⇒双核期⇒花粉粒
2．产生花粉植株的两条途径
3．影响花药培养的因素
(1)主要因素：
和
。
(2)月季花药培养一般材选料择的选择期，细胞培核养由基中的央组移成向细胞一侧的时期。
单核
4．实验操作[判断正误]
(1)在剥离花药时，不要损伤花药，否则接种后不能脱分化形成愈伤组织。
2．影响植物组织培养的因素[判断正误]
(1)菊花组织培养，一般选择开花植株的茎上部新萌生的侧枝。
() (2)植物激素的浓度可影响细胞分化，但使用的先后顺序及比例不影响×组织
培养的过程。
()
(3)pH、温度和光照等也影响植物组织培养。 ( ) ×
√
3．实验操作过程
配制各种母液
(1)制备 MS 固体培养基配制培养基
[典例3] 某二倍体植物是杂合体，下图为其花药中未成熟花粉在适宜的 培养基上培养产生完整植株的过程。请据图回答：
(1)图中①表示的是该花粉培养过程中的________过程，②表示的是________ 过程，X代表的是________，③表示的是________过程，④表示的是诱导 ________过程。
灭菌
(2)外植体消毒：
体积分数为70% 的酒精消毒
―→
无菌水 清洗
―→
质量分数为0.1%
的氯化汞溶液消毒
―→
无菌水
清洗
(3)接种：始终在
酒精灯旁火进焰行，对接种工具要用
植物组织培养 PPT
5、移栽锻炼 将生根的苗从锥形瓶中移至草炭土或蛭石中，用玻璃罩或 塑料布保持80%以上的湿度，2-3天后打开玻璃罩逐渐降 低湿度进行锻炼，直到将罩全部打开处于自然湿度为止。
6、定植 苗健壮后移至土中培养（定植），即可长成植株并开花。
例题：右图是实验室进行植 物组织培养的一般过程。请 回答下列问题：
(3)基本过程
①愈伤组织：由离体的植物组织或细胞经 脱分化 形成的一 种 相对没有分化 的活的薄壁细胞团组成的新生组织。 ②脱分化：又叫去分化，是由_高__度__分__化___的植物组织或细胞产 生_愈__伤___组__织__的过程。 ③再分化：愈伤组织继续培养，重新分化成_根__或___芽__等器官的 过程。
2、下面是宁夏农林科学院进行苹果试管苗培养的一般过程:
⑴请填写a～c所表示的内容。a. 脱分化 ； b. 愈伤组织 ；c. 再分化 。
⑵实验室一般使用保存的培养基母液来制备MS固体培养基,配制母液 时, 大量元素 、 微量元素 和有机物要浓缩5～10倍。 细胞分 ⑶该过程中a、c的启动关键在于培养基中所加 生长素 和 裂素 的浓度配比。
MS培养基中各成分的作用
植物激素和人工合成的植物激素
植物中存在的天然激素都有相应的使之分解的酶，这样，天 然激素在植物体内作用和存在的时间就较短，而人工合成的 激素在植物中没有相应分解它的酶，所以作用和存在的时间 长，作用效果明显。
大家应该也有点累了，稍作休息
大家有疑问的，可以询问和交流
生长素和细胞分裂素在植物组织培养中的相互作用
诱导芽的形成 愈伤组织不分化 诱导根的形成
菊花组织培养操作步骤:
生芽 生根
消毒
无菌水
1
酒精灯火焰 封口膜
生芽
植物组织培养的基本原理ppt课件
ppt精选版
26
改变诱导期长短
主要外因方面是添加一些生长物质
Steward等(1964)用2, 4-D及其类似的 生长调节物质处理处于静止状态的组织， 看到RNA的含量很快明显地增加。并且2、 4-D积累在分裂细胞的核仁中。
Yeoman 和 Mitchell (1970) 指出了核 仁是生长物质的作用部位。
42
根发生在组织的深处，与整体植株发生 类似，是内起源。 愈伤组织的外部形态也随分化而改 变，一般由疏松转向紧密。
此时期中细胞的伸展和分裂处于 平衡，故细胞的平均大小趋于稳 定。
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31
形成期愈伤组织的特点：
生长旺盛的愈伤组织一般呈乳黄色或白色，
有光泽；也有浅绿色或绿色；而老化的愈伤组织
多转变为黄色甚至褐色。
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32
提醒：
根据形态变化列出三个时期，实际上 它们的界限并不分严格，特别是分裂期 和分化期。一块培养组织的细胞既有分 裂的又有分化的。
试管苗 试管苗
试管苗
ppt精选版
11
主要内容:
1.3.1愈伤组织的诱导与器官分化
1.3.1.1 愈伤组织诱导 1.3.1.2 器官分化
1.3.2植物体细胞胚胎发生
1.3.2.1植物体细胞胚胎发生的方式 1.3.2.2植物体细胞胚胎发生的极性和生理隔离
1.3.3离体器官诱导 1.3.4影响植物离体形态发生的因素
杂的脱分化过程恢复分裂能力转化为分生细胞。此过程有人称之
为：细胞的诱导活化过程。
期，并发生同步分裂。
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22
有人认为损伤是诱导细胞分裂的重要因素。受 伤细胞释放出的物质与外源激素共同诱导细胞 发生分裂，是诱导植物愈伤组织形成的主要原 因。
《植物组织培养技术》课件
04 植物组织培养技术的应用实例
快速繁殖技术
快速繁殖技术是指利用植物组 织培养技术，快速、大量繁殖
植物种苗的一种方法。
该技术广泛应用于花卉、果树 、林木等植物的快速繁殖，能 够大大缩短繁殖周期，提高繁
殖系数。
快速繁殖技术还可以通过控制 培养条件，实现植物的定向繁 殖，如矮化、无病毒等。
快速繁殖技术具有高效、环保 、可重复利用等优点，是现代 农业和林业生产的重要手段之 一。
濒危植物保护与复壮是保护生 物多样性和维护生态平衡的重 要手段之一，具有深远的社会 意义和生态意义。
05 植物组织培养技术的挑战与前景
技术瓶颈与解决方案
技术瓶颈
目前植物组织培养技术面临的主要瓶颈包括培养基的优化、外植体的选择与处 理、污染控制以及基因转化效率等。
解决方案
针对这些问题，研究者们正在探索新型的培养基成分、优化外植体的选择标准 、开发新型的消毒方法以及改进基因转化技术，以期提高植物组织培养的效率 和成功率。
指任何一个植物细胞都包含该物种的 全套遗传信息，具有发育成完整个体 的潜在能力。
植物细胞全能性证明
植物细胞全能性的应用
植物组织培养技术利用植物细胞的全 能性，通过离体培养获得完整的植株 ，广泛应用于植物繁殖、品种改良、 基因工程等领域。
许多植物细胞如胡萝卜、烟草、草莓 等在适宜条件下能够发育成完整的植 株，证明了植物细胞的全能性。
技术发展趋势与展望
发展趋势
随着生物技术的不断发展，植物组织培 养技术也在不断进步和完善。未来，该 技术将更加注重与基因编辑、合成生物 学等新兴技术的结合，以实现更为精准 和高效的植物育种和种质资源保护。
VS
展望
未来，植物组织培养技术有望在农业、园 艺、林业等领域发挥更大的作用，为解决 全球粮食安全、生态恢复等问题提供有力 支持。
植物组织培养 植物组织培养技术认识护理课件
该技术通过无菌操作，将植物组织或 细胞接种在人工培养基上，在适宜的 环境条件下进行培养，诱导其分裂、 分化并发育成完整的植株。
植物组织培养技术的发展历程
1902年，德国植物学家哈伯兰 特首次提出了植物细胞具有全能
性的理论。
1958年，斯图尔德成功地将胡 萝卜根部的细胞培养成完整的植 株，标志着植物组织培养技术的
THANKS
感谢观看
基因编辑与组织培养结合
利用基因编辑技术对植物进行精确改 良，提高组织培养效率。
智能化与自动化
引入智能化和自动化技术，实现植物 组织培养的精准控制和高效生产。
生物反应器应用
利用生物反应器大规模培养植物细胞 ，为药物生产、生物燃料等领域提供 原料。
06
植物组织培养技术的伦理和社会影响
植物知识产权保护问题
培养条件与观察记录
培养条件
提供适宜的光照、温度、湿度等环境 条件，以满足植物生长需求。
观察记录
定期观察植物生长情况，记录生长数 据，及时发现问题并采取相应措施。
04
植物组织培养技术的实践应用
快速繁殖与育种
快速繁殖
通过植物组织培养技术，可以在短时间内快速繁殖大量植物，提高繁殖效率，缩短生长周期。
生物多样性
植物组织培养技术可能对生物多样性产生影 响，尤其是当某些人工繁殖的植物品种取代 野生种时，可能导致某些物种的消失或濒临 灭绝。
技术应用的伦理规范和法规
要点一
伦理原则
要点二
法规监管
植物组织培养技术的应用应遵循伦理原则，尊重生命、保 护环境和生态平衡，同时保障育种者的权益。
政府应制定相关法规和监管措施，规范植物组织培养技术 的研发和应用，确保技术的可持续发展和社会效益的发挥 。
植物组织培养技术的发展历程
1902年，德国植物学家哈伯兰 特首次提出了植物细胞具有全能
性的理论。
1958年，斯图尔德成功地将胡 萝卜根部的细胞培养成完整的植 株，标志着植物组织培养技术的
THANKS
感谢观看
基因编辑与组织培养结合
利用基因编辑技术对植物进行精确改 良，提高组织培养效率。
智能化与自动化
引入智能化和自动化技术，实现植物 组织培养的精准控制和高效生产。
生物反应器应用
利用生物反应器大规模培养植物细胞 ，为药物生产、生物燃料等领域提供 原料。
06
植物组织培养技术的伦理和社会影响
植物知识产权保护问题
培养条件与观察记录
培养条件
提供适宜的光照、温度、湿度等环境 条件，以满足植物生长需求。
观察记录
定期观察植物生长情况，记录生长数 据，及时发现问题并采取相应措施。
04
植物组织培养技术的实践应用
快速繁殖与育种
快速繁殖
通过植物组织培养技术，可以在短时间内快速繁殖大量植物，提高繁殖效率，缩短生长周期。
生物多样性
植物组织培养技术可能对生物多样性产生影 响，尤其是当某些人工繁殖的植物品种取代 野生种时，可能导致某些物种的消失或濒临 灭绝。
技术应用的伦理规范和法规
要点一
伦理原则
要点二
法规监管
植物组织培养技术的应用应遵循伦理原则，尊重生命、保 护环境和生态平衡，同时保障育种者的权益。
政府应制定相关法规和监管措施，规范植物组织培养技术 的研发和应用，确保技术的可持续发展和社会效益的发挥 。
植物组织培养PPT课件
在植物体内
限制
游离
表现
植物体的任何一个细胞，都有长成完整个体的潜在能力
.
5
01
培养基
在组织细胞生长过程中提供所需的营养物质
.
6
02
组培苗的生长过程
.
7
02
组培苗的生长过程
转苗
出瓶
.
8
03
植物组织培养的意义
.
9
03
快速繁殖
稀有植物 繁殖能力低或不能用种子繁殖的植物 受地理环境及季节因素限制的植物
.
10
04
组培的实验条件
.
11
04
超净工作台
提供无菌无尘的工作环境
照明灯
紫外线灯
风机
视频介绍
.
12
04
培养室
控制光照、温度，并 保持相对的无菌环境
.
13
05
转苗操作步骤
.
14
05
操作步骤
准备工作 01
1.将操作时需要用到的物品（酒精灯、一对镊子、托盘、培养基等） 放于超净工作台台内喷洒70%酒精后开启超净台紫外灯照射消毒 30min左右 2.戴口罩，70%酒精消毒双手 3.取一对镊子于酒精灯火焰的外焰灼烧约1-2min后放置至恢复室温 备用
.
18
05
每瓶接7-10株
接苗深度：将根部插入培 养基，露出根茎结合部 （过深不利于苗的生长） 尽量使苗直立固定
.
19
The end 希望同学们学有所成
.
20
1.取适量的苗于托盘中后，将培养瓶盖上盖子 （盖前同样转动灼烧瓶口） 2.左右手各持一把镊子，将托盘里的苗分成一株 株同时把夹带的培养基、枯叶等杂质与苗分开
植物组织培养学PPT课件
20
• 培养室：培养室是将接种的材料进行培养生长的场所。培养室的大小可根
据需要培养架的大小、数目、及其他附属设备而定。其设计以充分利用空 间和节省能源为原则。高度比培养架略高为宜，周围墙壁要求有绝热防火 的性能。
培养材料放在培养架上培养。培养架大多由金属制成，一般设5层，最 低一层离地高约lOcm，其他每层间隔30cm左右，培养架即高1．7m左右。 培养架长度都是根据日光灯的长度而设计， 如采用40W日光灯，则长 I．3m，30W的长lm，宽度一般为60cm。
• ②生长周期短，繁殖率高 植物组织培养是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求 而提供不同的培养条件，因此生长较快。另外，植株也比较小，往往20— 30d为一个周期。所以，虽然植物组织培养需要一定设备及能源消耗，但由 于植物材料能按几何级数繁殖生产，故总体来说成本低廉，且能及时提供 规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。
13
植物细胞全能性的表达
• 脱分化（dedifferentiation)：将来自已分 化组织的已停止分裂的细胞从植物体部 分的抑制性影响下解脱出来，恢复细胞 的分裂活性。
• 再分化（redifferentiation):经脱分化的组 织或细胞在一定的培养条件下可有转变 为各种不同细胞类型的能力。
14
接种室宜小不宜大，一般7～8平米，要求地面、天花板 及四壁尽可能密闭光滑，易于清洁和消毒。配置拉动门，以 减少开关门时的空气扰动。
接种室要求干爽安静，清洁明亮。在适当位置吊装1～2 盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。最好安装一小型空调，使 室温可控，这样可使门窗紧闭，减少与外界空气对流。
接种室应设有缓冲问，面积1m2为宜。进入无菌操作室 前在此更衣换鞋，以减少进出时带入接种室杂菌。缓冲间最 好也安一盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。
• 培养室：培养室是将接种的材料进行培养生长的场所。培养室的大小可根
据需要培养架的大小、数目、及其他附属设备而定。其设计以充分利用空 间和节省能源为原则。高度比培养架略高为宜，周围墙壁要求有绝热防火 的性能。
培养材料放在培养架上培养。培养架大多由金属制成，一般设5层，最 低一层离地高约lOcm，其他每层间隔30cm左右，培养架即高1．7m左右。 培养架长度都是根据日光灯的长度而设计， 如采用40W日光灯，则长 I．3m，30W的长lm，宽度一般为60cm。
• ②生长周期短，繁殖率高 植物组织培养是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求 而提供不同的培养条件，因此生长较快。另外，植株也比较小，往往20— 30d为一个周期。所以，虽然植物组织培养需要一定设备及能源消耗，但由 于植物材料能按几何级数繁殖生产，故总体来说成本低廉，且能及时提供 规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。
13
植物细胞全能性的表达
• 脱分化（dedifferentiation)：将来自已分 化组织的已停止分裂的细胞从植物体部 分的抑制性影响下解脱出来，恢复细胞 的分裂活性。
• 再分化（redifferentiation):经脱分化的组 织或细胞在一定的培养条件下可有转变 为各种不同细胞类型的能力。
14
接种室宜小不宜大，一般7～8平米，要求地面、天花板 及四壁尽可能密闭光滑，易于清洁和消毒。配置拉动门，以 减少开关门时的空气扰动。
接种室要求干爽安静，清洁明亮。在适当位置吊装1～2 盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。最好安装一小型空调，使 室温可控，这样可使门窗紧闭，减少与外界空气对流。
接种室应设有缓冲问，面积1m2为宜。进入无菌操作室 前在此更衣换鞋，以减少进出时带入接种室杂菌。缓冲间最 好也安一盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。
植物组织培养幻灯片
植物组织培养的原理：利用植物细胞的全 能性，通过人工控制培养条件，使植物细 胞分裂、分化，形成完整的植物个体。
植物组织培养的应用：主要用于植物育种、 植物基因工程、植物生物技术等领域。
植物组织培养的技术流程：包括取材、培 养基制备、接种、培养、移栽等步骤。
植物组织培养的应用
植物育种：通过组织培养技术，可以快速筛选出优良品种 植物繁殖：组织培养技术可以快速繁殖植物，提高生产效率 植物保护：组织培养技术可以用于保护濒危植物，恢复生态系统 植物研究：组织培养技术可以用于研究植物生长、发育、代谢等生理过程
植物组织培养技术原理
原理：利用植物细胞的全能性，通过人工控制条件，使植物细胞在体外培养成完整植株的过程。 培养基：提供植物细胞生长所需的营养物质、激素、维生素等。 培养条件：温度、光照、湿度、气体等。 培养过程：取材、消毒、接种、培养、移栽等。 应用：植物育种、生物技术、药用植物生产等。
植物组织培养的应用
植物组织培养的优缺点
缺点：技术要求高，成本高， 成功率低
优点：快速繁殖，提高产量， 减少病虫害
应用领域：农业、林业、花 卉、药材等
发展趋势：生物技术、基因 编辑、合成生物学等
未来展望
植物组织培养 技术的发展趋
势
植物组织培养 在现代农业中
的应用前景
植物组织培养 在生物制药领
域的应用
植物组织培养 在环境保护和 生态修复方面
优点：可进行基因编辑，提 高植物抗病性、抗逆性等
缺点：可能产生变异，影响 植物品质和产量
未来展望
植物组织培养技术的发展趋势 植物组织培养在现代农业中的应用前景 植物组织培养在环境保护和生态修复中的作用 植物组织培养在生物制药和生物能源领域的潜力
植物组织培养PPT课件
1978年，Melchers等进行了番茄和马铃薯的体细胞杂交。
1979年，Marton提出了利用植物原生质体和土壤农杆菌共培养的方法进行转化。 1981年，Larkin和Scowcroft引入“体细胞无性系变异（Somaclonal variation）”这一术语。 1982年，Krens等的工作证明，原生质体可以摄入裸露的DNA，表明可以用外源DNA对原生 质体进行遗传转化。 1982年，Zimmermann利用电刺激进行原生质体融合。 1985年，Horsch等用土壤农杆菌对叶盘进行感染和转化，并得到再生的转化植株。
1948年，Skoog等通过对烟草茎段和髓培养发现，不定芽和不定根的发生由生长素/腺嘌呤的比例决 定。
1950年，Ball从红杉愈伤组织培养中再生获得器官。
1952年，Morel和Martin通过分生组织培养获得大丽花的脱毒植株，同年，首次应用微型嫁接技 术。
1953年，Tuleche首次从花粉培养中获得银杏的单倍体愈伤组织。
蒜等。
茎尖培养脱毒
virus-free tissue
脱毒马铃薯种薯生物反应器液体培养
2、用于植物遗传育种
包括种质资源离体保存；花粉花药培养产生单倍体；胚乳培 养产生三倍体；胚培养拯救杂种胚克服远缘杂交障碍；原生质 体培养进行体细胞杂交；植物体细胞无性系变异诱导和筛选； 用于植物基因转移操作等。
2、植物组织培养技术的初步形成（1930-1960年）
1933年，我国植物生理学家李继侗培养银杏胚胎，并发现银杏胚乳提取液可促进离体胚的生长。
1937年，White发现B族维生素对离体根培养的重要性。并指出IAA对植物生长发育的控制起重要 作用。
1937,1938年，Gantheret在培养基中加入上述生长因子，使得柳树形成层诱导形成的愈伤组织连续 生长。Nobecomt对烟草种间杂种茎段的形成层细胞培养也得到了类似的结果。
1979年，Marton提出了利用植物原生质体和土壤农杆菌共培养的方法进行转化。 1981年，Larkin和Scowcroft引入“体细胞无性系变异（Somaclonal variation）”这一术语。 1982年，Krens等的工作证明，原生质体可以摄入裸露的DNA，表明可以用外源DNA对原生 质体进行遗传转化。 1982年，Zimmermann利用电刺激进行原生质体融合。 1985年，Horsch等用土壤农杆菌对叶盘进行感染和转化，并得到再生的转化植株。
1948年，Skoog等通过对烟草茎段和髓培养发现，不定芽和不定根的发生由生长素/腺嘌呤的比例决 定。
1950年，Ball从红杉愈伤组织培养中再生获得器官。
1952年，Morel和Martin通过分生组织培养获得大丽花的脱毒植株，同年，首次应用微型嫁接技 术。
1953年，Tuleche首次从花粉培养中获得银杏的单倍体愈伤组织。
蒜等。
茎尖培养脱毒
virus-free tissue
脱毒马铃薯种薯生物反应器液体培养
2、用于植物遗传育种
包括种质资源离体保存；花粉花药培养产生单倍体；胚乳培 养产生三倍体；胚培养拯救杂种胚克服远缘杂交障碍；原生质 体培养进行体细胞杂交；植物体细胞无性系变异诱导和筛选； 用于植物基因转移操作等。
2、植物组织培养技术的初步形成（1930-1960年）
1933年，我国植物生理学家李继侗培养银杏胚胎，并发现银杏胚乳提取液可促进离体胚的生长。
1937年，White发现B族维生素对离体根培养的重要性。并指出IAA对植物生长发育的控制起重要 作用。
1937,1938年，Gantheret在培养基中加入上述生长因子，使得柳树形成层诱导形成的愈伤组织连续 生长。Nobecomt对烟草种间杂种茎段的形成层细胞培养也得到了类似的结果。
组织培养PPT课件
自来水
75%酒精 10～30s
无菌水冲洗2～3次
2 ～10% NaClO3 10～15min
0.1～0.2% HgCl2 5～10min
无菌水冲洗4～5次
无菌滤纸吸干
切割
.
36
（2）.果实、种子
自来水
75%酒精
果实：2% NaClO3 10min 无菌水清
洗数次 剖出种子或组织
种子： NaClO3 20—30min～几小时 视种皮的硬度而定，种皮太硬的，先去
从植物体上获取外植体后，要先用自来水冲洗
10min[表面不光滑的，需冲洗1～2h，可用洗衣粉/洗洁
精清洗，必要时可用毛刷]
滤纸吸干水分 消毒[可
先在70%的酒精溶液中浸泡30s]
.
34
1）.常用的消毒剂
消毒剂
用法&用量
处理时间
优缺点
漂白粉 饱和液取上清
酒精
70～75%
H2O2
6～12%
升汞（HgCl2） 0.1～0.2%
KCl 0.4～0.8mol/L
甘露醇： 0.4～0.6mol/L
山梨醇 ：0.8～1.2mol/L
.
47
四.植物组培的培养基
1）.组成 ①.激素
生长素：IAA、NAA、2，4-D、IBA
分裂素：KT 6-BA 玉米素
用量：0.1～10mg/L
②.无机盐 总浓度 25mmol/L 左右
NO3- 25～40mmol/L
0.5×0.3×0.2㎝3 易产生Callus
大蒜蒜瓣
0.2×0.2×0.1 ㎝3 较少/不产 生
.
32
3）.分离原生质体（Protoplast）
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The foundation of success lies in good habits
20
谢谢聆听
·学习就是为了达到一定目的而努力去干, 是为一个目标去 战胜各种困难的过程,这个过程会充满压力、痛苦和挫折
Learning Is To Achieve A Certain Goal And Work Hard, Is A Process To Overcome Various Difficulties For A Goal
05
取苗
02
1.取待转苗的培养瓶于瓶口 处于酒精灯外焰转动灼烧1-2 圈 2.拧开瓶盖 3.左手持瓶子保持30-45°角， 右手持镊子，小心夹出小苗 放于托盘中
取苗时要保持在酒精灯周围的无菌 环境中，夹取过程中掉落于桌上的 苗不可再用，不可直接用手碰苗或 瓶口
托盘
酒精灯
镊子
05
分苗 03
1.取适量的苗于托盘中后，将培养瓶盖上盖子 （盖前同样转动灼烧瓶口） 2.左右手各持一把镊子，将托盘里的苗分成一株 株同时把夹带的培养基、枯叶等杂质与苗分开
杂质 苗
05
接苗
04
1.取新的培养基于酒精灯外焰 转动灼烧1-2周 2.拧开盖子 3.左手持瓶，右手持镊子于酒 精灯附近，夹取托盘里分好的 小苗接入培养基中
05
每瓶接7-10株
接苗深度：将根部插入培 养基，露出根茎结合部 （过深不利于苗的生长） 尽量使苗直立固定写在最后源自成功的基础在于好的学习习惯
在植物体内
限制
游离
表现
植物体的任何一个细胞，都有长成完整个体的潜在能力
01
培养基
在组织细胞生长过程中提供所需的营养物质
02
组培苗的生长过程
02
组培苗的生长过程
转苗
出瓶
03
植物组织培养的意义
03
快速繁殖
稀有植物 繁殖能力低或不能用种子繁殖的植物 受地理环境及季节因素限制的植物
04
组培的实验条件
植物组织培养
演讲人：甘可盈
content
01 植物组织培养技术的原理
组培苗的生长过程
02
03 植物组织培养的意义
组培的实验条件
04
05
转苗操作步骤
01
植物组织培养技术的原理
01
为什么取一小部分组 织就能长成完整的植 株呢？
01
植物细胞的全能性
植物的每个细胞都包含着该物种的全部遗传信息，从而具 备发育成完整植株的遗传能力。
04
超净工作台
提供无菌无尘的工作环境
照明灯
紫外线灯
风机
视频介绍
04
培养室
控制光照、温度，并 保持相对的无菌环境
05
转苗操作步骤
05
操作步骤
准备工作 01
1.将操作时需要用到的物品（酒精灯、一对镊子、托盘、培养基等） 放于超净工作台台内喷洒70%酒精后开启超净台紫外灯照射消毒 30min左右 2.戴口罩，70%酒精消毒双手 3.取一对镊子于酒精灯火焰的外焰灼烧约1-2min后放置至恢复室温 备用
20
谢谢聆听
·学习就是为了达到一定目的而努力去干, 是为一个目标去 战胜各种困难的过程,这个过程会充满压力、痛苦和挫折
Learning Is To Achieve A Certain Goal And Work Hard, Is A Process To Overcome Various Difficulties For A Goal
05
取苗
02
1.取待转苗的培养瓶于瓶口 处于酒精灯外焰转动灼烧1-2 圈 2.拧开瓶盖 3.左手持瓶子保持30-45°角， 右手持镊子，小心夹出小苗 放于托盘中
取苗时要保持在酒精灯周围的无菌 环境中，夹取过程中掉落于桌上的 苗不可再用，不可直接用手碰苗或 瓶口
托盘
酒精灯
镊子
05
分苗 03
1.取适量的苗于托盘中后，将培养瓶盖上盖子 （盖前同样转动灼烧瓶口） 2.左右手各持一把镊子，将托盘里的苗分成一株 株同时把夹带的培养基、枯叶等杂质与苗分开
杂质 苗
05
接苗
04
1.取新的培养基于酒精灯外焰 转动灼烧1-2周 2.拧开盖子 3.左手持瓶，右手持镊子于酒 精灯附近，夹取托盘里分好的 小苗接入培养基中
05
每瓶接7-10株
接苗深度：将根部插入培 养基，露出根茎结合部 （过深不利于苗的生长） 尽量使苗直立固定写在最后源自成功的基础在于好的学习习惯
在植物体内
限制
游离
表现
植物体的任何一个细胞，都有长成完整个体的潜在能力
01
培养基
在组织细胞生长过程中提供所需的营养物质
02
组培苗的生长过程
02
组培苗的生长过程
转苗
出瓶
03
植物组织培养的意义
03
快速繁殖
稀有植物 繁殖能力低或不能用种子繁殖的植物 受地理环境及季节因素限制的植物
04
组培的实验条件
植物组织培养
演讲人：甘可盈
content
01 植物组织培养技术的原理
组培苗的生长过程
02
03 植物组织培养的意义
组培的实验条件
04
05
转苗操作步骤
01
植物组织培养技术的原理
01
为什么取一小部分组 织就能长成完整的植 株呢？
01
植物细胞的全能性
植物的每个细胞都包含着该物种的全部遗传信息，从而具 备发育成完整植株的遗传能力。
04
超净工作台
提供无菌无尘的工作环境
照明灯
紫外线灯
风机
视频介绍
04
培养室
控制光照、温度，并 保持相对的无菌环境
05
转苗操作步骤
05
操作步骤
准备工作 01
1.将操作时需要用到的物品（酒精灯、一对镊子、托盘、培养基等） 放于超净工作台台内喷洒70%酒精后开启超净台紫外灯照射消毒 30min左右 2.戴口罩，70%酒精消毒双手 3.取一对镊子于酒精灯火焰的外焰灼烧约1-2min后放置至恢复室温 备用