植物抗旱机制的研究进展
作物抗旱基因工程研究进展
作物抗旱基因工程研究进展摘要:主要就植物的抗旱基因包括渗透调节、保护酶体系、抗旱基因及遗传特性等方面对植物抗旱机理的研究进行了综述。研究植物的抗旱性基因,有助于了解植物的抗旱机制,以期为我国节水抗旱农业的研究提供一些新的思路和手段。关键词:作物;抗旱机理;水分胁迫;基因工程干旱已是世界性的问题,世界干旱,半干旱地区已占陆地面积的1/3以上,干旱对植物的影响在诸多自然逆境因素中占首位。国外已经开始有转抗旱基因植物的研究,已有数十种植物被转化获得了抗旱转基因植株,并已在水稻上成功地进行了转抗旱基因水稻品系的培育。本文对上述几方面的研究进行了综述,旨在总结植物抗旱的新机制,以利于更好的进行抗旱工作。1 渗透调节物质对旱害的调控1.1 植物体内脯氨酸的合成1.1.1 脯氨酸合成酶研究现状编码脯氨酸合成酶基因的研究较为深入,至今已从水稻、黑麦、绿豆、大豆、拟南芥、蒺藜、苜蓿、榆钱、菠菜等植物中克隆出了多个与脯氨酸合成酶相关的基因,其中包括P5CS、PSCR、OAT和Pro。鸟氨酸循环中6~OAT基因已在大豆、苜蓿、拟南芥等中得到克隆。转运蛋白ProT基因在拟南芥、番茄、水稻、大麦等中得到克隆。WU研究发现,在拟南芥中P5CS是由2个不同调节基因编码的。该基因有19个内含子和20个外显子定位于2号染色体78.5位置上的AtP5CSl基因可以在大多数植物器官中表达,但在分裂细胞中沉默:定位于3号染色体101.3位置上的AtP5CS2基因转录产物,占植物组织中P5CSm-RNA总量的20~40%,并在分裂细胞中负责合成P5CSutRNA,AtPSCS转录产物的积累具有组织特异性。同样在番茄的核基因组中,也发现有2个脯氨酸基因座(10ci):一个是特异性双功能tom Pro2基因座:另一个基因座为torn Pro1,该基因座编码一个多顺反子mRNA,指导7-GK和GSADH 2种多肽的合成。P5CS基因广泛存在于单子叶和双子叶植物中;P5CR基因有7个外显子,6个内含子,其位于拟南芥的5号染色体上:6-OAT基因有10个外显子,9个内含子,该基因定位于拟南芥的5号染色体上:脯氨酸转运蛋白的基因有8个外显子,7个内含子,该基因定位于水稻的3号染色体上,在拟南芥中脯氨酸转运蛋白是2个不同调节基因编码的,该基因有7个内含子6个外显子,定位于2、3号染色体上。1.1.2 脯氨酸在转基因植物中的表现将PSCS和6-OAT分别转入烟草植株中发现,在转基因烟草(Nicotianatabacum)中脯氨酸含量明显提高且与对照相比,耐盐性也有所提高,转入其他植物也得到同样的结论。将从乌头叶豇豆中克隆的P5CS基因与CoMV35S启动子连接后转人烟草中。发现转基因烟草的脯氨酸含量比对照高10~18倍。在干旱胁迫下转基因烟草落叶少且迟。将拟南芥的6-OAT基因导人烟草,使脯氨酸累积增加2倍,转基因的幼苗可在200mmol·LNaCl中正常生长:将此基因导人烟草,使脯氨酸累积增加2倍,转基因的幼苗可在200mmol·L-1NaCl中正常生长。杨成民从豇豆中分离到的P5CS为目的基因,通过基因枪与选择标记bar基因共转化获得转基因黑麦草再生植株,Kishor等将P5CS 基因导人烟草,转基因植株脯氨酸含量比对照高10~18倍:在盐胁迫条件下,与对照相比转基因植株根的长度和干重增加,植株生物产量提高花发育得更好,果荚数目和每荚的种子数也增加,李燕等在皂角苗木对干旱胁迫的生理生化反应的研究中发现,在干旱胁迫下,皂角的脯氨酸含量先增后减,Bajin等发现滨藜中脯氨酸含量的增加在叶中较显著,对根没有显著影响。也有研究发现,根的脯氨酸增加的幅度比茎叶中都大。1.2 其他调节物质1.2.1 果聚糖合成酶基因有证据表明被子植物演化过程中果聚糖积累与一些植物耐旱(寒)能力相关,其中果聚糖蔗糖酶基因soeB)是较早克隆的基因。张慧等1998年将ssacB转入烟草,经卡那霉素筛选的抗性芽能在含1%NaCl的MS培养基上正常生根,而未转化的芽则不能生根或根生长缓慢。转基因小苗移栽后用含1%NaCl的营养液浇灌17d后,一些转基因植株生长良好,而未转化苗出现明显萎蔫,表明sacB基因能提高烟草的耐盐性。1.2.2 甜菜碱合成有关的酶基因甜菜碱是一种重要的植物渗透调节物质,特别是藜科和禾本科植物,在受到水分胁迫时积累大量甜菜碱。甜菜碱在植物中以胆碱为底物经两步合成,即胆碱加单氧酶(CMO)催化胆碱氧化成甜菜碱醛,然后,甜菜碱醛脱氢酶(BADH)催化甜菜碱醛形成甜菜碱。1.2.3 甘露醇合成的相关基因植物抗性生理研究结果证实,糖醇与植物的抗旱耐盐能力有关,甘露醇是生物体内包含细菌、藻类、真菌和100多种高等植物中广泛分布的一种糖醇,在甘露醇合成过程中起关键作用的酶,在细菌中是甘露醇-1-磷酸脱氢酶,其编码基因为mtlD。2 保护酶体系保护酶体系包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)和抗坏血酸过氧化物酶(ASP)等。SOD可分为Cu/Zn-SOD、Mn-SOD和Fe-SOD 3种类型,Cu-SOD主要在叶绿体和细胞质中,Mn-SOD主要存在于线粒体中,Fe-SOD 则主要存在于叶绿体中,将烟草的Mn-SODcDNA导人苜蓿后,转基因苜蓿的抗旱性得到了提高,将Mn-SOD基因定位到烟草的叶绿体和线粒体上,发现也能表达其基因。进一步研究发现,在叶绿体中Mn-SOD的过量表达使烟草受干旱所引起的氧化伤害程度比对照明显减轻,但线粒体中增加的Mn-SOD活性对烟草耐氧化胁迫能力没多大影响,另外,表达拟南芥Fe-SOD的转基因烟草、表达番茄Cu/Zn-SOD 的转基因烟草、过量表达豌豆Cu/Zn-SOD的转基因烟草均能增强抵抗干旱引起的氧化胁迫能力。3 植物抗旱基因与遗传3.1 保护生物大分子及膜结构的蛋白质3.1.1 水通道蛋白(aquapofin) 水通道蛋白是指作为跨膜通道的主嵌入蛋白(MIP)家族中具有运输水分功能的一类蛋白质,能够促进和调节水分跨膜的被动交换,包括植物体内的跨细胞和胞内水分流动,是水分跨膜运输的重要途径之一。3.1.2 调渗蛋白在高盐浓度下,培养的烟草细胞中多种蛋白质的含量发生了变化。其中一种分子量为26KD的蛋白质的增加尤为显著,高达细胞总蛋白量的12%以上。该蛋白的积累则要求氯化钠或低水势的存在。除烟草外其他一些植物西红柿、马铃薯、胡萝卜、棉花、小米和大豆的培养细胞经ABA处理后也出现了同OSM起免疫交叉反应且分子量约为26KD的蛋白质。这表明OSM可能是一种普遍存在于高等植物的蛋白质。目前已得到由农杆菌介导将OSM的启动子和B-葡萄糖苷醛酶(GUS)报告基因嵌合在一起的转基因烟草。3.1.3 胚胎后期发生丰富蛋白(LEA蛋白) 在种子后期发育过程当中,LEA蛋白随种子的脱水成熟其含量增加。在胁迫条件下LEA蛋白在植物细胞中起保护作用,这种保护作用对于植物在极端压力条件下是必要的。根据LEA的结构推测LEA蛋白可能有以下三方面的作用:①作为脱水保护剂,由于LEA蛋白在结构上富含不带电荷的亲水氨基酸,它们既能像脯氨酸那样,通过与细胞内的其他蛋白发生相互作用,使其结构保持稳定,又可能给细胞内的束缚水提供了一个结合的衬质,从而使细胞结构在脱水中不致遭受更大的破坏。②作为一种调节蛋白而参与植物渗透调节。③通过与核酸结合而调节细胞内其它基因的表达。3.2 编码抗旱转录因子的调节基因DREB是目前研究较多的抗非生物胁迫的转录因子。Xiong利用差示显示法从干旱处理的拟南芥中克隆了一批受干旱诱导的rd基因,对rd29A基因启动子进行分析揭示了一个与干旱、高盐及低温胁迫应答基因有关的DRE顺式作用元件,并克隆了3个与DRE元件结合的转录因子,用干旱或高盐处理10min,DREB2A和DREB2B被快速强烈诱导,并且不受外源ABA的诱导。Hara利用CaMV35S启动子和逆境诱导特异启动子rd29A,将DREBIA的cDNA导入拟南芥,DREBlA的过量表达激活许多耐逆境功能基因的表达如rd29A、Kinl、Con5a、Cor6和P5CS等转基因植株耐旱性、耐盐性和耐冻性提高。4 展望我国北方地区土壤干旱、盐渍化是影响农牧生产的重要因素。通过筛选与植物的抗旱性、抗盐碱性相关的基因,研究其功能,揭示其相关因子的信号转导途径,采用现代生物技术手段进行转基因育种、获得耐旱和耐盐碱能力强的新品种已成为解决我国中西部干旱、半干旱地区农牧业发展种质资源矛盾的有效手段之一。4.1 目前利用基因工程技术培育抗旱品种主要有两种策略1、增加植物渗透性代谢产物的合成能力,使植物在水分胁迫下能合成更多的渗透调节物质如脯氨酸,甘露醇、甜菜碱、海藻糖等,以提高植物的渗透调节能力,从而增强植物的抗旱性。2)增强植物对活性氧自由基的清除能力,使植物在水分胁迫下过量表达一些酶(如SOD,POD,CAT等),以有效地排除有害的活性氧自由基,从而提高细胞耐脱水的能力。4.2 在通过基因工程方法进行抗旱分子育种的过程中发现存在一些问题由于人们对植物抗旱的分子机制缺乏了解,抗旱分子育种还有很大的盲目性:采用单基因策略提高植物的抗旱性对有的基因和植物有效,对有的基因和植物却无效:利用35S启动子与抗旱基因组合在提高植物抗旱性的同时也造成植物畸形发育;外源基因表达水平不稳定。尽管目前抗旱分子育种面临不少的问题,但随着抗旱分子生物学研究的深人和生物技术的进步,相信不久的将来会有大量的抗旱基因作物应用到生产实践中来。。
植物抗旱机制中信号转导通路研究
植物抗旱机制中信号转导通路研究植物是地球上最重要的生物之一,作为生态环境中的重要成员,植物在自身繁衍生息的同时,也承担着稳定和改善生态环境的重要职责。
然而,随着气候变化和环境污染的加剧,植物生长和发育遭受着越来越大的威胁。
其中,干旱的影响尤为严重,不仅会导致植物受到水分限制,而且还会直接影响植物的存活和繁衍。
因此,了解植物如何对抗干旱,寻找植物抗旱的机制,对保护生态环境和维护人类的生存环境至关重要。
在植物抗旱机制中,信号转导通路是非常关键的一环,这也是植物如何适应干旱环境的关键所在。
因此,本文将介绍植物抗旱机制中信号转导通路的研究现状和进展。
一、植物抗旱机制植物为了适应干旱环境,在生长和发育的各个环节都有一系列的适应性调节。
其中,根系、茎叶、花器官等都有一系列的生理、生化响应适应干旱。
一般来说,植物抗旱机制主要有以下几个方面:(1)根系适应干旱,提高水分利用效率。
干旱条件下,植物会产生更多的细小须根和根毛,增加根系的表面积,从而增强水分吸收能力。
同时,在干旱条件下,植物还会调节根系和叶片的比例、形态和分布,提高水分的利用效率。
(2)茎叶适应干旱,减少水分损失。
植物的茎叶可以通过调整气孔大小和数量、裂隙和开口的大小以及表皮的密度和结构等途径来减少水分损失。
此外,植物还可以通过调控茎叶中的可溶性糖、叶绿素、角质素等物质来适应干旱。
(3)维持基础代谢和调节生长发育。
干旱条件下,植物会减缓生长速率,保持基础代谢和维持生理平衡。
同时,植物还会通过调节生长激素和转录因子等信号通路来适应干旱。
二、信号转导通路信号转导通路是植物在适应干旱环境时的关键机制之一。
它可以将外部干旱的刺激转化为细胞内的生理反应,从而调节植物在干旱条件下的生长和发育。
目前已经发现了许多植物在适应干旱环境中所涉及的信号转导通路,比如ABA信号、Ca2+信号、ROS信号、酶信号等。
(1)ABA信号通路ABA(abscisic acid)是植物抗旱的一个重要激素,它可以调节干旱条件下植物的水分利用和茎叶的水分损失。
植物抗旱机理及抗旱性鉴定方法研究进展
植物抗旱机理及抗旱性鉴定方法研究进展植物的抗旱机理是指植物在干旱环境中如何调节水分平衡,以维持正常的生长和发育。
随着全球气候变暖,干旱问题日益严重,研究植物的抗旱机理和鉴定抗旱性的方法对于农业生产和生态恢复具有重要意义。
本文将介绍植物抗旱机理的研究进展和抗旱性鉴定方法。
植物的抗旱机理主要包括:减少蒸腾损失、增加水分吸收能力、调节植物生长和发育等方面。
在减少蒸腾损失方面,植物通过改变气孔的开闭来控制蒸腾速率。
一些植物能够在干旱条件下调节其气孔的开合,降低蒸腾速率,减少水分流失。
同时,植物根系的生长和分布也对抗旱起着重要作用。
植物根系的发达程度和分布范围影响着植物吸收水分和养分的能力,从而影响植物的抗旱性。
另外,植物还通过产生一些抗旱物质来调节自身的生理代谢,如抗氧化物质、谷胱甘肽等,以抵抗干旱引起的氧化应激。
目前,研究人员采用了多种方法来鉴定植物的抗旱性。
一种常用的方法是通过测定植物的生理指标来评估其抗旱性。
例如,测定植物的相对水分含量、叶绿素含量、脯氨酸含量等指标,可以反映植物在干旱条件下的水分状态和生理代谢水平。
另外,测定植物的根系性状也是评估抗旱性的重要指标。
根系的发育程度和分布范围可以反映植物的水分吸收能力和适应干旱的能力。
此外,还可以通过评估植物的生长和发育状况来判断其抗旱性。
例如,测定植物的生物量、叶面积指数、根冠比等指标,可以反映植物在干旱条件下的生长状况。
近年来,研究人员还采用了分子生物学和基因工程等方法来研究植物的抗旱机理和鉴定抗旱性。
例如,通过研究与植物抗旱相关的基因,可以揭示植物在干旱条件下的分子调控机制。
同时,通过转基因技术来提高植物的抗旱性也是研究的热点之一、通过引入抗旱相关基因或调控植物内源基因的表达,可以提高植物的抗旱能力,从而增加农作物的产量和耐旱性。
综上所述,植物的抗旱机理及抗旱性鉴定方法研究已经取得了一些进展。
随着研究的深入和技术的进步,相信将会有更多的抗旱机理被揭示,也将有更多的有效方法用于评估和提高植物的抗旱性。
植物对干旱胁迫的响应研究进展
植物对干旱胁迫的响应研究进展一、本文概述干旱胁迫是全球气候变化背景下植物经常面临的一种环境压力,它不仅影响植物的生长和发育,还可能对植物的生存造成威胁。
因此,深入了解植物对干旱胁迫的响应机制,对于提高植物的抗逆性、优化农业生产和保护生态环境具有重要意义。
本文旨在综述近年来植物对干旱胁迫响应的研究进展,包括植物在干旱胁迫下的生理生化变化、分子生物学机制以及抗旱性改良等方面的研究成果,以期为未来的植物抗旱性研究提供参考和借鉴。
本文将概述干旱胁迫对植物生长发育的影响,包括水分亏缺对植物形态结构、生理功能和代谢过程的影响。
我们将重点介绍植物在干旱胁迫下的响应机制,包括植物激素、转录因子、基因表达调控以及信号转导等方面的研究进展。
我们还将综述植物抗旱性改良的研究现状,包括传统育种、基因工程和组学技术在抗旱性改良中的应用。
我们将对植物抗旱性研究的前景进行展望,探讨未来研究方向和挑战。
通过本文的综述,我们期望能够为读者提供一个全面的视角,以了解植物对干旱胁迫响应的研究现状和发展趋势,为植物抗旱性研究和实践提供有益的参考和启示。
二、植物干旱胁迫的生理生态响应植物在面对干旱胁迫时,会表现出一系列的生理生态响应。
这些响应旨在最大限度地减少水分损失,提高水分利用效率,以及维持生命活动的正常进行。
在形态学方面,植物会通过减少叶片数量和大小,降低叶面积指数,以及增加叶片厚度和角质层等方式,来减少水分蒸发和蒸腾作用。
根系也会发生适应性变化,如增加根长、根表面积和根毛数量,以扩大水分吸收的范围和效率。
在生理方面,植物会通过调整气孔开闭,降低蒸腾拉力,以减少水分流失。
同时,植物还会提高叶片细胞液的浓度,如增加脯氨酸等溶质的含量,以降低渗透势,增强保水能力。
植物还会通过调节光合作用的速率和途径,以及调整呼吸作用等,以适应干旱环境下的能量代谢需求。
在分子层面,植物会表达一系列与干旱胁迫相关的基因,编码如转录因子、蛋白激酶、水解酶等抗旱相关蛋白,以调节和响应干旱胁迫。
植物抗旱基因工程的研究进展1
来稿日期:20080831 基金项目:邯郸学院硕士博士启动基金(S2006002) 作者简介:葛水莲(19802),女,河北保定人,邯郸学院生物科学系教师,硕士.植物抗旱基因工程的研究进展葛水莲1,薛晶晶1,陈建中2(11邯郸学院生物科学系,河北邯郸056005;21邯郸市植物研究所,河北邯郸056005) 摘要:就植物的抗旱基因包括渗透调节,保护酶体系,抗旱基因及遗传特性等方面对植物抗旱机理的研究进行了综述.研究植物的抗旱性基因,有助于了解植物的抗旱机制,为中国节水抗旱农业的研究提供一些新的思路和新的手段.关键词:抗旱机理;水分胁迫;基因工程中图分类号:S 33214 文献标识码:A文章编号:167321492(2008)0620028204 干旱已是世界性的问题,世界干旱,半干旱地区已占陆地面积的三分之一以上,干旱对植物的影响在诸多自然逆境因素中占首位.显然,对植物抗旱机理的研究显得尤为重要.在长期的进化过程中,高等植物通过一系列生理变化来响应环境的水分胁迫.这些变化体现在渗透调节,保护酶体系,抗旱基因与遗传特性等方面.随着现代分子生物学与生物技术的发展,植物如何通过细胞感受逆境信号、传导逆境刺激、激活一系列分子途径并调控相关基因表达和生理反应以适应逆境,已成为科学家研究的热点[1].本文对上述几方面的研究进行了综述,旨在总结植物抗旱的新机制,以利于我们更好的进行抗旱工作.1 渗透调节中脯氨酸的调节111 植物体内脯氨酸的合成脯氨酸是一种小分子的渗透物质,是水溶性最大的氨基酸,许多植物受到盐渍时积累高水平的脯氨酸.植物的脯氨酸合成、累积及代谢是一个受非生物胁迫细胞内脯氨酸浓度调控的生理生化过程[2].脯氨酸积累可能是植物受到胁迫的一种信号.遭受胁迫的植物细胞内大量积累脯氨酸,已证明植物体内存在2条脯氨酸合成途径,根据起始氨基酸命名为Glu 途径和Orn 途径[3].胁迫导致水分亏缺时植物体内脯氨酸积累主要依靠Glu 途径,谷氨酸途径发生在胞质中,但脯氨酸降解为吡咯琳252羧酸(P5C )却发生在线粒体中,由脯氨酸脱氢酶(ProD H )催化,这种代谢的区室化分布避免了物质的无效循环.在正常情况下,脯氨酸作为一种反馈调节物质抑制了P5CS 的基因表达而诱导了ProD H 的基因表达.在胁迫条件下,P5CS 基因的表达活性超强,而ProD H 基因的表达活性却受到抑制.植物体内另一条脯氨酸合成途径为Orn 途径.鸟氨酸是在鸟氨酸6-氨基转移酶(62OA T )的作用下,生成谷氨酸半醛(GSA ),后通过Glu 途径生成脯氨酸[4].两条途径因植物和生长时期不同而各自起着重要的作用.从整体来说,在个体发育的早期阶段,异养型营养占优势,Orn -Pro 途径在脯氨酸合成中起重要作用,而谷氨酸作为脯氨酸合成的起始底物显然存在于个体发育的整个阶段,具体来说脯氨酸合成过程究竟是哪条途径居于主导地位有待研究.Roo sens [5]等研究表明,在盐胁迫和正常条件下,幼小植株的62OA T 活性和mRNA 都稍微高于较老植株,且该基因的表达与盐胁迫和脯氨酸产物密切相关.在拟南芥幼小植株中,游离脯氨酸含量、62OA T 活性以及62OA TmRNA 都受到盐胁迫处理而增加,这些结果表明对于拟南芥植物来说,在渗透胁迫过程中鸟氨酸途径和谷氨酸途径一样在脯氨酸的累积中发挥着重要的作用.另一方面4周龄的拟南芥植物虽然游离氨基酸的水平在盐胁迫条件下有所增加,但62OA T mRNA 的表达却没有检测到,相反P5CS mRNA 表达却达到较高水平.因此对于成年植株来说,游离脯氨酸的增加似乎只・82・第24卷第6期2008年12月 (自然科学版)Journal of Hebei North University (Natural Science Edition ) Vol 124No 16Dec.2008是由于谷氨酸途径的酶活性引起的.112 脯氨酸合成酶系分子生物学研究现状11211 脯氨酸合成酶研究现状 脯氨酸合成酶属于一个基因家族,在植物体内脯氨酸的合成由谷氨酸或鸟氨酸开始.在谷氨酸途径P5CS是一个双功能酶,具有谷氨酸激酶(72GK)和谷氨酰272半醛脱氨酶(GSAD H)活性,催化脯氨酸合成过程中的前2步反应,它是脯氨酸合成的限速酶;在鸟氨酸途径中,通过r2谷氨酰磷酸,GSA和P5C形成脯氨酸,62OA T是其限速酶.植物利用外源脯氨酸时Pro T起主要作用.与脯氨酸积累有关的酶主要有3类:谷氨酸途径中的P5CS和吡咯琳252羧酸还原酶(P5CR)、OA T、PSCR和Pro T.11212 脯氨酸合成酶基因分子生物学研究 编码脯氨酸合成酶基因的研究较为深入,至今已从水稻、黑麦、绿豆、大豆、拟南芥、蒺藜、苜蓿、榆钱、菠菜等植物中克隆出了多个与脯氨酸合成酶相关的基因,其中包括P5CS、PSCR、OA T和Pro T[627].鸟氨酸循环中62OA T基因已在大豆、苜蓿、拟南芥等中得到克隆.转运蛋白Pro T基因在拟南芥、番茄、水稻、大麦等中得到克隆. WU[8]研究发现,在拟南芥中P5CS是由2个不同调节基因编码的.该基因有l9个内含子和20个外显子定位于2号染色体7815位置上的At P5CS1基因可以在大多数植物器官中表达,但在分裂细胞中沉默;定位于3号染色体l0113位置上的At P5CS2基因转录产物,占植物组织中P5CSmRNA总量的20%~40%,并在分裂细胞中负责合成P5CSut RNA,At P5CS转录产物的积累具有组织特异性.同样在番茄的核基因组中,也发现有2个脯氨酸基因座(1oci):一个是特异性双功能tom Pro2基因座;另一个基因座为tom Prol,该基因座编码一个多顺反子mRNA,指导72GK和GSAD H2种多肽的合成[9].P5CS基因广泛存在于单子叶和双子叶植物中;P5CR基因有7个外显子,6个内含子,用探针将其定位于拟南芥的5号染色体上;62OA T基因有l0个外显子,9个内含子,该基因定位于拟南芥的5号染色体上;脯氨酸转运蛋白的基因有8个外显子,7个内含子,该基因定位于水稻的3号染色体上,在拟南芥中脯氨酸转运蛋白是2个不同调节基因编码的,该基因有7个内含子6个外显子,定位于2、3号染色体上. 11213 脯氨酸在转基因植物中的表现 将P5CS 和62OA T分别转入烟草植株中,发现在转基因烟草(N icoti ana t abacum)中脯氨酸含量明显提高且与对照相比,耐盐性也有所提高,转入其他植物也得到同样的结论.将从乌头叶豇豆中克隆的P5cs基因与CaMV35S启动子连接后转入烟草中,发现转基因烟草的脯氨酸含量比对照高10~18倍.在干旱胁迫下转基因烟草落叶少且迟.将拟南芥的62OA T基因导入烟草,使脯氨酸累积增加2倍,转基因的幼苗可在200mmol/L NaC1中正常生长;将此基因导人烟草,使脯氨酸累积增加2倍,转基因的幼苗可在200mmol/L NaC1中正常生长.杨成民[10]从豇豆中分离到的P5CS为目的基因,通过基因枪与选择标记bar基因共转化获得转基因黑麦草再生植株.K ishor[11]等将P5CS基因导入烟草,转基因植株脯氨酸含量比对照高10~18倍;在盐胁迫条件下,与对照相比转基因植株根的长度和干重增加,植株生物产量提高花发育得更好,果荚数目和每荚的种子数也增加.干旱条件下植物体内脯氨酸积累是否有利于植株抗旱,目前存在相当大的争议.尽管对于许多植物来说,脯氨酸的积累在逆境中的生理机制还未完全清楚,但普遍认为在干旱胁迫下脯氨酸的升高有利于植物对干旱胁迫的抵抗,耐旱植物(品种)通比不耐旱植物(品种)具有较强的脯氨酸积累能力,这些积累的脯氨酸通过质量作用定律进行渗透调节,从而增强植株保水能力.李燕等[12]在皂角苗木对干旱胁迫的生理生化反应的研究中发现,在干旱胁迫下,皂角的脯氨酸含量先增后减,这种变化趋势在一定程度上反映了脯氨酸在干旱胁迫下对植物体内氨积累所造成的毒害发挥消除作用.在干旱条件下植物各器官脯氨酸的积累存在差异.Bajji等发现滨藜中脯氨酸含量的增加在叶中较显著,对根没有显著影响.也有研究发现,根的脯氨酸增加的幅度比茎叶中都大[13].2 保护酶体系保护酶体系包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CA T)和抗坏血酸过氧化物酶(AsP)等,它们协同抵抗干旱胁迫诱导的氧化伤害.其中SOD酶可以催化O22,发生歧化作用起着清除O22的解毒作用,而CA T, POD,ASP能够清除歧化作用产生的H2O2造成的伤害.在整个防御系统中SOD是所有植物在氧・92・2008年12月葛水莲等:植物抗旱基因工程的研究进展第6期化作用中起重要作用的抗氧化酶.根据其结合的金属离子的不同.SOD 可分为Cu/Zn 2SOD 、Mn 2SOD 和Fe 2SOD 三种类型.Cu 2SOD 主要在叶绿体和细胞质中,Mn 2SOD 主要存在于线粒体中,Fe 2SOD 则主要存在于叶绿体中.将烟草的Mn 2SOD 2cDNA 导入苜蓿后,转基因苜蓿的抗旱性得到了提高,将Mn 2SOD 基因定位到烟草的叶绿体和线粒体上,发现也能表达其基因.进一步研究发现,在叶绿体中Mn 2SOD 的过量表达使烟草受干旱所引起的氧化伤害程度比对照明显减轻,但线粒体中增加的Mn 2SOD 活性对烟草耐氧化胁迫能力没多大影响.另外,表达拟南芥Fe 2SOD 的转基因烟草、表达番茄Cu/Zn 2SOD 的转基因烟草、过量表达豌豆Cu/Zn 2SOD 的转基因烟草均能增强抵抗干旱引起的氧化胁迫能力.3 植物抗旱基因与遗传的研究311 保护生物大分子及膜结构的蛋白质31111 水通道蛋白(aquapofin ) 水通道蛋白是指作为跨膜通道的主嵌入蛋白(M IP )家族中具有运输水分功能的一类蛋白质,能够促进和调节水分跨膜的被动交换,包括植物体内的跨细胞和胞内水分流动,是水分跨膜运输的重要途径之一.水通道蛋白属于主要内在蛋白家族成员,最早在哺乳动物的某些特殊的细胞类型里发现的如红细胞肾小管细胞等.在植物体内,水通道蛋白分布于液泡膜上的液泡膜嵌入蛋白(TIP ),分布于细胞质膜上的胞质膜嵌入蛋白(PIP )和根瘤细胞中.大多数水通道蛋白在维管组织和幼嫩组织的细胞中表达显著.目前对于水桶道蛋白基因的研究还有待于进一步发展.31112 调渗蛋白 在高盐浓度下,培养的烟草细胞中多种蛋白质的含量发生了变化.其中一种分子量为26KD 的蛋白质的增加尤为显著.高达细胞总蛋白量的12%以上.该蛋白的积累则要求氯化钠或低水势的存在[14].除烟草外其它一些植物西红柿、马铃薯、胡萝卜、棉花、小米和大豆的培养细胞经ABA 处理后也出现了同OSM 起免疫交叉反应且分子量约为26KD 的蛋白质.这表明OSM 可能是一种普遍存在于高等植物的蛋白质.目前已得到由农杆菌介导将OSM 的启动子和B 2葡萄糖苷醛酶(GU S )报告基因嵌合在一起的转基因烟草.31113 胚胎后期发生丰富蛋白(L EA 蛋白) 在种子后期发育过程当中,L EA 蛋白随种子的脱水成熟其含量增加.在胁迫条件下L EA 蛋白在植物细胞中起保护作用,这种保护作用对于植物在极端压力条件下是必要的.根据L EA 的结构[15]推测L EA 蛋白可能有以下三方面的作用:1)作为脱水保护剂.由于L EA 蛋白在结构上富含不带电荷的亲水氨基酸,它们既能像脯氨酸那样,通过与细胞内的其它蛋白发生相互作用,使其结构保持稳定,又可能给细胞内的束缚水提供了一个结合的衬质,从而使细胞结构在脱水中不致遭受更大的破坏.2)作为一种调节蛋白而参与植物渗透调节.3)通过与核酸结合而调节细胞内其它基因的表达.312 编码抗旱转录因子的调节基因由于在逆境条件下与逆境相关的转录因子能跟调节功能基因的表达和信号转导,它们在转基因植物中的过量表达会激活许多抗逆功能基因同时表达,因此可提高植物的耐旱性.DREB 是目前研究较多的抗非生物胁迫的转录因子.Xiong [16217]利用差示显示法从干旱处理的拟南芥中克隆了一批受干旱诱导的基因rd 基因,对rd29A 基因启动子进行分析揭示了一个与干旱、高盐及低温胁迫应答基因有关的DRE 顺式作用元件,并克隆了3个与DRE 元件结合的转录因子,用干旱或高盐处理10min ,DREB2A 和DREB2B 被快速强烈诱导,并且不受外源ABA 的诱导.Hara [18]利用CaMV35S 启动子和逆境诱导特异启动子rd29A ,将DREB1A 的cD 2NA 导入拟南芥,DREB1A 的过量表达激活许多耐逆境功能基因的表达如rd29A 、K inl 、Con5a 、Cor6和P5CS 等转基因植株耐旱性、耐盐性和耐冻性提高.4 展 望近年来植物抗旱、耐盐碱基因工程的研究受到了越来越广泛的关注和重视.中国北方地区土壤干旱、盐渍化是影响农牧生产的重要因素.通过筛选与植物的抗旱性、抗盐碱性相关的基因,研究其功能,揭示其相关因子的信号转导途径,采用现代生物技术手段进行转基因育种、获得耐早和耐盐碱能力强的新品种已成为解决我国中西部干旱、半干旱地区农牧业发展种质资源矛盾的有效手段之一.目前利用基因工程技术培育抗旱品种主要有两种策略:1)增加植物渗透性代谢产物的合成能力,使植物在水分胁迫下能合成更多的渗透调节物质如脯・03・2008年12月 河北北方学院学报(自然科学版) 第6期氨酸,甘露醇、甜菜碱、海藻糖等,以提高植物的渗透调节能力,从而增强植物的抗旱性;2)增强植物对活性氧自由基的清除能力,使植物在水分胁迫下过量表达一些酶(如SOD,POD,CA T等),以有效地排除有害的活性氧自由基,从而提高细胞耐脱水的能力[19220].在通过基因工程方法进行抗旱分子育种的过程中发现存在一些问题:1)由于人们对植物抗旱的分子机制缺乏了解,抗旱分子育种还有很大的盲目性;2)采用单基因策略提高植物的抗旱性对有的基因和植物有效,对有的基因和植物却无效;3)利用35S启动子与抗旱基因组合在提高植物抗旱性的同时也造成植物畸形发育;4)外源基因表达水平不稳定.尽管目前抗旱分子育种面临不少的问题,但随着抗旱分子生物学研究的深入和生物技术的进步,相信不久的将来会有大量的抗旱基因作物应用到生产实践中来.参考文献:[1]Blum A.Drought resistance,water2use efficiency,andyield potential2are they compatible,dissonant,or mutu2 ally exclusive[J].Austral J Agricult Research,2005,56(11):115921168[2]段德玉,刘小京,李存桢,等.N素营养对NaCI胁迫下盐地碱蓬幼苗生长及渗透调节物质变化的影响[J].草业学报,2005,14(01):63268[3]Hu H,Dai M,Yao J,et al.Overexpressing NAM,A T2A F,and CUC(NAC)transcription factor enhancesdrought resistance and salt tolerance in rice[J].Proceed Nation Acad Sci,2006,103(35):12987[4]Song S Q,Lei Y B,Tian X R.Proline MetabolismandCross2Tolerance to salinity and heat stress in germina2 ting wheat seeds[J].Russ J Plant Physiol,2005,52(06):7932800[5]Roosens N H,Bitar F A,Loenders K,et al.Overexpres2sion of ornithine2δ2aminotransferase increases proline bi2 osynthesis and confers osmotolerance in transgenic plants[J].Molec Breed,2002,9(02):73280[6]Yu S W,Li R T,Zhang R D.Fluore scence in situ Hy2bridization of Pyrroline252carboxylate Synthetase(P5CS)G ene on Rice Chromosome[J].J Huazhong AgricultUniv,2002.21(01):124[7]季孔庶,孙志勇,方彦.林木抗旱性研究进展[J].南京林业大学学报:自然科学版,2006,30(06):1232128[8]Wu Q,Xia R.Effects of arbuscular mycorrhizal f ungi onleaf solutes and root absorption areas of trifoliate orangeseedlings under water stress conditions[J].Front For2 estry in China,2006,(03):3122317[9]Yang W L,Hu Z A,Wang H X,et al.The protectiverole of xanthophyll cycle in resurrection angiosperm boea hygrometrica during dehydration and rehydration [J].Acta Botanica Sinica,2003,45(03):3072310 [10]杨成民,王宏芝,孙振元,等.利用基因枪共转化法获得转bar与P5CS基因黑麦草[J].草地学报,2005,13(01):34238[11]K ishor P B K,Sangam S,Amrutha R N,et al.Regula2tion of proline biosynthesis,degradation,uptake and transport in higher plants:its implications in plantgrowth and abiotic stress tolerance[J].Curr Sci,2005, 88:4242438[12]李燕,孙明高,孔艳菊,等.皂角苗木对干旱胁迫的生理生化反应[J].华南农业大学学报,2006,27(03):66269 [13]Bajji M,L utts S,K inet J.Water deficit effects on solutecontribution to osmotic adjustment as a f unction of leaf ageing in three durum wheat(Triticum durum Desf.)cultivars performing differently in arid conditions[J].Plant Sci,2001,160(04):6692681[14]李燕,薛立,吴敏.树木抗旱机理研究进展[J].生态学杂志2007,26(11):195721966[15]张林生,赵文明.L EA蛋白与植物的抗旱性[J].植物生理学通讯,2003,39(01):61266[16]Xiong L,Wang R G,Mao G,et al.Identification ofdrought tolerance determinants by genetic analysis ofroot response to drought stress and abscisic acid[J].Plant Physiol,2006,142:106521074[17]Fujita Y,Fujita M,Satoh R,et al.AREB1is a tran2scription activator of novel ABRE2dependent ABA sig2naling that enhances drought stress tolerance in Arabi2dop sis[J].Plant Cell,2005,17:347023488[18]Lizana C,Wentworth M,Martinez J P,et al.Differenti2al adaptation of two varieties of common bean to abiotic stress I.Effects of drought on yield and photosynthesis [J].J Experim Botany,2006,57,(03):6852697 [19]Hara M,Fujinaga M,Kuboi T.Radical scavenging ac2tivity and oxidative modification of citrus dehydrin[J].Plant Physiol Biochem,2004,42:6572662[20]张成军,解恒才,郭佳秋,等.干旱对4种木本植物幼苗脯氨酸含量的影响[J].南京林业大学学报:自然科学版,2005,29(05):33236[责任编辑:刘守义]・13・2008年12月葛水莲等:植物抗旱基因工程的研究进展第6期。
植物抗旱抗旱机理及其相关基因研究进展
植物抗旱抗旱机理及其相关基因研究进展植物抗旱是指植物在干旱等恶劣环境下,能够通过一系列适应性生理和生化机制来维持生长和发育的能力。
植物抗旱机理主要涉及到水分利用效率提高、减少蒸腾速率、促进根系发育和增强细胞膜的稳定性等方面。
近年来,随着基因测序技术的快速发展,植物抗旱相关基因的研究进展迅速。
植物的抗旱机制主要包括避免脱水、渐进脱水耐受和耐旱维持三个阶段。
避免脱水是指植物通过调节气孔的开闭来减少水分蒸腾,防止脱水。
渐进脱水耐受是指植物在长期干旱时,通过一系列适应性调节,逐渐适应干旱环境并维持正常生长和发育。
耐旱维持是指植物在长时间干旱条件下,能够维持细胞内水分平衡,避免细胞脱水,保持生长和发育活力。
植物抗旱的分子机制涉及到多个基因家族的调控。
其中,ABRE (Abscisic Acid-responsive Element)、DRE(Drought-responsive Element)和LEA(Late Embryogenesis Abundant)等基因家族被广泛研究。
ABRE基因家族与植物在胁迫条件下的ABA合成与信号传导过程中发挥重要作用,参与调控植物抗旱能力的提高。
DRE基因家族是植物耐旱途径基础基因,参与调控植物在水分胁迫下的抗逆应答。
LEA基因家族的蛋白质在干旱逆境下的活化与折叠起到了关键作用,参与细胞质和叶绿体中蛋白质合成抗旱蛋白并降低脱水损伤。
除了以上基因家族,研究还发现其他抗旱相关基因,如水通道蛋白基因、抗旱酶基因、氮代谢酶基因等。
水通道蛋白基因能够调节植物细胞水分传输,提高植物的抗旱能力。
抗旱酶基因参与植物在干旱逆境下的生理代谢过程,保护细胞膜的完整性和功能。
氮代谢酶基因在植物受到干旱胁迫时能够促进植物根系的发育,增加植物对水分的吸收能力。
基因研究的进展有助于提高植物的抗旱能力,并为植物育种和遗传改良提供了理论基础。
通过转基因技术,研究者可以将抗旱相关基因导入非耐旱植物中,提高其抗旱能力。
高粱抗旱性研究进展
㊀山东农业科学㊀2024ꎬ56(1):164~173ShandongAgriculturalSciences㊀DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2024.01.022收稿日期:2023-03-27基金项目:国家重点研发计划项目(2022YFD1500602-1)ꎻ国家现代农业产业技术体系项目(CARS-06-14.5-B16)作者简介:王晓东(1996 )ꎬ男ꎬ研究实习员ꎬ主要从事高粱栽培与育种工作ꎮE-mail:1009124737@qq.com通信作者:肖继兵(1976 )ꎬ男ꎬ研究员ꎬ主要从事旱作农业研究ꎮE-mail:xiaojb2004@126.com高粱抗旱性研究进展王晓东ꎬ李俊志ꎬ窦爽ꎬ肖继兵ꎬ辛宗绪ꎬ吴宏生ꎬ朱晓东(辽宁省旱地农林研究所ꎬ辽宁朝阳㊀122000)㊀㊀摘要:干旱是限制植物生产力和威胁粮食安全的重要因素之一ꎮ高粱(SorghumbicolorL.Moench)是全球主粮和饲料作物ꎬ因其具有较强的抗旱性和能够在恶劣的环境条件下生存而广泛种植于干旱半干旱地区ꎬ在作物抗旱领域中具有重要的研究价值ꎮ深入解析干旱胁迫下高粱的形态和生理特性㊁鉴定和筛选抗旱品种㊁挖掘相关抗旱基因ꎬ对推动高粱抗旱育种进程㊁提高品种抗旱性㊁提高产量具有重要意义ꎮ本文从干旱胁迫对高粱生长的影响㊁高粱对干旱胁迫的生理响应㊁高粱耐旱性鉴定方法和鉴定指标㊁高粱抗旱性分子生物学和提高高粱抗旱性方法5个方面对高粱抗旱性研究进展进行综述ꎬ并对高粱抗旱性研究方向进行展望ꎬ以期为进一步研究高粱抗旱的形态㊁生理特性及分子机制奠定基础ꎮ关键词:高粱ꎻ干旱胁迫ꎻ生理响应ꎻ分子生物学ꎻ鉴定ꎻ抗旱性中图分类号:S514㊀㊀文献标识号:A㊀㊀文章编号:1001-4942(2024)01-0164-10ResearchProgressonDroughtResistanceofSorghumWangXiaodongꎬLiJunzhiꎬDouShuangꎬXiaoJibingꎬXinZongxuꎬWuHongshengꎬZhuXiaodong(LiaoningInstituteofAgriculture&ForestryinAridAreasꎬChaoyang122000ꎬChina)Abstract㊀Droughtisoneoftheimportantfactorsthatlimitplantproductivityandthreatenfoodsecurity.Asaglobalstaplefoodandforagecropꎬsorghum(SorghumbicolorL.Moench)hasgoodcharacteristicsindroughtresistancealongwithabilitiestosurviveinharshenvironmentsꎬandiswidelyplantedinaridandsemi ̄aridareasꎬwhichgiveitimportantresearchvaluesinthefieldofcropdroughtresistance.Itisofgreatsignifi ̄canceinacceleratingbreedingprocessofdrought ̄resistantvarietiesandincreasingdroughtresistanceandyieldofsorghumtofurtheranalyzethemorphologicalandphysiologicalcharacteristicsunderdroughtstressꎬidentifyandscreentheexcellentdrought ̄resistantvarietiesꎬanddigoutdrought ̄resistantgenes.Inthispaperꎬthere ̄searchprogressindroughtresistanceofsorghumwasreviewedfrominfluencesofdroughtstressonsorghumgrowthꎬphysiologicalresponsesofsorghumtodroughtstressꎬidentificationmethodsandindexesꎬmolecularbiologyꎬandimprovementmethodsꎬandtheprospectofresearchdirectionofdroughtresistanceinsorghumwasproposedꎬinordertolayafoundationforfurtherstudyofthemorphologicalandphysiologicalcharacteris ̄ticsandmolecularmechanismsofdroughtresistanceinsorghum.Keywords㊀SorghumꎻDroughtstressꎻPhysiologicalresponseꎻMolecularbiologyꎻIdentificationꎻDroughtresistance㊀㊀干旱是限制作物生产发展的最重要因素之一ꎬ有发生范围广㊁频次高㊁持续时间长等特点[1-2]ꎮ目前ꎬ世界上有三分之一以上总陆地面积的干旱和半干旱地区ꎬ我国现有干旱㊁半干旱和亚湿润干旱区近300万km2ꎬ占国土总面积近四成[3]ꎮ其中ꎬ绝大部分是因为缺乏灌溉条件而以雨养农业为主ꎬ其作物产量占全国总产量的比重较小ꎮ选育耐旱性强的作物品种是保证干旱地区高产稳产的重要举措ꎮ干旱可能会发生在作物生长发育的各个阶段ꎮ然而ꎬ在干旱和半干旱地区ꎬ作物生长季开始和结束时发生干旱的可能性较高ꎮ生长季节开始时的干旱胁迫严重影响植物的生长发育ꎮ如果干旱发生在作物开花期或灌浆期ꎬ可能会导致产量严重下降或歉收[4]ꎮ高粱(SorghumbicolorL.Moench)是禾本科一年生草本植物ꎬ主要种植于热带㊁亚热带和温带的干旱半干旱区ꎬ也是我国主要的杂粮作物之一ꎬ是重要的酿用㊁食用㊁饲用㊁帚用作物ꎬ同时也是全球仅次于水稻㊁玉米㊁小麦㊁大豆种植面积的第五大粮食作物ꎮ高粱具有很强的抗旱㊁耐涝㊁耐盐碱㊁耐瘠薄㊁耐高温等抗逆特性[5]ꎮ高粱不同品种间抗旱能力存在较大差异ꎮ近些年从多个方面开展了高粱抗旱性遗传和抗旱品种选育相关研究[6-7]ꎮ本文综述干旱胁迫对高粱生长的影响㊁高粱耐旱性鉴定方法和鉴定指标ꎬ以及高粱对干旱的生理响应ꎬ并从转录组分析㊁抗旱QTL定位和全基因组关联分析方面进行梳理和整合ꎬ并对高粱抗旱性的分子调控机制㊁鉴定体系及抗旱性品种选育进行展望ꎬ以期为后人开展相关研究提供理论参考ꎮ1㊀干旱胁迫对高粱生长的影响1.1㊀干旱胁迫对高粱种子萌发和幼苗生长的影响水分缺乏使植物发育迟缓ꎬ干旱胁迫达到一定阈值时ꎬ会显著抑制种子萌发和幼苗生长[8]ꎮ王志恒等[9]研究了高粱萌发阶段受干旱胁迫的响应特性ꎬ发现随着干旱胁迫程度的增加ꎬ高粱种子的发芽率㊁发芽势等显著降低ꎬ种子残留干重逐渐增加ꎬ干物质转移㊁转化效率逐渐下降ꎬ根冠比逐渐增大ꎬ比根重逐渐减小ꎮ长期干旱胁迫降低幼苗的苗高㊁叶长ꎬ幼苗地上部和根的鲜重不同程度的下降[10]ꎮ1.2㊀高粱萌发期及苗期的抗旱性研究大多数农作物在种子萌发㊁幼苗形成和开花阶段对干旱胁迫较为敏感ꎬ干旱胁迫下萌发期和苗期表现出耐旱性是作物生长发育的前提ꎮ对高粱萌发期和苗期耐旱性的研究发现ꎬ高粱萌发期和苗期的耐旱性是不一致的ꎮ张笑笑[11]对73份高粱品种进行萌发期和苗期耐旱性鉴定ꎬ初筛结果发现萌发期和苗期都抗旱的品种5份ꎬ苗期抗旱品种10份ꎬ田间和室内采用多重表型分析最终得到苗期抗旱品种1份ꎮ郝培彤等[12]在20%PEG干旱胁迫下评价21份饲草高粱材料的耐旱性ꎬ筛选出萌发期耐旱和苗期耐旱材料各3份ꎬ萌发期和苗期共同耐旱材料1份ꎮ由此可见ꎬ高粱品种萌发期和苗期耐旱性是不同的ꎬ萌发期耐旱品种苗期不一定耐旱ꎬ苗期耐旱品种萌发期也可能不耐旱ꎮ针对高粱萌发期和苗期耐旱性ꎬ许多学者是分开进行研究的ꎬ而在大田干旱生产条件下ꎬ种子从萌发阶段就已经受到干旱胁迫的影响ꎮ因此研究植物的耐旱性ꎬ应该从种子萌发到苗期进行不间断的干旱胁迫处理ꎬ这样可以更加全面地反映出植物在萌发期和苗期对干旱胁迫的各种反应ꎮ1.3㊀干旱胁迫对高粱光合作用的影响Zhang等[13]研究发现ꎬ在干旱胁迫处理后ꎬ高粱叶片叶绿素总含量及叶绿素a㊁叶绿素b含量降低ꎬ且叶绿素a的降低幅度显著大于叶绿素bꎮ干旱胁迫下叶绿素含量降低主要是由于叶绿素生物合成下降ꎬ从而导致叶绿素加速分解ꎮ植物进行光合作用时ꎬ要保证充足的光照ꎬ然而光照过强ꎬ会造成叶片吸收的光能超出同化所需ꎬ进而造成光抑制或者光破坏[14]ꎮ因此植物会通过植物激素㊁外源物质等来减缓由于光能过多引起的光抑制ꎬ促进光合活性ꎬ避免PSⅡ系统受到破坏[15]ꎮ张姣等[16]的研究表明ꎬ干旱胁迫下ꎬ高粱叶片的净光合速率(Pn)㊁气孔导度(Gs)㊁最大光化学效率(Fv/Fm)㊁光化学淬灭系数(qP)㊁电子传递速率(ETR)出现不同程度的下降ꎬ初始荧光(Fo)与对照组相比有所升高ꎬZhang等[13]也得出相同的结论ꎮ说明干旱胁迫会使光合相关酶活性丧失ꎬ导致光能过剩而产生积累ꎬ通过热耗散等途径消耗多余的光能ꎬ可以让作物适应干旱胁迫环境ꎮ干旱胁迫导致光合作用能力下降主要原因是非气孔限制[17]ꎮ王祁等[18]的研究还发现ꎬ在轻度干旱胁迫下ꎬ高粱叶片PSⅡ系统结构和功能损伤较小ꎬ然而在重度胁迫下ꎬ叶片PSⅡ系统遭到破坏ꎬ进而发生光抑制现象ꎮ光合作用的强弱可以直接反映出植物抵御干旱胁迫的能力ꎬ保证叶绿素含量的稳定㊁保护光合相关酶活性ꎬ可抵561㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王晓东ꎬ等:高粱抗旱性研究进展御干旱胁迫对其光合作用的影响ꎮ2㊀高粱对干旱胁迫的生理响应2.1㊀有机渗透调节干旱胁迫下ꎬ植物细胞通过调节可溶性物质的浓度来维持细胞内外渗透压平衡ꎬ进而应对干旱胁迫带来的影响ꎮ参与渗透调节的物质可分为两类ꎬ第一类是外界环境提供的无机离子ꎬ第二类是胞内合成的有机溶质ꎮ第二类渗透调节物质主要包括甜菜碱㊁脯氨酸㊁糖和糖醇等有机化合物[19]ꎮ近些年来ꎬ可溶性蛋白㊁可溶性糖㊁脯氨酸等渗透调节物质被广泛研究ꎮ脯氨酸的积累可以使许多植物应对渗透胁迫反应ꎬ作为一种相容的渗透剂ꎬ其可以提高细胞或组织的保水能力ꎬ同时可以作为碳水化合物的来源ꎻ作为一种酶的保护剂ꎬ也可以减轻蛋白质变性ꎬ具有很强的抗氧化能力ꎮ张玉霞等[20]用聚乙二醇溶液模拟干旱胁迫ꎬ结果表明饲用高粱品种脯氨酸含量与对照组相比显著升高ꎮ王艳秋等[21]研究发现ꎬ干旱胁迫下高粱叶片的脯氨酸含量显著增加ꎬ且其显著性较大ꎬ是高粱调节适应干旱胁迫的重要指标ꎮ可见ꎬ脯氨酸在干旱胁迫下至关重要ꎬ但是也有不同观点:董喜存等[22]的研究发现ꎬ在不同程度干旱胁迫下ꎬ甜高粱品种叶片脯氨酸含量变化趋势并不一致ꎮ因此认为ꎬ单纯测定脯氨酸含量不能准确反映抗旱性ꎬ可以将其作为一种抗旱胁迫下的保护性反应ꎮ可溶性糖主要包括葡萄糖㊁蔗糖㊁果糖和半乳糖ꎮ可溶性糖既可以为植物生长发育提供能量ꎬ并且具有信号功能ꎬ又是植物生长发育的重要调节因子[23]ꎮ何玮等[24]研究不同干旱胁迫下甜高粱叶片可溶性糖含量的变化时发现ꎬ轻度干旱胁迫下可溶性糖含量先下降然后突然升高ꎬ再下降之后突然升到最高ꎻ在重度干旱胁迫下ꎬ可溶性糖含量先下降ꎬ然后升到最高ꎬ再下降ꎮ总体表明ꎬ在受到干旱胁迫时ꎬ高粱叶片可溶性糖含量整体呈升高趋势ꎮGill等[25]研究不同非生物胁迫下高粱可溶性糖含量变化的结果表明ꎬ干旱胁迫下总的可溶性糖含量呈升高趋势且高于对照ꎬ其中果糖含量始终高于葡萄糖和蔗糖ꎮ此外ꎬ在干旱胁迫下ꎬ可溶性糖还可以作为蛋白质渗透保护剂而发挥作用ꎮ可溶性蛋白含量的变化可以直接反映植物渗透调节能力的大小ꎬ它不仅可以提高细胞的保水能力ꎬ而且可以有效地保护生物膜以及细胞的生命物质ꎮ荣少英等[26]研究不同高粱品种在不同干旱条件下可溶性蛋白的变化时发现ꎬ甜高粱㊁普通高粱和对照相比可溶性蛋白含量随着干旱胁迫的加剧呈上升趋势ꎮ有研究[27-28]表明ꎬ在逆境胁迫下ꎬ膜质过氧化产物丙二醛抑制蛋白质的生物合成ꎻ长时间重度干旱使植物体内分解代谢加剧ꎬ导致大量可溶性蛋白分解ꎮ2.2㊀抗氧化防御系统活性氧具有很强的氧化能力ꎮ植物在进行有氧代谢的过程中会产生活性氧ꎬ低浓度的活性氧可以作为信号分子参与调控植物非生物胁迫反应[29-30]ꎮ抗氧化防御系统具有维持植物体内活性氧平衡的功能[31]ꎮ该系统包括两大类ꎬ一类是非酶促抗氧化物质ꎬ其中最为重要的是水溶性抗坏血酸(Asc)ꎬ其次是谷胱甘肽(GSH)ꎬ还有脂溶性生育酚㊁类胡萝卜素等ꎻ另一类是酶促抗氧化剂ꎬ包括超氧化物歧化酶(SOD)㊁过氧化物酶(POD)和过氧化氢酶(CAT)[32]ꎮ植物抗氧化调控系统中ꎬ提高酶活性和抗氧化物的表达量是作物抵御逆境胁迫的关键因素ꎮ陈敏菊等[33]研究发现ꎬ高粱幼苗叶片SOD和CAT活性因干旱胁迫的强度不同而存在差异ꎬ土壤含水量在55%~60%时SOD活性逐渐升高ꎬ随着干旱程度加剧ꎬSOD活性逐渐下降ꎻCAT活性在土壤含水量为40%~60%时高于对照ꎬ随着干旱加剧活性逐渐降低ꎻPOD活性的变化规律和SOD一致ꎮ这表明轻度干旱胁迫可以提高高粱幼苗叶片抗氧化酶活性ꎮ卢峰等[34]研究高粱幼苗不同生长阶段受到干旱胁迫时酶活性的变化情况表明ꎬ胁迫6㊁8㊁12㊁24d时SOD活性显著高于对照ꎬ干旱胁迫12d时酶活性达到峰值ꎬPOD活性的变化和SOD基本一致ꎮ说明高粱幼苗在受到干旱胁迫时ꎬ通过提高叶片保护酶活性来抵御其危害ꎮ2.3㊀激素调节植物激素参与干旱胁迫调节ꎮ通过外源激素来提高作物的抗旱性是现阶段重要的科学途径之一[35-36]ꎮ细胞分裂素通过促进细胞分裂ꎬ延缓植物叶片中叶绿素的降解来提高植物的抗旱性[37]ꎮ661山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第56卷㊀生长素可以正向调控四种抗氧化酶(SOD㊁CAT㊁POD㊁GR)活性来降低干旱胁迫对植株的抑制作用ꎻ同时生长素可以通过调节根生物量㊁增加根的分支来提高水分吸收效率进而提高抗旱性[38]ꎮ脱落酸(ABA)对植物在逆境胁迫下的应答起着关键作用ꎬ其参与气孔的开关ꎬ保卫细胞的通道活动ꎬ调节转录钙调蛋白的表达ꎬ诱导相关基因的表达[39]ꎮ植物在受到干旱胁迫时ꎬ也可以通过减少赤霉素的方式来适应胁迫环境[40]ꎮ关于干旱胁迫下植物激素调节机制ꎬ国内外对水稻㊁小麦等作物的报道较多ꎬ逆境胁迫下高粱中植物激素的作用机制还需进一步探讨和研究ꎮ高粱的抗旱性在生理上涉及到三个方面:第一是干旱胁迫下需要维持高的含水量ꎬ维持高粱水分平衡ꎬ通过增加脯氨酸㊁可溶性糖㊁可溶性蛋白质等物质含量提高渗透调节能力ꎬ维持细胞或者组织持水ꎬ进而维持膨压ꎻ第二是干旱胁迫下保证其基本的生理功能ꎬ通过激素调节㊁酶活性提高等来维持高粱正常的生理功能ꎻ第三是干旱胁迫解除时高粱含水量和生理功能的恢复能力ꎮ做好以上三点ꎬ可以有效地抵御干旱胁迫带来的负面影响ꎮ3㊀高粱耐旱性鉴定方法及鉴定指标因为各个时期的耐旱机制不同ꎬ一般将高粱耐旱性鉴定分为萌发期㊁苗期和全生育期鉴定ꎮ萌发期是作物在干旱胁迫条件下能否完成生长周期的关键时期[41]ꎬ对高粱群体结构和数量起着决定性作用ꎮ高粱萌发期抗旱性鉴定多采用聚乙二醇(PEG)㊁葡萄糖溶液等模拟干旱胁迫环境进行ꎬ通过种子发芽率㊁萌发抗旱指数等反映高粱的抗旱性ꎮ其中PEG-6000是目前被广泛应用的鉴定萌发期抗旱性较为理想的溶液ꎮ陈冰嬬等[41]使用15份保持系㊁18份恢复系和8份杂交种ꎬ通过PEG-6000水溶液模拟干旱胁迫环境ꎬ筛选出1份恢复系和1份保持系萌发期抗旱性亲本材料ꎻ通过抗旱性因子分析ꎬ认为萌发抗旱指数㊁根长和剩余干物质量可以作为高粱萌发期抗旱性筛选的鉴定指标ꎮ候文慧等[42]利用15%的聚乙二醇溶液进行干旱胁迫处理ꎬ采用隶属函数分析方法对8个饲用高粱萌发期抗旱性进行排序ꎬ得出SU9002为抗旱性最强的材料ꎬBJ0602为抗旱性最为敏感的材料ꎻ并利用主成分和聚类分析方法ꎬ对萌发期5个抗旱指标进行分析ꎬ结果表明ꎬ发芽指数和发芽率可以作为饲用高粱萌发期抗旱性评价的指标ꎮ采用聚乙二醇等高渗溶液不仅方法简单ꎬ而且排除了外界环境的干扰ꎬ可以获得更加准确的数据ꎬ有效地缩短了鉴定周期ꎬ提高鉴定效率ꎮ苗期是高粱整个生长发育阶段的关键时期之一ꎬ其生长好与坏直接影响着最终的产量和品质ꎬ因此ꎬ苗期抗旱性鉴定尤为重要ꎮ高粱苗期抗旱性鉴定方法可以分为三种ꎮ第一种较为常见的是使用PEG-6000溶液模拟干旱胁迫环境ꎮ赵晓倩[43]采用25%PEG-6000对259份高粱品种进行干旱胁迫处理ꎬ筛选出极抗旱品种14份㊁极敏感品种33份ꎬ并通过主成分分析方法对9个指标进行分析ꎬ结果表明ꎬ苗高㊁成活率㊁根冠比㊁根长和根鲜重可以作为评价高粱苗期抗旱性的指标ꎮ第二种是干旱复水法ꎬ是指在干旱胁迫后进行复水处理ꎬ用复水后的恢复能力指标评价高粱抗旱性ꎮ刘婷婷等[44]利用盆栽控水法对8个高粱品种幼苗进行干旱复水处理ꎬ通过研究生物量㊁水势㊁渗透式㊁光合参数等生理指标的变化情况来分析不同高粱品种的抗旱能力以及干旱适应能力和旱后复水恢复能力的关系ꎬ分析鉴定出了一份抗旱性强的品种辽杂21和旱后复水能力强的品种Moench.cv.Gadambaliaꎮ干旱胁迫时维持较高的叶片净光合速率和相对含水量有助于其提高干旱复水能力ꎬ因此ꎬ叶片净光合速率和相对含水量可以作为筛选高粱苗期抗旱性的生理指标ꎮ第三种是反复干旱法ꎬ是指通过高粱苗期连续两次干旱胁迫控水ꎬ以材料存活率为评价指标的一种鉴定方法ꎬ适用于大批量的品种鉴定ꎮ李舒凡[45]通过反复干旱法ꎬ对200份高粱品种进行苗期耐旱性鉴定ꎬ将叶片与根系的长势作为抗旱性的评价指标ꎬ能够从存活的质量上区别品种的抗旱性差异ꎬ进一步提高了筛选抗旱性品种的准确性ꎮ对高粱苗期抗旱性的鉴定只能反映出营养生长阶段的情况ꎬ需要结合生殖生长阶段的抗旱性ꎬ对不同品种抗旱能力进行综合评价ꎮ作物全生育期抗旱性鉴定对于抗旱新品种的选育㊁抗旱机制的研究以及抗旱基因的挖掘有着重要意义ꎬ共有两种鉴定方式ꎮ一种是通过人工761㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王晓东ꎬ等:高粱抗旱性研究进展控制水分和环境ꎬ通过干旱棚㊁人工气候箱等模拟干旱环境ꎬ研究各个生育期干旱胁迫对籽粒产量和品质的影响ꎮ汪灿等[46]通过在干旱棚内设置两个处理对50份酒用高粱材料进行成株期抗旱性鉴定ꎬ测定了成株期8个农艺性状ꎬ筛选出两个成株期酒用高粱抗旱性强的品种粱丰141-3和粱丰247-3ꎻ通过主成分㊁灰色关联度分析ꎬ认为分蘖数㊁穗粒数和单株粒重可作为酒用糯高粱资源成株期抗旱性评价指标ꎮ另一种是自然环境法ꎬ设置干旱和水地两个处理ꎬ操作简便ꎬ没有设备的要求ꎬ测定的结果更具说服力ꎬ但受环境因素影响较大ꎬ需要多年的试验数据进行支撑ꎮ袁闯等[47]采用自然环境法ꎬ设置灌水和干旱两个处理ꎬ通过测定高粱成熟期株高㊁穗重㊁千粒重㊁产量等10个性状ꎬ对22份不同品系的甜高粱进行成熟期耐旱性鉴定ꎬ筛选出3份抗旱品种和2份抗旱敏感性品种ꎻ通过主成分分析和逐步线性回归分析ꎬ认为千粒重㊁单株粒重㊁穗粒数和穗茎粗可以作为甜高粱成熟期抗旱性的评价指标ꎮ现阶段ꎬ高粱各抗旱指标评价鉴定基本都是局限于某一个时期ꎬ因此ꎬ需要综合高粱生长发育每个时期的指标来进行综合分析ꎬ建立综合指标评价体系ꎬ以提高高粱品种抗旱性鉴定的可靠性和真实性ꎮ4㊀高粱抗旱性分子生物学研究现阶段ꎬ国内外对于高粱抗旱性鉴定㊁抗旱生理生化以及干旱对农艺性状影响的研究已趋于完善ꎬ并且对于以基因为基础的转基因和分子标记技术也广泛应用到抗旱性分子遗传研究领域ꎬ通过转录组分析㊁QTL定位和全基因组关联分析(GWAS)构建分子遗传图谱ꎬ挖掘抗旱相关基因是高粱抗旱性分子遗传研究的发展方向ꎮ4.1㊀转录组分析转录组分析对于研究未知基因功能和特定调节基因的作用机制起着关键作用[48]ꎮ近年来新一代的转录组测序技术(RNA-seq)应运而生ꎬ它可以研究作物在干旱胁迫下的基因表达模式㊁分析抗旱分子机制㊁确定候选基因并进行功能注释[49]ꎮDugas等[50]通过渗透胁迫和脱落酸对高粱植物的转录组进行了分析ꎬ利用转录组测序技术揭示高粱的抗旱机制和基因筛选ꎮZhang等[51]使用转录组测序方法对干旱胁迫下高粱的叶和根进行转录组分析ꎬ鉴定出了差异表达基因ꎬ通过富集(GO)分析出耐旱性相关转录因子ꎮ王志恒等[52]用PEG-6000对甜高粱进行干旱胁迫ꎬ对高粱幼苗进行转录组测序分析并建立包含cDNA的文库ꎬ对差异表达基因进行GO富集分析和KEGG分析ꎬ发现有两个代谢通路与干旱胁迫响应相关ꎬ这两个通路都属于遗传信息代谢通路ꎮ表明甜高粱通过激活与干旱胁迫相关的蛋白表达和与碳水化合物相关的基因表达而增强渗透调节能力来响应干旱胁迫ꎮXu等[53]对两个抗旱性不同的高粱品种进行转录组分析ꎬ运用转录组测序技术确定了候选基因并进行了基因功能注释ꎬ分析了代谢通路ꎮ转录组测序技术促进了基因功能和表达水平的研究ꎬ通过分析干旱胁迫下基因的表达网络和富集通路ꎬ挖掘相关的新基因ꎬ可为今后进一步揭示干旱胁迫调节机制提供理论支撑ꎮ4.2㊀抗旱基因QTL定位植物的抗旱性是受多基因控制的数量性状ꎬ遗传复杂ꎮ干旱对作物的影响程度变化较大ꎬ常规育种方法费时㊁费力ꎬ难以选育优质的抗旱品种ꎮ随着分子生物学的发展ꎬQTL分析被广泛应用到分子遗传领域ꎮ赵辉[54]利用籽粒高粱654和甜高粱LTR108组成244个RIL群体ꎬ并构建了分子遗传连锁图谱ꎬ利用QTL定位分析耐旱性相关性状ꎬ分别在1㊁4㊁6㊁7染色体上检测出3㊁1㊁1㊁3个与抗旱系数相关的QTLs位点ꎬ并且在LG-1㊁LG-6㊁LG-7上定位到5个影响株高的QTLsꎮHaussmann等[55]用IS9830和N13与E36-1分别构建226个RIL群体ꎬ通过构建遗传图谱ꎬ发现标记分别位于10个连锁群和12连锁群中ꎬ利用复合区间作图检测到的3个性状的QTL数量在5个到8个之间ꎬ解释了31%和42%的遗传变异ꎮSakhi等[56]对107份孕穗期的高粱材料进行干旱胁迫处理ꎬ使用10条染色体上98个SSR标记位点的基因型数据对23对性状进行关联分析ꎬ鉴定出9个QTL与8个抗旱性状相关ꎮ持绿性是高粱干旱胁迫耐受性的一个组成部分ꎮSukumaran等[57]对Tx436(非持绿性)和00MN7645(持绿性)构建重组自交系进行遗传定位ꎬ利用全基因组单标记扫描和复合区间影射互补方法ꎬ检测到了15个与抗旱性状相关的QTLꎻ在1号染色体上发现了籽粒产量QTLꎬ解释了8%~16%的表型变异ꎬ861山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第56卷㊀在第2㊁6㊁9号染色体上发现了开花时间QTLꎬ解释了6%~11%的表型变异ꎬ在3㊁4号染色体上发现了持绿性QTLꎬ解释了8%~24%的表型变异ꎮ有关高粱QTL定位的研究可为后续高粱抗旱基因的精细定位㊁挖掘抗旱性相关基因和分析抗旱性机理奠定基础ꎮ4.3㊀全基因组关联分析(GWAS)GWAS是对多个个体在全基因组范围内进行遗传标记多态性检测ꎬ将基因型和表型进行关联并应用到寻找遗传图谱和挖掘性状相关候选基因的一种方法ꎮ近年来ꎬ为解析高粱抗旱性的遗传基础ꎬXin等[58]研究354份甜高粱在两种不同干旱处理下的株高性状ꎬ并将基于株高的平均生产力㊁干旱指数和胁迫耐受指数作为表型数据ꎬ结合甜高粱再测序获得的6186个SNPsꎬ使用三种不同的数量性状遗传模型进行GWAS分析ꎬ结果表明ꎬ在GLM㊁MLM和FarmCPU下分别检测到49㊁5个和25个耐旱相关的遗传位点ꎬ发现2个耐干旱的候选基因ꎬ其中ꎬSb08g019720.1基因与Athali ̄anaEFMTF基因同源ꎬ而Sb01g037050.1基因与玉米bZIPTF基因同源ꎮ高奇[59]用401份甜高粱材料进行干旱胁迫处理ꎬ并通过三个与干旱相关的性状筛选出耐旱评价指标并作为表型数据ꎬ利用高粱全基因组SNP标记ꎬ对三个性状耐旱指数进行全基因组关联分析ꎬ检测到两个株高性状基因可能是耐旱候选基因ꎮ赵晓倩[43]对259份高粱的7个苗期耐旱性相关性状进行全基因组关联分析ꎬ检测到102个显著的SNP位点ꎬ筛选出7个抗旱候选基因ꎮ通过全基因组关联分析揭示耐旱候选基因可为后续基因功能验证和高粱耐旱分子机制研究奠定基础ꎮ5㊀提高高粱抗旱性的方法5.1㊀传统育种方法传统的育种方法包括杂交育种㊁回交育种㊁系统选育㊁混合选育等ꎬ其中较为常见的是杂交育种ꎮ杨伟等[60]通过母本不育系7501A和父本恢复系RHMC386进行组配杂交ꎬ选育出优质抗旱高粱新品种潞杂9号ꎮ杨婷婷等[61]研究发现ꎬ以不育系SX605A为母本㊁以恢复系SX870为父本杂交育成高粱品种晋杂31号ꎮ其选育过程中ꎬ亲本都是通过杂交再连续多代自交得到的稳定品种ꎬ都具有很强的抗旱性ꎬ通过该方法可以提高选育品种的抗旱性ꎮ李继洪等[62]同样用不育系亲凡A为母本㊁以恢复系苏丹草黑壳3号为父本杂交选育出抗性强的品种吉草3号ꎮ由此可见ꎬ选育抗旱性强的不育系和恢复系是提高高粱杂交种耐旱性的重要途径ꎮ5.2㊀施加外源物质通过对高粱施加外源营养元素㊁生长调节剂以及进行种子引发等都可以提高其抗旱性ꎮAhmed等[63]发现硅营养对高粱的生长和生理参数有显著影响ꎬ通过在干旱胁迫条件下对高粱进行施加硅营养处理ꎬ可以提高耐旱基因型品种(系)的叶片水势㊁叶面积指数㊁蒸腾速率和SPAD值ꎬ同时在硅处理下净同化和相对生长量表现出最大值ꎮ张瑞栋等[64]分别用聚乙二醇(PEG)㊁KCl㊁CaCl2和水杨酸(SA)对高粱种子进行引发处理ꎬ显示其可以促进干旱胁迫下种子萌发率ꎬ促进胚根和胚芽的伸长ꎮ其原因可能是引发处理提高了胚芽内抗氧化酶活性ꎬ同时促进糖代谢ꎬ增加脯氨酸含量ꎬ解决了干旱胁迫下发芽率低㊁胚根胚芽生长受抑制的问题ꎬ进而提高高粱萌发期的抗旱性ꎮTounekti等[65]的研究也得到一致的结果ꎮKamali等[66]研究发现ꎬ使用固氮菌和丛枝菌根真菌(AMF)的高粱比不使用的受干旱胁迫程度较轻ꎬ固氮菌和丛枝菌根真菌可以减少高粱电解质渗漏和丙二醛含量ꎬ通过提高花青素㊁类胡萝卜素㊁黄酮㊁生长素(IAA)等物质含量和抗氧化酶活性来缓解干旱胁迫的影响ꎮKamali等[67]同时也发现细菌和丛枝菌根真菌也可以通过增加光合色素㊁可溶性蛋白等物质含量提高高粱渗透调节能力ꎬ继而应对干旱胁迫环境ꎮShehab等[68]研究发现ꎬ脱落酸(ABA)和茉莉酸甲酯(MeJA)可以减轻干旱胁迫引起的负面效应ꎬ降低干旱胁迫下高粱中氰化氢(HCN)的含量ꎮ植物生长调节剂(PGRs)改善高粱抗旱性归因于可溶性蛋白㊁丙二醛㊁活性氧㊁过氧化氢等的积累减少ꎬ光合参数的改善以及抗氧化酶活性的变化ꎬ进而提高其抗旱能力ꎬ特别在甜高粱中尤为明显ꎮ5.3㊀转基因方法植物抗旱性是受多基因控制的数量性状ꎬ其中包括参与调控植物活性氧㊁可溶性糖㊁抗氧化酶㊁叶绿素和ABA信号转导等生理生化过程的基961㊀第1期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王晓东ꎬ等:高粱抗旱性研究进展。
植物抗旱与保护机制的研究
植物抗旱与保护机制的研究由于全球持续的气候变化和水资源短缺,植物面临着越来越大的干旱压力。
因此,研究植物抗旱机制是非常重要的。
在过去的几十年里,科学家们通过对植物的生理、分子和遗传学特征进行研究,已经取得了一些关于植物抗旱机制的发现。
本文将探讨植物抗旱的基本原理和一些最新的研究成果。
植物抗旱的基本原理植物对抗旱的基本原理是为了避免或减轻水分亏缺时对其生长发育的影响。
植物会通过一系列的调控途径来达到这个目的。
这些途径包括:控制水分流失、减少蒸腾、调节根系吸收水分、增加植物自身水分利用效率等。
控制水分流失:植物通过调节其表面的日光反射、切断水分渗透径和减少根部表面水分蒸发等方式来控制水分流失。
对于某些植物来说,在水分亏缺时,其表皮细胞会产生粘液,特别是在土壤水分表面上形成的粘液膜,能够有效地阻止水分的流失。
减少蒸腾:植物通过多种途径来控制蒸腾,包括减少叶缝开放程度、增加气孔密度、加厚叶片或者降低叶面积等。
此外,一些植物可以通过特化的C4农艺等方式来适应低水条件。
调节根系吸收水分:植物通过调节根系的形态和结构、根长和分布等来提高根系对水分的吸收能力。
根系吸收水分的效率可以通过多种方法进行调整,如增加根毛的分布密度、增加毛根的数量等。
增加植物自身水分利用效率:植物可以通过多种机制来提高自身的水分利用效率,如调节光合作用效率、提高水分利用效率、调节叶面积等。
其中,维生素B6在增强植物水分利用效率方面发挥了重要作用。
植物抗旱机制的研究进展最近,科学家在分子和基因水平上通过使用现代遗传学和组学技术,使我们对植物抗旱机制有了更深入的了解。
下面是一些最新的研究成果:利用基因重组技术来提高植物的抗旱性:科学家们利用基因重组技术将一个叫做“AtDREB1A”基因的抗旱基因导入到某些作物变种中。
这种抗旱基因能够调节植物中的许多蛋白质的表达,从而使植物更耐旱。
这项技术可以应用于多种重要的作物,如水稻、小麦、玉米等。
利用分子调控技术来提高植物的抗旱性:研究人员对一种植物叫做拟南芥进行了研究,发现它能够通过激活一种叫做“18:3”脂肪酸的信号通路来增加植物的抗旱性。
植物抗旱性鉴定评价方法及抗旱机制研究进展
四、应用前景及建议
植物抗旱性鉴定评价方法和抗旱机制研究进展在农业生产、生态修复等领域具 有广泛的应用前景。未来的研究应以下几个方面:
1、鉴定方法优化:进一步探索和优化植物抗旱性的鉴定物物种的需求。
2、机制深入研究:加强植物抗旱机制的深入研究,特别是不同植物物种间抗 旱机制的差异及其原因,为抗旱性育种提供理论依据。
3、抗氧化防御系统:植物在干旱条件下会面临氧化胁迫,通过激活抗氧化酶 体系、积累抗氧化剂来抵抗氧化损伤。
4、信号转导:植物在干旱条件下会通过感知环境信号、产生并传递信号来调 节基因表达、代谢途径和细胞结构,从而应对干旱环境。
这些机制的研究为植物抗旱性育种提供了理论基础,有助于提高植物抗旱性的 效果。然而,现有研究主要集中在模式植物上,对不同植物物种间抗旱机制差 异的研究还不够深入。因此,未来研究需要加强不同植物物种间抗旱机制的比 较和分析,从而为抗旱性育种提供更多有效的资源。
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植物抗旱性鉴定评价方法及抗旱机制研 究进展
目录
01 一、植物抗旱性鉴定 的背景
03
三、植物抗旱机制研 究进展
02
二、植物抗旱性鉴定 评价方法
04 四、应用前景及建议
植物抗旱性是指植物在干旱条件下能够正常生长和发育的能力。由于全球气候 变化和人口增长带来的水资源短缺问题,植物抗旱性研究已成为农业科学领域 的重要课题。本次演示将介绍植物抗旱性的鉴定评价方法和抗旱机制研究进展, 并探讨其应用前景。
3、基因编辑技术应用:利用基因编辑技术对植物进行抗旱性改良,培育具有 优良抗旱性能的新品种,提高农业生产力和生态环境的稳定性。
4、综合应用:将植物抗旱性鉴定评价方法、抗旱机制研究和实际应用相结合, 实现理论和实践的相互促进,推动植物抗旱性的研究发展。
植物抗旱性生理生化机制的研究进展
植物抗旱性研究及应对摘要:本文通过对植物的干旱类型、抗旱类型和特征以及在干旱逆境条件下的生理、生化上的变化进行总结,并对其研究前景进行了展望,以期为选育植物抗逆品种的研究提供参考,旨在促进植物抗旱机理方面的研究工作。
关键词:抗旱机理前景引言:干旱、低温、高温、盐渍等不良环境是影响植物生长的重要因子,其作用于植物会引起植物体内一系列生理、生化和分子生物学上的变化,主要包括生物膜结构与组成的改变,许多特异性蛋白、糖、渗透调节物质(甜菜碱和脯氨酸等)的增加,和一些酶活性的变化等[1-2]。
植物体表现为生长和代谢受到抑制,严重时甚至引起不可逆伤害,最终导致植株死亡[3-4]。
在全世界,干旱和半干旱地区的总面积约占陆地面积的30%以上。
在中国,干旱和半干旱地区约占国土面积的50%左右,大部分分布在北方和西北地区[5]。
1 植物的旱害及抗旱性1.1 干旱的类型及其危害干旱是一种因长期无雨或少雨使土壤水分缺乏、空气干燥的气候现象。
干旱在气象学上有两种含义:一是干旱气候,即干旱和半干旱地区气候的基本情况;二是气候异常,某段时间降水量大大少于多年平均值。
作物的水分状况取决于吸收和蒸腾两个方面,吸水减少或蒸腾过多都可引起水分亏缺。
因此,在抗旱生理研究中,根据干旱发生的场所和产生的原因,可分为三种:土壤干旱、大气干旱以及生理干旱[10]。
1.1.1 土壤干旱土壤干旱是指土壤可利用水缺乏。
当土壤干旱时,根系吸水满足不了叶片蒸腾失水的需要,植物发生水分亏缺,不能维持正常的生理活动,而受到伤害。
土壤干旱时将引起植物的永久萎蔫。
永久萎蔫指由于土壤水分缺乏引起的萎蔫,这种萎蔫,经过夜晩(停止蒸腾)也不能解除。
要解除萎蔫,必须给土壤补充水分。
1.1.2 大气干旱大气干旱指大气湿度过低、空气干燥。
大气干旱往往伴随着高温,使蒸腾过快,大大超过植物的吸水速率,破坏水分平衡,发生水分亏缺,对植物产生伤害。
大气干旱往往引起植物的暂时萎蔫。
植物抗旱基因及其功能研究进展
二、植物抗旱基因的研究进展
二、植物抗旱基因的研究进展
近年来,随着植物基因组学和功能基因组学的发展,越来越多的植物抗旱基 因被鉴定出来。这些基因主要涉及渗透调节、抗氧化、转录因子和信号传导等方 面。
二、植物抗旱基因的研究进展
渗透调节是植物抗旱的重要机制之一,它包括离子运输、渗透剂合成和细胞 水平调节等方面的基因。抗氧化基因主要涉及超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化 物酶(POD)和过氧化氢酶(CAT)等,它们可以清除植物体内的活性氧自由基, 减轻氧化损伤。转录因子和信号传导相关基因在植物抗旱适应性反应中也起到关 键作用,它们可以调控其他基因的表达,提高植物的抗旱能力。
植物抗旱基因及其功能研究进 展
目录
01 一、植物抗旱基因的 背景和意义
02
二、植物抗旱基因的 研究进展
03 三、植物抗旱基因存 在的问题和挑战
04 四、展望植物抗旱基 因的未来发展方向
05 参考内容
内容摘要
随着全球气候变化的加剧,植物抗旱性研究变得越来越重要。植物抗旱基因 是研究植物抗旱性的基础,对于提高植物耐旱性具有重要意义。本次演示将综述 植物抗旱基因的研究进展,分析存在的问题和挑战,并展望未来发展方向。
二、植物抗旱性鉴定评价方法
二、植物抗旱性鉴定评价方法
1、形态指标法:通过观察植物的形态特征,如叶片颜色、叶片厚度、根系发 达程度等,来评价植物的抗旱性。该方法简单易行,但有些形态指标与植物抗旱 性之间缺乏直接的因果关系。 2.生理指标法:通过测量植物的生理指标,如叶 绿素含量、脯氨酸含量、保护酶活性等,来评价植物的抗旱性。这些指标能够反 映植物在干旱条件下的生理状态,具有较好的客观性和准确性。
一、引言
一、引言
植物抗病基因的结构、功能及其进化机制是植物病理学领域研究的热点之一。 植物抗病基因的多样性、复杂性及其进化机制的多样性,使得这一领域的研究具 有深远的意义。对于植物抗病基因的研究,不仅可以揭示植物与病原菌之间的相 互作用机制,还可以为抗病基因工程提供理论基础,以培育抗病性更强的农作物 新品种。
植物对干旱胁迫的生理生态响应及其研究进展
植物对干旱胁迫的生理生态响应及其研究进展一、本文概述Overview of this article随着全球气候变化的影响日益显著,干旱成为影响植物生长和分布的主要环境胁迫之一。
植物对干旱胁迫的生理生态响应及其机制一直是植物生物学和环境科学研究的热点领域。
本文旨在综述植物在干旱胁迫下的生理生化变化、形态结构调整以及分子机制等方面的研究进展,以期深入理解植物耐旱性的本质,并为提高植物抗旱性和农业可持续发展提供理论依据和实践指导。
With the increasingly significant impact of global climate change, drought has become one of the main environmental stresses affecting plant growth and distribution. The physiological and ecological responses of plants to drought stress and their mechanisms have always been a hot research area in plant biology and environmental science. This article aims to review the research progress on physiological and biochemical changes, morphological and structural adjustments, and molecular mechanisms of plants under drought stress, inorder to gain a deeper understanding of the essence of plant drought resistance and provide theoretical basis and practical guidance for improving plant drought resistance and sustainable agricultural development.文章首先介绍了干旱胁迫对植物生长的负面影响,包括水分亏缺引起的光合作用下降、细胞膜透性增加、酶活性改变等。
植物逆境耐受性机制的研究
植物逆境耐受性机制的研究植物在自然环境中需要应对各种逆境因素,如高温、低温、旱涝、盐碱等。
植物因此发展出了许多适应性机制,以保持其在逆境环境下的生长和生存能力。
植物逆境耐受性机制的研究是近年来非常热门的领域,在此介绍其中的一些研究进展与应用。
一、植物抗旱适应性机制植物在干旱条件下会产生渴求反应,表现为减缓生长和代谢,以便在有限的水资源下更有效地利用水分。
植物会同时产生一些生化和生理反应来适应干旱条件,如合成保温物质,例如脯氨酸,使细胞内保留水分,降低水分散失的情况;以及表达各种逆境相关的基因,例如启动响应激素和其他信号通路,从而提高耐旱性。
在植物抗旱适应性机制的研究中,已有许多重要成果。
例如,研究员们发现了一种调节植物响应干旱的蛋白,命名为RD26。
RD26会在植物干旱应答时被激活,并启动一些响应激素和其他信号通路,使植物减缓生长和代谢以降低水分用量,从而提高植物的耐旱性。
二、植物对盐碱逆境的适应性机制植物在盐碱条件下面临着更复杂的问题,因为含盐或含碱的土壤会影响植物的生理,例如离子平衡和水分吸收。
为了适应这种逆境,植物会产生启动基因转录和蛋白合成的信号通路,以保持细胞渗透压和稳定细胞膜的完整性。
随着对植物对盐碱逆境的研究深入,许多相关的基因和蛋白质已被识别出来。
其中一个例子是Na+/H+转运蛋白(SOS3),它会受到盐胁迫的诱导,以驱逐过多钠离子。
另一个示例是ABF3, 它是负责使植物在缺水条件下增强抗氧化能力的蛋白。
三、植物对低温的应对机制低温是植物在自己的生命历程中经常遇到的逆境之一。
植物对低温的适应性机制包括通过合成调节细胞膜的草酸和其他保温物质,以保留细胞水分;表达某些抗凝冻基因,以保持细胞膜的完整性。
通过对植物对低温逆境的研究,许多基因和蛋白分子已被鉴定。
其中, 一个称为CBF1的转录因子,在低温环境下被诱导表达;它的基因编码区域被直接识别并结合到基因启动子区域上,从而促进保温物资的合成。
植物抗旱性研究进展
植物抗旱性研究进展植物抗旱性研究一直以来是植物科学领域的热点之一。
随着全球气候变暖和水资源日益紧缺,对植物抗旱性的研究变得尤为重要。
植物抗旱性研究的进展不仅有助于揭示植物生理机制,还能为改良植物品种、提高农作物产量和抵御干旱等极端环境提供重要理论支持。
在这篇文章中,我们将系统介绍植物抗旱性研究的最新进展,希望能为相关领域的研究者和读者提供一些参考。
一、植物抗旱机制的研究现状植物抗旱性是植物对干旱胁迫的适应能力,其主要包括植物在调节水分代谢、保护细胞膜完整性、维持气孔功能和调节生长发育等方面的生理和生化机制。
近年来,大量的研究表明,植物抗旱性是一个复杂的生物学过程,其调控机制涉及到多个信号传导途径和调控网络。
1. 植物抗旱相关基因的克隆和功能分析植物抗旱性的分子机制一直以来都备受关注。
在过去的几十年里,研究人员已经克隆和鉴定了大量与植物抗旱性相关的基因。
通过对这些基因的功能解析,科研人员已经初步揭示了植物抗旱性的调控机制。
目前,植物抗旱性研究中最具有代表性的基因包括:ABA合成相关基因NCED、激活子结合蛋白(bZIP)、转录因子DREB、LEA蛋白、脱落酸相关基因等。
这些基因在植物的抗旱过程中发挥着重要的作用,其中ABA合成相关基因NCED和激活子结合蛋白(bZIP)等基因参与了植物的胁迫信号转导和保护细胞膜完整性,而转录因子DREB和LEA蛋白则参与了植物体内的胁迫蛋白的表达和水分调节。
除了这些已知的抗旱相关基因,近年来高通量测序技术的发展使得研究者可以更加全面地分析植物基因组水平上的抗旱基因。
这些研究不仅有助于发现植物抗旱性的新机制,还能为植物品种的改良和优化提供一定的基因资源。
2. 植物抗旱蛋白的结构与功能解析植物中存在大量与抗旱相关的蛋白,其中包括保护性蛋白(如LEA蛋白、脱落酸相关蛋白)、胁迫信号转导蛋白(如激活子结合蛋白、植物生长素蛋白)、调节蛋白(如气孔调控蛋白、胁迫响应转录因子)等。
植物干旱抗逆的分子机制研究
植物干旱抗逆的分子机制研究植物作为一类生物体,需要不断地适应外界环境的变化。
干旱是植物面对的一类非常严峻的环境,它能够显著影响植物的生长发育和产量。
然而,植物有着强大的抗逆能力,能够在干旱环境中维持生长和生存。
当前,关于植物对干旱的适应机制的研究已经得到了很大的进展。
本文将着重介绍植物干旱抗逆的分子机制,以期更好地探索植物生存和发展的途径。
1. 概述干旱是指在固定的时间和地点内,水分供应不足以满足植物正常的生长和发育所需的水分。
干旱条件能够导致植物的体内半胱氨酸含量升高,丙酮酸脱羧酶活性增加,丙二醛和过氧化氢的含量增加。
这些反应都被认为是植物面临干旱环境时表达的抗逆基因的结果。
植物的干旱抗逆机制主要包括盐调节、利用生物化学水势的变化、维持水分平衡和激活一系列缩短生长时间的基因表达等。
2. 干旱抗逆基因干旱抗逆因子(Drought-tolerance factor)被认为是植物对抗干旱的适应性获得的基本分子机制。
HvDRG3是一种在大麦根中表达的杆菌X是HRXN12家族成员,可以抑制干旱引起的根别扭(distortion of roots)以及其它的植物胁迫反应。
HvDRG3与DREB1A相似,并且参与到了干旱适应性的过程中。
HvDRG3的作用是启动与水分压力相关的转录因子CAX3,这种转录因子是一种由膜上基因家族(membrane-up gene family)产生的、专门用来调节植物细胞内的水分压力。
除此之外,FGF2P1是最受人欢迎的抗旱因子之一。
它能够引起植物的生长和死亡,强调了基因在植物适应干旱方面的重要性。
FGF2P1的作用是激活一个雌激素的葡糖转移酶基因(estrogen conjugating enzyme gene),这个基因能够帮助植物解决水分压力和失重。
3. 植物干旱抗逆基因的表达调控植物干旱条件下的表达调控包括两个阶段。
第一个阶段,植物维持水分平衡和根生长的过程中,延伸了干旱阶段,导致了过量的抗旱基因表达。
卫矛属植物抗旱性研究进展
卫矛属植物抗旱性研究进展卫矛属植物是一类分布广泛、生命力强、抗旱能力较强的灌木植物,广泛分布于北半球的温带和亚热带地区。
随着全球气候变暖和人类活动的加剧,干旱在全球范围内日益严重,提高植物的抗旱能力成为解决干旱问题的关键之一。
因此,卫矛属植物的抗旱性研究具有重要的理论意义和实践价值。
本文综述了当前卫矛属植物抗旱性研究的进展情况。
一、卫矛属植物的形态和生态特性卫矛属植物属于卫矛科,是一类常绿或半常绿的灌木植物,主要分布于北半球的温带和亚热带地区。
该属植物的叶子多为长条形,有皮孔,具有蒸腾作用,并能在干旱条件下减少叶片水分损失;根系发达,能扎根于岩石裂缝中获取水分和养分;木本茎干硬、耐寒耐旱,能耐受低温和干旱的侵袭;花色斑斓、花期较长,能吸引花粉和花蜜等昆虫传播种子。
1.生理生态研究卫矛属植物的抗旱性与其生理生态特性密切相关。
目前研究表明,卫矛属植物具有较强的蒸腾作用、茎皮层保护性厚度、根系发达、水分利用效率高、抗氧化酶活性高等特点,这些生理生态因素共同作用,增强了卫矛属植物的抗旱能力。
2.分子遗传研究近年来,分子遗传学研究在卫矛属植物抗旱性研究中得到了越来越广泛的应用。
目前研究表明,卫矛属植物的抗旱性状受到多个基因的共同调控,这些基因参与了植物的生长发育、离子吸收、水分平衡、膜透性调节等生理生态过程的调控。
通过分析这些基因的作用机理和调控网络,有望进一步揭示卫矛属植物抗旱性的遗传机制,并为植物抗旱育种提供理论依据。
卫矛属植物通过自身优秀的生理生态特性和基因调控机制,表现出较强的抗旱能力,对于解决全球范围内的干旱问题具有重要的意义。
目前,卫矛属植物抗旱性的研究重点在于基因调控机制、抗旱育种等方面的研究,并在实践中得到越来越广泛的应用。
未来的研究方向包括通过推广卫矛属植物在抗旱应用中的成果,加强其在生态工程、园林绿化等方面的应用,进一步提升卫矛属植物在解决干旱问题中的作用。
植物干旱胁迫响应机制研究进展
植物干旱胁迫响应机制研究进展一、本文概述随着全球气候变化的加剧,干旱成为影响植物生长和产量的主要环境因子之一。
植物干旱胁迫响应机制是植物生物学领域的研究热点,对于提高植物抗旱性和农业生产具有重要意义。
本文综述了近年来植物干旱胁迫响应机制的研究进展,包括干旱胁迫对植物生理生化特性的影响、干旱胁迫下植物信号转导途径的调控机制、以及植物抗旱性基因工程的研究与应用等方面。
通过对这些内容的梳理和分析,旨在为深入理解植物干旱胁迫响应机制提供理论支持,并为植物抗旱性育种和农业生产提供新的思路和方法。
二、干旱胁迫对植物生理生化的影响干旱胁迫是植物在生长过程中经常遇到的一种非生物胁迫,它会对植物的生理生化过程产生深远影响。
这些影响主要体现在植物的光合作用、呼吸作用、物质代谢和抗氧化系统等方面。
干旱胁迫会降低植物的光合作用效率。
干旱会导致植物叶片气孔关闭,从而减少二氧化碳的供应,影响光合作用的进行。
干旱还会影响叶绿素的合成和稳定性,进一步降低光合效率。
干旱胁迫会改变植物的呼吸作用。
在干旱条件下,植物会通过增加呼吸作用来应对能量需求的增加。
然而,过度的呼吸作用会消耗大量的能量和有机物,对植物的生长和发育产生不利影响。
干旱胁迫还会影响植物的物质代谢。
在干旱条件下,植物会优先保证生命活动必需的物质合成,如脯氨酸、甜菜碱等渗透调节物质的合成会增加,以增强植物的抗旱性。
同时,一些非必需物质的合成可能会受到抑制,以节省能量和物质。
干旱胁迫会对植物的抗氧化系统产生影响。
干旱会导致植物体内活性氧(ROS)的产生增加,对植物细胞造成氧化损伤。
为了应对这种氧化压力,植物会增强抗氧化系统的活性,如增加超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)等抗氧化酶的活性,以清除ROS,保护细胞免受损伤。
干旱胁迫对植物的生理生化过程产生了广泛而深远的影响。
为了更好地应对干旱胁迫,植物需要调整自身的生理生化过程,以适应环境压力,保证正常的生长和发育。
植物抗旱性研究进展
植物抗旱性研究进展随着全球气候变化的日益加剧,旱灾成为了世界各地越来越突出的环境问题。
幸运的是,许多植物已经发展出了对干旱的适应策略,并表现出较强的抗旱性。
这些适应策略包括生理、形态和分子水平上的变化。
本文将就植物抗旱性研究的相关进展进行探讨。
一、植物的生理适应1.叶片的生长由于叶片是植物进行光合作用的主要器官,因此它们对抗旱有着特殊的适应方式。
在水分缺乏的环境下,许多植物具备生长叶片的能力。
这类叶片有较小的表面积,使得光合作用的水分的流失减少,从而保持了水分的平衡状态。
2.调节渗透压植物对水分的平衡是通过调节细胞的渗透压实现的。
在干旱条件下,植物会发生渗透调节和保持水分平衡的反应。
其中,渗透压的调节特别重要,植物通过调整细胞中的有机物和无机物的浓度来调节渗透压。
3.激素调节植物内部的激素关系着植物的生长发育和适应能力。
许多研究已经表明,植物的激素水平与其抗旱能力密切相关。
例如,研究表明,ABA在植物的抗旱适应中具有特别重要的作用,能够调节植物的渗透压和关闭气孔,降低水分消耗。
1.根系适应植物的根系是其吸取水分和养分的主要器官,因此在干旱条件下,许多植物调整其形态来适应干旱条件。
这些适应措施包括生长更深的根系和增加根系表面积以便更有效地吸收水分。
2.叶片形态适应由于叶片表面积的大小与水分的流失量直接相关,许多植物会调整叶片的形态来降低水分的消耗。
这种适应措施包括叶片较小、更加厚实、更加紧密排布等变化。
1.蛋白质调节在应对干旱的过程中,植物的蛋白质活动发生了变化,借以适应干旱条件下的生长。
例如,几种研究表明,在干旱条件下,植物的蛋白质修饰模式发生了变化,从而导致了一些蛋白质的功能调节和抗旱性能的提高。
2.基因表达调节植物是复杂的基因调节系统,许多基因可以调节植物的抗旱性。
在干旱条件下,植物会调节一些基因的表达以增强其抗旱性。
例如,许多基因编码有关水分调节和渗透压调节的关键酶,调控它们的表达可以对植物的抗旱性产生重要的影响。
植物抗旱性鉴定评价方法及抗旱机制研究进展
植物抗旱性鉴定评价方法及抗旱机制研究进展李瑞雪;孙任洁;汪泰初;陈丹丹;李荣芳;李龙;赵卫国【摘要】Drought affects the growth and development of plants at every phase and various physiological metabolic processes in plants, and ecological environment. It is one of the most disastrous limiting factors for growth and survival of plants. With the development of molecular biology,studying the regulation mechanisms of stress resistances at molecular scale has been become the key task in agricultural research. This paper describes the advances in drought resistance of plants in recent years based on two aspects :the identification and evaluation system of drought resistance in plant,and the mechanism of drought resistance,which aims at providing reference and strategies for plant drought resistance molecular mechanism research and molecular genetic breeding in plant drought resistance improvement.%干旱显著影响植物各阶段的生长发育、各种生理生化代谢过程和生态环境,是植物成活与生长的重要限制因素之一,随着现代分子生物学的发展,从分子水平研究植物抵御干旱等逆境的机理已成为农业研究的一个重要任务.从植物抗旱性鉴定评价体系和抗旱机制研究两个方面对近年来植物抗旱性研究进展进行了综述,以期为今后植物抗旱分子机制的研究和改良植物抗旱性的分子遗传育种工作提供参考.【期刊名称】《生物技术通报》【年(卷),期】2017(033)007【总页数】9页(P40-48)【关键词】植物;抗旱性;鉴定方法;评价指标;抗旱机制【作者】李瑞雪;孙任洁;汪泰初;陈丹丹;李荣芳;李龙;赵卫国【作者单位】江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;安徽省农业科学院蚕桑研究所,合肥 230061;中国农业科学院蚕业研究所,镇江 212018;江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;安徽省农业科学院蚕桑研究所,合肥 230061;江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;中国农业科学院蚕业研究所,镇江 212018;江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;中国农业科学院蚕业研究所,镇江 212018;江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;中国农业科学院蚕业研究所,镇江 212018;江苏科技大学生物技术学院,镇江 212018;中国农业科学院蚕业研究所,镇江 212018【正文语种】中文植物在生长发育过程中,会受到来自外界环境的各种生物或非生物胁迫,其中干旱是最重要的非生物胁迫之一。
植物抗旱性研究进展
植物抗旱性研究进展植物是受环境因素影响最为严重的生物之一,其生长发育和生存状态往往取决于所处环境。
在干旱等水分紧缺的情况下,植物会受到很大的挑战,但是为适应这些条件,植物进化出了一系列抗旱机制,以保证其生存和生长发育。
本文将介绍植物抗旱性研究的进展及相关机制,同时讨论如何通过遗传改良来提高植物的抗旱能力。
植物抗旱性研究的进展植物抗旱性的研究可以追溯至19世纪初。
早期的研究集中在观测植物在干旱等水分缺乏条件下的生长变化,如植物的枯萎程度、叶片水分含量等。
随着科学技术和实验手段的不断发展,研究者可以更深入地了解植物抗旱性的机制。
当前,植物抗旱性研究主要涉及以下方面:1.植物水分平衡的调节植物在水分充足状态下,可以通过调节根系吸收、根际土壤水分利用率、水分的输运等方式来平衡水分。
同时,植物也能够通过调控茎叶的气孔开关,减少蒸腾量等方法来减少水分的损失。
在水分缺乏的情况下,植物可以通过调控细胞内外的渗透压、促进根系吸水能力、调控植物激素等途径来平衡整个水分系统。
2.植物对环境温度和土壤盐度的适应性温度和土壤盐度也是影响植物抗旱性的重要因素之一。
一些植物通过转录调控、蛋白合成等机制来适应不同的环境温度和土壤盐度条件,从而提升自身的抗旱能力。
3.植物抗氧化压力的机制水分缺乏等环境因素会诱导植物产生活性氧自由基,从而引发氧化损伤,对植物造成损害。
植物通过在适应条件下诱导一些类胡萝卜素、维生素C、E等含有抗氧化能力的物质来降低氧化压力,调节植物内部的氧化还原状态,从而提高植物的抗旱能力。
4.植物逆境适应信号传递系统的研究植物逆境适应信号传递系统能够感受外界环境变化并传递信号,从而使植物逆境适应。
研究表明,植物的类UV-B激发蛋白、蛋白激酶等可被激活,从而传递信号。
5.生物学家利用转基因技术来提高植物抗旱性通过外源基因介导的手段,科学家可以将一些具有抗旱、耐盐等特性的基因或基因组引入到植物体内,来提高植物的抗旱性。
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基金项目 作者简介
收稿日期
浙江林学院校发展基金( 编号 2351000368) 。 申亚梅( 1977- ) , 女, 江苏姜堰人, 硕士, 讲师, 从事 园林 植物 教学工作。 2006! 06! 18
物 叶 片 含 水 量 以 及 气 孔 导 度 、光 合 速 率 呈 下 降 趋 势[7- 9]。吴 林 等利用光合速 率 的 变 化 比较 了 几 种 越 桔 的 耐 旱 能力[10]。陈 智忠等利用蒸腾速率与气孔导度鉴别了牡丹品种的耐旱性 等[11]。樊卫国等研究了刺梨对土壤干旱胁迫的生理响应, 发 现在受干旱胁迫时, 叶 片 水势 、光 合 速 率 、叶 绿 素 含 量都 明 显下降[12]。Schulte 等研究指出, 不同杨树杂种无性系之间的 气孔导度对叶水势有不同的响应, 并且植物在受到干旱胁 迫情况下, 植物生理生化指标的变化还存在着种间与种内 不同品种之间的差异性[13]。因此, 生理生化指标可以直接或 间接地评价植物种间与种内耐旱能力的差异。
安徽农业科学, Journal of Anhui Agri. Sci. 2006, 34( 20) : 5214- 5215, 5238
责任编辑 姜 丽 责任校对 胡剑胜
植物抗旱机制的研究进展
申亚梅 1, 童再康 1, 蔡建国 1, 吴家森 1, 张素雅 2 ( 1.浙江林学院园林学院, 浙江临安 311300; 2.浙江省温州市泰顺县柳峰乡政府
随着分子生物学的快速发展, 寻找与植物耐旱性相关 的分子标记, 克隆相关的基因已成为研究的热点。一旦获得 可靠的标记基因, 即该标记基因与耐旱性呈高度相关, 就可 以通过基因的遗传性而了解该植物稳定的耐旱性。目前, 研 究 重 点 在 于 广 泛 筛 选 与 重 要 耐 旱 指 标 相 关 联 的 标 记 基 因 [29]。 Mie Kasuga 等研究表明, 在转基因植株中 的 cDNA 能 诱 导 DREB1A 的表达, 从而提高植物的抗旱能力[30]。郭卫东等在 克隆了二棱大麦第 3 组 LEAcDNA 和抗旱基因 HDCS1 的基 础上, 将其连接于 pBI121 的 CaMV35S 启动子和 NOS 终止 子之间, 构建了 HDCS1 的植 物 表 达 载体 pBHC[31], 为 植 物 的 抗旱基因研究奠定了基础。 5 观赏植物抗旱性研究及其耐旱种质资源概况
目前, 水资源短缺以及土壤沙化已成为全球性问题。干 旱严重影响植物的生长发育, 造成树木和作物减产[1]。研究 者 们 已 从 形 态 指 标 、生 理 生 化 指 标 、分 子 标 记 等 方 面 研 究 了 植物耐旱机理。笔者对此进行了综述。 1 形态指标 1.1 叶片细胞结构及大小 植物在不同干旱胁迫情况下, 细胞内水分外渗, 引起细胞收缩, 为减少细胞收缩时受到的 机械损伤, 叶片细胞变小; 此外, 植物耐旱性与植物叶片表 皮外壁的角质层、栅栏组织、海绵组织等有关[2]。因此, 抗旱 能力强的植物, 其叶片细胞较小, 叶表皮外壁的角质层厚, 栅栏组织发达, 栅栏组织与海绵组织比值高。 1.2 植 物 根 系 植 物 在 受 到 干 旱 胁 迫 时 , 根 势 向 深 处 生 长, 以吸取土壤深处的水分来维持自身生长。如果长时间的 水分亏缺, 植物对干旱产生适应性时, 植物的根系水势较 低, 有利于根系吸水, 而且根冠比大, 有利于植物有效利用 土壤中的水分, 以保持水分平衡[3]。因此, 耐旱性强的植物, 均具有发达的根系。 2 生长指标
同样, 在干旱胁迫情况时, 植物体内各种代谢、合成、渗 透调节物质都会发生变化, 以维持其平衡。在高等植物中, 渗透调节产物包括: 可 溶 性 糖 、脯 氨 酸 、甜 菜 碱及 其 他 有 机 质等。它们在植物受胁迫时, 起到稳定生物大分子的结构和 功能的作用[14]。大 量 研 究 表 明, 植 物 在 干 旱 胁 迫 情 况 下, 细 胞透性增强, 细胞内渗透势发生变化。陈少瑜等对干旱胁迫 下银合欢等 3 种树种苗木叶片的质膜相对透性进行了研 究, 结果表明随着干旱胁迫的加强, 3 种树种的质膜相对透 性增强[15]。Clifford 等研究表明, 植物在干旱胁迫时, 细胞的 渗透调节依赖于无机离子和小分子有机物质的积累、运转 及分布 [16]。植物细胞内渗透势的变化由渗透调节 物 质 所 控 制, 植物积累这些物质的能力体现了植物渗透调节的能力, 从而表现出不同的耐旱能力。其中, 作为植物渗透调节物质 累积之一的脯氨酸, 在植物的抗性生理中发挥着重要的作 用。在水分胁迫条件下, 脯氨酸的累积有 3 种不同的途径: 效应细胞的从头合成; 脯氨酸降解过程的降低; 脯氨酸特异 性转移系统的参与, 从而 实 现 脯氨 酸“源 ”( 效 应 细 胞 等) 到 “库”( 靶细胞等) 的分配 [17]。而且, 在逆境胁 迫 时 , 脯 氨 酸 含 量 呈 上 升 趋 势 。 曾 鸣 、黄 颜 梅 等 分 别 研 究 了 四 川 柏 木 、露 丝 柏和西藏柏木的抗旱性, 结果表明在水分胁迫相同的条件 下, 累积的脯氨酸越多和速度越快, 其抗旱性较强[18, 19]。但是 也有的研究结果表明, 水分胁迫时, 脯氨酸的累积量多少与 速度只能反应植物对胁迫条件的反应, 而不能作为鉴别品 种间的耐旱能力的指标[20]。植物细胞受到胁迫时, 可溶性糖 含量 的 变 化 也 能 反 应 其 受到 胁 迫 的 程 度 。Arant 等 研 究 发
6 展望
植物所表现的抗旱性是由多种因素组成的, 研究者通
过不同指标的测定来了解植物的抗旱性, 以培育耐旱性强
的品种。目前, 培育耐旱性植物的主要途径有: 引种驯化; 建
立在形态( 如株高、生 长 以 及根 系 发 达 程 度 等) 、生 理( 如渗
透调节等) 、分子标记 等选 择 基 础 之 上 的 传 统 育 种; 利 用 组
研究观赏植物的耐旱性主要是为了丰富干旱地区绿化 环境, 增加其植物种类和植物多样性。但是, 同农作物、果树 或其他造林树种相比, 关于观赏植物耐旱性的研究还较少。 目前已报导的耐旱种类仅有侧柏 ( Platycladus orientalis) [32], 木 麻 黄 ( Casuairina equisetifolia) [33], 青 檀 ( Pteroceltis tatarinowii) [34], 新 银 合 欢( Leucaena leucocephala) [15], 黄 连 木 ( Pistacia chinesis) [35], 杉木( Cunninghamia lanceolata) [36], 喜 树 ( Camptotheca acuminat) [37]等少数种类。并且对这些种类耐旱 性的研究均以盆栽的方式进行, 结果表明随着干旱的加剧, 其叶片的质膜透性、SOD 等酶的活性与脯氨酸含量均增加, MDA 含 量 有 所 下 降; 不 耐 旱 的 植 物 随 着 干 旱 的 加 剧 , 其 酶 的活性将下降, MDA 含量上升。
干旱对植物的影响首先表现为一些生理生化指标上的 变化。研究表明, 光合速率、呼吸速率、气孔导度、叶片含水 量 、细 胞 液 的 渗 透 势 等 指 标 均 随 植 物 水 分 的 胁 迫 而 变 化 。有 关利用生理指标来确定植物的耐旱能力报道较多, Osmond、 Krause 与 Ron Mittler 等人分别研究发现, 在干旱胁迫下, 植
34 卷 20 期
申亚梅等 植物抗旱机制的研究进展
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现, Ziziphus rotundifolia 在胁迫情况下, 可溶性糖含量的变 化呈下降趋势。此外, 在受胁迫时植物细胞溶质也会发生变 化, 其中甜菜碱已成为人们研究的热点。甜菜碱是高等植物 最主要的代谢积累产物之一, 是一种无毒的渗透保护剂, 它 的积累使植物细胞在 渗 透 胁 迫 下 仍 能 维 持正 常 功 能 [22], 且 积累甜菜碱的植物比积累脯氨酸的植物对干旱、盐渍等逆 境的耐受性更高[23]。此 外 , 在 植 物受 到 干 旱 胁 迫 时 , 其 体 内 可溶性碳水化合物的分布及其含量也会发生相应变化, 这 些变化可能与膜的稳定性有关。干旱胁迫会使植物产生活 性 氧 O2- 、H2O2、·OH- 等 , 从 而 对 细 胞 造 成 伤 害 , 而 植 物 自 身 为免受活性氧的伤害, 形成了抗氧化酶类保护系统。抗氧化 酶类 主 要 有 超 氧 物 岐 化 酶( SOD) 、过 氧 化 氢 酶( CAT) 、过 氧 化物( POD) 、抗坏血酸过 氧 物 酶( AsA!POD) 、谷 胱 甘肽 还 原 酶 ( GR) 等 。 大 量 研 究 表 明 , SOD、CAT 的 活 性 和 丙 二 醛 ( MDA) 含量及膜透性是评价 植 物 抗 逆性 的 重 要 指 标[22]。王 晓琦等李莉等分别对亚麻幼苗、诸葛菜的耐旱胁迫进行了 研究, 发现 SOD 活性呈先升后降、POD 活性呈先降后升的 趋势[24, 25]。而另有研究表明, 一些植物在胁迫时 SOD 活性呈 下降趋势, 如胡哲森等对锥栗幼苗进行研究, 结果表明水分 胁 迫 使 锥 栗 叶 片 相 对 含 水 量 , SOD 和 CAT 活 性 下 降 , POD 活性上升, 质膜相对透性和 MDA 含量增加[26]。MDA 是膜脂 过氧化产物, 其含量增加说明对植物的毒害程度加深, MDA 也是衡量植物受损害程度的生理指标。夏新莉等对樟子松 干旱胁迫进行研究, 结果表明随着胁迫程度的加深, 植物活 性下降, MDA 含量上升且与 SOD 的 活 性 变化 呈 反 比[27]。张 文辉等利用 SOD、CAT 的活性和 MDA 含量及膜透性 4 个指 标评价不同种源栓皮栎耐旱性, 结果与上述一致[28]。 4 标记基因
Resear ch Advance in the Resistance of Plant to Dr ought SHEN Ya!mei et al (Forestry College of Zhejiang, Linan, Zhejiang 311300) Abstr act Water deficit is one of the most important environmental factors which limit plant growth and development. In this paper, the mechanisms and research progress of configuration, growth, physiology, biochemistry, genetics and source of the species that can resist drought stress were reviewed. Key wor ds Plant; Drought tolerance; Water stress