抗原抗体的反应讲解
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这类免疫分析的方法可以用于医学，免疫学中抗原抗 体的分析(包括病原的诊断，免疫细胞表面分子的检 测等)，而且可以广泛的用于生命科学的几乎各个领 域，甚至于食品科学，环境科学及分析化学等更为广 泛的学科领域。
一、免疫沉淀与免疫凝集
1．溶液中的沉淀反应
在体外，当抗体与相应抗原二者浓度比例适当时，会发生 免疫沉淀(immunoprecipitation)反应，表明两者之间有特 异性反应。免疫沉淀反应广泛用于抗原或抗体的定性及定 量分析。在液相中形成的沉淀不易观察判断，利用抗原和 抗体溶液之间的界面形成的沉淀线便于判断，即环状沉淀 试验(ring precipitant test)(图7—来自百度文库0)。沉淀试验可以在玻璃 管中进行，将小试管或毛管的底部加入抗原溶液，在上层 轻轻铺上不同稀释倍数的抗体溶液，勿使界面破坏，为了 使界面更好地形成，常在下层抗原溶液中加入10％的蔗糖 或甘油。抗原抗体溶液置于37℃或4℃孵育后，在界面上形 成白色沉淀线。玻片上沉淀的形成必须在显微镜下观察。
火箭电泳(rocket electrophoresis)，为单向免疫扩散与电泳 结合的一种方法。已混合有抗体的凝胶上，做一小孔，加入 抗原，电泳后，沿着电泳方向形成火箭型沉淀线，沉淀线的 高度与抗原量成正比(图7—14)。火箭电泳可用于定量测定， 例如用于测定人血清中的甲胎蛋白。
4.免疫共沉淀
二、免疫标记
1．放射免疫分析 放射免疫分析法(radio—immunoassay，RIA)的应用始于60年 代末，广泛用于激素、药物等小分子化合物的定量分析，是灵敏、
可靠的免疫分析方法之一。常用来标记抗原或抗体的同位素有 125I，131I，3H和35S。放射活性的检测液相反应体系用液体闪 烁仪计数，而固相体系可用X射线胶片显影。 125I 为γ 射线(0.035meV)，131I 有硬β 射线(0.608meV)和γ 射 线(0.36meV)两种，半衰 期为60 d，放射性碘标记常用氯胺T法(chloramines—T)。氯胺 T是氯代酰胺类氧化剂，在水中不稳定，产生的氯离子将碘离子 (I-)氧化为单质碘(I2)，单质碘与抗原或抗体分子上的苯丙氨酸及 酪氨酸残基的苯环或组氨酸的咪唑基共价相连，使之发生碘化反 应。
免疫利用共沉淀是抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细 菌蛋白质的“protein A/G"特异性地结合到抗体(免疫球蛋白) 的FC片段的现象开发出来的方法。目前多用protein A/G预先 结合在argarose beads上，使之与含有抗原的溶液及抗体反应 后，beads上的prorein A/G就能达到吸附抗原的目的。通过低 速离心，可以从含有目的抗原的溶液中将目的抗原与其它抗原 分离。
第七章 抗原抗体反应的应用
免疫沉淀与免疫凝集 免疫标记 免疫定位分析 抗原抗体反应的其他应用
免疫分析方法是利用抗原与抗体特异性反应的特性对 抗原或抗体进行量或质的测定分析。这类分析方法具 有特异、灵敏和快速的特点，有的可以表现出一个氨 基酸分子的差异，如用单克隆抗体进行检测的方法； 测定的量可以达到μg甚至ng的水平，如ELISA法， 放射免疫法等；反应在几小时，几分钟甚至更短的时 间可以看到测定的结果，如免疫沉淀法等。
5.免疫凝集
颗粒性抗原（红细胞、细菌、 乳胶颗粒等）与 抗体特异性结合，形成肉眼可见的凝集块。
(1)直接凝集(direct agglutination) 玻片凝集、试管凝集
(2)间接凝集（indirect agglutination） 可溶性抗原或抗体包被在乳胶颗粒或红细胞表面，与相
应 抗体或抗原混合出现的凝集现象。 正向间接凝集试验 反向间接凝集试验 反向间接凝集抑制试验
单向扩散法又称Mancini 法，将适当浓度的抗体 混于琼脂(0．8％—1％)中，琼脂凝 固后，打成小孔，加入抗原，抗原由小孔开始向 周围扩散，并在小孔周围合适的位置形成沉 淀环。沉淀环的面积与抗原浓度呈正相关。通过 与已知抗原浓度形成的沉淀环面积进行比较，可 确定被测抗原的浓度(图7—11)。单扩散常用于测 定血清中IgG、IgM、IgA及补体的含量。 单扩散法的特点使用抗体浓度大，当抗原浓度低 于5—10μ g／mL则不适用。
3．免疫电泳
免疫扩散沉淀形成需较长时间，且灵敏度低。免疫电泳 （immunoelectrphoresis）是利用蛋白质在凝胶中电泳迁移 率不同能被分离开来的特性与免疫扩散结合一起进行分析的方 法。这种方法能提高分辨率和灵敏度。混合的蛋白质抗原在 PH 8．6时带负电荷，在电场的作用下，由负极向正极迁移， 使混合的抗原组分得以分离，而抗体可以通过自由扩散，也可 以通过电泳与分离的抗原形成相应的特异性沉淀线。从而提高 免疫沉淀的灵敏度。常见的免疫电泳方法有血清免疫电泳，火 箭电泳和对流免疫电泳(又称电渗析)。传统的免疫电泳即指血 清免疫电泳，将抗原混合物(病人血清)在凝胶中用电泳分离后， 沿电冰方向挖一平行的小槽，加入抗血清，进行双扩散。沉淀 线的特点显示病人血清与正常人血清存在的差异，即血清蛋白 组分的缺少或增加(图7—13)。
双扩散法又称为Ouchterlony法，在琼脂板中抗原和抗 体分别从相邻的孔中向四周扩散，在抗原孔和抗体孔之 间二者比例合适的部位形成沉淀线。琼脂双扩散常用于 分析抗原间的血清学关系和抗体间差异，相邻孔中不同 抗原与同一抗血清反应形成的沉淀线形状的变化显示抗 原间是否存在共同的抗原决定簇。当两个抗原完全—致 时，两条沉淀线完全融合(图7—12A)；如果两个抗原无 共同抗原决定簇而抗血清中有针对两种抗原的抗体时， 沉淀线互不干扰，呈交叉状(图7—12B)；当两个抗原只 是部分抗原决定簇相同，还有其他不同的抗原决定簇， 则沉淀线在后者一方形成突出的小刺(图7—12C)。此外， 根据抗体或抗原的不同，可形成其他不同特征的沉淀线。 Ouchterlony法灵敏度不高，形成沉淀线需较长时间 (18—24h)。但在抗原分析方面很有实用价值。
2.凝胶扩散沉淀
抗原抗体可在半透明的半固相介质中进
行沉淀实验。抗原分子和抗体分子在凝胶 介质中自由扩形成浓度梯度，抗原与抗体 在比例合适的一定扩散部位相遇形成沉淀 线。凝胶沉淀可用于测定抗原或抗体的相 对浓度，也可用于比较不同抗原的特异性、 纯度及相互关系。最常用的方法为单向免 疫扩散(radial immuno diffusion )和双向 免疫扩散(double－immunodiffusion)。
一、免疫沉淀与免疫凝集
1．溶液中的沉淀反应
在体外，当抗体与相应抗原二者浓度比例适当时，会发生 免疫沉淀(immunoprecipitation)反应，表明两者之间有特 异性反应。免疫沉淀反应广泛用于抗原或抗体的定性及定 量分析。在液相中形成的沉淀不易观察判断，利用抗原和 抗体溶液之间的界面形成的沉淀线便于判断，即环状沉淀 试验(ring precipitant test)(图7—来自百度文库0)。沉淀试验可以在玻璃 管中进行，将小试管或毛管的底部加入抗原溶液，在上层 轻轻铺上不同稀释倍数的抗体溶液，勿使界面破坏，为了 使界面更好地形成，常在下层抗原溶液中加入10％的蔗糖 或甘油。抗原抗体溶液置于37℃或4℃孵育后，在界面上形 成白色沉淀线。玻片上沉淀的形成必须在显微镜下观察。
火箭电泳(rocket electrophoresis)，为单向免疫扩散与电泳 结合的一种方法。已混合有抗体的凝胶上，做一小孔，加入 抗原，电泳后，沿着电泳方向形成火箭型沉淀线，沉淀线的 高度与抗原量成正比(图7—14)。火箭电泳可用于定量测定， 例如用于测定人血清中的甲胎蛋白。
4.免疫共沉淀
二、免疫标记
1．放射免疫分析 放射免疫分析法(radio—immunoassay，RIA)的应用始于60年 代末，广泛用于激素、药物等小分子化合物的定量分析，是灵敏、
可靠的免疫分析方法之一。常用来标记抗原或抗体的同位素有 125I，131I，3H和35S。放射活性的检测液相反应体系用液体闪 烁仪计数，而固相体系可用X射线胶片显影。 125I 为γ 射线(0.035meV)，131I 有硬β 射线(0.608meV)和γ 射 线(0.36meV)两种，半衰 期为60 d，放射性碘标记常用氯胺T法(chloramines—T)。氯胺 T是氯代酰胺类氧化剂，在水中不稳定，产生的氯离子将碘离子 (I-)氧化为单质碘(I2)，单质碘与抗原或抗体分子上的苯丙氨酸及 酪氨酸残基的苯环或组氨酸的咪唑基共价相连，使之发生碘化反 应。
免疫利用共沉淀是抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细 菌蛋白质的“protein A/G"特异性地结合到抗体(免疫球蛋白) 的FC片段的现象开发出来的方法。目前多用protein A/G预先 结合在argarose beads上，使之与含有抗原的溶液及抗体反应 后，beads上的prorein A/G就能达到吸附抗原的目的。通过低 速离心，可以从含有目的抗原的溶液中将目的抗原与其它抗原 分离。
第七章 抗原抗体反应的应用
免疫沉淀与免疫凝集 免疫标记 免疫定位分析 抗原抗体反应的其他应用
免疫分析方法是利用抗原与抗体特异性反应的特性对 抗原或抗体进行量或质的测定分析。这类分析方法具 有特异、灵敏和快速的特点，有的可以表现出一个氨 基酸分子的差异，如用单克隆抗体进行检测的方法； 测定的量可以达到μg甚至ng的水平，如ELISA法， 放射免疫法等；反应在几小时，几分钟甚至更短的时 间可以看到测定的结果，如免疫沉淀法等。
5.免疫凝集
颗粒性抗原（红细胞、细菌、 乳胶颗粒等）与 抗体特异性结合，形成肉眼可见的凝集块。
(1)直接凝集(direct agglutination) 玻片凝集、试管凝集
(2)间接凝集（indirect agglutination） 可溶性抗原或抗体包被在乳胶颗粒或红细胞表面，与相
应 抗体或抗原混合出现的凝集现象。 正向间接凝集试验 反向间接凝集试验 反向间接凝集抑制试验
单向扩散法又称Mancini 法，将适当浓度的抗体 混于琼脂(0．8％—1％)中，琼脂凝 固后，打成小孔，加入抗原，抗原由小孔开始向 周围扩散，并在小孔周围合适的位置形成沉 淀环。沉淀环的面积与抗原浓度呈正相关。通过 与已知抗原浓度形成的沉淀环面积进行比较，可 确定被测抗原的浓度(图7—11)。单扩散常用于测 定血清中IgG、IgM、IgA及补体的含量。 单扩散法的特点使用抗体浓度大，当抗原浓度低 于5—10μ g／mL则不适用。
3．免疫电泳
免疫扩散沉淀形成需较长时间，且灵敏度低。免疫电泳 （immunoelectrphoresis）是利用蛋白质在凝胶中电泳迁移 率不同能被分离开来的特性与免疫扩散结合一起进行分析的方 法。这种方法能提高分辨率和灵敏度。混合的蛋白质抗原在 PH 8．6时带负电荷，在电场的作用下，由负极向正极迁移， 使混合的抗原组分得以分离，而抗体可以通过自由扩散，也可 以通过电泳与分离的抗原形成相应的特异性沉淀线。从而提高 免疫沉淀的灵敏度。常见的免疫电泳方法有血清免疫电泳，火 箭电泳和对流免疫电泳(又称电渗析)。传统的免疫电泳即指血 清免疫电泳，将抗原混合物(病人血清)在凝胶中用电泳分离后， 沿电冰方向挖一平行的小槽，加入抗血清，进行双扩散。沉淀 线的特点显示病人血清与正常人血清存在的差异，即血清蛋白 组分的缺少或增加(图7—13)。
双扩散法又称为Ouchterlony法，在琼脂板中抗原和抗 体分别从相邻的孔中向四周扩散，在抗原孔和抗体孔之 间二者比例合适的部位形成沉淀线。琼脂双扩散常用于 分析抗原间的血清学关系和抗体间差异，相邻孔中不同 抗原与同一抗血清反应形成的沉淀线形状的变化显示抗 原间是否存在共同的抗原决定簇。当两个抗原完全—致 时，两条沉淀线完全融合(图7—12A)；如果两个抗原无 共同抗原决定簇而抗血清中有针对两种抗原的抗体时， 沉淀线互不干扰，呈交叉状(图7—12B)；当两个抗原只 是部分抗原决定簇相同，还有其他不同的抗原决定簇， 则沉淀线在后者一方形成突出的小刺(图7—12C)。此外， 根据抗体或抗原的不同，可形成其他不同特征的沉淀线。 Ouchterlony法灵敏度不高，形成沉淀线需较长时间 (18—24h)。但在抗原分析方面很有实用价值。
2.凝胶扩散沉淀
抗原抗体可在半透明的半固相介质中进
行沉淀实验。抗原分子和抗体分子在凝胶 介质中自由扩形成浓度梯度，抗原与抗体 在比例合适的一定扩散部位相遇形成沉淀 线。凝胶沉淀可用于测定抗原或抗体的相 对浓度，也可用于比较不同抗原的特异性、 纯度及相互关系。最常用的方法为单向免 疫扩散(radial immuno diffusion )和双向 免疫扩散(double－immunodiffusion)。