基因工程实验与理论总结
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1.动物细胞DNA提取原理是什么?
答:先用SDS裂解细胞,使染色体离析,蛋白质变性,释放出核酸。然后用等体积酚/氯仿/异戊醇抽提,使蛋白质变性沉降到酚与水相的界面,DNA则留在水相中,离心后在上清液中加入醋酸钠和两倍体积无水乙醇,除去多糖物质和沉淀DNA,然后离心后沉淀用70%乙醇洗涤,最后用ddH2O溶解沉淀DNA,-20℃保存。
2.DNA提取中用到了哪些试剂?有什么作用?
EDTA:二价金属离子螯合剂,螯合Mg2+,抑制DNA酶活性。因为Mg离子是DNA酶的辅因子。
SDS:一种阴离子去污剂,在高温(55℃—65℃)条件下能裂解细胞,使染色体离析,蛋白质变性,释放出核酸。
酚:使蛋白质变性。
氯仿:作为除杂剂,除去糖、脂等杂质;加速有机相与液相分离;抽提核酸溶液中残留的酚。乙丙醇:作为消泡剂;降低DNA的水溶性,让DNA从溶液中析出;有利于分层,使离心后的上层含DNA水相,中间的蛋白质相及下层有机溶液相维持稳定。
无水乙醇:降低DNA的水溶性,沉淀DNA。
醋酸纳:调PH,中和Tris-Buffer,形成中性环境,利于DNA沉淀。
Tris-Buffer(PH8.0):提供一个缓冲环境,防止核酸被破坏。
70%乙醇:清洗溶液中离子及其他杂质。
NaCl:提供高盐环境,使DNA溶解于液相中。
2.有机溶剂使用注意事项?
答:①有机溶剂的容器,不论是否在使用中,都应随手盖紧。
②尽可能在通风位置工作,以避免吸入有机溶剂的蒸汽。
③尽可能避免皮肤直接接触。
3.PCR原理?
答:将目的基因DNA在高温(94℃)下解链成为单链模板;人工合成的一对与目的基因两侧序列相互补的寡核苷酸引物在低温(40~60℃)下分别与变性的目的基因片段两侧的两条链的部分序列互补结合;在中等温度(65~75℃)下,由耐热的DNA聚合酶(Taq酶)将dNTP 中的脱氧单核甘酸加到引物3,-OH末端,并以此为起点,沿着模板以5,→3,方向延伸,合成一条新的互补链。
4.PCR类型?反转录PCR怎么做的?
答:反向PCR、巢式PCR、锚定PCR、数字PCR、RT-PCR、实时荧光定量PCR、免疫捕捉PCR等。
RT-PCR的原理:提取组织或细胞中的总RNA,以ployA(A)+选择性RNA为模板采用oligo(dT)、随机引物或基因特异性的引物GSP经反转录酶的作用从RNA合成cDNA。再以cDNA为模板进行PCR扩增,获得目的基因或检测基因表达。
5.PCR影响因素?
答:引物;模板;DNA聚合酶;Mg2+;底物;反应缓冲液。
6.PCR体系有什么物质?作用?
答:①引物:是两段与待扩增目的DNA序列侧翼片段具有互补碱基特异性的寡核苷酸,使DNA聚合酶以其3,-OH末端为起点合成互补链,决定了特定基因的扩增。
②模板:提供DNA复制的模板,模板DNA可以是单链分子,也可以是双链分子。
③TaqDNA聚合酶:将dNTP中的脱氧单核甘酸加到引物3,-OH末端,并以此为起点,沿着模板以5,-3,方向延伸,合成一条新的互补链。
④底物dNTPmix:4种脱氧核苷酸,提供PCR反应的原料和能量。
⑤反应缓冲液:反应缓冲液一般含有Tris-HCl、KCl和适当的Mg2+。Mg2+是DNA聚合酶的激活剂,Tris-HCl起缓冲作用,KCl有利于引物的退火。
7.怎样提高PCR产物的特异性?
引物:a.典型的引物18到24个核苷长。引物需要足够长,保证序列独特性,并降低序列存在于非目的序列位点的可能性。但是长度大于24核苷的引物并不意味着更高的特异性。较长的序列可能会与错误配对序列杂交,降低了特异性,而且比短序列杂交慢,从而降低了产量。b.选择GC含量为40%到60%或GC含量映像模板GC含量的引物。c.设计5'端和中间区为G或C的引物。这会增加引物的稳定性和引物同目的序列杂交的稳定性。d.避免引物对3'末端存在互补序列,这会形成引物二聚体,抑制扩增。e.避免3'末端富含GC。设计引物时保证在最后5个核苷中含有3个A或T。f.避免3'末端的错误配对。3'端核苷需要同模板退火以供聚合酶催化延伸。g.避免存在可能会产生内部二级结构的序列,这会破坏引物退火稳定性。
Mg2+:浓度通常为0.5—2.0mmol/l,过高或过低均影响产物的特异性。
模板:模板量应适宜,过量则可能增加非特异性。
延伸时间:应适宜,时间过长会导致产物非特异性增加。
循环次数:一般为30个(25—30个)周期,如果循环次数过高,会增加非特异性产物及其复杂度。
8.PCR都有哪些酶可以用?
答:TaqDNA聚合酶;TthDNA聚合酶;Vent聚合酶;PfuDNA聚合酶。见实验书69页。
9.T4 DNA连接酶连接的原理?
答:T4 DNA连接酶作用机制:酶先与A TP形成酶-AMP共价复合物,再与DNA作用、AMP 转移至DNA缺口5,-磷酸基上形成焦磷酸键而活化5,-磷酸基,然后再与3,-羟基形成磷酸酯键,完成连接过程。
10.PCR产物与T载体怎样连接的?
答:PMD18-T质粒0.5uL,PCR产物4.5uL,2×solution(含T4DNA连接酶)5uL,混匀后16℃水浴过夜。
11.DNA用试剂盒是怎么回收纯化得到的?
答:依据吸附柱中的硅胶膜在高盐浓度下特异性吸附DNA,在低盐浓度下可被洗脱的原理。按照100mg胶块加入700uL溶胶液的比例,55℃溶胶。将融化的胶溶液转移到吸附柱中,离心后倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入同一收集管,加漂洗液离心洗涤,重复漂洗一次,去掉废液后放回吸附柱空转,尽量去除多余溶液。再将吸附柱放入新的收集管中加入洗脱液,静置离心后去掉吸附柱,即为纯化产物。
12.DNA回收的注意事项?
答: ①加入的胶块溶化液的量要足量,保证胶能完全溶解,避免堵塞硅胶模
②确保WB液中已经加入了酒精
③把胶液倒入柱子后要静止2min以后再离心,使DAN完全吸附于膜上
④洗脱液要滴在膜中央,以充分洗脱结合在膜上的DNA。
⑤将离心后的洗脱液倒掉后,要在空离心。
13.连接为何在16℃?
答:因为黏性末端的DNA双键间有氢键的作用,温度过高使氢键不稳定,但连接的最适温度恰为37℃,所以经综合考虑,采用16℃较为合适。
14.载体与目的基因连接时各自的量有什么讲究?
答:连接时外源基因的量要多一些,载体的量要少一些,这样碰撞的机会就会多,否则载体自身环化就严重,一般载体DNA与目的基因连接采用1:(1-3)的比。连接酶的用量不宜过