液相色谱-串联质谱法测定饮用水中的丙烯酰胺

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液相色谱-串联质谱法测定饮用水中的丙烯
酰胺
张凌云1刘波1徐荣1卢益新1谭美凌1赵宇1 伍子同2
(1 深圳市水务集团水质监测站深圳 518000;
2 武汉理工大学理学院化学系武汉 430070)
摘要建立了用液相色谱-串联质谱法测定饮用水中丙烯酰胺的方法。

该法使用Cole-Parmer PTFE滤膜过滤样品,采用Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm)柱分离,以0.1%甲酸和甲醇为流动相(体积比95:5)分离。

采用UPLC/MS/MS电喷雾电离正离子模式(ESI+),多反应检测(MRM),以外标法定量分析。

该方法在0.10μg·l-1到0.60μg·l-1有良好线性范围。

最低检测下限(LOD)0.10μg·l-1。

加标回收率范围为88.9%-106.7%。

相对标准偏差均低于8.2%。

方法适用与水中丙烯酰胺的测定,具有灵敏度高、重现性好的特点,在水质监测中有重要作用。

关键词质谱,LC/MS/MS,丙烯酰胺,饮用水,外标法。

1 引言
丙烯酰胺(Acrylamide)是一种水溶性小分子白色结晶状固体(图1),溶于水,乙醇等极性有机溶剂,是聚丙烯酰胺的单体。

聚丙烯酰胺在水处理中用作絮凝剂,在饮用水的处理中有助于水的澄清。

丙烯酰胺已被国家癌症中心(IARC)列为IIA类致癌物[1],它的α,β-不饱和氨基系统非常容易与亲核物质通过迈克尔加成(Michael addition)发生化学反应,从而影响蛋白质的正常功能而致病[2]。

急性毒性实验证明丙烯酰胺有神经毒性[3]、生殖、发育毒性[4]。

动物实验证明丙烯酰胺可导致遗传物质的改变和癌症的发生。

由于丙烯酰胺单体可导致生物遗传物质的改变及引起癌症,并且有神经毒性,世界卫生组织规定饮用水中的丙烯酰胺最高限量不超过0.5μg·l-1 [5].因此,有必要建立一种合适的测定方法以检测饮用水中的低含量丙烯酰胺。

丙烯酰胺极性很强,在常温下易分解[6]。

目前,国内外测定痕量丙烯酰胺的方法主要有高效液相色谱法、气-质联用法及衍生化法[7-9],但不适用于测定水中的丙烯酰胺。

而测定水中痕量丙烯酰胺有液相色谱-串联质谱联用法[10]、高效液相色谱法[7]。

但是这些方法测定步骤繁琐、灵敏度低、不能满足大多数实验室的检验要求。

本论文陈述了使用液相色谱-串联质谱法测定饮用水中的丙烯酰胺的方法,该法有前处理简单、测定周期短、灵敏度高、重现性好等优点。

图1 丙烯酰胺的结构式与化学性质
Fig.1 Chemical structure and properties of acrylamide
2 实验部分
2.1实验仪器、试剂与样品
2.1.1 仪器
Waters Acquity 超高液相色谱仪(配备自动进样器、二元梯度泵);Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm)色谱柱;Micromass Quattro Premier XE四级杆串联质谱仪;Barnsted超纯水器;AND AF-2000十万分之一电子天平。

2.1.2 试剂
纯水制备自Barnsted超纯水器,电导率为18.2MΩ,TOC<0.2PPM,并去热源;丙烯酰胺固体标准品购自Cxbio Biotech.;丙烯酰胺液体标准品浓度1000μg·ml-1,溶剂为甲醇,购自美国百灵威;甲醇(HPLC级,德国Merck公司)
2.2 实验条件
2.2.1 色谱条件
色谱柱:Waters Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm);柱温:30℃;流动相:甲醇-水(0.1%甲酸),体积比5:95;进样量10μl;流速:0.25ml·min-1。

2.2.2 质谱条件
离子源:ESI+模式;毛细管电压:3.50kV;锥孔电压:20V;二级锥孔电压:5V;源温:120℃;脱溶剂温度:350℃;脱溶剂气流速:400L·h-1;定量方式为多反应检测(MRM)模式,定量离子为丙烯酰胺(71.6>54.8),定性离子为丙烯酰胺(71.6>43.9),碰撞能量均为8eV。

2.2.3 样品预处理
分析前,样品于4℃避光保存。

分析时,样品用Cole-Parmer PTFE 0.2μm滤膜过滤。

2.2.4 定性及定量
选择m/z71.6>54.8作为样品的定量离子,m/z 71.6>43.9作为样品的定性离子;以m/z 71.6>54.8的峰面积比对丙烯酰胺的质量浓度作标准曲线。

以保留时间和m/z71.6>43.9的响应强度比作为定性标准。

3 结果与讨论
3.1实验条件优化
3.1.1 液相色谱条件的优化
丙烯酰胺有较强的水溶性,因此选择纯水作为主要流动相,为了增加电离效果可以加入少量甲酸,但甲酸加入后会改变流动相PH值,酸性太强会大大降低色谱柱的使用寿命,因此选择0.1%的甲酸水溶液作为主要流动相。

但须注意甲酸溶液必须临用新配并密封放置半小时后使用。

实验对比研究BEH C18(1.7μm 2.1X50mm)柱与Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm)柱在分离度与灵敏度上的差异,发现采用Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm)柱有相对较长的保留时间并且信噪比和灵敏度都有所高,而且可以改善拖尾现象。

对比分别使用0.1%甲酸水溶液与水(0.1%甲酸)-甲醇(体积比95:5)为流动相时保留时间、响应强度、峰形的差异,发现使用0.1%甲酸水溶液保留时间增大,两者响应强度无较大差别,但使用甲醇可改善峰形。

经过综合考虑,采用水(0.1%甲酸)-甲醇(体积比95:5)为流动相,流速:0.25ml·Min-1,在2分钟内可较好地分离丙烯酰胺,保留时间大约为0.94min。

3.1.2 质谱条件的优化
以MRM方式定量分析灵敏度高,精密度好。

对质谱条件如碰撞能量、锥孔电压等进行了反复测试和优化,发现几个特定的参数对质谱检测的灵敏度有很大影响。

锥孔电压不仅直接关系到碎片解离的方式,对离子流强度也有影响。

当锥孔电压比较低时,样品离子通过样品锥孔的速度降低,撞击锥孔或者与源内气体的动力小,分子离子不容易破碎;当增加锥孔电压时,分子离子的速度增加,通过锥孔时,与锥孔或者与源内气体的撞击动力大,分子离子就容易产生断裂,形成源内CID。

图2为改变锥孔电压对总离子流强度的影响。

经过优化,锥孔电压为20V时离子流强度最大,条件最优化。

(a)
(b)
(c)
(d)
图2 锥孔电压对总离子提取流强度的影响(a)15V (b) 35V (c)25V (d) 20V Fig.2 Extracted ion profile at different cone voltage(a)15V (b) 35V (c) 25V (d) 20V
根据丙烯酰胺的质谱解离方式(图3),通过预实验,发现丙烯酰胺解离产生m/z54.8、43.9、27.0碎片。

其中子离子m/z54.8具有较高强度,为母离子(m/z71.6)脱氨(NH3)得到的产物,其强度满足定量分析时的准确度要求。

当碰撞能量8eV时,子离子m/z54.8强度最大(图4)。

因此,使用m/z54.8离子峰面积定量,强度稍小的m/z43.9离子定性。

图3 丙烯酰胺的质谱解离方式
Fig.3 Scheme of mass spectral fragmentation for acrylamide
(a)
(b)
(c)
(d)
(e)
图4不同碰撞能量时的m/z54.8提取流(a)10eV (b)9eV (c)8eV (d)7eV (e)6eV
Fig.4 Extracted ion profile of m/z54.8 at varied collision enegry (a)10eV (b)9eV (c)8eV (d)7eV
(e)6eV
合适的脱溶剂气温(Desolvation temp)也至关重要,由于丙烯酰胺性质不稳定,脱溶剂气温过高可能加快丙烯酰胺分解,降低响应强度;而且脱溶剂气温越高噪声也越大。

若脱溶剂气温过低,无法有效脱去流动相,生成杂质峰。

经过优化,脱溶剂气温设为350℃时为最优。

此外,驻留时间(Dwell time)也影响检测的精确度和灵敏度,增大驻留时间,得到的离子的准确度提高,重现性增加,但是灵敏度降低,反之亦然。

因此,驻留时间设置为0.3较合适。

增大碰撞气流速可增大检测响应,但是增加不明显,因此选择0.2ml·min-1较好。

3.1.3 样品处理优化
据文献报道,丙烯酰胺测定可用固相萃取技术(SPE)进行前处理[10]。

但由于水中丙烯酰胺含量极低,在常温下不稳定,固相萃取过程中,吸附、洗脱耗时长,不利于丙烯酰胺稳定存在,因此使用固相萃取技术(SPE)不适宜作为饮用水中丙烯酰胺分析的样品前处理。

鉴于UPLC/MS/MS的高灵敏度,可直接用滤膜过滤水样后进样分析。

对比使用滤膜过滤后分析以及不使用滤膜直接分析的测定结果,发现平均加标回收率、相对标准偏差相差不大(表1、表2),即滤膜对丙烯酰胺吸附较小,不影响测定的准确度。

分析前,水样须存放于4℃环境下避光保存,以防止水样中的痕量丙烯酰胺分解。

表1 不使用滤膜过滤加标回收率测定结果
Table.1 Recoveries of acrylamide for spiked samples without sample preparation
表2 使用滤膜过滤加标回收率测定结果
Table.2 Recoveries of acrylamide for spiked samples using syringe filter
3.2方法学验证
3.2.1 线性关系与检测限
精密称取丙烯酰胺标准品0.003g,用超纯水溶解配制300mg·l-1溶液,取10μl该溶液与10ml超纯水混合,制成300μg·l-1中间液,用该中间液配制0.09μg·l-1,0.18μg·l-1,0.24μg·l-1,0.30μg·l-1,0.36μg·l-1,0.48μg·l-1,0.60μg·l-1标准溶液。

每次进样10μL,使用MassLynx v4.0软件处理数据,根据峰面积绘制标准曲线。

标准曲线及相关系数如图5所表。

r=0.9997,r^2=0.9994,线性方程为y=136.56x+3.99。

该方法在0.09μg·l-1到0.60μg·l-1间有良好线性。

由于水中丙烯酰胺含量极低,且该范围包括世界卫生组织规定饮用水中的丙烯酰胺的最高限量0.5μg·l-1,因此该方法符合实际分析的要求。

以3倍信噪比在标准曲线查得结果计算,得出该方法检测限(LOD)为0.1μg·l-1。

图5 0.09μg·l-1到0.60μg·l-1的线性标准曲线
Fig.5 Linearity plot for acrylamide response ranged from 0.09μg·l-1 to 0.60μg·l-1 3.2.2 方法精密度与加标回收率
取0.36μg·l-1,0.51μg·l-1,0.60μg·l-1标准溶液,每次进样量为10μl,分别进样5次,计算峰面积,测得相对标准偏差(RSD),结果如表3所示。

表3 相对标准偏差值(RSD)
Table.3 RSD of samples
浓度(n=5)(μg·l-1)RSD (%)
0.36 4.8%
0.51 8.1%
0.60 3.3%
3.2.3加标回收率
准确量取10ml纯水,,分别配置加标量为0.36μg·l-1、0.60μg·l-1的样品,按上述方法测定,结果如表4。

表4 纯水加标回收率测定结果
Table.4 Recoveries of acrylamide for spiked pure water
编号加标量
(μg·l-1)
浓度
(μg·l-1)
回收率
(%)
编号加标量
(μg·l-1)
浓度
(μg·l-1)
回收率
(%)
1-1 0.36 0.32 88.9 2-1 0.60 0.62 103.3 1-2 0.36 0.32 88.9 2-2 0.60 0.59 98.3 1-3 0.36 0.36 100.0 2-3 0.60 0.59 98.3 1-4 0.36 0.38 105.6 2-4 0.60 0.61 101.7 准确量取10ml出厂水,分别配置加标量为0.36μg·l-1、0.60μg·l-1,的样品,按上述方法测定,结果如表5
表5 实际样品加标回收率测定结果
Table.5 Recoveries of acrylamide for spiked samples
编号加标量
(μg·l-1)
浓度
(μg·l-1)
回收率
(%)
编号加标
(μg·l-1)
浓度
(μg·l-1)
回收率
(%)
3-1 0.36 0.35 97.2 4-1 0.60 0.63 105.0 3-2 0.36 0.34 94.4 4-2 0.60 0.64 106.7 3-3 0.36 0.36 100.0 4-3 0.60 0.60 100.0 3-4 0.36 0.37 102.8 4-4 0.60 0.61 101.7
由表4计算得出纯水样品平均加标准回收率为98.1%,回收率范围为88.9%-105.6%。

由表5计算得出实际样品平均加标准回收率为101.0%,回收率范围为94.4%-106.7%,相对标准偏差
分别为7.7%、3.3%(n=6)。

通过对比发现,纯水样品加标回收率与实际样品加标回收率相差不大,回收率结果令人满意,因此该法重现性好,精密度高,符合一般检测要求。

4 结论
建立了利用超高效液相色谱-串联质谱联用仪测定水中的痕量丙烯酰胺的方法。

该法采用PTFE滤膜过滤水样,Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm)柱,以0.1%甲酸和甲醇为流动相(体积比95:5)进行分离。

以外标法定量分析,在0.10μg·l-1到0.60μg·l-1有良好线性范围。

具有样品处理简单、测定周期短、灵敏度高、重现性好等优点,适用于在环境实验室中饮用水中痕量丙烯酰胺的测定。

参考文献
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International Agency for Research on Cancer, 1994: 389-433.
[2] 张根义. 热加工食品中丙烯酰氨的形成机理和风险分析 [J]. 无锡轻工大学学报, 2003, 22(4): 91-99.
[3] LoPachin RM, Lehning EJ. Acrylamide-induced distal axon degeneration: a proposed mechanism of action [J].
Neurotoxicology, 1994, 15(2): 247-259.
[4] Rice JM. The carcinogenicity of acrylamide[J]. Mutation Research, 2005, 580(1):3-20.
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[6] U.S. Environmental Protection Agency, EPA 749-F-94-005a, Chemical Summary For Acrylamide,
/chemfact/s_acryla.txt, 1984
[7] 陈玲,陈皓. 固相萃取-高效液相色谱联用分析水中的痕量丙烯酰胺 [J]. 色谱 2003, 21(5):534.
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[9] Smith E A, Oehme F W. J Chromatogr Sci, 1993, 31(5):192.
[10] Lucentini,L.Ferretti,E.Veschetti,et al. Determination of low-level acrylamide in drinking water by liquid
chromatography/tandem mass spectrometry [J]. Journal of AOAC International. 2009, Vol.92(No.1)
(QUANTITION OF LOW-LEVEL ACRYLAMIDE IN WATER BY
LC/MS/MS)
ZHANG Ling-yun1, WU Zi-tong2, LIU Bo1, XU Rong1, TAN Mei-lin1, ZHAO Yu1
(1 Water quality monitoring station, Shenzhen water(group)co.,ltd, Shenzhen, 518000, China;
2 School of science, Wuhan University of Technology, Wuhan, 430070, China)
Abstract
A liquid chromatography/tandem mass spectrometry(LC/MS/MS) method is developed for quantitation of acrylamide in drinking water using positive electrospray ionization(ESI+) and multiple reaction monitoring(MRM). Chromatographic separation is carried out through Acquity HSS T3(1.8μm,2.1X50mm) column using 0.1% formic acid/methanol as the mobile phase. External standard(ES) method is carried out in quantitation. The method confirms good linearity between 0.10μg·l-1and 0.60μg·l-1. Limit of detection isμg·l-1. Overall recoveries are between 88.9% and 106.7%.The method is suitable for determination of low level acrylamide in drinking water due to its high sensitivity and good repeatability, which plays a vital role in water quality monitoring.
Keywords: mass spectrometry,LC/MS/MS,acrylamide, Drinking water,external standard。

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