免疫组化原理及流程介绍
免疫组化的完整步骤及各步原理
免疫组化的完整步骤及各步原理免疫组化是一种非常神奇的实验技术，它可以帮助我们更好地了解细胞的结构和功能。
那么，免疫组化的完整步骤及各步原理究竟是什么呢？别着急，让我来给大家一一道来。
我们要了解一下什么是免疫组化。
简单来说，免疫组化就是利用特定的抗体去寻找目标蛋白，然后通过化学染色的方式将这些蛋白标记出来，这样我们就可以更加清晰地看到它们在细胞中的分布情况了。
那么，免疫组化的第一步是什么呢？没错，就是要准备好实验所需的材料和设备。
这包括：抗体、抗原、酶标板、洗涤缓冲液、PBS缓冲液、DAB染色剂等等。
当然啦，这些材料和设备都是非常珍贵的，所以我们在使用的时候一定要小心谨慎哦！接下来，我们就要开始进行免疫组化实验了。
我们需要将抗原加入到酶标板中，然后用洗涤缓冲液将其充分稀释。
接着，我们就可以将待检测的细胞涂布到酶标板上了。
这里需要注意的是，涂布的时候一定要均匀涂抹，否则就可能会影响后续的实验结果哦！涂布好细胞之后，我们就需要让它们休息一会儿了。
这个过程叫做“孵育”。
在孵育的过程中，抗体会自己找到抗原并与之结合。
这个过程通常需要几个小时的时间，具体时间取决于所使用的抗体和抗原的性质。
孵育完毕之后，我们就可以进行下一步操作了——洗涤。
洗涤的目的是去除未结合的抗原和未被抗体识别的细胞残留物。
这个过程通常需要用到PBS缓冲液或洗涤缓冲液，并且要反复洗几次才能彻底清除所有的残留物。
洗完之后，我们就可以进行染色了。
这个过程叫做“DAB染色”。
DAB染色剂可以与抗体结合产生紫色的颜色反应，从而使我们能够清晰地看到被标记出来的目标蛋白。
染色的时间通常也只需要几分钟左右就可以了。
我们还需要进行一个叫做“复染”的操作。
复染的目的是让细胞核也被染上颜色，这样我们就可以看到细胞的整体结构了。
复染通常需要用到碱性染料，比如伊红染料。
不过复染的时间也要控制好哦，过度染色可能会影响到后续的实验结果。
好了，以上就是免疫组化的完整步骤及各步原理了。
免疫组化的完整步骤及各步原理
免疫组化的完整步骤及各步原理大家好，今天咱们聊聊免疫组化这门技术。
它可是生物医学研究中的一把好手，能让细胞和组织的秘密无所遁形。
咱们先从免疫组化是什么说起。
首先得明白，免疫组化是一种研究方法，它通过给样品加上抗体，让它们跟细胞里的蛋白质或分子“亲密接触”，然后通过染色来观察这些蛋白质或分子的位置和分布。
听起来是不是挺高大上的？不过别急，咱们慢慢来，一步步揭开它的神秘面纱。
1.1 准备工作开始之前，你得确保所有材料都是新鲜的、高质量的，还有那试剂啊，得是实验室里常用的那种。
别忘了准备一个显微镜，这可是观察的关键哦！1.2 固定和包埋接下来就是让细胞和组织固定在一块，这个步骤叫做固定。
把样本放到甲醛溶液或者丙酮里面一泡，就能把它们牢牢地锁住，防止它们移动。
之后呢，把固定好的样本放进树脂里，这样它们就能稳稳当当的了。
这一步是为了保护细胞和组织的结构不被破坏，方便后续的切片和染色工作。
1.3 切片把处理好的样本切成薄片，这就是切片。
切片的时候得小心，别让样本碎掉或者变形。
切片后，还得把那些乱七八糟的东西去掉，比如蜡质啊、气泡啊，这样才能让下面的染色工作顺利进行。
1.4 染色染色可是个技术活。
你得选对染料，颜色要鲜艳，还要能穿透细胞膜，把里面的物质找出来。
染色的方法有很多种，比如直接法、间接法和免疫荧光法等等。
每种方法都有它的特点，就像不同的人有不同的爱好一样。
1.5 观察染色完成后，就可以用显微镜来观察啦！看看细胞和组织里的蛋白质、分子是怎么分布的。
有时候，你还能发现一些有趣的现象，比如某些细胞里藏着很多糖，还有些地方有抗体的“家”。
这些观察结果可是非常宝贵的，能帮助我们更好地理解生物体内的奥秘。
2.1 注意事项做免疫组化实验的时候，可不能马虎哦。
记得要戴好防护眼镜和手套，避免接触到有毒有害物质。
操作时要轻柔，不要破坏样本的结构。
还有啊，处理完样本后得洗手，保持实验室的清洁和卫生。
2.2 常见问题及解决方案有时候会遇到一些问题，比如样本太干或者太湿，这时候可以试试加一点水或者甘油来调整。
免疫组化的完整步骤及各步原理
免疫组化的完整步骤及各步原理免疫组化是一种常用的实验诊断技术，它通过检测细胞或组织中的特定蛋白质来帮助诊断疾病。
免疫组化的完整步骤包括抗原制备、抗体制备、预处理、染色和结果分析等几个环节。
下面我将详细介绍每个环节的原理及操作步骤。
首先是抗原制备。
抗原是指能够与特异性抗体结合的物质，常见的抗原有蛋白质、多肽和核酸等。
在免疫组化中，我们需要选择一种合适的抗原，并将其制备成适合免疫反应的浓度和形式。
一般来说，抗原可以采用化学合成法、生物来源法或基因工程技术等方法进行制备。
接下来是抗体制备。
抗体是指能够与抗原特异性结合的免疫球蛋白，它是免疫组化的核心成分。
在抗体制备过程中，我们需要先确定需要检测的抗原类型和数量，然后选择合适的动物或植物源材料，进行细胞融合或表达纯化等步骤，最终得到高纯度的单克隆抗体。
第三步是预处理。
在进行免疫组化之前，我们需要对样品进行一系列的预处理操作，以去除杂质和干扰物质的影响。
预处理包括样品稀释、缓冲液调整、基质效应消除等步骤。
还需要根据具体的实验设计选择合适的预处理方法和条件。
第四步是染色。
染色是免疫组化的核心步骤之一，它可以将标记有抗体的二抗与待测样本中的抗原结合，形成可视化的斑点分布。
常用的染色方法包括直接荧光法、间接荧光法、免疫印迹法等。
在染色过程中，需要注意染料的选择、浓度和作用时间等因素，以保证染色效果的质量和稳定性。
最后一步是结果分析。
免疫组化的结果分析需要综合考虑多个因素，如阳性对照品的比较、背景值的控制、图像处理和统计分析等。
常用的结果分析方法包括图像分析软件(如ImageJ)和统计分析软件(如SPSS)。
在结果分析过程中，需要注意数据的可靠性和准确性，避免误判和漏判的情况发生。
免疫组化是一项复杂而精细的技术，它需要综合运用多种知识和技能才能完成高质量的实验诊断任务。
希望以上的介绍能对您有所帮助！。
免疫组化的完整步骤及各步原理
免疫组化的完整步骤及各步原理免疫组化是一种非常神奇的实验技术，它可以让科学家们观察到细胞内部的微小世界。
那么，这个神奇的过程到底是怎么进行的呢？下面就让我们一起来揭开免疫组化的神秘面纱吧！我们要了解一下什么是免疫组化。
简单来说，免疫组化就是利用特定的抗体去识别和标记细胞表面或者细胞内部的一些蛋白质分子。
这些抗体可以是医生们自己设计的，也可以是从动物或者植物中提取出来的天然抗体。
当这些抗体与目标蛋白结合时，就会发生一些特殊的反应，比如说颜色的变化、荧光的产生等等。
通过观察这些反应，科学家们就可以了解到细胞内部的结构和功能特点。
接下来，我们来看一下免疫组化的完整步骤及各步原理。
首先是样品制备，也就是把待测的细胞样本取出来进行处理。
这个过程非常重要，因为只有处理好的样品才能够被抗体识别和标记。
接着就是抗体制备，也就是把医生们设计好的抗体合成出来。
这个过程需要一定的技术和经验，因为不同的抗体可能适用于不同的细胞类型和目标蛋白。
然后就是抗原检测，也就是把制备好的抗体加入到样品中，看看它们是否能够与目标蛋白结合。
如果结合了，就会发生一些特殊反应，比如说颜色的变化、荧光的产生等等。
最后就是结果分析，也就是根据观察到的反应来推断出细胞内部的结构和功能特点。
虽然免疫组化看起来很复杂，但是只要掌握了其中的原理和技巧，就可以轻松地完成实验了。
当然啦，在实际操作过程中也会遇到各种各样的问题和挑战，比如说抗体的选择、样品的质量等等。
但是只要我们保持耐心和信心，相信总会找到解决问题的方法的。
免疫组化是一项非常重要的技术，它可以帮助我们更好地了解细胞内部的结构和功能特点。
虽然它看起来有些复杂难懂，但是只要我们认真学习和实践，相信一定可以掌握其中的精髓并取得优异的成绩！。
免疫组化的原理
免疫组化的原理
免疫组化是一种利用抗体与其特异性抗原结合的反应来检测或定位特定分子的方法。
它主要基于抗体的高度特异性与高亲和力，能够识别并结合到抗原上。
免疫组化的过程一般包括固定组织、抗原还原、孵育抗体、洗涤、孵育二次抗体和检测。
具体步骤如下：
1. 固定组织：将待检测的生物组织固定在载玻片上，通常使用形式固定剂或冷冻剂进行固定。
2. 抗原还原：对固定组织进行抗原还原处理，以破坏抗原与抗体结合时的形态学阻滞并使抗原更易于与抗体结合。
3. 孵育抗体：将含有特异性抗体的抗体溶液加到载玻片上的组织切片上，允许其与目标抗原结合。
此时，如果组织中存在目标抗原，抗体就会与其结合形成免疫复合物。
4. 洗涤：通过洗涤步骤去除未结合的抗体，减少干扰性信号的产生。
洗涤通常使用磷缓冲盐溶液或其他缓冲溶液进行多次冲洗。
5. 孵育二次抗体：加入标记有酶、荧光物质或放射性同位素等的二抗溶液，使其与已结合的抗原-一抗复合物发生反应。
二次抗体通常是对多种一抗的特异性抗体。
6. 检测：使用相应的技术，如酶标记法、荧光标记法或放射性
探测等，检测二次抗体与抗原-一抗复合物的结合情况。
通过信号的产生和可视化，可以确定抗原的存在位置以及其表达程度。
总的来说，免疫组化是一种通过利用抗体与抗原间的特异性反应，实现对目标抗原的检测和定位的方法。
其原理主要是通过抗原-抗体的结合来实现对特定分子的识别和鉴定。
免疫组化的原理及操作规程
免疫组化的原理及操作规程免疫组化，即免疫组织化学染色技术，是一种利用抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（如荧光素、酶、金属离子、同位素等）显色，从而确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质）的定位、定性及相对定量的研究方法。
该技术广泛应用于临床病理诊断、生物医学研究以及药物开发等领域。
本文将详细介绍免疫组化的原理及操作规程。
一、免疫组化的原理免疫组化的基本原理是抗原与抗体的特异性结合。
抗原是指能够刺激机体产生免疫应答，并能与免疫应答产物（抗体或致敏淋巴细胞）发生特异性结合的物质。
抗体是机体的免疫细胞在抗原刺激下产生的具有特异性识别能力的免疫球蛋白。
在免疫组化中，通常将目标抗原（如某种蛋白质或多肽）作为待检测物，通过特定的抗体与之结合，再利用标记技术使抗体可视化，从而实现对目标抗原的定位、定性和定量研究。
免疫组化的标记技术主要有直接法和间接法两种。
直接法是将标记物（如荧光素、酶等）直接标记在抗体上，使其与目标抗原结合后直接显色。
间接法则是利用未标记的抗体（一抗）先与目标抗原结合，然后再通过标记的二抗（与一抗特异性结合的抗体）与一抗结合，最终实现显色。
间接法具有更高的灵敏度和灵活性，因此在实际应用中更为常见。
二、免疫组化的操作规程免疫组化的操作规程主要包括以下几个步骤：1. 标本处理：根据实验需求选择合适的组织标本，并进行固定、脱水、包埋等处理，制备成组织切片或细胞涂片。
固定是为了保持组织或细胞的形态结构，防止抗原丢失；脱水则是为了去除组织中的水分，便于后续操作；包埋则是将组织块包裹在支持物（如石蜡）中，便于切片。
2. 抗原修复：由于固定和脱水等处理过程可能导致抗原表位的遮蔽或改变，因此在进行免疫组化染色前，需要对抗原进行修复。
常用的修复方法包括热修复、酶修复和酸修复等。
具体方法应根据实验需求和抗原性质进行选择。
3. 阻断内源性酶活性：为了避免组织内源性酶对后续显色反应的干扰，需要使用相应的阻断剂（如过氧化氢）对内源性酶活性进行阻断。
免疫组化原理和步骤
免疫组化原理和步骤免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种广泛应用于组织学和细胞学研究中的实验方法，主要用于检测和定位蛋白质在组织或细胞中的分布和表达水平。
它结合了免疫学原理和组织学技术，通过使用特异性的抗体和染色剂来实现对目标蛋白质的检测和可视化。
免疫组化的原理主要是利用抗体的高度特异性与抗原相结合，然后使用染色技术来显示抗原的位置。
该技术的基本原理可分为抗原-抗体反应、信号放大和信号显示三个步骤。
第一步：抗原-抗体反应免疫组化的第一步是选择合适的抗体，通过与目标蛋白质的特异性结合来形成抗原-抗体复合物。
抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体。
单克隆抗体具有高度特异性，只能结合到特定的抗原上。
多克隆抗体具有高度敏感性，可以结合多个位点，从而实现信号放大。
通常，为了提高抗原的可检测性，需要对组织样本进行抗原修复处理。
这可以通过热处理（如蒸汽加热、微波加热）或酶切处理来实现。
修复可以解除组织样本中抗原与蛋白质结构之间的交联，增加抗体的渗透性和可结合性。
当抗原-抗体反应发生时，可通过一系列化学反应来形成抗原-抗体复合物。
例如，可以使用二抗来与抗原-抗体复合物结合，然后使用辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）标记的二抗来与二抗结合。
该反应可形成稳定的抗体-酶复合物。
第二步：信号放大由于抗原-抗体复合物的信号很弱，通常需要进行信号放大以便更好地检测到目标蛋白质。
放大信号的方法有很多种，其中最常用的是酶免疫标记联合酶放大技术。
酶免疫标记是通过将抗体与酶结合，使其能够催化特定的化学反应来产生荧光、色素或光学信号。
常用的酶免疫标记包括辣根过氧化物酶（HRP）和碱性磷酸酶（AP）。
这些酶能够催化荧光素、二苯基胺、硝基蓝等底物的氧化还原反应，从而产生可视化的信号。
酶放大技术常用的方法包括：免疫酶化学法（如DAB法）、免疫荧光法和免疫酶学荧光混合法等。
这些方法可通过将底物转化为可见的色素或荧光信号来标记抗原-抗体复合物，从而实现目标蛋白质的检测和定位。
免疫组化原理及流程介绍
免疫组化原理及流程介绍免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种利用免疫反应来检测组织内特定抗原的技术。
它通过将特定的抗体与要检测的组织染色连接，从而实现对该抗原的可视化检测和定位。
免疫组化广泛应用于病理学领域，可以用于诊断和鉴定疾病，研究疾病发生机制以及评估治疗效果。
下面将介绍免疫组化的工作原理和流程。
免疫组化的工作原理可以分为两个步骤：抗原-抗体反应和可视化。
抗原-抗体反应是指将固定的组织样本与特异性抗体结合，形成抗原-抗体复合物。
这种特异性的结合是由于抗原与抗体之间具有互补的结构，类似于锁与钥的关系。
一旦抗原-抗体结合发生，可以通过一系列的化学反应来可视化这种结合，从而观察到抗原的位置和表达水平。
免疫组化的流程一般可以分为样本制备、抗原修复、抗体染色和结果分析四个主要步骤。
样本制备：首先，需要取得要检测的组织样本。
这些组织样本可以是切片、细胞涂片或者细胞悬液。
然后，将样本固定在载玻片上，以保持组织结构的完整性。
抗原修复：组织样本的形态学上常常被固定剂和时间的影响而改变，导致抗原的结构发生损坏。
为了修复抗原使其可被抗体识别，需要进行抗原修复步骤。
常用的抗原修复方法包括高压蒸汽处理（例如蒸气胶片锅或蒸箱）和化学处理（例如酶解或化学溶解）。
抗体染色：通过将特异性抗体与要检测的抗原结合，可实现抗原-抗体复合物的形成。
抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体，可以使用直接染色或间接染色技术。
直接染色是将抗原和抗体直接连接，通过抗原-抗体复合物可视化抗原的表达水平。
间接染色是先与一种包含特异性抗体的二抗结合，再利用第二抗体与标记物（通常是酶或荧光标记）结合，从而放大信号。
结果分析：通过显微镜观察染色结果，评估抗原的表达情况和分布。
常用的评估方法包括定性评估和定量评估。
定性评估是通过观察染色强度和细胞定位来判断抗原的表达水平和细胞类型。
定量评估则是通过计算染色阳性的细胞数量或染色强度来定量化抗原的表达水平。
免疫组化实验流程审批
免疫组化实验流程审批免疫组化实验是一种常用的生物学和医学研究技术，它对于疾病的诊断、治疗和研究具有重要意义。
为了确保实验的准确性、可靠性和安全性，需要建立一套严格的实验流程审批制度。
一、免疫组化实验的基本原理和应用免疫组化实验基于抗原与抗体特异性结合的原理。
通过将特定的抗体与组织或细胞中的抗原结合，再利用显色反应或荧光标记等方法，使抗原所在的位置得以显示。
这一技术广泛应用于肿瘤诊断、病理学研究、神经科学、免疫学等领域。
在肿瘤诊断中，免疫组化可以帮助确定肿瘤的类型、来源、分化程度以及预测肿瘤的预后和对治疗的反应。
例如，乳腺癌中雌激素受体、孕激素受体和HER2 的检测，对于治疗方案的选择具有重要指导意义。
二、实验前的准备工作1、实验人员资质从事免疫组化实验的人员应具备相关的专业知识和技能，经过系统的培训，并熟悉实验室的安全操作规范。
实验人员需要了解免疫组化的基本原理、实验步骤、常见问题及解决方法。
2、实验材料和试剂选择合适的组织样本、抗体、显色剂等实验材料和试剂至关重要。
组织样本应保证新鲜、固定良好，并经过正确的处理和保存。
抗体的选择应根据实验目的和样本类型，确保其特异性和亲和力。
显色剂应具有良好的稳定性和显色效果。
3、实验设备和仪器准备齐全且性能良好的实验设备和仪器，如切片机、孵育箱、显微镜等。
设备应定期进行维护和校准，以保证实验结果的准确性和可靠性。
三、免疫组化实验流程1、组织样本处理（1）取材：从生物体中获取组织样本时，应遵循无菌操作原则，避免样本受到污染。
（2）固定：将组织样本迅速放入适当的固定液中，如福尔马林，以保持组织的形态和结构。
（3）脱水：通过梯度酒精脱水，去除组织中的水分。
（4）包埋：将脱水后的组织样本包埋在石蜡中，便于切片。
2、切片制作使用切片机将包埋好的组织切成薄切片，通常厚度为 4-6 微米。
切片应平整、完整，无褶皱和裂痕。
3、脱蜡和水化将切片放入二甲苯中脱蜡，然后依次经过梯度酒精进行水化。
免疫组化原理和步骤
免疫组化原理和步骤实验原理：抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性，免疫组织化学正是利用了这一原理。
先将组织或细胞中的某种化学物质提取出来，以此作为抗原或半抗原，通过免疫动物后获得特异性的抗体，再以此抗体去探测组织或细胞中的同类的抗原物质。
由于抗原与抗体的复合物是无色的，因此还必须借助于组织化学的方法将抗原抗体结合的部位显示出来，以其达到对组织或细胞中的未知抗原进行定性，定位或定量的研究。
实验步骤：（一）脱蜡和水化：脱蜡前应将组织芯片在室温中放置60分钟或60℃恒温箱中烘烤20分钟。
1、组织芯片置于二甲苯中浸泡10分钟,更换二甲苯后在浸泡10分钟。
2、无水乙醇中浸泡五分钟。
3、95%乙醇中浸泡五分钟。
4、75%乙醇中浸泡五分钟。
（二）抗原修复：用于福尔马林固定的石蜡包埋组织芯片：1、抗原热修复（1）高压热修复在沸水中加入EDTA(ph8.0)或0.01m柠檬酸钠缓冲溶液（ph6.0）。
盖上不锈钢锅盖，但不能锁定。
将玻片置于金属染色加上，缓慢加压，是玻片在缓冲液中浸泡五分钟，然后将盖子锁定，小阀门将会升起来。
10分钟后除去热源，置入凉水中，当小阀门沉下去后打开盖子。
此方法适用于较难检测或核抗原的抗原修复。
（2）沸热修复电炉或水浴锅加热0.01柠檬酸钠缓冲液（ph6.0）至95℃左右，放入组织芯片加热10-15分钟。
（3）微波炉加热在微波炉里加热0.01柠檬酸钠缓冲液（ph6.0）至沸腾后将组织芯片放入，断电，间隔5-10分钟，反复1-2次。
适用的抗原Bcl-2、ax、AR、PR、C-fos、x-jum、z-kit、c-myc、E-cadherin。
ChromograninA、Cyclin、ER、Heatshock、Protein、HPV、Ki-67、MDMZ、P53、P34、P15、P-glycoprotein、PKC、PCNA、ras、Rb等2、酶消化方法常用0.1%胰蛋白酶和0.4%胃蛋白酶液。
免疫组化的原理和步骤
免疫组化的原理和步骤免疫组化是一种常用的实验方法，它利用特异性抗体与免疫原之间的相互作用，通过对细胞或组织中特定抗原的定位和检测，以揭示细胞或组织中特定分子的存在和分布情况。
在免疫组化中，主要包括抗原修复、特异性抗体结合、信号放大、染色和显微镜观察等步骤。
第一步：抗原修复抗原修复是为了提高抗原的可见性，常见的修复方法有热原修复和化学原修复。
热原修复是将组织样本在热压下加热一段时间，以恢复被固定、变性或交联的抗原的活性。
化学原修复是使用化学试剂改变组织中蛋白分子的结构，使其易于抗体结合。
抗原修复可以显著提高抗原的可见性，有利于后续的免疫组化实验。
第二步：特异性抗体结合特异性抗体是免疫组化实验的关键。
在这一步中，需要选择与目标抗原高度特异性结合的抗体。
常用的抗体包括单克隆抗体和多克隆抗体，可以通过直接标记抗体或者间接标记抗体的方式进行实验。
对于直接标记抗体，抗原与荧光物质、酶或金颗粒等直接结合，可通过荧光显微镜、光学显微镜或电子显微镜直接观察抗原的分布和定位。
对于间接标记抗体，首先给定的抗原与一种特异性的一抗反应，接着加入与一抗结合的二抗，最后加入标记有荧光物质、酶或金颗粒等的三抗，通过标记物的发光或染色来观察抗原的分布和定位。
第三步：信号放大为了增加信号的灵敏度和准确性，常常需要对抗原-抗体结合进行信号放大，最常用的方法是酶标方法。
在酶标法中，将特异性抗体与带有酶标记的二抗结合，酶标记的二抗与染色剂的底物作用时，能生成可见的颜色或发光信号，从而实现对抗原的检测和定位。
常用的酶标方法有还原粉末树脂染色法（如DAB法）和荧光素酶法等。
第四步：染色染色是免疫组化实验的关键步骤之一、通过染色方法可以使未染色的组织或细胞变得可见，从而明确表达抗原的位置和数量。
常用的染色方法有光学显微镜下的暴露荧光显微镜和电子显微镜。
第五步：显微镜观察最后一步是通过显微镜来观察和分析免疫组化结果。
光学显微镜和电子显微镜是常用的观察工具。
免疫组化基本原理及操作流程
免疫组化基本原理及操作流程免疫组化技术是一种广泛应用于生物医学研究和临床诊断中的方法，用于检测和定位特定的抗原或抗体在细胞或组织中的存在和分布。
免疫组化的基本原理是利用抗原与抗体之间的高度特异性结合来实现抗原的检测和定位。
免疫组化的基本操作流程如下：第一步：标本处理标本可以是细胞培养物、组织切片、血液等。
在进行免疫组化前，首先需要对标本进行适当的处理，以使得抗原能够得到良好的保存和定位。
处理方法包括固定、脱水、包埋等。
固定是将标本用适当的化学物质处理，使其固定在载玻片上，并保持其原有的形态和结构。
第二步：抗原检测与定位在标本处理完成后，可以开始进行抗原的检测和定位。
这一步需要使用特异性的抗体来与目标抗原结合。
抗体通常通过动物免疫技术获得，即将纯化的抗原注射到动物体内，激发其产生特异性的抗体。
抗体经过收集和纯化后，将其与抗原所在的标本接触，通过抗原与抗体的特异性结合来检测和定位抗原的存在和分布。
第三步：抗体检测抗体检测是免疫组化中至关重要的一步。
通常使用标记抗体来检测抗原的存在和定位。
标记抗体是一种与特定抗体共价结合的物质，它可以通过荧光染料、辣根过氧化物酶、生物素等标记物来实现抗原的检测和定位。
标记抗体通过特异性结合抗原，使得抗原能够在显微镜下观察到，并确定其存在的位置。
第四步：显色与观察在完成抗体检测后，需要进行显色以使抗原能够在显微镜下观察到。
显色方法包括使用荧光显色、暗场显色、免疫酶染色等。
其中，免疫酶染色是最常用的方法，它通过在抗体中添加酶标记物，如辣根过氧化物酶（HRP），再加入适当的显色底物，使其生成可见的色素沉淀。
经过显色后，使用显微镜观察标本，可见到抗原的存在和定位。
第五步：结果分析与解读在观察到显色结果后，需要对结果进行分析和解读。
根据显色的程度和分布情况，可以判断抗原的阳性与阴性。
阳性表示抗原在样品中存在，而阴性则表示抗原在样品中不存在。
结果的解读需要结合临床和实验的背景知识进行综合分析。
免疫组化步骤及原理
免疫组化步骤及原理一、前言免疫组化是一种常用的实验技术，它可以用来检测组织或细胞中的蛋白质表达及其分布情况。
本文将详细介绍免疫组化的步骤及原理。
二、免疫组化的步骤1. 取材首先需要取得需要检测的样本，可以是活体组织或固定后的切片。
对于固定后的切片，需要进行脱水、透明化和包埋等处理。
2. 制备切片将取得的样本制备成厚度为4-6μm的切片，并将其放置在载玻片上。
然后进行脱蜡和再水化处理，以便后续步骤的顺利进行。
3. 抗原修复抗原修复是为了恢复经过固定和包埋处理后被破坏或掩盖了的抗原性位点，使其能够被抗体识别。
抗原修复方法有多种，如高温加压法、微波辅助法等。
4. 阻断非特异性结合位点在进行免疫反应之前，需要阻断非特异性结合位点以减少假阳性结果。
常用的方法是使用牛血清白蛋白、小鼠IgG等。
5. 抗体孵育将特异性的一抗加入载玻片上，在恰当的条件下孵育一段时间，使其与靶分子结合。
然后用洗涤缓冲液洗去未结合的抗体。
6. 二抗孵育加入与第一抗体来源物种不同的二抗，使其结合到第一抗体上。
通常二抗会标记有荧光素、辣根过氧化物酶等标记物，以便于检测。
7. 洗涤在每个孵育步骤之后都需要进行洗涤，以去除未结合的分子和杂质。
洗涤缓冲液可以是PBS、TBST等。
8. 显色对于标记有辣根过氧化物酶等标记物的二抗，需要使用底物进行显色。
底物包括DAB、VIP等，在加入底物之前需要在载玻片上加入过氧化氢等催化剂。
9. 盖片封装最后将载玻片盖上盖片，并使用透明胶水进行封装。
这样可以保持样本的湿度和防止样本污染。
三、免疫组化的原理免疫组化的原理基于抗原与抗体的特异性结合。
抗原是指能够被免疫系统识别并引起免疫反应的分子，如蛋白质、多肽等。
抗体是由B细胞分泌的一种具有特异性结合能力的分子，可以识别和结合到相应的抗原上。
在进行免疫组化实验时，首先需要选择一种特异性较高的一抗，使其与靶分子结合。
然后加入来源于不同物种的二抗，使其与第一抗体结合。
免疫组化原理和步骤
免疫组化原理和步骤免疫组化是一种广泛应用于生命科学领域的技术，可以用来检测和鉴定细胞和组织中特定蛋白分子的存在、定位和表达量。
免疫组化基于免疫学原理，通过使用特异性抗体与待检测分子特异性结合，再通过可视化和定量分析来观察和测定待检测分子的存在和分布情况。
本文将详细介绍免疫组化的原理和步骤。
免疫组化的原理：免疫组化是基于免疫学原理的一种实验方法，其核心原理是特异性抗体与待检测分子的免疫反应。
免疫反应可分为两种类型：直接法和间接法。
1.直接法：直接法是指特异性抗体直接与待检测分子发生免疫反应。
在这种方法中，待检测物与特异性抗体结合后，通过标记在抗体上的标记物来直接检测待检测物的存在。
常用的直接标记物包括酶（如辣根过氧化物酶HRP）、荧光染料（如荧光素同工酶）和放射性同位素（如3H和125I）。
直接法的优点是操作简单，敏感度高，但标记物的选择受限。
2.间接法：间接法是指通过特异性抗体与检测物结合，再加入与抗体结合的二抗发生免疫反应。
间接法的优点是能够使用多种不同的二抗，从而提高了敏感度和特异性。
常用的二抗包括抗IgG的兔抗或小鼠抗。
这些二抗通常是与辣根过氧化物酶结合，并以酶标记物（如DAB）或荧光染料（如荧光素同工酶）来可视化。
免疫组化的步骤：免疫组化实验通常需要经过一系列的步骤，包括固定组织、制备切片、抗原解脱、抗体标记和可视化。
下面是免疫组化的详细步骤：1.组织固定：首先将待检的组织材料使用适当的固定剂进行处理，目的是固定细胞和组织结构，以保持其形态和抗原的保存。
常见的固定剂包括福尔马林、乙酸乙酯、乙醇等。
2.制备组织切片：使用组织切片机将固定的组织切割成薄片，通常厚度为3-5微米。
切片后，可以将切片保存在载玻片上待用。
3.抗原解脱：组织切片上的抗原往往由于固定处理而失去了原有的免疫反应活性，需要进行抗原解脱的处理。
抗原解脱的方法包括酶解法、热解法和酸解法等，可以恢复抗原的免疫反应性。
4.抗体标记：选择适当的特异性抗体，并将其与标记物结合。
免疫组化步骤及原理
免疫组化步骤及原理免疫组化是一种用于检测和定位特定细胞组织中特定分子的技术。
它可以帮助我们研究细胞的结构和功能，并在疾病诊断和治疗中发挥重要作用。
以下是免疫组化的步骤及其原理。
步骤一：标本固定免疫组化的第一步是将待检测组织样本固定在载玻片或其他固定载物上。
常用的固定剂包括福尔马林（formalin）和牛血清白蛋白（BSA）。
固定的目的是保持组织的形态结构并防止其腐解。
步骤二：脱水和去蜡接下来，固定的组织样本通常需要通过一系列酒精浓度逐渐脱水，然后使用组织蜡进行浸泡固化。
蜡浸泡的目的是保护组织细胞结构，并便于切片及后续的免疫标记。
步骤三：抗原暴露在进行免疫组化之前，需要通过抗原暴露步骤使组织样本中的目标分子或抗原暴露出来，便于其和抗体的结合。
这可以通过热处理（如加热松弛），酶解（如胰蛋白酶消化）或抗原修复剂（如热带缓冲液或消化酶）进行。
步骤四：非特异性结合位点的阻断为了阻断非特异性结合位点，需要在进行免疫反应之前进行非特异性抗体预处理。
这可以通过与蛋白质或动物血清结合的非免疫球蛋白（如Bovine Serum Albumin，BSA）或鱼胶（Fish Gelatin）来实现。
这样，可以降低背景信号并提高特异性。
步骤五：抗体结合在免疫组化过程中，使用特异性抗体与待检测的目标分子结合形成免疫复合物。
这些抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体。
单克隆抗体是由同一B细胞产生的一类抗体，具有高度特异性，并且可以与特定的抗原结合。
多克隆抗体则由多个B细胞产生，可以结合目标分子的多个表位。
步骤六：荧光或酶标记的二抗结合为了检测抗体和目标分子的结合，可以使用荧光染料或酶标记的二抗。
荧光染料（如FITC，Cy3，Cy5等）可以在荧光显微镜下观察到相应的光信号。
酶标记的二抗通常使用辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）来标记，这些酶可以催化或参与染色反应，并在光镜下呈现颜色。
步骤七：显色和观察显色的方法根据使用的标记物不同而有所不同。
免疫组化过程及原理
免疫组化过程及原理免疫组化，是一种通过特异性抗体和荧光素等探针对组织切片中的分子进行定位和鉴定的技术。
这种技术广泛应用于生物医学研究和医学诊断中。
本文将介绍免疫组化的过程和原理。
一、样品制备样品制备是免疫组化技术的第一步。
样品主要包括组织切片、胞液、细胞培养物等。
制备样本主要方法有固定、切片、脱水等步骤。
在进行免疫组化之前，必须使用固定剂对样本进行固定。
固定剂的选择应根据不同的样品以及需要检测的分子性质而定。
通常，使用含有甲醛或戊二醛的固定剂。
二、抗体选择和标记选择适当的抗体和相应的探针是免疫组化技术的关键。
抗体是能特异性与靶分子结合的蛋白质，可通过季节性生产、杂交瘤融合技术等方法制备。
标记技术有荧光标记、酶标记、金粒子标记等。
取决于使用的抗体和探针类型，所使用的技术将会是不同的。
三、特异性识别将标记好的抗体溶液滴到固定后的组织切片表面，然后进行特异性识别，即特异性抗体与分子特异性结合的过程。
在该步骤中，选定的抗体只与需要检测的分子特异性的表达区域结合。
四、荧光检测使用荧光显微镜检测标记分子特异性抗体对组织切片上分子特异性结合的情况。
在免疫组化的过程中，荧光探针的特异性荧光信号为明显的标记。
荧光显微镜能够捕捉到这些信号，并将它们转化成清晰可见的图像。
通过荧光检测可以确定细胞表达、蛋白质定位、蛋白质互作等。
五、数据记录和结果分析将荧光显微镜的图像记录下来，并通过图像分析软件进行数据处理和结果分析。
对比对照组、干预组与实验组数据，确定显著的差异。
进行加权平均、标准差、方差等数学方法，基于统计学得出可靠的结论。
六、检测标准化免疫组化技术在不同实验室或者不同操作者之间具有高度可变性。
为了在不同的实验室、不同的操作者不同的样品下得出相同的结果，需要标准化免疫组化的流程。
标准化流程包括选择合适的抗体、标准化抗体稀释度、制剂及品质检测，检测标准的制定等。
标准化流程的制定保证了实验之间的准确性和可重复性，提高了免疫组化技术的可靠性。
免疫组化原理及步骤
免疫组化原理及步骤免疫组化是一种常用于研究细胞和组织中蛋白质的定位、表达及定量的方法。
其原理基于抗原与抗体之间的特异性结合。
在进行免疫组化实验时，通常需经历如下步骤：1. 取样与制片：从待研究的组织或细胞中取得样本，并将其固定在载玻片或切片上，以便后续的实验处理。
2. 抗原恢复：某些样本经过固定处理后，可能会造成抗原的损失或掩盖。
因此，为了使抗原能更好地被抗体识别，常需要进行抗原恢复的步骤。
一般而言，常用的抗原恢复方法包括加热处理、酶解或化学处理等。
3. 阻断非特异性结合：为了避免非特异性的结合，需使用一些非特异性抗体或蛋白质（如牛血清白蛋白、胶原蛋白等）来阻断待测抗体结合样本中的非特异性位点。
4. 抗体标记与孵育：选择特异性与待测抗原结合的一抗体，并将其标记上可视化信号或发光染料等。
在将该标记抗体和样本一同孵育的过程中，待测抗原会与一抗体发生特异性结合。
5. 洗涤：通过洗涤步骤，去除与抗体无关的非特异性结合物，以减少背景信号的干扰。
6. 可视化和显色：对于免疫组化实验，最终需要将特异性结合的抗原或抗体定位，并使其可视化。
这可以通过结合染色剂、酶标记或荧光标记等方法实现。
7. 评价与分析：最后，通过显微镜观察和图像分析等手段，对标记结果进行定性或定量的评价与分析。
可以使用计算机软件进行图像处理和定量分析以获取更准确的数据。
总之，免疫组化的原理在于利用抗原与抗体的特异性结合来对蛋白质进行检测与定位。
在实验过程中，需要进行样本取样与制片、抗原恢复、非特异性结合阻断、抗体标记与孵育、洗涤、可视化和显色、评价与分析等一系列步骤。
这些步骤均为确保实验结果的准确性和可靠性所必需的。
免疫组化原理和步骤[1].docx
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免疫组化原理与步骤免蚪化操作规程.一、试验原理与意义免蚪叙化学又称免疫编鹿化学，是指带显色弼标记的待异性抗体在翅裂4UW位逋过抗原抗体反应和组蛆化学的呈色反应，对相应抗原进行定性、定位、定・渊定的一『新技术。
它把免发反应的特异性、蛆场化学的可见性奇妙地结合起耒，借助星微传("英光星例h电子显微制的显像和放大作用，在编魔、及场鹿水平检涌各种抗原物质(tn量白质、多肽、∙、谶*、病原体以与受体等)。
二、试验》«微波炉、吹战机、坦化第、0盒、烯箱、提善善、染缸、光学里Ira、纯木浆卫生锻、计时善和通风播售。
三、试剂配制.1.0.01MPBS(pH7.34):9.0gNaC1.+50m1.0.2MPB加双篇水至1000m1.;I(XX)m1.0.2MPB(pH7.4)=5.93gNaH2PO4∙2H20+58.02gNa2HPO4>12 H2Oin1000m1.双蔡水或=19OmIA+81Om1.B(A.0.2MNaH2PO4∙2H2O:15.6gin5∞m1.ddH2O;B .0.2MNa2HPO4∙12H2O:71.632gin10∞m1.dH2O)。
2.CitrateBUfferedSa1.ine(0.01M曰»械，PH6.0):28m1.A÷72m1.B÷2∞m1.ddH2O(A.Citrateadd(⅞^11∣):10.5g加双蒸水至100Om1.;B.Citratesodium(柠棣戢制):29.4Ig加双燕水至100om1.)•.3.编制ft透液：由终浓度分别为0.3%双氧水希0.3%TritonX-1.∞混合而成。
配制方法是先用徵波加蒸的36m1.PBS,再接着加120u1. TritonX-100,并加热一儿，冷却至临用首加0.4m1.30%H202β4.5%羊血清或封闭血清，用PBS稀拜。
5.含0.03%H2O2的0.05%DAB(避光)：用20×DAB(1%,10mg∕m1.)5u1.+0.1u1.30%H2O2+95u1.PBS e6.一抗、二抗均用PBS稀稀。
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免疫组化原理及流程介绍
5.一抗孵育
一抗:可以特异结合底物，就是识别出 我们想要检测的东西。一抗和底物结 合与否用肉眼是看不出来的。
免疫组化原理及流程介绍
•
一抗孵育条件在免疫组化反应中最重要， 包括孵育时间和抗体浓度。 • 一抗孵育温度有几种：4度、室温、37度， 其中4度效果最佳；孵育时间：这与温度、抗 体浓度有关，一般37度1-2h，然后4度过夜和 从冰箱拿出后37度复温45min。具体条件还要 摸索。
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★除上述对照结果分析之外，还必 须从以下几个方面综合评价：
1．阳性染色特点 ① Ag定位，胞浆、胞核、胞膜、间质 具有结构性。（非特异性染色 细胞与 组织无区别） ② 染色强度不同：颜色深浅不一（非 特异性染色 弥散性均匀）。
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2．组织切片制作过程的影响 ① 固定不良—非特异性染色，显示不均。 ② 边缘干燥—非特异性染色（常见）， 加抗体时勿干片。
免疫组化原理及流程介绍
通常在过氧化物酶（HRP）法中，显 色剂为DAB。
DAB(3,3-二氨基联苯胺显色液)
配法:DAB 50mg
ABC 法 SP法
0.05M TB 100ml
30%H2O2 30-40ul
PAP法
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9、复染、脱水、透明、封片
复染：目的是形成细胞轮廓，从而更 好地对目标蛋白进行定位，经常用的试剂 为苏木素。 片子复染完后流水振洗，然后臵于盐酸 酒精中数秒（一定动作要快）后拿出流水 振洗，在放入氨水中返蓝即可。
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• 4.一抗的清洗： （1）单独冲洗，防止交叉反应造成污染。
（2）温柔冲洗，防止切片的脱落。推荐 用浸洗方式； （3）冲洗的时间要足够，才能彻底洗去 结合的物质。
具体操作： 1)将一抗倒掉并用 PBS 洗 5 min×5 次； 2)用滤纸将圆圈周围的水吸去，加入已 稀释的二抗后放入 37℃恒温烤箱中 30 min。 3)用 PBS 洗 5 次×5 min
7.SP反应
SP染色法即链霉素抗生物素蛋白 生物素过氧化酶连接法。 该法是ABC法基础上的进一步改良， 使卵白素与链霉（而非生物素）结合， 而后再结合PO基。
⑤H2O2 浓度过高，呈色速度过快且粘 附剂太厚。
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（3）所有切片背景过深
① 内源性过氧化酶没有完全阻断
② 切片或涂片过厚
③ 漂洗不够
④ 底物呈色反应过久
⑤ 蛋白质封闭不够或所用血清溶血
⑥ 使用全血清抗体稀释不够
免疫组化原理及流程介绍
（4）阳性对照染色良好，检测的 阳性标本呈阴性反应。
(1) 所有切片呈阴性
1）染色未完全严格按照操作步骤进行 2）漏加一种抗体，或抗体失活 3）缓冲液内含叠氮化钠，抑制了酶的活性 4）底物中所加H2O2 量少或失活 5）复染或脱水剂使用不当
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（2）所有切片呈阳性反应，其原因：
①切片在染色过程中抗体过浓，或干片了。 ②缓冲液配臵中未加氯化钠和PH值不准确， 洗涤不彻底。 ③使用已变色的呈色底物溶液，或呈色反 应时间过长。 ④抗体温育的时间过长。
1.脱蜡与水化
脱蜡与水化的目的是确保抗体等其 他试剂能够充分与组织中抗原等结合发 生反应。若脱蜡和水化不全易出现局灶 性反应和浸洗不全，而产生非特异性背 景着色。
1)60 ℃×20 min→Xylene：2 ×10 minutes；
2)100% absolute ethanol： 2 ×5 minutes；
3．人工假象与特异性结果显示不在同一 平面上。
免疫组化原理及流程介绍
▲染色失败的几种原因：
染 色 失 败 的 可 能 情 况 (1)所染的全部切片均为阴性结 果，包括阳性对照在内。 (2)所有切片均呈阳性反应 (3)所有切片背景过深 (4)阳性对照染色良好，检测的 阳性标本呈阴性反应
免疫组化原理及流程介绍
目的是使抗体能够充分地进入胞内 进行结合反应。一般用Triton X-100、 蛋白酶k等通透液。
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(2)封闭内源性过氧化酶
其主要目的是降低内源性过氧 化物酶的活性。在传统的ABC法和SP 法中，免疫组化反应结果容易受到 内源性过氧化物酶的干扰，必须用 过氧化氢等进行灭活。
免疫组化原理及流程介绍
1.防止脱片；2.使抗原 抗体结合更稳定。
免疫组化原理及流程介绍
具体做法： 甩去切片上的羊血清,用滤纸擦干组织周 围残留血清，直接加入已稀释的一抗（1： 250、500、1000）后，放入湿盒中室温 1 小时，然后 4 度过夜，冰箱中取出后需37 ℃复温 45 min。
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6.二抗孵育
免疫组化原理及流程介绍
四 免疫组化结果分析
免疫组化结果的判断原则： 1.必须设对照。 2.抗原表达必须在特定部位。 3.阴性结果不能视为抗原不表达。
免疫组化原理及流程介绍
实验分析的相关介绍
阳性对照： 用已知抗原阳性的切片与待 检标本同时进行免疫细胞化学染 色。对照切片呈阳性结果，标为 阳性对照。
免疫组化的原理及流程介绍
免疫组化原理及流程介绍
• 主要内容
一.免疫组化的发展简史 二.免疫组化的原理 三.免疫组化的基本流程 四.免疫组化的结果分析
免疫组化原理及流程介绍
一.发展简史
1941年 Coons 首先用荧光素标记抗体—检测 肺组织内的肺炎双球菌获得成功。 60年代 Akanke建立酶标抗体技术——铁蛋白 标记Ab技术。 70年代 Stemberger 改良上述技术，建立辣根 过氧化物酶——抗体过氧化物酶（PAP）技术， 使免疫细胞化学得到广泛应用。
免疫组化原理及流程介绍
• 1) 用 PBS 3 次×3min 后，用双蒸水洗 5 min；加 一大滴苏木素染液，（胞核蛋白染几秒，胞浆或胞膜 蛋白染 20 s ），自来水冲洗，双蒸水洗 5 min，再 用 PBS 返蓝 5 min。 • 2) 脱水：50% ethanol (1-2) min;70% ethanol (1-2) min ;95% ethanol （1-2） min； 95% ethanol （1-2） min； 100% absolute ethanol: (1-2) min； 100% absolute ethanol: (1-2) min。 • 3) 透明：Xylene 1×(1-2) min→Xylene 2×(1-2) min • 4) 封片：中性树胶。
最常见的原因是：
标本的固定和处理不当
免疫组化原理及流程介绍
注意事项：
• 1.苏木素复染时间需要摸索，尤其要考虑阳 性染色的位臵。 • 2.切片脱蜡和水化要充分；加反应液时要覆 盖组织充分；每次加 液前甩干洗涤液，但 又防止干片 。
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• 3.以下原因可能导致片子着色不均匀： • ① 脱蜡不充分。可以 60 ℃烤 20 min，立即放入新鲜 的 二甲苯中； • ② 水化不全。应经常配制新鲜的梯度乙醇； • ③ 抗体没混匀。用移液器充分混匀一抗/二抗等试剂； • ④ 抗体孵育时，切片放倾斜； • ⑤ 抗体孵育后 PBS 冲洗不充分。 • ⑥ 制片厚薄不均匀等问题。染片盒不平，切片倾斜。
二抗:可以和一抗结合，并带有可以被 检测出的标记(如带荧光、放射性、化 学发光或显色基团），作用是检测一抗。
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•
二抗孵育条件：二抗一般室温或37度 30min-1h，具体时间需要摸索。 • 但在免疫组化中我们一般先把二抗浓度 和孵育时间先定下，然后去摸索一抗浓度和 孵育时间。
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具体操作:
1)用封闭通透液浸润切片 30 min（RT 避光）。 其配法是用预热 40 ml PBS 加120ul TritonX-100 加热几分钟，在临用前加 400 ul的30％H2O2。 2)PBS 溶液洗 3 次×3 min。
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3. 抗原修复 暴露抗原决定簇
由于组织中部分抗原在甲醛或多 聚甲醛固定过程中，发生了蛋白之间 交联及醛基的封闭作用，从而失去抗 原性；通过抗原修复，使得细胞内抗 原决定簇重新暴露，提高抗原检测率。
3)95% ethanol 2 minutes；
4)80% ethanol 2 minutes；
5)70% ethanol 2 minutes；
6)distilled water:5 min；
具 体 操 作
7)PBS 洗 3 ×3 min。
免疫组化原理及流程介绍
2.细胞通透与封闭内源性过氧化酶
(1)细胞通透
免疫组化原理及流程介绍
4.封闭特异性蛋白
组织切片上有些剩余的位点可以与一 抗非特异性结合，造成后续结果的假 阳性。 封闭血清一般是和二抗同一来源的，血 清中有一些动物自身的抗体，预先能和 组织中有交叉反应的位点发生结合。
免疫组化原理及流程介绍
具体操作：
将切片取出,周围水分用滤纸吸干,用组化 笔在组织周围画上圈,在圆圈内组织滴入 5%羊 血清（与二抗来源一致）后放入湿盒中,室温 (约30℃)下10～30min。 大一点
免疫组化原理及流程介绍
SP染色法的特点:
灵敏特异性低，成本低。
具体操作：
1） 加入 SP 复合液后放入 37 度烤箱中 30 min。 2） 用 PBS 洗 5 次×5 min。
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8.显色
在免疫组化中，由于抗原抗体所 形成的复合物本身没有颜色，不能 直接观察，只能借助于其他某些化 学基团的显色作用，是复合物显色， 有利于显微镜下观察。
免疫组化原理及流程介绍
抗原修复的主要方法:
常用的修复方法从强到弱一般 分为三种，高压修复、微波修复、 胰酶修复。
酶消化方法 一般用于细 胞内抗原 应用高频电磁波 打开蛋白质间的 交联键