植物制片的一般原理

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植物制片的一般原理
5. 封边剂
石蜡,油漆,指甲油。
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四、染色 一般做成永久切片观察的材料, 都需要染色。
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1. 染色原理
很复杂,难以解释。 ⑴物理学的解释 ①毛细作用或渗透作用而进入组织的内部——因 为组织材料有孔隙。 ②电子吸附作用——因而染色牢度有强有弱。 ⑵化学上的解释 组织或细胞中的各部分,或是酸性的(结合阳离 子,即碱性染料),或是碱性的(结合阴离子, 即酸性染料)。但没有新物质形成。
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细胞核染料(碱性染料): 苏木精,亚甲蓝,中性红,碱性品红,洋 红,地衣红,结晶紫,番红,甲苯绿,碱 蓝。 细胞质染料(酸性染料): 酸性品红,亮绿,苯胺蓝,固绿,刚果红, 橘红G,曙红,贾纳斯绿,孔雀绿,甲基橙。
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3. 染色方法
⑴死细胞染色。 ⑵活细胞染色。 选无毒性染料。 观察细胞质流、精子或流动孢子等。
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④不改变原生质原来的体积(膨胀或缩 小); ⑤增加细胞内含物折光程度,易于鉴别; ⑥可增加媒染作用和染色能力; ⑦又能有保存作用。 单一的化学药品难以具备以上所有条件; 而几种药品混合,可成近似理想的混合固 定剂。
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2、配制固定剂的一些常用化学药品 ⑴酒精(乙醇,CH3CH2OH) 可作细胞保存剂(70%)。 单独使用时,浓度为70~100%,如DNA合成示 踪。 特点: ①杀死细胞快,渗透力强,可使材料变硬。 ②对蛋白质的固定较差,对膜结构的观察不利; 而DNA免疫组织化学染色,抗体易结合。 是一种还原剂,不能与氧化剂如重铬酸钾、锇酸 等配合,与甲醛、醋酸配合,效果很好。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ物制片的一般原理
3、一些常用的固定剂
⑴FAA
70%乙醇
90ml
乙酸
5ml
甲醛(37-40%)5ml
固定一般的组织,不能用在细胞学上。
固定2-4小时;也是优良保存剂。
固定后的材料不必洗涤,直接脱水。
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⑵卡诺固定液 乙醇 30ml 乙酸 10ml 组织及细胞固定。
根尖、花药固定30 min-60 min,一般不
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一、固定与常用的固定剂 切取组织,如果不立刻处理,就会干枯 与萎缩,酶活动导致细胞自溶。 因此,植物的组织在切取以后,应将植 物组织迅速地杀死与固定,使它们不至 于在死亡前,形态及结构上有更多的内 部或外面的变化。
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1、理想的固定剂 须具备以下的条件: ①迅速地渗入材料,杀死原生质,固定其 微细结构; ②细胞中结构不至于因固定引起人为地改 变; ③凝固原生质,不至于因以后的处理,而 使固定了的原生质变形;
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⑶醋酸(乙酸,CH3COOH) 单独使用,浓度为0.3-5%。 特点:渗透力大,固定十分迅速,但易使 细胞发生膨胀。 常与甲醛(易引起收缩)混合使用。
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⑷锇酸(OsO4) 四氧化锇,灰黄色结晶,中性,昂贵——白金。 使用浓度为1-2%。 强氧化剂,配制水要超净,不宜与还原性固定剂 配合。 特点: ①最好的固定剂,对细微结构的固定良好,是脂 肪性物质唯一的固定剂。
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双子叶植物茎横切面 番红-固绿对染,橘红G衬染
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②铁矾苏木精法 染色体蓝黑色,细胞质灰色或近 无色。 4%铁矾(20-30分)→流水洗 →0.5%苏木精→水洗→2%铁矾 分色→50%酒精。
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③卡宝品红 染色(石炭酸品红) 配制方法: 先配成三种原液,再配成染色液。 原液A: 3 g碱性品红溶于100 ml 70%酒精中。 原液B: 取原液A 10 ml加入到90 ml 5%石炭酸水溶液中。 原液C: 取原液B 55 ml ,加入6 ml 冰醋酸和6 ml福尔马林 (38%的甲醛) 。(原液A和原液C可长期保存,原液B限两周 内使用) 。 染色液: 取C液10—20 m1 ,加45%冰醋酸80~90 ml,再加 山梨醇1.8 g ,配成10%~20%浓度的石炭酸品红液,放 置两周后使用,效果显著(若立即用,则着色能力差) 。 适用范围: 适用于植物组织压片法和涂片法,染色体着色深, 保存性好,使用2—3年不变质。
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2、常用脱水剂 ⑴酒精 浓度梯度: 30%,50%,70%,85%,95%, 100%。 每级依材料5分钟(切片)——2小时(组织块)。 ⑵叔丁醇 可以简化脱水过程。 ⑶丙酮 比酒精脱水快,可溶解树脂,因此在用电镜观察 的超薄切片中常用。
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三、植物制片上各种其它用剂
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生物制片比直接利用活体 观察有进步: ①染色; ②永久制片。
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植物制片一般包括以下步骤: ①将材料杀死与固定; ②切成薄片或涂成薄片; ③脱水与透明; ④染色; ⑤封固。 一些组织化学及细胞学观察用制片,往往 用冰冻切片法(只要把材料冰冻硬化就行 了,可以保持酶的活性)。
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2. 各种常用染料
细胞壁染料: 酸性品红(纤维素) 真曙红(角质) 亚甲蓝(角质) 苯胺蓝(纤维素) 固绿(纤维素) 亚甲绿(木质) 俾士麦棕(纤维素) 苏木精(纤维素) 番红(木质,角质,栓质) 刚果红(纤维素) 亮绿(纤维素) 苏丹(栓质) 结晶紫(角质,木质) 甲基绿(角质,木质)
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4. 封固剂
目的: ①保存已染好的材料; ②利用有合适折光率的封固剂, 使材料清楚地显现出来。
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⑴水溶性封固剂 适合新鲜材料。常用的是甘油和明胶封固 剂。 甘油冻胶: 明胶,5g;甘油,35ml;苯酚,1g;蒸馏 水,30ml。 ⑵树脂性封固剂 加拿大树胶,折射率与玻璃相近。 冷杉胶,1.52。
植物制片的一般原理 压片法观察细胞分裂或核型分析
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④孚尔根染色法(组织化学反应,显 示DNA) 6NHCl解离→水洗→席夫试剂(1- 5小时)→漂洗液→流水→50%酒 精。
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⑤高碘酸——席夫反应法(组织化 学反应--PAS法,显示多糖) 0.5%高碘酸(5-10分钟)→水洗 →席夫试剂(15分钟)→漂洗3次 →流水。
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⑶显微化学反应。 鉴别组织及细胞中的各种组成成分。 (4)免疫组织化学反应。 DNA或蛋白质及其他细胞组分在组 织和细胞中的定位。
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4. 常用染色剂及染色程序
①番红-固绿对染法 1%番红(50%或70%酒精) 0.2%固绿( 95%酒精) 5%桔红G (1/2纯酒精+1/2二甲苯)衬染, 丁香油分色。
1. 透明剂
脱水以后,通常要经过一种试剂,一方 面使材料透明干净,另一方面以便于包 埋剂及封固剂的进入,这就是透明剂的 作用。 二甲苯 便宜,能溶解石蜡,可与封固 剂混合。但易使组织收缩变硬变脆,同 时必须完全脱水后才能用。
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叔丁醇 能简化脱水步骤。
步骤:1/2二甲苯+1/2纯酒精→二甲苯→二 甲苯。 时间:切片,5-10分钟;组织块,1-3小 时。
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免疫组化-示处于S期的细胞
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⑵福尔马林(37~40%甲醛,HCHO) 单独使用,浓度为2-10%。 特点: 对蛋白质固定较好,可使材料变硬,但渗 透力弱,易使材料收缩。 是还原剂,不能与氧化剂配合,但与其它 液体如酒精、醋酸配合,效果很好。 挥发性强——对眼角膜有损伤。
超过一天。
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⑶戊二醛 缓冲液配制——磷酸或Tris缓冲液。3-6%。 ⑷多聚甲醛 缓冲液配制——磷酸或Tris缓冲液。3-6%。 ⑸锇酸 1%。磷酸或巴比妥盐缓冲液配制。
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二、脱水作用及脱水剂 固定剂由水溶液配制。 永久制片制作需要脱水。 1、脱水作用 ①使材料变硬,形状愈加稳定。 ②能与包埋剂或封固剂混合。
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2. 粘贴剂
不致使切片在以后的处理过程, 如脱水、 染色等时丢失。 常用明胶粘贴剂,配方: 明胶(粉状),1g;蒸馏水,100ml;石 炭酸(苯酚),2g(防腐);甘油,15ml。
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3. 包埋剂
①石蜡或蜂蜡 廉价,常见,可反 复使用。 ②火棉胶切坚硬材料, 如种子/木材 等用。 ③树脂 薄切片或超薄切片。
因此在各种细胞器的研究中常常使用——超薄 切片电镜观察。 ②渗透十分薄弱,材料越小越好。
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⑸多聚甲醛和戊二醛 非凝固性固定剂,在薄切片(厚1-2μm ) 和超薄切片(6-30nm)中使用,能很好地固 定细胞的细微结构。 市售的甲醛由于含甲酸等杂质,不适宜用 作非凝固性固定剂使用。
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