Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展

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多肽合成中Fmoc

多肽合成中Fmoc

多肽合成中Fmoc多肽合成中fmoc-氨基酸侧链的保护在肽合成中,活性侧链基团应得到永久保护,以使其在a-氨基脱保护反应和氨基酸缩合反应中保持稳定。

它们的永久保护与a-氨基的临时保护相匹配,形成正交保护。

在所有缩合反应完成后,可在特定条件下移除保护基团。

Fmoc氨基酸的侧链保护基应在碱性条件下稳定,并在酸性条件下去除(TFA)。

以下是不同氨基酸侧链的常见保护基团。

1.天冬氨酸(ASP)和谷氨酸(Glu)asp和glu侧链羧基常用tbu保护。

可用tfa,tmsbr等脱除。

但是用tbu保护仍有侧链环化形成酞亚胺的副反应发生。

近年来发展了一些新的保护基如环烷醇酯、金刚烷醇酯等可减轻这一副反应,这些保护基可用三氟甲磺酸三甲硅烷酯(tmsotf)除去。

2.丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸丝氨酸(ser)、苏氨酸(thr)和酪氨酸(tyr)的羟基tyr的酚羟基通常用叔丁基(tbu)保护。

3.天冬酰胺(ASN)和谷氨酰胺酞(Gln)asn和gln的a-羧基活化时可能会发生分子内脱氢反应生成氰基化合物。

碱性时gln 的侧链可以环化生成酰胺,为避免这些问题,可以用9-咕吨基,2,4,6-三甲氧卞基,4,4'-二甲氧二苯甲基或三苯甲基(trt)等保护,这四种基团均可用tfa脱除。

4.组氨酸(his)his是最容易发生消旋化的氨基酸,boc基团是一个较理想的保护基,降低了咪唑环的碱性,抑制了消旋。

5、半胱氨酸(cys)半胱氨酸的-SH具有很强的亲核性,很容易酰化成硫醚并氧化成二硫键。

有两种常见的保护基团:一种可以被TFA去除,如对甲基苄基、对甲氧基苄基和二苯甲基;第二种类型可以通过(cf3co)3t1/TFA去除,并且对TFA稳定。

例如,TBU、BOM和乙酰胺甲基对弱酸是稳定的,例如苄基和叔丁基硫代(stbu)。

琉球试剂和磷试剂可以还原半胱氨酸(stbu),Na/NH3可以脱保护半胱氨酸(bzl)。

6、精氨酸(arg)Arg的胍基具有较强的亲核性和碱性,因此必须加以保护。

保护氨基酸Fmoc-His(Trt)-OH的合成方法优化

保护氨基酸Fmoc-His(Trt)-OH的合成方法优化

方 法对 Hi 两步 保护 反 应 条件 进 行优 化 , 得 最终 两 步反 应 收 率分 别 都 达到 8 % 以上 , 品 纯 s的 使 O 产
度 达 到 9 以 上 。 5
关 键 词 : 氨 酸 ( s ;氨 基 酸 保 护 ;三 苯 甲基 ( t ;一 甲氧 羰 基 ( mo ) 纽 Hi ) Tr) 9 芴 F c 中图分 类号 : 2. 1 O 6 9பைடு நூலகம்7 文献 标识 码 : A 文 章 编 号 : 3 76 5 ( 0 8 0 —4 —4 0 6 -3 8 2 0 ) 95 90


需要 对 其 a氨 基 及 侧 链 上 的 咪 唑 环 加 以保 护 。 由 于 F c 护 基 的 一 些 独 特 优 点 , 对 碱 的 不 一 mo 保 如
稳 定性 、 易检 测 性 等 , 此 , 们 选 择 F c为 其 aNH 因 我 mo — 保 护 基 。 在 F c策 略 合 成 过 程 中 , 苯 甲 mo 三
摘 要 : 在肽 合 成 中 , 了得 到理 想的 目的 肽 , 为 首先 需要 对氨 基 酸 的 活性 基 团加 以封 闭或 保 护 。叔 丁氧羰基 ( o ) 9 芴甲氧羰 基 ( mo ) 固相合 成 中首 选的 aNH B c和 一 F c是 — 保 护基 , 由此 形 成 了多肽 固相 合 成 方法 中的 两大 类 : o B c方 法 和 F c方 法 。组 氨 酸 ( s 是 多肽 合 成 中 问题 最 大 的氨 基 酸之 mo Hi)
Sy he i nd Optm ia in o o e t d A m i c d nt ssa i z to fPr t c e no A i
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固相多肽合成中Dmab保护基的脱除研究

固相多肽合成中Dmab保护基的脱除研究

固相多肽合成中Dmab保护基的脱除研究时华曜;范崇旭;代先东;刘尚义;曹瑛【摘要】Dmab was a protecting group of carboxyl with the advantages of rapid and chemoselective removal in solid phase peptide synthesis(SPPS), but the efficiency of deprotection of Dmab was not stable sometimes. Therefore, based on the Fmoc/tBu/Dmab orthogonal protection strategy, four peptide resins were synthesized by SPPS, and the deprotection reaction condition of Dmab in SPPS was studied. The results showed that the α-ODmab of Glu and Asp could be removed quickly and complete-ly on the peptide resin, but the intermediate product of 4-aminobenzyl ester peptide could be detected after the deprotective reaction of β-ODmab of Asp and γ-ODmab of Glu. The efficiency of deprotection of Dmab could be deduced as α-ODmab >β-ODmab >γ-ODmab. In conclusion, the Dmab protecting group held promise in SPPS, especially in the synthesis of head-to-tail cyclic peptides, but was not enough ideal in the synthesis of side-chain cyclic peptides or modified peptides.%在固相多肽合成中,Dmab作为羧基保护基具有脱保护条件温和、步骤简便、选择性高的特点,但有时脱保护效率并不稳定. 为此,基于Fmoc/tBu/Dmab三维正交保护策略,利用固相多肽合成技术设计并合成了4个肽树脂,对固相多肽合成中Glu和Asp主链和侧链羧基的Dmab 保护基脱除规律进行了研究. 结果显示,树脂上α-ODmab的脱保护快速、完全,β-ODmab和γ-ODmab脱保护反应较慢,可以检测到相应的中间产物(4-氨基苄酯肽),推测脱保护效率由快到慢依次为α-ODmab >β-ODmab >γ-ODmab. 该结果表明Dmab作为α-COOH保护基具有较高的应用价值,但用于β-COOH和γ-COOH保护时,其脱保护条件尚不成熟.【期刊名称】《化学研究》【年(卷),期】2018(029)003【总页数】7页(P257-263)【关键词】Dmab保护基;脱保护;固相多肽合成【作者】时华曜;范崇旭;代先东;刘尚义;曹瑛【作者单位】军事科学院防化研究院,北京102205;军事科学院防化研究院,北京102205;军事科学院防化研究院,北京102205;军事科学院防化研究院,北京102205;军事科学院防化研究院,北京102205【正文语种】中文【中图分类】O621.3Dmab(4-{N-[1-(4,4-Dimethy-2,6-dioxocyclohexylidene)-3-methylbutyl] amino} benzyl)是近年来用于固相多肽合成的新型保护基团[1-4](图1),用作保护氨基酸的羧基,在20%哌啶或三氟乙酸(TFA)中稳定存在[5]. Dmab的脱除分两步进行,首先,ivDde(1-(4,4-dimethyl-2,6-dioxocyclohexylidene)-3-methylbutyl)可以通过2%水合肼溶液选择性地脱去;然后,剩余的氨基苄基(4-aminobenzyl)经1,6-电子迁移自发消去,从而得到相应的羧酸[6-7](图2).图1 Dmab-OH结构式Fig.1 Structure of Dmab-OH图2 -Glu(ODmab)-的脱除Dmab反应Fig.2 Deprotection of -Glu(ODmab)-Dmab作为羧基的临时保护基,具有脱保护便捷、温和、选择性高以及与常规Fmoc/tBu策略的固相多肽合成技术相容性高等特点. 基于Fmoc/tBu/Dmab三维正交保护策略的固相合成内酰胺环肽的方法陆续有报道. CHAN等[5]使用该策略合成了一种类速激肽拮抗剂环肽,即将Fmoc-Glu-ODmab固定在树脂上,肽链构建完毕后直接在固相上进行环化反应,然后,从树脂上裂解下来得到目标环肽. 随后,其他带三功能基团氨基酸Asp[8]、Tyr[9]、Lys[10]也相继有用于该策略合成环肽的报道. 另外,该策略还可以用来合成某些复杂的多肽,如糖肽[2]或杂环肽[3].但是一些研究在应用Fmoc/tBu/Dmab策略合成多肽时发现[5-6],Dmab在作为Glu和Asp的羧基保护基时,脱除反应效率不稳定,有时会大大影响目标产物产率. 我们在研究中也发现了该现象. 因此,设计了含有Glu和Asp的两个肽链,采用Fmoc/tBu/Dmab策略构建线性肽树脂,研究了固相树脂上Dmab作为羧基保护基时α-ODmab、β-ODmab和γ-ODmab的保护基脱除反应的差异,探索Dmab使用的条件及规律.1 实验部分1.1 仪器与试剂主要仪器:Agilent 1100分析型HPLC,Agilent 6410 Triple QuadLC/MS(Agilent公司,美国);R-200旋转蒸发仪(Buchi公司,瑞士).主要试剂:2-氯代三苯甲基氯树脂(2-CTC Resin)、Fmoc保护氨基酸(Fmoc-Glu(ODmab)-OH,Fmoc-Glu-ODmab,Fmoc-Asp(ODmab)-OH,Fmoc-Asp-ODmab,Fmoc-Glu-OtBu,Fmoc-Gly-OH,Fmoc-Arg(Pbf)-OH,Fmoc-Lys(Boc)-OH,Fmoc-D-Phe-OH)、苯并三唑-N,N,N′,N′-四甲基脲六氟磷酸盐(HBTU)、1-羟基苯并三唑(HOBt),GL Biochem公司;二异丙基乙胺 (DIEA),J&K Chemical公司;2,2,2-三氟乙醇(TFE),Alfa Aesar公司;色谱纯乙腈(ACN),色谱纯甲醇(MeOH),Sigma公司;水合肼(N2H4·H2O),TCI试剂公司;其他试剂均为国产分析纯.1.2 方法1.2.1 肽树脂的制备以肽树脂1(H2N-(-GluOtBu-)4-GluODmab-Resin)的合成为例.将Fmoc-Glu-ODmab 1.36 g(2.0 mmol)溶于DCM 20 mL中,加入DIEA 350.0 μL(2.0 mmol),配成氨基酸溶液. 称取的2-CTC Resin 2.05 g(0.933 mmol·g-1)置于固相反应器中,立即加入氨基酸溶液,振荡5 min;再次添加DIEA 525.0 μL(3.0 mmol),室温振荡反应1.5 h. 加入MeOH 1 640.0 μL,振荡15 min,封闭剩余树脂位点. 用DCM(20 mL×3)、DMF(20 mL×2)、DCM(20mL×2)、MeOH(20 mL×3)依次洗涤树脂,抽干并转移树脂至培养皿中干燥12 h. 称重树脂,得3.06 g,增重1.01 g;经计算,被固定在树脂上的保护氨基酸的量约为1.5 mmol.将氨基酸树脂转至固相反应器中,DCM溶胀15 min,DMF(20 mL×3)洗涤,20% 哌啶/DMF溶液(20 mL×2)脱除Fmoc保护基2次(2 min,8 min),DMF(20mL×5)洗涤. 称取Fmoc-Glu-OtBu 1.92 g(4.5 mmol)、HBTU 1.62 g(4.3 mmol)、HOBt 0.61 g(4.5 mmol),溶于25 mL DMF中,加入DIEA 1.58 mL(9.0 mmol),活化5 min. 将活化好的氨基酸溶液加入固相反应器内,反应1.5 h,DMF(20mL×5)洗涤. 取少量树脂用Kaiser Test检测为阴性后,进行下一个氨基酸的连接. 上述方法依次连接氨基酸Fmoc-Glu-OtBu×3,偶合反应后均进行Kaiser Test定性检测树脂上的偶合效率,显色反应为阴性即可进入下一个偶联循环;若结果为阳性,则重新投入活化好的氨基酸溶液,再次进行该循环反应. 最后,使用20% 哌啶/DMF溶液(20 mL×2)脱除Fmoc保护基,即可得到载有Dmab保护基的肽树脂1.用相同的方法合成肽树脂2(H2N-(-GluOtBu-)4-Glu(ODmab)-Resin)、肽树脂3(H2N-D-Phe-Lys(Boc)-Arg(Pbf)-Gly-AspODmab-Resin)、肽树脂4(H2N-D-Phe-Lys(Boc)-Arg(Pbf)-Gly-Asp(ODmab)-Resin).1.2.2 Dmab的脱除称取0.10 g肽树脂1,2,3,4分别置于固相反应器内,用2% N2H4·H2O/DMF(2 mL×2)溶液脱除Dmab保护基2次(10 min×2);DMF(2 mL×3)、DCM(2mL×2)、MeOH(2 mL)、DCM(2 mL×3)依次洗涤树脂,抽干.1.2.3 肽树脂的裂解将上述肽树脂转移至圆底烧瓶内,置于冰水浴中,加入裂解液(按体积比配置:DCM+TFE+HOAc(8+1+1))1 mL,电磁搅拌,反应30 min;过滤,滤液在旋蒸仪上减压除去溶剂,残留的醋酸通过反复加入正己烷后减压除去,得到粗肽样品.1.2.4 产物的分析使用0.1% TFA/ACN溶解样品,进行RP-HPLC分析(使用Agilent 1100 HPLC,色谱条件为:Vydac 218TP54 C18(4.6×150 mm)分析柱;流动相A为0.1% TFA/H2O溶液,流动相B为0.1% TFA/ACN溶液;洗脱梯度为0~30 min,10%~70% B;进样体积为3 μL,流速为1 mL/min,检测波长为214 nm);收集主要馏分,进行ESI-QQQ-MS分析(使用Agilent 6410 Triple Quad MS,质谱条件为:毛细管电喷雾电压为4 kV,采用正离子检测模式,质量扫描范围m/z 125~1 100).2 结果与讨论2.1 Glu残基的α-ODmab、γ-ODmab保护基脱除为了比较Glu的α-ODmab和γ-ODmab的脱保护,以线性肽LγE5(图3)为目标产物,采用Fmoc/tBu/Dmab三维保护策略,设计合成了肽树脂1和2:肽树脂1:H2N-(-GluOtBu-)4-GluODmab-Resin肽树脂2:H2N-(-GluOtBu-)4-Glu(ODmab)-Resin图3 线性肽LγE5的结构Fig.3 Structure of LγE5肽树脂1和2分别以Glu的γ-COOH和α-COOH与树脂连接,相应的另一个羧基由Dmab保护,则肽树脂1和2上Dmab的脱除反应分别对应α-ODmab和γ-ODmab的脱保护反应.肽树脂1和2分别经2% N2H4·H2O脱除Dmab保护基后,裂解肽树脂,得到产物粗肽1和2. 粗肽1经HPLC和ESI-MS分析显示(图4),主要馏分(tR=14.2 min)的[M+H]+为888.1 Da,与LγE5的理论值888.5 Da相符,即该馏分为LγE5. 粗肽2经HPLC(图5)和ESI-MS分析(图6)结果显示,色谱峰a馏分(tR=13.6 min)的[M+H]+为993.5 Da,色谱峰b馏分(tR=14.0 min)的[M+H]+为888.4 Da(目标肽LγE5的理论值为888.5 Da),即馏分b为LγE5,而馏分a中含有比目标肽大105 Da的组分.图4 粗肽1的HPLC和ESI-MS图Fig.4 HPLC and ESI-MS analysis of crude peptide 1图5 粗肽2的HPLC图Fig.5 HPLC analysis of crude peptide 2图6 色谱峰a和b馏分的ESI-MS图Fig.6 ESI-MS analysis of component a and b of crude peptide 2根据Dmab脱除反应机理(图2)[6],经肼处理后ivDde首先脱去,随后4-氨基苄基迅速发生自发的消去反应,最终得到自由羧基. 肽树脂1中的α-ODmab脱保护反应完全符合该机理,脱除Dmab后的产物单一(图4). 但是肽树脂2中的γ-ODmab脱保护产物复杂,观察到比LγE5的[M+H]+大105 Da的另一产物([M+H]+为993.5 Da),恰与LγE5的4-氨基苄酯肽理论值相符([M+H]+为993.2 Da)(图7). 即γ-ODmab在进行保护基的脱除反应时,4-氨基苄基的自发消去反应进行缓慢,造成脱保护反应不完全. JOHNSON等[5]利用Dmab保护基进行环肽合成时也发现了该现象.图7 LγE5的4-氨基苄酯肽Fig.7 Structure of 4-aminobenzyl ester of LγE5 2.2 Asp残基的α-ODmab、β-ODmab保护基脱除为了比较Asp的α-ODmab和β-ODmab脱保护,以线性肽RGD(图8)为目标产物,采用Fmoc/tBu/Dmab三维保护策略,设计合成了肽树脂3和4:肽树脂3:H2N-D-Phe-Lys(Boc)-Arg(Pbf)-Gly-AspODmab-Resin肽树脂4:H2N-D-Phe-Lys(Boc)- Arg(Pbf)-Gly-Asp(ODmab)-Resin肽树脂3和4分别以Asp的β-COOH和α-COOH与树脂连接,相应的另一个羧基由Dmab保护,则肽树脂3和4上保护基Dmab的脱除分别对应α-ODmab 和β-ODmab的脱保护反应.肽树脂3和4分别经2% N2H4·H2O脱除Dmab保护基后,裂解肽树脂,得到产物粗肽3和4. 如图9所示,粗肽3的HPLC分析图谱显示馏分较单一(tR=16.2 min),ESI-MS分析显示其[M+H]+为974.4 Da,与RGD的理论值974.3Da([M+H]+)相符,即该馏分为RGD. 而粗肽4经HPLC(图10)和ESI-MS分析(图11)显示,色谱峰c馏分(tR=15.8 min)的[M+H]+为1 079.0 Da,色谱峰d 馏分(tR=16.3 min)的[M+H]+为974.0 Da,即馏分d为RGD,馏分c中含有比目标肽大105 Da的组分,参照Glu的Dmab保护基脱除原理(见图2),推测该组分为RGD的4-氨基苄酯肽.图8 线性肽RGD的结构Fig.8 Structure of RGD图9 粗肽3的HPLC和ESI-MS图Fig.9 HPLC and ESI-MS analysis of crude peptide 3图10 粗肽4的HPLC图Fig.10 HPLC analysis of crude peptide 4图11 色谱峰c和d馏分的ESI-MS图Fig.11 ESI-MS analysis of component c and d of crude peptide 4从上述结果中可知,Asp的α-ODmab保护基脱除反应速度快,反应彻底,但β-ODmab保护基脱除反应不彻底,中间产物4-氨基苄酯的自发消去反应较慢,检测到了RGD的4-氨基苄酯肽(图12),该中间产物比RGD大105 Da. 但与Glu的γ-ODmab相比,Asp的β-ODmab脱保护效率高一些,因此仅检测到少量的中间产物4-氨基苄酯肽(图10),而在Glu的γ-ODmab中,4-氨基苄酯肽的含量占多数(图5).图12 RGD的4-氨基苄酯肽Fig.12 Structure of 4-aminobenzyl ester of RGD 3 结论通过对固相多肽合成中Glu和Asp的羧基保护基Dmab脱保护反应进行研究,发现当Dmab作为不同位置(α-、β-和γ-)的羧基保护基时,其脱保护难易程度不同. 在常规的Dmab脱保护条件(2% N2H4·H2O/DMF)下,肽树脂上α-ODmab的脱保护反应快速、完全,而β-ODmab、γ-ODmab的脱保护反应较慢,可以检测到中间产物4-氨基苄酯肽,由此推测可能是因为β-和γ-的4-氨基苄酯自发消除反应缓慢造成的. 根据中间产物比例(HPLC峰面积比)推断,γ-ODmab脱保护比β-ODmab脱保护更困难一些. 即当Dmab用作固相多肽合成中的羧基保护基时,脱保护效率依次为α-ODmab > β-ODmab > γ-ODmab.该规律的发现解释了在固相多肽合成时Dmab保护基脱除不稳定的现象. 同时该结果也表明,作为羧基保护基,Dmab在用于主链环合的环肽固相合成时,是一个非常优秀的保护基;但用于Glu和Asp的侧链保护时,尚有局限性,需要更多的研究以建立高效的脱保护条件.参考文献:[1] BRIAND B, KOTZUR N, HAGEN V, et al. 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fmoc-osu保护氨基步骤

fmoc-osu保护氨基步骤

Fmoc-保护氨基步骤在有机合成中,保护基的选择和去保护操作对合成化合物的成功与否起着至关重要的作用。

Fmoc-保护氨基步骤是一种常用的保护氨基化学反应,以下将对Fmoc-保护氨基步骤进行介绍。

一、Fmoc-保护氨基步骤的原理Fmoc-保护氨基步骤是利用Fmoc保护基对氨基进行保护,在需要时去除Fmoc保护基,从而实现对氨基的保护和去保护。

Fmoc-氨基保护基通过酰氧化还原反应与氨基结合,并且在碱性条件下容易去除。

二、Fmoc-保护氨基步骤的具体操作1. 氨基的保护将含有氨基的化合物与Fmoc-无水氢氟酸酐和碱一起反应,生成Fmoc-氨基保护化合物。

2. 氨基的去保护在需要去除氨基保护基的时候,可以使用碱性条件,如二甲基甲酰胺/碱、三乙胺等,将Fmoc-氨基保护化合物去除Fmoc基,从而得到裸露的氨基化合物。

三、Fmoc-保护氨基步骤的应用Fmoc-氨基保护基适用于多肽合成中,常用于固相合成中对氨基的保护。

它具有保护效果好、去保护条件温和、去保护后易于纯化等优点,因此得到广泛应用。

四、Fmoc-保护氨基步骤的优缺点1. 优点Fmoc-氨基保护基具有保护效果好、去保护条件温和、去保护后易于纯化等优点。

2. 缺点Fmoc-氨基保护基的合成工艺较为复杂,而且去保护条件对一些特殊化合物可能会有影响。

五、Fmoc-保护氨基步骤的改进方法为了克服Fmoc-氨基保护基的缺点,一些化学研究人员提出了各种各样的改进方法,如改进合成工艺、寻找新的去保护条件等,以提高Fmoc-氨基保护基的适用性和效率。

Fmoc-保护氨基步骤作为一种常用的保护氨基化学反应,在有机合成中起着重要作用。

了解其原理、操作、应用及优缺点,对于有机化学研究人员具有重要意义。

通过不断地改进和完善Fmoc-保护氨基步骤,可以提高其在有机合成中的应用价值,推动有机合成领域的发展。

Fmoc-保护氨基步骤在有机合成中的应用非常广泛,特别是在多肽合成领域。

fmoc多肽固相合成

fmoc多肽固相合成

fmoc多肽固相合成序言在现代化学领域,多肽固相合成技术是一种非常优越的合成手段,可以快速高效地制备具有特定结构和功能的多肽分子。

其中,FMOC法多肽固相合成技术是一种被广泛应用的方法。

它以自组装原理为基础,通过化学反应和物理作用将氨基酸的分子有序地锚定在固相载体表面,并以此为基础稳定地合成目标多肽分子。

本文将介绍FMOC法多肽固相合成技术并分为三个部分分别进行详细介绍。

一、FMOC法和多肽合成FMOC法是一种固相合成中常用的保护群移除技术。

该技术采用FMOC苯基保护基进行氨基酸顺序控制和保护,保护群移除后可自由保护出N端羧基以及C端羧基,从而得到目标多肽。

FMOC法具有保护群移除方便、产率高、重整方便等优点,是一种优异的保护群移除技术。

多肽合成是指通过逐步合成单个氨基酸单元来构建目标肽链。

多肽合成包括固相合成和溶液合成两种方式。

相对于溶液合成而言,固相合成技术是一种更加先进的技术。

多肽固相合成技术使用固定在载体上的特殊极性基团,以亲水性的特殊固相材料作为载体,通过共价键或超分子键与氨基酸的侧链反应,使氨基酸固定在载体表面。

由于基团之间的共价键或超分子键具有高度的稳定性,这些固定在载体上的氨基酸单元可以构成一段有序的肽链。

二、多肽固相合成多肽固相合成是将多个氨基酸单元在固相基质表面依次加入反应体系中,结合区分抑制和亵渎剂辅助,合成目标多肽的技术。

多肽固相合成法与FMOC法密不可分,如同飞机离不开燃料,只有二者结合才能够完成肽链的合成。

多肽固相合成技术的优点在于反应过程可以在单一反应过程中进行,这意味着在一次反应中可将许多氨基酸单元加到固相基质表面。

此外,固相合成技术还具有卓越的特异性和选择性,因此,它可以被广泛地应用于多肽分子的制备。

三、FMOC多肽固相合成的应用FMOC多肽固相合成因其简单、快速的优点而被广泛应用于现代化学领域。

特别是在药物研究和生物技术中,FMOC多肽固相合成技术对于制备具有特定活性和功能的多肽分子具有独特的优势。

多肽合成研究进展

多肽合成研究进展

多肽合成研究进展[摘要]多肽是一类生物活性很高的物质。

本文从化学合成和生物合成两个方面综述了多肽的合成,介绍了固相合成、液相分段合成法、施陶丁格连接、天然化学连接、光敏感辅助基连接、可去除辅助基连接、化学区域选择连接、氨基酸的羧内酸酐(NCA)法、组合化学法、酶解法、基因工程法、发酵法等合成方法的原理及其优缺点,对多肽合成方法的发展及其中药资源领域的应用进行了展望,为相关研究提供参考。

多肽是一类介于氨基酸和蛋白质之间的物质,由一种或多种氨基酸按照一定的排列顺序通过肽键结合而成。

已发现存在于生物体内的多肽达数万种多肽是一种蛋白质的结构片段,能起到蛋白质的活性基团作用,是人体新陈代谢、调节活动的重要物质。

通过研究多肽的结构与功能之间的关系,进而了解多肽中各氨基酸系列的功能。

在进行化合物的设计时,尽可能选择短肽,以便提高其生理活性,并且减少临床不良反应。

在美国FDA1999年允许大豆蛋白制品标注可以预防心血管疾病的功能之后,随着人们对多肽中各氨基酸系列功能了解的不断深人及多肽药物和保健品的持续高速发展、多肽合成技术的日益成熟,越来越多的活性多肽已被开发并广泛应用于医药领域,多肽药物的开发越来越受到人们的重视,其市场需求也在日益增加。

本文对近年来多肽的合成方法与研究进展进行综述。

1.多肽合成的分类多肽的合成主要分为两条途径:化学合成和生物合成。

化学合成主要是以氨基酸与氨基酸之间缩合的形式来进行。

在合成含有特定顺序的多肽时,由于合成原料中含有官能度大于2的氨基酸单体,合成时应将不需要反应的基团暂时保护起来,方可进行成肽反应,这样保证了合成目标产物的定向性。

多肽的化学合成又分为液相合成和固相合成。

多肽液相合成主要分为逐步合成和片段组合两种策略。

逐步合成简洁迅速,可用于各种生物活性多肽片段的合成。

片段组合法主要包括天然化学连接和施陶丁格连接。

近年,多肽液相片段合成法发展迅速,在多肽和蛋白质合成领域已取得了重大突破。

基于基金项目的药学创新实验设计--以“fmoc固相合成多肽”为例

基于基金项目的药学创新实验设计--以“fmoc固相合成多肽”为例

DOI:10 3969/j issn 1671 ̄3079 2019 06 020收稿日期:2018 ̄12 ̄25基金项目:国家自然科学基金青年基金项目(81703346)ꎻ浙江省公益技术应用研究计划项目(LGD19H070002)ꎻ嘉兴市科技局项目(2017AY33074)作者简介:孙李丹(1989-㊀)ꎬ女ꎬ浙江台州人ꎬ嘉兴学院医学院讲师ꎬ博士ꎬ研究方向为新药分子的设计与合成.网络出版时间:2019 ̄04 ̄1117:54:19㊀网络出版地址:http://kns.cnki.net/kcms/detail/33.1273.Z.20190411.1526.004.html基于基金项目的药学创新实验设计 以 Fmoc固相合成多肽 为例孙李丹ꎬ黄㊀嬛(嘉兴学院医学院ꎬ浙江嘉兴314001)摘㊀要:在基金科研成果的基础上ꎬ利用固相合成技术ꎬ设计了以9 ̄芴甲氧羰基(Fmoc)固相多肽合成S1肽序的创新实验项目.实验采用简单易得和安全性更高的试剂ꎬ并使用高效液相色谱和质谱对合成的粗品进行纯度检测和结构确证ꎬ形成了对活性多肽合成和表征的一套完整的科研训练过程ꎬ对于激发学生的科研热情㊁加强综合实验技能㊁培养科研素养和创新精神具有较好的效果.关键词:固相合成ꎻ多肽ꎻ药学ꎻ研究性教学中图分类号:R917㊀㊀㊀文献标志码:A㊀文章编号:1671 ̄3079(2019)06 ̄0136 ̄06AnExperimentDesignofPharmacyInnovationBasedonaFundedProjectACaseStudyon FmocSolidPhasePeptideSynthesisSunLidanꎬHuangXuan(CollegeofMedicineꎬJiaxingUniversityꎬJiaxingꎬZhejiang314001)Abstract:ByapplyingthetechnologyofsolidphasesynthesisꎬaninnovativeexperimentalprojectofFmocsolidphasepeptidesynthesisisdesignedbasedontheachievementsofafundedproject.Theexperimentusessimpleandsafereagents.Moreoverꎬthepurityandstructureofthecrudeproductisanalyzedandverifiedbyliquidchromatographyandmassspectrometry.Thusꎬawholestudenttrainingprocessofscientificresearchonpeptidesynthesisandcharacteriza ̄tionisdevelopedꎬwhichhasgoodeffectonstimulatingstudents̓researchenthusiasmꎬstrengtheningtheircomprehensiveexperimentalskillsꎬandcultivatingtheirscientificresearchqualitiesandinnovativespirit.Keywords:solidphasesynthesisꎻpeptidesꎻpharmacyꎻresearchteaching高等教育发展最核心㊁最紧迫的任务是提升人才培养质量ꎬ为国家培养适应社会发展需要的综合性创新人才.[1-2]当前ꎬ医药高等学校教育教学改革和可持续发展的主要目标包含创新型药学人才的培养ꎬ而教学和科研相结合的方式是培养学生创新精神㊁创新意识㊁创新思维和创新能力的必要手段.[3-4]本文结合基金科研项目ꎬ利用固相合成技术ꎬ设计了一套完整的多肽合成创新实验ꎬ旨在培养学生的科研兴趣㊁激发学生潜能㊁养成多元思维和提高实践的能力.多肽是一种由氨基酸组成的化学物质ꎬ具有广泛的生物活性及良好的安全性ꎬ已日益受到药物研发工作者的重视.[5-6]多肽主要采用化学合成法制备ꎬ其中液相合成和固相合成是最主要的合成方法ꎬ但液相合成在多肽工业化生产中因其处理复杂㊁产物纯度低㊁机械化操作困难ꎬ于20世纪60年代逐渐被固相合成所取代ꎬ并在近几年得到了极大的发展与应用.[7-10]631 ㊀㊀㊀㊀㊀嘉兴学院学报JournalofJiaxingUniversity㊀㊀㊀㊀㊀第31卷第6期2019年11月Vol.31No.62019.11㊀1㊀多肽合成的原理与步骤1 1㊀多肽合成路线的选择固相合成法根据保护基团的不同ꎬ可以分成9 ̄芴甲氧羰基/叔丁基(Fmoc/tBu)正交保护策略和叔丁氧羰基/苄氧羰基(Boc/Cbz)正交保护策略.[11-13]本文采用Rink树脂作为固相载体ꎬ利用Fmoc/tBu正交保护策略合成碳末端为酰胺键的肽链ꎬ合成路线见图1.㊀㊀图1㊀S1的合成路线1 2㊀仪器与试剂仪器:北京欣维尔玻璃仪器有限公司多肽固相合成管ꎻ上海精仪754型紫外分光光度计ꎻ上海梅特勒-托利多公司AL204型电子天平ꎻ江苏金坛精密仪器SHY ̄2A型电热恒温水浴振荡器ꎻ德国Thermo公司ST16R高速冷冻离心仪ꎻ上海亚荣生化仪器RE ̄5299旋转蒸发仪.试剂:Fmoc ̄Rinkamide ̄MBHA树脂㊁Fmoc保护氨基酸㊁苯甲醚㊁苯甲硫醚㊁二巯基乙烷(EDT)㊁三甲基硅烷(TIS)㊁苯并三氮唑 ̄NꎬNꎬNᶄꎬNᶄ ̄四甲基脲六氟磷酸酯(HBTU)㊁1 ̄羟基 ̄苯并三氮唑(HOBt)均购自上海吉尔生化有限公司ꎻ哌啶㊁NꎬN ̄二甲基甲酰胺(DMF)和N ̄甲基吡咯烷酮(NMP)购自南京海邦贸易有限公司ꎻ三氟乙酸(TFA)购自阿拉丁试剂有限公司ꎻNꎬN ̄二异丙基乙基胺(DIPEA)购自南京康曼琳化工实业有限公司ꎻ溴酚蓝等其他试剂均为国产分析纯.1 3㊀多肽的合成称取0 182g树脂并置于多肽反应器ꎬ加入5mLDCM溶液ꎬ溶胀30min.精确称取0 45gFmoc ̄Rinkamide ̄MBHA树脂置于反应器中ꎬ根据多肽的分子量ꎬ选用的树脂氮载量为0 55mmol/gꎬ树脂在DCM中溶胀30minꎬ然后使用7mLDMF或DCM交替洗涤树脂2次后滤干溶液ꎬ再在反应器中加入7mL脱保护剂(20%哌啶/DMF溶液)室温震荡30minꎬ脱除树脂上的Fmoc保护基ꎬ之后再分别用7mLDMF或DCM交替洗涤树脂2次.Fmoc ̄Glu(OtBu) ̄OH(0 6mmol)㊁活化剂(0 6mmolHBTU和0 6mmolHOBt)和活化碱(1 2mmolDIPEA)溶于7mLDMF并加至反应器中与树脂混合ꎬ室温反应1hꎬ结束后过滤去除反应液ꎬ7mLDMF或DCM交替洗涤树脂3次ꎬ采用溴酚蓝法对连接效率进行定性检测ꎬ获得偶联效率.按照上述方法和相应肽序ꎬ重复脱保护和偶合过程ꎬ每个循环偶731 孙李丹ꎬ黄嬛:基于基金项目的药学创新实验设计831 嘉兴学院学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第31卷第6期合结束后定性检测偶合效率ꎬ从而确定是否重复偶合还是进行下一步循环.1 4㊀多肽的切割将得到的多肽 ̄树脂复合物放入反应器中ꎬDCM和甲醇交替清洗ꎬ从而使树脂上的肽链舒展ꎬ从而提高切割效果.10mL切割剂加至反应器后ꎬ首先于0ħ条件下振荡反应30minꎬ随后室温振荡反应3hꎬ如果有较难脱除的侧链保护基ꎬ则需适当延长反应时间.反应结束后将液体滤至大量冰乙醚中ꎬ出现白色絮状沉淀后ꎬ冷冻离心并真空干燥得到多肽粗品.2㊀多肽的纯度分析和结构认证根据FDA针对多肽结构认证的指导原则ꎬ采用固相合成法ꎬ严格按照C端到N端的顺序进行合成ꎬ氨基酸组分和序列完全符合要求.2 1㊀仪器与试剂美国WatersLCTPremierXE液质联用仪ꎻ日本岛津2010C型反相HPLC上海精仪754型紫外分光光度计ꎻ上海梅特勒 ̄托利多公司AL204型电子天平ꎻ昆山超仪CR3型台式超声仪ꎻ美国Tedia公司色谱级乙腈ꎻ阿拉丁试剂公司质谱级甲酸.2 2㊀操作步骤纯度分析步骤:称取少量制备得到的多肽样品ꎬ溶于少量水中ꎬ浓度约为0 5mg/mLꎬ0 22μm微孔滤膜过滤后采用日本岛津2010C型反相HPLC分析样品.分析中采用C18反相柱(150mmˑ4 6mmꎬ5μm)ꎻ流动相A:0 1%TFA/水ꎬ流动相B:0 1%TFA/乙腈ꎻ流速为1mL/minꎻ检测波长为214nm.液相条件为B5%~60%ꎬ15min.结构确证步骤:称取少量制备得到的多肽样品ꎬ溶于少量水中ꎬ浓度约为0 5mg/mLꎬ0 22μm微孔滤膜过滤后采用WatersLCTPremierXE液质联用仪分析样品.液相分析条件如下:C18反相柱(1 7μm2 1ˑ50mmꎬWaters)ꎻ流动相A:0 1%甲酸/水ꎬ流动相B:0 1%甲酸/乙腈ꎻ流速为0 3mL/minꎻ紫外检测波长为214nm.质谱方法采用全扫描模式ꎬ对分子分子离子峰和多电荷峰进行检测.3㊀结果与讨论3 1㊀多肽合成方法的选择Boc/Cbz正交保护策略采用Boc基团作为α ̄氨基的保护基ꎬ合成过程中需要反复使用三氟醋酸ꎬ因此易发生多种副反应.此外ꎬ所有氨基酸偶联完毕后需要使用HF㊁TFMSA等强酸切除树脂ꎬ由于其腐蚀性较强ꎬ仪器易损耗ꎬ因而存在一定的安全隐患ꎬ[14-16]从而限制了该方法的使用.而Fmoc/tBu正交保护策略以Boc法为基础ꎬ采用Fmoc基团作为α ̄氨基的保护基ꎬ该保护基在酸性条件下较为稳定ꎬ并且可使用哌啶等碱性试剂脱除ꎬ偶合过程中不使用强酸ꎬ可降低Boc/Cbz正交保护策略中因使用强酸而可能发生的副反应ꎬ有助于提高产率ꎬ因此采用该方法进行多肽合成.3 2㊀树脂的溶胀与活化干态树脂在使用前需要溶胀成网络状ꎬ以增加内部空间ꎬ从而有利于反应基团进出树脂.根据组成材料不同ꎬ树脂可分为聚苯乙烯(PS树脂)㊁聚苯乙烯接枝的聚乙二醇(PEG ̄Ps树脂)和聚丙烯酞胺(PEGA)树脂ꎬ本文中使用的Rink树脂组成材料为聚苯乙烯ꎬ该树脂在不同有机溶剂中的溶胀系数如表1所示.由表1和图2可见ꎬ在DCM中ꎬRink树脂的溶胀效果较好ꎬ为了使树脂达到最佳溶胀状态ꎬ我们先将Rink树脂在DCM中充分浸泡溶胀ꎬ然后进行多肽合成.表1㊀Rink树脂在常用溶剂中的溶胀系数溶剂DCMDMFNMPRink树脂4 53 82 83 3㊀正交保护固相合成策略中氨基酸保护基的选择在多肽合成过程中ꎬ由于侧链的活性基团易发生反应ꎬ因此需要进行充分有效的保护ꎬ从而降低副反应的发生.常用的氨基保护基有烷氧羰㊀㊀图2㊀DCM溶胀的Rink树脂基类㊁酰基类和烷基类.Fmoc基团属烷氧羰基类ꎬ可防止消旋化ꎬ并且相对于苄氧羰基和Boc基团而言ꎬ其脱除条件比较温和ꎬ因此常用于保护氨基酸中的α氨基ꎬ尤其适用于合成含有Trp㊁Met㊁Cys等对酸不稳定的多肽.本文线性多肽合成选用的保护基团如下:Lys(Boc)ꎬGln(Trt)ꎬTyr(tBu)ꎬThr(tBu)ꎬSer(tBu)和Glu(Ot ̄Bu).3 4㊀定性检测方法定性检测采用游离氨基与检测试剂发生显色反应ꎬ通过树脂颜色是否发生变化来间接判断氨基酸的偶合效率.本文尝试了茚三酮和溴酚蓝显色法ꎬ检测结果表明ꎬ茚三酮显色法的检测灵敏度优于溴酚蓝ꎬ但是前者在检测时需要加入剧毒物氰化钾试剂ꎬ安全性较差ꎬ且显色反应需要加热ꎬ操作繁琐.此外ꎬ茚三酮不对脯氨酸的仲胺结构产生显色反应.而溴酚蓝在室温条件就可以ꎬ㊀㊀图3㊀溴酚蓝溶液中的Rink树脂多肽复合物㊀(图左为未脱保护复合物ꎬ图右为氨基裸露的复合物)且反应时间较短ꎬ检测灵敏度也较高ꎬ既方便又快捷ꎬ图3是溴酚蓝溶液中的Rink树脂多肽复合物ꎬ但是该显色反应对组氨酸可能会出现假阳性结果.因此ꎬ采用两种方法交替检测.3 5㊀肽链的切割肽链切割就是用特定试剂清除肽链上的侧链保护基ꎬ同时将多肽与树脂分离ꎬ该步骤将直接影响最终产物的纯度和收率.在切割过程中ꎬ温度是一个重要的影响因素ꎬ升高温度虽然可加快反应速度ꎬ但同时副反应也随之增加ꎬ因此ꎬ为了防止切割液和树脂混合时过度放热ꎬ导致温度过高而引起副反应ꎬ实验中可首先将切割物冰浴20minꎬ然后逐渐恢复至室温继续反应.切割剂中主要成分是三氟醋酸ꎬ三氟醋酸可以有效脱除肽链中的OtBu㊁tBu㊁Trt㊁Boc等不稳定保护基.在切割富含叔丁基侧链保护基的多肽时ꎬ体系中存在大量叔丁基三氟乙酸盐和叔丁基正离子ꎬ易与Trp㊁Tyr㊁Met和Cys等含富电子基团的残基发生副反应ꎬ因此ꎬ在切割过程中加入水㊁TIS和EDT等阳离子清除剂.其中水是最常用的清除剂ꎬTIS和EDT可清除叔丁基三氟乙酸盐ꎬ同时EDT还可防止Cys氧化.考虑到单独使用EDT难以抑制Trp的叔丁基化副反应ꎬ因此可加入苯甲硫醚㊁苯酚㊁水等起保护作用.在实际操作中ꎬ可根据肽链中氨基酸的组成来选取不同成分的切割剂.931 孙李丹ꎬ黄嬛:基于基金项目的药学创新实验设计3 6㊀液相纯度分析在反相色谱分离多肽和蛋白质的实验中ꎬ使用TFA作为离子对试剂是常见的手段.流动相中的三氟乙酸可与疏水键合相和极性残基发生相互作用ꎬ从而改善峰形ꎬ克服峰展宽和拖尾问题.原理在于TFA与多肽上的正电荷及极性基团相结合从而以减少极性保留ꎬ并把多肽带回到疏水的反相表面.此外ꎬTFA紫外最大吸收峰低于200nmꎬ对多肽在低波长(一般均大于210nm)处的检测干扰很小.图4是多肽S1的高效液相图ꎬ由图4可知ꎬ其纯度较好ꎬ保留时间为10 4min.㊀㊀图4㊀S1高效液相结果3 7㊀质谱分析质谱是鉴定多肽分子的重要方法ꎬ本文采用WatersLCTPremierXE液质联用仪鉴定多肽分子量.纯化后的多肽样品配置成浓度为0 05mg/mL的水溶液ꎬ过滤后直接进样分析.在质谱检测分子量范围内ꎬ当多肽的分子量较小时ꎬ可能同时出现单电荷和多电荷分子离子峰ꎻ当多肽的分子量较大且超过质谱仪的检测上限时ꎬ可间接观测多电荷分子离子峰来确定其分子量.多肽S1的ESI ̄MS质谱分析结果如表2和图5所示.表2㊀S1的高效液相和质谱数据结果化合物理论分子量实际分子量理论分子离子峰实际分子离子峰S11094 61094 5[M+1H]+㊀1095 1[M+1H]+㊀10955㊀㊀图5㊀S1质谱结果041 嘉兴学院学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第31卷第6期4㊀结语本文基于基金项目研究成果ꎬ设计了以 Fmoc固相合成多肽S1 的创新实验ꎬ形成了一套完整的对活性多肽合成和表征的科研训练过程ꎬ对激发学生的科研热情㊁加强综合实验技能㊁培养科研素养和创新精神具有较好的效果.参考文献:[1]杜玉波.全面推进素质教育㊀培养高素质创新人才[J].中国高教研究ꎬ2012(1):1-4.[2]李士阔ꎬ黄方志ꎬ沈玉华ꎬ等.研究性教学在材料科学综合实验中的实践[J].实验科学与技术ꎬ2015(4):105-106ꎬ128.[3]葛金芳ꎬ解雪峰ꎬ吴繁荣ꎬ等.科研教学互动在培养创新型药学人才中的探索与实践[J].中国高等医学教育ꎬ2015(10):28-29.[4]韩响玲ꎬ金一粟ꎬ穆克朗ꎬ等.以实践创新能力培养为核心㊀全面推进实验室面向本科生开放[J].实验技术与管理ꎬ2013(2):10-13ꎬ17.[5]厉保秋.多肽药物研究与开发[M].北京:人民卫生出版社ꎬ2011:1-10[6]黄蓓.多肽固相合成研究进展[J].河南化工ꎬ2013(1):28-30ꎬ58.[7]FUSESꎬOTAKEYꎬNAKAMURAH.PeptideSynthesisUtilizingMicro ̄flowTechnology[J].ChemistryꎬAnAsianJournalꎬ2018(24):3818-3832.[8]HANSENPRꎬODDOA.FmocSolid ̄PhasePeptideSynthesis[J].MethodsInMolecularBiologyꎬ2015(1348):33-50.[9]MERRIFIELDRB.Solid ̄PhasePeptideSynthesis[J].AdvancesInenzymologyandRelatedAreasOfmolecularBiologyꎬ1969(32):221-296.[10]RAGNARSSONUꎬKARLSSONSꎬLINDEBERGG.AminoGroupProtectionInSolidPhasePeptideSynthesis[J].ActaChemicaScandinavicaꎬ1970(8):2821-2825.[11]YOOBꎬSHETHVRꎬPAGELMD.Anamine ̄derivatizedꎬDOTA ̄loadedpolymericsupportforFmocSolidPhasePeptideSynthesis[J].TetrahedronLettersꎬ2009(31):4459-4462.[12]MCKEOWNSCꎬCORBETTDFꎬGOETZASꎬetal.SolidPhaseSynthesisandSARofSmallMoleculeAgonistsfortheGPR40Re ̄ceptor[J].Bioorganic&MedicinalChemistryLettersꎬ2007(6):1584-1589.[13]TOFTENGAPꎬSORENSENKKꎬCONDE ̄FRIEBOESKWꎬetal.FmocSolid ̄PhaseSynthesisofC ̄TerminalPeptideThioestersByFormationofaBackbonePyroglutamylImideMoiety[J].AngewandteChemieꎬ2009(40):7411-7414.[14]TOONEEJ.AdvancesinEnzymologyandRelatedAreasofMolecularBiology.Preface[J].FebsLettersꎬ1979(1):317-372.[15]SCHNOLZERMꎬALEWOODPꎬJONESAꎬetal.InSituNeutralizationInBoc ̄ChemistrySolidPhasePeptideSynthesis.RapidꎬHighYieldAssemblyofDifficultSequences[J].InternationalJournalofPeptideandProteinResearchꎬ1992(3/4):180-193.[16]CLIPPINGDALEABꎬBARROWCJꎬWADEJD.PeptideThioesterPreparationbyFmocSolidPhasePeptideSynthesisforUseinNativeChemicalLigation[J].JournalofPeptideScience:AnOfficialPublicationofTheEuropeanPeptideSocietyꎬ2000(5):225-234.(责任编辑㊀张争)141 孙李丹ꎬ黄嬛:基于基金项目的药学创新实验设计。

fmoc-trp(boc)-oh结构式

fmoc-trp(boc)-oh结构式

fmoc-trp(boc)-oh结构式Fmoc-Trp(Boc)-OH 结构式解析及应用一级标题:Fmoc-Trp(Boc)-OH结构式简介Fmoc-Trp(Boc)-OH是一种化学物质,其化学结构式为Fmoc-Trp(Boc)-OH。

该结构式由多个组成部分组成,包括取代基Fmoc和Boc,以及氨基酸Trp。

通过仔细研究和分析该结构式,我们能够了解到它的特点、性质以及在化学领域的应用。

二级标题:FmocFmoc(9-蝶酰亚基羰基)是固相合成中常用的保护基。

它可以在氨基酸或肽链中选择性地保护天然氨基酸的α-胺。

这是因为它具有良好的稳定性,在碱性条件下容易除去,而不对其他部分产生影响。

在合成过程中,Fmoc通常会与大分子树脂发生酰亚胺反应,并且由于其自行水解失活规律而被称为“失活剂”。

这样就形成了一个可重复使用的氨保护团。

因此,Fmoc作为一种方便可控的改变剂,广泛应用于合成更复杂的肽链或天然产物。

二级标题:BocBoc(t-丁氧羰基)是另一种常见的氨基酸保护基。

与Fmoc类似,它也能够选择性地保护氨基酸中的α-胺基团。

但相比于Fmoc,Boc更容易在有机碱条件下脱除。

在合成过程中,Boc通常会与具有强酸催化剂存在下的Ω-羧基发生缩醛反应。

这样就生成了一个更稳定、可重复使用的氨保护团。

因此,Boc不仅被广泛应用于固相合成和溶液合成中,还可以作为肽合成中其他合适方法的补充。

二级标题:TrpTrp(色氨酸)是一种重要的天然氨基酸,在多种生物活性分子和药物中发挥着关键作用。

它含有独特的吲哚环结构,对于肽链和蛋白质稳定性及功能发挥至关重要。

通过引入Fmoc和Boc取代基到Trp分子上,我们可以控制其反应活性以及在化学反应中的角色。

这样使得Fmoc-Trp(Boc)-OH 成为一个重要的中间体,用于合成天然产物和药物分子。

二级标题:Fmoc-Trp(Boc)-OH的应用Fmoc-Trp(Boc)-OH由于其独特的结构和特性,在化学领域广泛应用于多个方面。

fmoc-osu合成方法

fmoc-osu合成方法

fmoc-osu合成方法
Fmoc-Osu是一种常用的保护氨基酸侧链羟基的化合物,可用
于固相合成中氨基酸衍生物的合成。

下面是Fmoc-Osu的合成
方法:
材料:
1. Fmoc-氨基酸(已经保护好的氨基酸)
2. Oxalyl亚胺
3. N,N'-二乙基甲酰胺(DEA)
4. 二甲基亚砜(DMSO)
5. 氯甲烷
6. 乙酸乙酯
7. 水
步骤:
1. 将Fmoc-氨基酸溶解在二甲基亚砜中,加入适量的DEA
(用于中和反应中产生的副产物)。

2. 将Oxalyl亚胺加入溶液中,混合均匀。

3. 在室温下搅拌溶液数小时,直到反应完全进行。

4. 将反应溶液浓缩,得到Fmoc-Osu固体。

5. 用氯甲烷洗涤Fmoc-Osu固体,将洗涤液收集。

6. 用乙酸乙酯洗涤固体,将洗涤液收集。

7. 将洗涤液通过旋转蒸发装置去除溶剂,得到粗品Fmoc-Osu。

8. 用氯甲烷将粗品溶解,并通过滤液去除固体杂质。

9. 用氯甲烷沉淀Fmoc-Osu,并将沉淀物收集。

10. 将沉淀物在真空中干燥,得到纯品Fmoc-Osu。

注意事项:
1. 在合成中使用化学品时请注意安全操作,佩戴好防护手套和眼镜。

2. 溶液搅拌可以使用磁力搅拌器。

3. 洗涤时要尽量使反应产物与固体杂质分离。

4. 合成反应的时间和温度可以根据具体情况进行调整。

5. 某些步骤端产物需要在真空下干燥,确保溶剂的充分去除。

fmoc法

fmoc法

fmoc法
Fmoc法(9-氟酞基甲氧羰基保护组-胺酸-三苯甲基酯保护氨基酸-固相合成法)是合成多肽链的一种常用方法。

该方法利用固相合成原理,在固相支持剂上逐步反应建立肽链。

Fmoc是指9-氟酞基甲氧羰基保护组,它可以保护氨基酸的氨基,防止其在反应过程中发生不希望的副反应。

在合成过程中,每一步都是将下一个氨基酸依次加入到肽链上。

Fmoc法的步骤一般包括以下几个步骤:
1. 固相支持剂的活化:将固相支持剂和活化剂(如二硫化氨基咪唑)反应,引入反应基团,以提供反应的活性位点。

2. 脱保护:使用稀酸溶液(如三氟乙酸)去除氨基酸的保护基团(Fmoc),使其暴露出游离的氨基。

3. 洗涤:用合适的溶剂对反应物进行洗涤,去除未反应物和副产物。

4. 活化剂的加入:加入适当的活化剂(如二硫化氨基咪唑)以提高下一步对氨基酸的偶联反应效率。

5. 氨基酸的偶联:将下一个氨基酸加入到肽链上,与之前的氨基酸通过酰化反应形成肽键。

6. 重复步骤2-5:重复上述步骤直到合成完整的多肽链。

7. 末端处理:在合成完整的多肽链后,进行末端保护(如甲酰化或酰化)或活化(如偶联活化剂)等处理。

Fmoc法具有反应条件温和、副产物易于去除、合成方便等优点,广泛应用于多肽、蛋白质和其他生物活性分子的合成研究中。

多肽固相合成—Fmoc法与Boc法

多肽固相合成—Fmoc法与Boc法

多肽固相合成—Fmoc法与Boc法
多肽合成是一个重复添加氨基酸的过程,固相合成顺序一般从C 端(羧基端)向N端(氨基端)合成。

过去的多肽合成是在溶液中进行的,称为液相合成法。

现在多采用固相合成法,从而大大的减轻了每步产品纯化的难度。

为了防止副反应的发生,参加反应的氨基酸的侧链都是被保护的,而羧基端是游离的,并且在反应之前必须活化。

多肽化学合成方法有两种,即Fmoc合成法和Boc合成法。

Boc合成法
Boc合成法是采用TFA(三氟乙酸)可脱除的Boc(叔丁氧羰基)为α-氨基保护基,侧链保护采用苄醇类。

合成时将一个Boc氨基酸衍生物共价交联到树脂上,用TFA脱除Boc,用三乙胺中和游离的氨基末端,然后通过DCC活化,偶联下一个氨基酸,最终脱保护多采用HF法或TFMSA(三氟甲磺酸)法。

用Boc法已成功地合成了许多生物大分子,如活性酶、生长因子、人工蛋白等。

在Boc合成法中,反复地用酸来脱保护,这种处理带来了一些问题:如在肽与树脂的接头处,当每次用50%TFA脱Boc基时,有约1.4%的肽从树脂上脱落,合成的肽链越长,这样的损失越严重;此外,酸处理会引起侧链的一些副反应,Boc合成法尤其不适于合成含有色氨酸等对酸不稳定的肽类。

Fmoc合成法
与Boc合成法的根本区别在于采用了碱可脱除的Fmoc(9-芴甲氧羰基)为α-氨基的保护基,侧链的保护采用TFA可脱除的叔丁氧基等,树脂采用90%TFA可切除的对烷氧苄醇型树脂,最终的脱保护避免了强酸处理。

Fmoc系列保护氨基酸的制备研究

Fmoc系列保护氨基酸的制备研究
1963年,R.Bruce Merrifield(1984年获得诺贝尔奖)发明了固相肽合成法。 首先将肽链的c端以共价键形式连在不溶性的高分子树脂上,然后脱去c【-氨基 保护基,并与过量的活化羧基反应,重复这个过程直到延长到所需肽的长度,再 脱去侧链保护基,并把肽从高分子树脂上切下。
固相合成的优点主要表现在最初的反应物和产物都是连在固相载体上,因此 可以在一个反应容器中进行所有的反应,便于自动化操作,加入过量的反应物可 以获得高产率的产物,同时产物很容易分离。Merrifield成功合成了舒缓激肽(9 肽)和具有124个氨基酸残基的核糖核酸酶。1965年9月,中国科学家在世界 上首次合成了牛胰岛素。
不同的氨基酸需要适合自己的保护基团,并且随着合成肽种类的不同,选择 保护基的方案也不同。首先要保证高反应收率的情况下对需要保护的基团有选择 性的保护,且保护后的氨基酸要有一定的稳定性。其次,保护基在接肽反应后高 收率地选择性脱去,且不影响生成的肽键。现在能够用温和条件脱去的保护基发 展比较迅速。常见的保护基团简介如表1—1所示。
肽合成的基本化学过程是由德国化学家Emil Fisher在19世纪末期发展起来 的,称为液相合成法。直到20世纪50年代,一些具有实用价值的合成方法问世 以来,多肽的化学合成才得到迅速发展。Du Vigneaud等人首次完成了催产素的 全合成,促肾上腺皮质激素、促胃液素和其它一些生物活性肽也相继被合成,这 种方法每接一种氨基酸都要对肽进行纯化,所以比较繁琐,产率较低。
自动化的Merrifield合成技术可以在短时问内生产长片段的肽,因而引发了 肽化学领域的复兴。随后的改进显著缩短了合成所用的时间,并提高了合成的产 量,这为生产疫苗和多肽激素,以及选择性治疗先天代谢紊乱带来了新的前景。
多肽合成离不开保护氨基酸,氨基酸保护基的不同对多肽合成的效率和产率 有很大的影响。根据合成肽时侧链的活性,可把自然界中20神氨基酸分为惰性 侧链氨基酸(如:Gly、Leu、Ile、Ala、Val和Phe等)和活泼侧链氨基酸(如:

长效胸腺五肽的合成

长效胸腺五肽的合成

长效胸腺五肽的合成史敏;马亚平;倪京满【摘要】目的提高长效胸腺五肽(mPEG(10kD)-TP5)——定位单链聚乙二醇化修饰的胸腺五肽的合成产率.方法选用Fmoc-Tyr(tBu)-Wang树脂和Fmoc/t-Butyl 策略完成所有氨基酸的缩合,三氟乙酸对Wang树脂、侧链切割脱除.在碱性条件下,单甲氧基聚乙二醇修饰物(mPEG(10kD)-SPA)定点连接到赖氨酸的侧链氨基(ε-NH2)上.中间产物经钯碳催化氢化,得到mPEG(10kD)-TP5.结果目标产物总收率为20%,新合成路线比我们之前报道的方法产率提高了10倍.结论路线操作简单,易于纯化,产率较高.%Purpose To enhance the yield of site-specificPEGylated(10KD) thymopentin. Methods All the amino acids were step-wise assembled on Fmoc-Tyr( tBu)-wang resin by Fmoc/t-Butyl strategy. Then the Wang resins were cleaved and the side-chains were removed through treatment with trifluoracetic acid. Under alkalescent conditions, the mono-PEGylation was targeted to the e-amine group of the lysine. The pegylated thymopentin was made by Pd/C catalytic hydrogenation. Results The total yield was 20% , which was improving for 10 times in comparison with the yield reported by us. Conclusion This method is easily handing with high yield and low cost for preparing pegylated TP5.【期刊名称】《中国生化药物杂志》【年(卷),期】2012(033)005【总页数】4页(P609-611,614)【关键词】胸腺五肽;定点聚乙二醇化;合成【作者】史敏;马亚平;倪京满【作者单位】兰州大学药学院药剂学研究所,甘肃兰州730000;深圳翰宇药业有限责任公司,广东深圳518057;兰州大学药学院药剂学研究所,甘肃兰州730000【正文语种】中文【中图分类】TQ464.7胸腺五肽(Thymopentin,TP5)是人工合成小分子多肽,其氨基酸序列为NH2-Arg-Lys-Asp-Val-Tyr-COOH,保持了内源性胸腺生成素Ⅱ调节机体免疫平衡的生物活性,其原型药物体内半衰期仅为30 s[1]。

1毕业论文-多肽的固相合成及固相反应在多肽合成中的应用

1毕业论文-多肽的固相合成及固相反应在多肽合成中的应用

2015届分类号:O622.5单位代码:10452毕业论文多肽的固相合成及固相反应在多肽合成中的应用姓名薛立英学号201110830203年级2011级专业制药工程系(院)药学院指导教师李振李冀伟2015年4月10日摘要为研究多肽的固相合成工艺,并为工业化合成目标多肽提供理论依据。

本实验采用Fmoc固相合成法,以2-Cl-Trt树脂作为固相载体,以FMOC-L-LYS(Boc)-OH、FMOC-L-ALA-OH和FMOC-L-PRO-OH为原料合成目标产物五肽,将反应时间和反应温度作为控制反应的条件。

实验得出最适合的合成条件为,0℃投入反应,在室温下分别搅拌5 h,过夜;目标产物五肽的最终纯度可达100.0%。

该合成方法操作简便、产率高,可用于工业化合成多肽。

关键词:2-Cl-Trt树脂;固相载体;FMOC-L-LYS(Boc)-OH;FMOC-L-ALA-OH;有机合成;FMOC-L-PRO-OHABSTRACTTo study the artwork of solid phase synthesis of polypeptide,and to provide the theoretical basis for industrialization synthesis of objective ing Fmoc solid phase synthesis method,with 2-Cl-Trt resin as solid phase carrier,and with FMOC-L-LYS(Boc)-OH、FMOC-L-ALA-OH and FMOC-L-PRO-OH as raw material to synthesis of target products.The orthogonal experiments were put forward by discussing and comparing some reaction conditions such as time and temperature.Results:Optimal conditions:0℃in reaction,respectively mixing five hours,at room temperature for the night.This method is easy to operate and has high product rate,can be applied on the large scale.Key words: 2-Cl-Trt resin;solid phase carrier;FMOC-L-LYS(Boc)-OH;organic synthesis;FMOC-L-ALA-OH;FMOC-L-PRO-OH目录1 引言 (1)2 实验部分 (2)2.1 主要试剂、仪器和其他物品 (2)2.1.1 实验试剂 (2)2.1.2 实验仪器 (3)2.1.3 其他物品 (3)2.2树脂的选择 (3)2.3 合成方法 (3)2.3.1 总反应方程式 (3)2.3.2 以FMOC-L-LYS(Boc)-OH为起始原料 (3)2.3.3 以FMOC-L-ALA-OH为原料 (4)2.3.4 以FMOC-L-PRO-OH为原料 (4)2.3.5 树脂的切割 (4)2.4 LC-MS检测分析 (4)3 结果与讨论 (5)3.1 图谱分析 (5)3.2 讨论 (11)4 结语 (11)参考文献 (12)谢辞 (13)1 引言多肽是一种涉及生物体内各种细胞功能的生物活性物质,它是由多种氨基酸按照一定的排列顺序通过肽键结合而成,其分子结构介于氨基酸和蛋白质之间的一类化合物。

fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展

fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展

Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展摘要:综述了各种用于Fmoc法肽合成赖氨酸的正交保护方法,这些保护方法对多肽的化学修饰起着十分重要的作用。

介绍了各种正交保护赖氨酸的合成、脱除方法及在肽合成中的应用实例,分析了各种保护基的特点、相互间的互补性及不足之处。

关键词:正交保护;肽合成;赖氨酸1963年,Merrifield创立了固相多肽合成法〔1〕,从此以各种保护氨基酸为原料的固相合成研究及其应用引起了人们的广泛关注。

今天,固相合成法得到了很大发展。

正交保护是指在一定条件下,分子中的一组保护基可被选择性地脱除,而其他保护基不受影响〔2〕。

一般情况下,正交保护是指基于机理之间的区别,例如半永久性和临时性保护基之间的区别,而且正交保护策略一般能提供较温和的反应条件。

Lys中的ε 氨基碱性很强,同时具有亲核作用。

Fmoc策略中,Boc基团是比较好的保护基团,对碱的稳定性好,可以有效抑制副反应的发生。

赖氨酸是双氨基的氨基酸,同时Lys一般也是进行化学修饰的位点,这时需要特殊的保护基团,一般使用Alloc〔3〕、Dde〔4〕、ivDde〔5〕等进行正交保护。

1Dde保护的赖氨酸Dde保护基团在肽合成中主要用于保护伯胺,它是由2乙酰基5,5二甲基1,3环己二酮在DMF溶液中形成的〔6〕。

由于它易于被2%肼/DMF溶液脱除和在TFA和哌啶溶液中相对稳定,所以Dde保护的赖氨酸在Fmoc/tBu肽合成策略中用于合成支链肽、环肽和侧链氨基修饰的肽。

1.1Fmoc Lys(Dde) OH的合成Fmoc Lys(Dde) OH的合成方法较多。

由于醛酮和伯胺反应生成含碳氮双键的亚胺(西佛碱),亚胺在稀酸中水解,又回到原来的羰基化合物及胺,可以用这一机理来保护赖氨酸中的ε 氨基。

PrasadS.Raje等〔7〕报道用茴香醛在碱性条件下和赖氨酸形成西佛碱临时性地保护ε 氨基,然后选择Fmoc保护α 氨基。

稀酸水解西佛碱去除ε 氨基保护,最后选择保护基保护ε 氨基。

抗肿瘤环九肽crourorb A1的固相合成

抗肿瘤环九肽crourorb A1的固相合成

抗肿瘤环九肽crourorb A1的固相合成吴也;王许梦;林乐;凌保东;廖洪利【摘要】Using Fmoc solid-phase polypeptide synthesis (SPPS) with Rink Amide MBHA resin as a solid support,Fmoc-Asp-OAll as a starting material,and DIEA/HCTU as a condensation system,crourorb A1 was synthesized according to its amine acid sequence form C-terminal to N-terminal by sequential coupling and cyclization on the resin.After cleavage,the anti-tumor cyclic nanopeptide was purified by preparative RP-HPLC with a final purity of 98% and yield of 34%.%通过Fmoc固相合成法,以Rink Amide MBHA 树脂为载体、Fmoc-Asp-OAll为起始原料、DIEA/HCTU为缩合体系,按照crourorb A1的氨基酸序列由C端向N端依次偶联后,在树脂上实现环合,切割后经制备型RP-HPLC纯化,得到纯度为98%的抗肿瘤环九肽crourorb A1,总收率34%.【期刊名称】《化学与生物工程》【年(卷),期】2017(034)003【总页数】4页(P31-34)【关键词】crourorbA1;抗肿瘤;固相合成;环肽【作者】吴也;王许梦;林乐;凌保东;廖洪利【作者单位】成都医学院药学院,四川成都 610083;成都医学院药学院,四川成都610083;成都医学院药学院,四川成都 610083;成都医学院药学院,四川成都610083;四川省高校结构特异性小分子药物重点实验室,四川成都 610500;成都医学院药学院,四川成都 610083;四川省高校结构特异性小分子药物重点实验室,四川成都 610500【正文语种】中文【中图分类】R979.1;R914.5大戟科巴豆属,分布于热带和亚热带地区,包含1 300多种草药、灌木和乔木[1-2]。

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Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展摘要:综述了各种用于Fmoc法肽合成赖氨酸的正交保护方法,这些保护方法对多肽的化学修饰起着十分重要的作用。

介绍了各种正交保护赖氨酸的合成、脱除方法及在肽合成中的应用实例,分析了各种保护基的特点、相互间的互补性及不足之处。

关键词:正交保护;肽合成;赖氨酸1963年,Merrifield创立了固相多肽合成法〔1〕,从此以各种保护氨基酸为原料的固相合成研究及其应用引起了人们的广泛关注。

今天,固相合成法得到了很大发展。

正交保护是指在一定条件下,分子中的一组保护基可被选择性地脱除,而其他保护基不受影响〔2〕。

一般情况下,正交保护是指基于机理之间的区别,例如半永久性和临时性保护基之间的区别,而且正交保护策略一般能提供较温和的反应条件。

Lys中的ε氨基碱性很强,同时具有亲核作用。

Fmoc策略中,Boc基团是比较好的保护基团,对碱的稳定性好,可以有效抑制副反应的发生。

赖氨酸是双氨基的氨基酸,同时Lys一般也是进行化学修饰的位点,这时需要特殊的保护基团,一般使用Alloc〔3〕、Dde〔4〕、ivDde〔5〕等进行正交保护。

1Dde保护的赖氨酸Dde保护基团在肽合成中主要用于保护伯胺,它是由2乙酰基5,5二甲基1,3环己二酮在DMF溶液中形成的〔6〕。

由于它易于被2%肼/DMF溶液脱除和在TFA和哌啶溶液中相对稳定,所以Dde保护的赖氨酸在Fmoc/tBu肽合成策略中用于合成支链肽、环肽和侧链氨基修饰的肽。

1.1FmocLys(Dde)OH的合成FmocLys(Dde)OH的合成方法较多。

由于醛酮和伯胺反应生成含碳氮双键的亚胺(西佛碱),亚胺在稀酸中水解,又回到原来的羰基化合物及胺,可以用这一机理来保护赖氨酸中的ε氨基。

PrasadS.Raje等〔7〕报道用茴香醛在碱性条件下和赖氨酸形成西佛碱临时性地保护ε氨基,然后选择Fmoc保护α氨基。

稀酸水解西佛碱去除ε氨基保护,最后选择保护基保护ε氨基。

可以利用这一原理合成FmocLys(Dde)OH(图1)〔8〕。

图1FmocLys(Dde)OH的合成1.2Dde保护基团的脱除Dde保护基团可以用2%的水合肼在DMF溶液或乙醇胺溶液中去除(图2)。

用水合肼脱除Dde时,若肽链中同时含有Alloc保护基团,Alloc上的双键会被肼还原。

加入一定量的烯丙基醇作为清除剂能阻止双键的还原〔9〕。

图2用2%的水合肼/DMF溶液脱除Dde保护基团由于在利用水合肼脱除Dde保护基团时,会有部分的Fmoc基团脱落,J.J.DiazMochon等〔10〕利用盐酸羟胺(咪唑,NMP,DCM)在Fmoc保护基团存在的情况下定量脱除Dde保护基团(图3)。

这种新的脱除方法在脱除Dde时不会对Fmoc保护基团有任何影响。

图3盐酸羟胺(咪唑,NMP,DCM)溶液脱除Dde保护基团1.3Dde保护基团的不足之处Dde保护基团的不足之处主要有2点:首先,当用20%的哌啶/DMF脱除Fmoc时,在每次脱除过程中会有少量的Dde保护基团脱落,所以在合成长链肽时会严重影响肽的纯度,为了避免上述副反应产生可以使用DBU/DMF(2∶98)作为Fmoc的脱除试剂;其次,有报道指出Dde保护基团会发生分子内的从侧链或α氨基到赖氨酸上ε氨基的N→N’位移〔11〕。

1.4Dde保护的赖氨酸在肽合成中的应用G.B.Bloomberg等〔12〕用FmocLys(Dde)OH和正交保护的Glu成功地合成支链环肽。

具体方法为先合成AcCys(trt)Glu(OAll)AlaLys(Dde)Resin后用1.5%的水合肼/DMF脱除Dde保护基团,然后赖氨酸上的ε氨基与FmocGGEKTRNQMGCOOH偶联,最后脱除Fmoc保护基后的α氨基,用Pd(PPh3)4脱除Glu上的Allyl保护基后的γ羧基偶联,这样便得到环肽。

2ivDde保护的赖氨酸由于ivDde是通过改进Dde保护基团而得到42重庆理工大学学报的,它的化学性质和Dde比较相似。

由于ivDde的空间位阻效应较大,使侧链ivDde保护基团在哌啶/DMF溶液中的稳定性比Dde好,同时降低了其侧链位移倾向〔13〕。

2.1FmocLys(ivDde)OH的合成的用ivDde保护的赖氨酸和Dde保护的赖氨酸的合成方法类似。

SiriRamChhabra〔14〕、李文曲〔15〕等报道用适当量的DCCDMAP活化的羧酸酰化双甲酮与FmocLysOH在乙醇溶液中回流即得到Dde类保护的赖氨酸衍生物(图4)。

图4FmocLys(ivDde)OH的合成2.2ivDde保护基团的脱除由于ivDde和Dde的化学性质比较相近,所以它和Dde的脱除条件也是一致的。

脱除方法均为2%的肼/DMF溶液。

2.3ivDde保护基团的不足之处当脱除ivDde保护基团时,若同时含有烯丙基类保护基,应在脱保护溶液中加入一定的烯丙醇用来阻止烯丙基上双键被还原。

2.4ivDde保护的赖氨酸在肽合成中的应用Bolsche等〔16〕报道用FmocLys(ivDde)OH将牛乳铁蛋白肽LFampin265284(NDLIWKLLSKAQEKFGKNKSRC)和LFcin1730(NFKCRRWQWRMKKLGC)连接在一起,最后得到嵌合肽(NFKCRRWQWRMKKLGKRSKNKGFKEQAKSLLKWILDN)。

先将FmocLys(ivDde)OH和NovaSynTGR树脂偶联在一起,脱除Fmoc后,接着合成LFcin1730,用Boc保护LFcin1730末端Phe上的α氨基。

然后用水合肼脱除赖氨酸上的IvDde基团后偶联LFampin265284。

这样赖氨酸上的α氨基和ε氨基分别连接了一段多肽。

这个嵌合肽具有有较强的抗菌活性,对离子强度较不敏感。

合成及研究HIVgp41三聚体对研究开发新型抗HIV融合酶抑制剂及HIV疫苗具有十分重要的意义。

Lu等〔17〕试图用全保护的51肽gp41单体直接与Pinwheel三元酸缩合后支链脱保护,结果发现其偶联产率极低,支链脱保护产率小于1%。

为此,作者采用IvDde保护37及51位赖氨酸,单体支链脱保护纯化后与Pinwheel三元酸氟化物偶联,然后脱除IvDde,成功地合成了HIVgp41三聚体,产率可达22%。

3Alloc保护的赖氨酸1950年,Alloc(烯丙氧羰基)保护基被Stevens和Watanabe〔18〕首次用于保护胺和醇。

Alloc保护基的脱除可通过使用铂和钯催化剂催化氢解、液氨金属钠,或使用碘化頮的冰醋酸溶液来完成。

但用这些方法脱除Alloc都过于复杂,这就限制了它在有机合成中的应用。

随着Tsuji和Trost开发的钯催化的烯丙基脱除反应的出现,烯丙基保护基的潜力才被人们所认识。

由于它良好的正交性和脱除条件较温和,现在Alloc是使用频率较高的正交保护基团之一。

3.1Fmoclys(Alloc)OH的合成由于赖氨酸上的α位氨基和羧基与铜易形成络合物,许家喜等〔19〕利用此反应先选择性地将ε位氨基与酰化试剂AllocCl反应得到ε位氨基被Alloc保护的铜络合物。

因这种络合物在水中的溶解性比较好,在加热条件下直接通入H2S,可以得到解离完全的产物。

ε氨基保护的赖氨酸经碱(NaOH或Na2CO3)将α位的氨基从其内盐解离出来后,与FmocCl反应便可得到正交保护的FmocLys(Alloc)OH(图5)。

图5FmocLys(Alloc)OH的合成52姜和,等:Fmoc法肽合成中正交保护赖氨酸的研究进展3.2Alloc保护基团的脱除Alloc保护基团的脱除为钯催化的烯丙基转移到各种各样的亲核试剂(烯丙基清除剂)的过程(图6)〔20〕。

在此反应中通常选用Pd(PPh3)4作为催化剂。

有的文献中选用PdCl2(PPh3)2作为催化剂,因为它的性能优于Pd(PPh3)4,其优越性主要有2点〔27〕:①在空气中稳定;②与零价的Pd(PPh3)4不同,二价的PdCl2(PPh3)2在加入亲核试剂进行消除反应前,不会催化脱羧使烯丙基氨基甲酸酯重排为烯丙胺。

Alloc基团的脱除关键就在于选择合适的亲核试剂。

亲核试剂又分为可逆型烯丙基清除剂(如吗啉)和不可逆型烯丙基清除剂(如双甲酮和NDMBA)。

它们的主要区别是可逆型烯丙基清除剂一旦烯丙基化可回复到π烯丙基复合物。

如果烯丙基清除剂选择不当的话便会形成烯丙胺副产物,而且可能以不同的方式形成。

主要有几点:1)自由氨基与亲核试剂(烯丙基清除剂)竞争捕获π烯丙基钯络合物,因此,最好使用这样的脱保护系统,能形成质子胺或伪装成非亲核形式的胺或使用过量烯丙基清除剂(图6)。

2)烯丙基基团与清除剂形成的也可通过一个平衡过程形成烯丙胺(图7)。

图6钯催化的烯丙基羧酸酯的脱除图7使用质子可逆的烯丙基清楚剂时烯丙胺的形成机理最后,Alloc保护的胺衍生物在Pd催化剂和未加任何亲核试剂的条件下经过脱羧重排形成烯丙胺。

一般情况下仲胺的重排要比伯胺快〔21〕。

PalomaGomezMartinez等以N甲基苄胺为例使用各种不同烯丙基清除剂来脱除Alloc,表1给出了其结果。

该研究的目的在于为多肽合成选择确定最佳的清除剂〔22〕。

这些研究结果表明2种胺硼烷,NH3·BH3和Me2NH·BH3被推荐为优良的烯丙基清除剂,因为它们有快速的反应动力学。

表1Pd(PPh3)4作为催化剂时各种烯丙基清除剂的相对效率AllylGroupScavenger%YieldHN(Me)CH2PhAllN(Me)CH2PhNDMBA1000Thiosalicylicacid1000PhSiH3955Bu4NBH46040NH3·BH399.6~1000~0.4Me2NH·BH31000tBuNH2·BH396~973~4Me3N·BH30100Py·BH301003.3Alloc保护基团的不足之处Alloc保护基的不足之处主要体现在脱除过程中易生成烯丙胺副产物。

不过只要选择适当的亲核试剂(烯丙基清除剂),这个问题应该能够克服。

3.4Alloc保护的赖氨酸在肽合成中的应用Fmoclys(Alloc)OH在肽合成中大都用于合成长效多肽,且大部分都是在ε氨基上用MIPA(3马来酰亚胺基丙酸)修饰与白蛋白结合而长效的。

Bakis等〔23〕利用Alloc保护的赖氨酸合成了经MIPA修饰的长效利钠肽(利尿降压药)衍生物。

Bridon等〔24〕合成了长效GLP1肽。

谢东等〔25〕利用Fmoclys(Alloc)OH经MIPA修饰合成了HIV融合抑制长效多肽FB006M。

62重庆理工大学学报4讨论与展望多肽类药物相对于小分子药物来说稳定性较差,在体内易降解,半衰期短,这些特殊性使得该类药物的主要临床应用剂型为注射剂。

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