生化分离工程名词解释

生化分离工程名词解释

CH2膜分离

膜水通量:在一定条件下(一般为0.1MPa，温度20 C)，单位时间单位膜面积的水通量(in:m3m-2h-1)

分子截留率:表征膜对溶质的截留能力

表观截留率：由于膜表面的极化浓度不易测定，通常只能测定料液的体积浓度(bulkconc.)，因此常用表观截留率

真实截留率:在实际分离中，由于存在浓度极化现象

如不存在浓度极化,R表观 R真实.如R表观=1,则cf=0,即溶质完全被截留;如R表观=0,则cf=cb,即溶质可自由透过膜

截留分子量MWCO：molecular weight cutoff一般将在截留率为90%的溶质分子量定义为膜的截留分子量

CH3萃取

萃取(Extraction)：利用溶质在互不相溶的两相之间分配系数的不同而使溶质得到纯化或浓缩的方法称为萃取

液-液萃取：以液体为萃取剂，当含有目标产物的原料也为液体时，则为液-液萃取

反萃取：调节水相条件，将目标产物从有机相转入水相的萃取操作称为反萃取

胶束(micelles):向水中加入S，水溶液的δ随[S]增大而下降。当[S]达到一定值后，S缔合形成水溶性胶束,溶液的表面张力不再随表面活性剂浓度的增大而降低。胶团形成均是S分子自聚集的结果，是热力学稳定体系。

自组装(selfassembly):自动有序聚集的过程

临界胶束浓度(critical micelle concentration,CMC):S在水溶剂中形成胶束的最低浓度。

反胶束(reversemicelles):若向有机溶剂中加入一定浓度S，在有机溶剂中所会形成胶束。

微水相或“水池”(waterpool)：反胶束内溶解的水

CH5吸附

固定床：当U不大时，颗粒之间仍保持静止并互相接解，这为固定床

流化床：当U增大至起始流态化速度Umf,颗粒不再相互支撑,开始悬浮在液体中;进一步提高U 床层随之膨胀,床层压力降几乎不变,但床层中颗粒的运动加剧,这时的床层为流化床

膨胀床

CH6 色谱

基线:在色谱操作条件下，没有被测组分通过鉴定器时，记录器所记录的检测器噪声随时间变化图线称为基线。

死时间tm:不被固定相溶解或吸附的物质，从进样到出现极大值的时间称为死时间。

流动相流动速度：u = L/tm

保留时间tr: 从进样到出现色谱峰最高值所需的时间称保留时间。t i = L(1+m i)/u

调整保留时间tr’:保留时间与死时间之差称调整保留时间。tr’=tr-tm

保留值：是表示试样中各组分在色谱柱中的停留时间的数值，通常用时间或用将组分带出色谱柱所需载气的体积来表示。保留时间/保留体积

相对保留值γ2,1:某组份2与组份1的调整保留值之比。由于γ2,1只与柱温及固定相的性质有关，而与柱径、柱长、填充情况及流动相流速无关，因此它是色谱法中广泛使用的定性数据。

死体积Vm:指色谱柱内固定相颗粒间所剩留的空间、色谱仪中管路和连接头间的空间以及检测器的空间的总和Vm=tmF0; F0:流动相体积流速(ml/min)

保留体积Vr:指从进样开始到被测组份在柱后出现浓度极大点时所通过的流动相体积Vr=trF0 与校正保留体积Vr’=Vr-Vm

分配系数m= c s/c m; 式中，c s和c m分别为组份在固定相和流动相中的浓度。

分配比k：即容量因子,色谱柱对组份保留能力的重要参数

标准差σ: 0.607倍峰高处宽度的一半

半峰宽Y1/2: 峰高一半处对应的峰宽Y1/2=2.354σ

基线宽度Y: 基线宽度Y=4σ

速率理论

柱效n: 衡量柱效的指标是n(或neff)，反映了色谱分离过程的动力学性质。

选择性α：为洗脱峰相临的两种溶质的容量因子之比，α=k2/k1

分离度Rs：也称分辨度，指相邻两色谱保留值之差与两峰底宽平均值之比

凝胶介质特征参数

排阻极限(exclusion limit)：指不能扩散到凝胶网络内部的最小分子的M。

分级范围(fractionation range)：能阻滞组分并且使组分相互之间得到分离的组分分子量范围。床体积:1g干燥凝胶溶胀后所占有的体积

空隙体积:V0