口炎清颗粒提取和制粒工艺优选
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口炎清颗粒提取和制粒工艺优选
目的优选口炎清颗粒的提取和制粒工艺。方法采用高效液相色谱法测定口炎清浸膏中芍药苷含量。以浸膏收率、芍药苷提取率为评价指标,用单因素试验和正交试验优化提取工艺。以吸湿率、堆密度、休止角为评价指标,采用多因素比较法和正交试验优化制粒工艺,并测定口炎清颗粒的临界相对湿度。结果最佳提取工艺为12倍60%乙醇回流提取3次,每次2 h。口炎清浸膏粉与糊精按6∶4比例混合后用90%乙醇制粒,制得的口炎清颗粒吸湿性小,流动性好,临界相对湿度约为63%。结论口炎清颗粒的提取和制粒工艺合理可行,稳定性好,可为工业化生产提供依据。
标签:口炎清颗粒;高效液相色谱法;提取工艺;正交试验;制粒工艺
口炎清颗粒为本院开发的中药汤剂,由赤芍、葛根、石斛、麦冬等组成,功效清热凉血、生津养阴,用于扁平苔藓等口腔疾病的治疗。汤剂味苦,患者依从性差,且久储易酸败,不易携带,为此,我们将其制成胶囊剂。为保证制剂质量,合理制定制备工艺,本试验对提取和制粒工艺进行优选。
1 仪器与试药
Agilent 1200高效液相色谱仪(美国Agilent公司),HWS24型电热恒温水浴锅(上海科技一恒有限公司),RE-2000A型旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂),CS101-2ABN型电热鼓风干燥箱(重庆市永生实验仪器厂),KQ5200型超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司),BS224S电子天平(德国Sartorius公司)。
口炎清颗粒处方药材购于重庆桐君阁中药材批发公司,经重庆医科大学药学院刘新教授鉴定为正品,均符合2010年版《中华人民共和国药典》(一部)项下有关规定。芍药苷对照品(批号110736-201136,中国食品药品检定研究院),淀粉(批号20120201,曲阜市药用辅料有限公司),乳糖(批号20120101,湖南尔康药用辅料有限公司),糊精(批号20120301,曲阜市药用辅料有限公司),乙腈为色谱纯,其他试剂均为分析纯。
2 方法与结果
2.1 芍药苷含量测定
2.1.1 色谱条件色谱柱:Phenomenex-C18柱(150 mm×4.6 mm,10 ?m);流动相:乙腈-0.1%磷酸溶液(15∶85);检测波长:229 nm;流速:1 mL/min;柱温:室温;进样量:20 ?L。理论塔板数按芍药苷峰计不低于3 000。
2.1.2 对照品溶液的制备精密称取芍药苷对照品12.5 mg,置25 mL容量瓶中,加甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,即得0.5 mg/mL的对照品溶液。
2.1.3 供试品溶液的制备取口炎清浸膏粉2 g,精密称定,置50 mL容量瓶中,加40 mL甲醇,超声处理30 min,冷却至室温,加甲醇至刻度,振摇,过滤,即得供试品溶液。
2.1.4 阴性对照溶液的制备按处方量取除赤芍的各味药材,60%乙醇回流提取3次,每次2 h,合并提取液,浓缩,70 ℃烤成干浸膏,粉碎,取粉末2 g,按“2.1.3”项下方法制成缺赤芍的阴性对照溶液。
2.1.5 专属性考察分别取对照品溶液、供试品溶液、阴性对照品溶液20 ?L,注入液相色谱仪,按“2.1.1”项下色谱条件,测定,记录色谱图。结果表明,供试品溶液在与对照品溶液相应保留时间处呈相同的色谱峰,而阴性对照溶液在相应的保留时间处无吸收峰出现,对测定无干扰。色谱图见图1。
2.1.6 标准曲线制备精密吸取0.5 mg/mL芍药苷对照溶液0.1、0.5、1.5、2.5、4.5 mL置5 mL容量瓶中,甲醇稀释至刻度,摇匀,配成浓度分别为0.01、0.05、0.15、0.25、0.45 mg/mL的溶液。分别吸取20 ?L,按“2.1.1”项下色谱条件,测定,记录峰面积。以质量浓度为横坐标,峰面积为纵坐标进行线性回归,得回归方程Y=13 997X-52.45(r=0.999 9),表明芍药苷浓度在0.01~0.45 mg/mL范围内与峰面积线性关系良好。
2.1.7 精密度考察精密吸取芍药苷对照品溶液20 ?L,按“2.1.1”项下色谱条件,1日内重复进样6次,测定日内精密度,芍药苷峰面积RSD=0.75%;连续测定4 d,芍药苷峰面积RSD=0.68%。
2.1.8 稳定性考察精密吸取供试品溶液20 ?L,按“2.1.1”项下色谱条件,分别于0、2、4、8、12、24 h进样,测定,记录峰面积。结果芍药苷峰面积RSD=0.88%,表明供试品溶液在24 h内稳定。
2.1.9 重复性考察取口炎清浸膏粉5份,按“2.1.3”项下方法制备溶液,精密吸取20 ?L,按“2.1.1”项下色谱条件,测定,记录峰面积。芍药苷峰面积RSD=1.15%。
2.1.10 加样回收率试验取已知芍药苷含量的口炎清浸膏粉0.1 g共9份,分别置10 mL容量瓶中,加入0.5 mg/mL的芍药苷对照品溶液1.0、1.2、1.5 mL,按“2.1.3”项下方法制备低、中、高3种浓度的溶液,分别精密吸取20 ?L,按“2.1.1”项下色谱条件,测定,计算加样回收率,结果平均回收率为99.69%,RSD=0.62%。
2.2 芍药苷提取率的测定
取处方量全部药材,按单因素和正交试验安排提取,合并提取液,过滤,浓缩至一定体积,用与提取相应乙醇定容至500 mL,取100 mL,70 ℃烤成干浸膏,粉碎,取口炎清浸膏粉,按“2.1.3”项方法制备供试品溶液,按“2.1.1”项下色谱条件测定,计算芍药苷提取率。芍药苷提取率(%)=100 mL提取液中芍药苷量×5/药材中芍药苷量。2.3 浸膏收率的测定
按2010年版《中华人民共和国药典》(一部)[1]浸出物测定法进行测定。取处方量全部药材,按单因素和正交试验安排提取,合并提取液,过滤,浓缩至一定体积(V),精密吸取10 mL置恒重后的蒸发皿中,水浴蒸干,残渣置恒温烘箱中,105 ℃干燥3 h,取出,干燥器内冷却30 min,精密称定质量,计算浸膏收率。浸膏收率(%)=W1×V/(W2×10)×100%。其中W1为浸膏质量(g),V为药液总体积(mL),10为所吸取药液总体积(mL),W2为提取所用药材总量(g)。
2.4 单因素考察
2.4.1 提取方法考察取处方量全部药材2份,分别采用8倍量60%乙醇回流提取和冷浸提取2次,合并提取液,浓缩,按“2.3”项下方法测定浸膏收率,按“2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明,回流提取法浸膏收率和芍药苷提取率均优于冷浸法。结果见表1。
2.4.2 提取溶媒考察取处方量全部药材2份,分别用8倍量水和60%乙醇回流提取2次,每次1 h,合并提取液,浓缩,按“2.3”项下方法测定浸膏收率,按“2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明2种溶剂对浸膏收率无明显影响,但60%乙醇回流提取的芍药苷提取效率明显优于水提。结果见表2。
2.4.3 乙醇浓度考察取处方量全部药材6份,分别用8倍量20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%乙醇回流提取2次,每次1 h,合并提取液,浓缩,按“2.3”项下计算浸膏收率,按“2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明,乙醇浓度在60%以下对浸膏收率影响不显著,60%乙醇作溶剂时芍药苷提取率最高。结果见表3。
2.4.4 乙醇用量考察取处方量全部药材5份,分别用4、8、10、12、14倍量60%乙醇回流提取2次,每次1 h,合并提取液,浓缩,按“2.3”项下方法计算浸膏收率,按“2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明,乙醇用量显著影响浸膏收率和芍药苷提取率。结果见表4。
2.4.5 提取次数考察取处方量全部药材5份,8倍量60%乙醇分别回流提取1、2、3、4、5次,每次1 h,浓缩,按“2.3”项下方法计算浸膏收率,按“2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明,提取次数显著影响浸膏收率和芍药苷提取率。见表5。
2.4.6 提取时间考察取处方量全部药材5份,8倍量60%乙醇回流提取1次,每次1、2、3、4、5 h,浓缩,按“2.3”项下计算浸膏收率,按”2.2”项下方法测定芍药苷提取率。结果表明,提取时间显著影响浸膏收率和芍药苷提取率。结果见表6。
2.5 正交试验优选提取工艺