心血管系统疾病的实验动物模型

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人类疾病动物模型概述人类疾病动物模型Animalmodelsofhuman

人类疾病动物模型概述人类疾病动物模型Animalmodelsofhuman
伤段两头阻断,抽空积血后,用氮气吹该段血 管。 方法二:手术分离动脉血管,根据血管直径,选择相应 规格的介入用球导管,排空气囊,插入血管内, 充气后抽出;根据要求损伤的程度不同,可以一 次或多次反复。
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心脏缺血和心肌梗塞动物模型
冠状动脉阻断法
开胸结扎冠状动脉法
普通外科手术动物模型
犬短肠综合症模型
动物:犬
手术:可根据造模目的不同,选择切除和保留的肠段及其 长度。 一般小肠长度应少于100cm
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大鼠诱发模型(其中之一) 动物:大鼠 180~200g 药物:胆固醇、猪油、甲基硫氧嘧啶 方法:1%~4%胆固醇
10%猪油 0.2%甲基硫氧嘧啶 86%~89%基础饲料 时间:连续饲喂7~10天
第三十页,编辑于星期日:二十三点 四十分。
血管内膜损伤动物模型
动物:250~300g大鼠 方法一:手术分离血管(动脉或静脉),欲致内膜损
药物:D-半乳糖 氧化钾
方法:50%D-半乳糖生理盐水+5mg当量氯化钾,大鼠 腹腔注射7.5mg/kg/日、共两周
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妇产科疾病动物模型
胎儿宫内生长迟缓动物模型(部分结扎 子宫动脉法)
动物:兔 方法:妊娠7天的兔,手术暴露双侧子宫角,将3/0钢
丝线平行放置一侧子宫动脉中,用3/0丝线结 扎该动脉及钢丝,然后抽出钢丝。 时间:孕后21天杀死动物取出胎儿,经称量即可判 定,亦可在此期间进行相关实验。
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(二)、按系统范围分类
1.疾病的基本病理过程动物模型 2.各系统疾病动物模型
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实验4 急性右心衰竭

实验4  急性右心衰竭

实验4 急性右心衰竭实验时间:6月13日【实验目的】1、复制家兔急性右心衰的动物模型。

2、观察家兔急性右心衰时血流动力学的主要变化。

3、通过实验,加深对家兔急性右心衰发生机制及病理变化的理解。

【实验材料】家兔及固定台,1ml、10ml、50ml注射器各一支,听诊器一付,Med lab生物信号采集处理系统、YT—2型血压换能器,CVP检测器经三通活塞与输液器连接配套,常规手术器械,20%乌拉坦溶液、1%普鲁卡因溶液、1%肝素溶液,预温至38℃液体石蜡。

【方法和步骤】1、家兔称重,由耳缘静脉注入20%乌拉坦溶液5ml/kg,仰位固定于兔台,颈前剪毛后于其皮下酌量注射1%普鲁卡因作局部浸润麻醉,使手术更易进行,作正中纵切口,逐层分离组织,分别游离出气管,一侧颈总动脉与颈外静脉及其二属支(腭内外)后,由耳缘静脉注入1%肝素液,剂量为1ml/kg。

调节CVP测管“0”位点与兔腋中线处于同一平面,转动三通开关,使CVP测管内充满生理盐水,转动开关至相互不通位置,由颈外静脉属支插入静脉插管,转动开关,使CVP测管与静脉插管通而与输液器不通,继续推进静脉插管深入约5~6cm至中心静脉位置,可见CVP测管内液面逐步下降直至随呼吸而上下搏动时,固定静脉插管,CVP测量管内液面高度即为CVP值。

2、使动脉插管内充满生理盐水,把动脉套管后端与血压换能器的一个(进压)管嘴相连,组成测定系统。

换能器与Med lab相连。

结扎颈总动脉远心端,近心端以动脉夹夹闭,在结扎线下方剪口,插入动脉插管,并固定牢固后去除动脉夹,描记动脉血压。

3、检查手术野有无出血,各导管是否固定良好,用组织钳对合皮肤并敷以温盐水纱布。

4、实验前各项指标值的测量并完整记录,包括动脉血压、CVP、肝—CVP返流试验,听诊呼吸、心率及动物一般状况后,开始以下实验。

5、实验过程:用1ml注射器抽取已预温至38℃液体石蜡1ml,以每分钟0.1ml速度推注入耳缘静脉内,若动脉血压有明显下降或CVP有明显上升,即停止注射,观察5分钟,若血压与CVP又恢复至原水平,可再缓慢推注少量液体石蜡,直至血压有轻度下降[约1.33~2.67kPa(10~20mmHg)]或/和CVP有明显升高时止(一般液体石蜡用量为0.5~1ml),同时测记其余指标。

治疗心衰药物实验报告

治疗心衰药物实验报告

一、实验背景心力衰竭(心衰)是一种严重的心血管疾病,主要表现为心脏泵血功能下降,导致心脏无法有效输送血液至全身,进而引发一系列症状,如呼吸困难、乏力、水肿等。

近年来,随着医疗技术的不断发展,治疗心衰的药物种类逐渐增多,疗效也得到显著提高。

本实验旨在通过动物模型,评估不同类型心衰药物的疗效,为临床治疗提供参考。

二、实验材料与方法1. 实验动物:选择健康成年雄性SD大鼠40只,体重200-250g,随机分为5组,每组8只。

2. 实验分组:对照组、模型组、利尿剂组、RAAS抑制剂组和受体阻滞剂组。

3. 模型建立:采用结扎左冠状动脉前降支的方法建立心衰模型。

4. 药物处理:实验第2天开始,对照组和模型组给予生理盐水,利尿剂组给予呋塞米(1mg/kg/d),RAAS抑制剂组给予依那普利(10mg/kg/d),受体阻滞剂组给予美托洛尔(10mg/kg/d)。

各组均连续给药4周。

5. 观察指标:- 生化指标:测定血清肌酸激酶(CK)、乳酸脱氢酶(LDH)、脑钠肽(BNP)和心衰指数(CI)水平。

- 心脏功能:采用超声心动图测定左心室收缩末期直径(LVESD)、左心室舒张末期直径(LVEDD)、左心室射血分数(LVEF)和心脏指数(CI)。

- 生存率:观察各组动物的存活情况。

三、实验结果1. 生化指标:与模型组相比,利尿剂组、RAAS抑制剂组和受体阻滞剂组的CK、LDH、BNP和CI水平均显著降低(P<0.05)。

2. 心脏功能:与模型组相比,利尿剂组、RAAS抑制剂组和受体阻滞剂组的LVESD、LVEDD和CI显著降低(P<0.05),LVEF显著升高(P<0.05)。

3. 生存率:与模型组相比,利尿剂组、RAAS抑制剂组和受体阻滞剂组的生存率显著提高(P<0.05)。

四、讨论本实验结果表明,利尿剂、RAAS抑制剂和受体阻滞剂在治疗心衰方面具有显著疗效。

利尿剂可减轻心脏负荷,降低血压,改善心衰症状;RAAS抑制剂可抑制肾素-血管紧张素-醛固酮系统,降低血压,减轻心脏负荷,延缓心衰进展;受体阻滞剂可降低心率,降低血压,减轻心脏负荷,改善心脏功能。

实验动物学-动物模型、设计、结果分析

实验动物学-动物模型、设计、结果分析

人类疾病动物模型动物实验的设计、结果分析及影响因素人类疾病动物模型1.定义人类疾病动物模型(animal model of human diseases)是指医学研究中建立的具有人类疾病表现的动物实验对象和相关材料。

是临床和实验假说的试验基础。

疾病模型:包括整体动物、离体器官和组织、细胞株和数学模型。

2.发展史◆18世纪,詹纳(Edward Jenner)牛痘◆1876年,郭霍(Robert Koch)炭疽杆菌。

◆1884年,巴斯德(Louis Pasteur)狂犬病病毒疫苗◆1911年,劳斯(F. P. Rous)鸡肉瘤---1966年诺贝尔生理学或医学奖◆1914年,山极和市川用沥青长期涂抹家兔耳朵成功诱发皮肤癌◆20世纪50年代中期,加德赛克(Daniel Carleton Gajdusek)发现变异的普里昂蛋白(prion protein)是库鲁(Kuru)病的病原体---1976年和1997年诺贝尔生理学或医学奖3.意义◆避免人体实验造成的危害;◆应用动物模型可研究平时不易见到的疾病;(烈性传染病(SAS;狂犬病)、中毒病(蛇毒等)、放射病等)◆研究发病率低、潜伏期和病程长的疾病;(遗传病(白化病);动脉硬化;肥胖等)◆可严格控制条件,克服复杂因素;年龄、性别、饮食、文化经济等◆样品收集方便,实验结果易分析;◆比较人畜共患病病原体对人与动物病变的异同,更加全面了解疾病性质。

4.制作原则◆与人类疾病的可比性,相似性越高越好;◆复制动物模型可重复性;品种、品系、年龄、性别、体重,健康状况,饲养环境、管理、实验处理要一致。

◆可靠性;特异的、可靠的反映某种疾病。

◆适用性和可控性;临床应用和疾病的可控性,利于疾病研究的开展。

◆易行性和经济性;制模方便易行、小动物多选用而灵长类少5.分类1)按制作方法分类◆诱发性疾病动物模型◆突变系疾病动物模型自发突变动物模型人工诱变动物模型◆转基因疾病动物模型诱发性疾病动物模型experimental animal model通过使用物理、化学、生物等致病手段,人为制造的与人类疾病表现类似的动物模型。

心肌缺血动物模型制备方法

心肌缺血动物模型制备方法

心肌缺血动物模型制备方法心肌缺血动物模型是研究心血管疾病,如心肌梗死、心绞痛等的常用方法。

本文将介绍制备心肌缺血动物模型的具体步骤。

材料与仪器1. 大鼠或小鼠2. 氧气和二氧化碳混合气体3. 麻醉仪4. 灭菌扫描仪5. 心电图仪6. 鼠标心脏解剖仪7. 组织染色和电镜检查仪8. 淬灭钳和缝合针9. 氧气麻醉设备10. 细胞色素标记试剂盒方法1. 麻醉动物:选择体重在200-300g的大鼠或小鼠,放入麻醉仪中,将氧气和二氧化碳混合气体注入到呼吸气道,使动物处于深度麻醉状态。

2. 在鼠胸部上方剃毛并用消毒酒精擦拭,再使用灭菌扫描仪对鼠胸部进行消毒处理。

3. 开始进行手术:使用淬灭钳,穿刺胸骨左侧的第三根肋骨,插入心包中,直到感觉到心脏跳动。

4. 使用鼠标心脏解剖仪,在心脏上滑动,找到左前降支冠状动脉并用缝合针把它们包扎。

包扎的宽度应约为1毫米。

5. 撤回钳子,使心脏恢复跳动,观察心电图,以确认心肌缺血已有效制备。

6. 等待适当的时间进行操作,最好在10-30分钟内制备完毕心肌缺血。

7. 消毒手术部位,关闭氧气和二氧化碳混合气体,将动物放回代表室,进行观察。

8. 24小时后,给予动物一次肟酸钾(16mg/kg)注射治疗。

分析心肌缺血动物模型制备完成后,需要进行心脏和组织染色检查,以及电镜检查。

在实验中,可以使用细胞色素标记试剂盒来检测细胞色素C的排放情况,以评估心肌细胞受损程度。

另外,观察动物濒临死亡时的行为变化,可以对模型的制备成立发挥较为重要的作用。

使用心肌缺血动物模型,以生成动物模型来模拟心肌缺血的病理过程,进行心血管系统方面的研究,对制定相应治疗措施有重要意义。

疾病模型动物的选择与应用

疾病模型动物的选择与应用

疾病模型动物的选择与应用随着科技的发展和医学治疗技术的进步,对疾病模型动物的研究和应用也越来越广泛。

但是,选择一个合适的疾病模型动物是一个非常关键的问题。

因为不同动物的体质、生理、病理等方面都存在很大差异,有些动物对某些疾病模型的复制效果并不理想。

因此,本文将探讨疾病模型动物的选择与应用。

一、小鼠作为疾病模型动物的优缺点1、小鼠的优点小鼠是应用非常广泛的疾病模型动物之一,主要原因在于其种类繁多、繁殖能力强、容易控制和易于使用。

此外,小鼠的解剖学、生理学、遗传学、免疫学和神经学都非常相似,与人类之间存在很高的相似度。

因此,小鼠可以很好的复制一些与人类相关的疾病模型,如肝癌、胰腺炎、糖尿病、心血管疾病、神经系统疾病等。

此外,在药物研发和评价领域,小鼠也扮演着非常重要的角色。

小鼠可以很好的反映药物毒性和药物剂量,并且可以评估药物疗效和口服或注射的给药方案。

2、小鼠的缺点但是,在应用小鼠模型时必须要注意其缺陷。

首先,小鼠的大小和代谢速率都比较快,导致其体内药物代谢和生物转化速度更快,容易出现差异。

其次,小鼠的免疫系统尚未完全发育完全,抵御感染能力比较弱。

如果需要复制慢病毒等一些需要长期感染的疾病模型时,小鼠的效果并不理想。

此外,小鼠的肾脏与人类的肾脏存在一些差异,这就导致小鼠不适合作为药物肾毒性研究的模型。

二、大鼠作为疾病模型动物的优缺点1、大鼠的优点尽管与小鼠相比,研究大鼠模型需要更多人力、物力和时间,但是其仍然是非常有价值的。

主要原因在于,与小鼠相比,大鼠的大小、生理、生命活动指标等都更接近人类。

因此,大鼠可以很好地模拟和复制人类疾病模型。

此外,大鼠具有较强的抵抗能力和健康状态持久性,相对比较适用于研究慢性疾病模型。

比如糖尿病、高血压、肝病等疾病模型,使用大鼠效果比小鼠更佳。

2、大鼠的缺点大鼠偏好植物性食物,导致其重要微量元素缺乏,如维生素C、钙、和硫等,需要通过不同的食物配方进行补充。

而且由于大鼠相对的灵敏度和肝脏代谢活性都较高,所以在药物研发和评价方面需要进行更多的优化和调整。

小型猪医学研究模型的建立与应用

小型猪医学研究模型的建立与应用

小型猪医学研究模型的建立与应用一、引言猪是人类的重要食品来源,同时也是重要的实验动物之一。

在医学研究中,猪被广泛应用于心血管、消化系统、呼吸系统等多个领域的研究。

但是传统的大型猪模型存在成本高、操作复杂等问题,因此近年来小型猪模型逐渐受到关注和应用。

二、小型猪种类介绍1. 迷你猪:体重在20-70kg之间,适合进行小剂量药物试验和手术操作。

2. 越南小耳猪:体重在15-30kg之间,适合进行肺部和心血管系统方面的实验。

3. 神户迷你豚:体重在10-20kg之间,适合进行神经系统和代谢方面的实验。

三、小型猪模型建立方法1. 选取适当的品种和个体。

2. 控制饲养环境和饮食,保证动物健康。

3. 建立手术操作流程,并进行操作培训。

4. 对动物进行术前和术后护理。

四、小型猪模型应用案例1. 心血管系统方面:使用越南小耳猪模型进行冠状动脉旁路移植手术的研究,发现使用多巴胺可以提高手术成功率。

2. 消化系统方面:使用迷你猪模型进行结肠癌的研究,发现饮食中添加大豆异黄酮可以减缓结肠癌的发展。

3. 呼吸系统方面:使用神户迷你豚模型进行慢性阻塞性肺疾病的研究,发现长期暴露于二氧化硫环境下会导致肺功能下降。

五、小型猪模型的优势和局限性1. 优势:成本低、操作简单、体积小、易于管理。

2. 局限性:体型较小,无法适用于某些领域的研究;生理生化指标与人类存在差异。

六、未来展望随着对小型猪模型的深入了解和应用,未来将进一步完善其建立方法和实验技术,并拓展其在医学领域中的应用范围。

七、结论小型猪模型作为一种新兴实验动物,具有成本低、易于管理等优势,已经在心血管、消化系统、呼吸系统等多个领域得到了广泛应用。

未来将进一步完善其建立方法和实验技术,并拓展其在医学领域中的应用范围。

右心衰竭的小型啮齿类动物模型

右心衰竭的小型啮齿类动物模型

右心衰竭的小型啮齿类动物模型秦晓涵 郭潇潇△ 方 全(中国医学科学院北京协和医学院北京协和医院心内科,北京100730)摘要 右心衰竭(rightheartfailure,RHF)是一种复杂的临床综合征,发病机制多样,致残、病死率高。

目前对右心衰竭的研究远落后于左心衰竭,右心衰竭的有效治疗方法匮乏,建立可靠稳定的右心衰竭动物模型是深入研究其病理生理机制、寻找诊断和治疗新靶点的基础。

本文将从压力负荷过重、容量负荷过重、基因编辑等方面对目前右心衰竭的小型啮齿类动物模型做一总结,为今后右心衰竭动物模型的选择和建立提供参考。

关键词 右心衰竭;小型啮齿类;动物模型;压力负荷;容量负荷中图分类号 R541;R332 右心衰竭(rightheartfailure,RHF)是由心血管系统结构或功能异常导致右心室充盈或射血功能受损引起的一种复杂临床综合征,常继发于各种原因引起的肺高血压(pulmonaryhypertension,PH)、先天性心脏病、冠心病、瓣膜病和心律失常等。

RHF的发病机制复杂多样,但归纳起来可以分为三种类型:压力负荷过重、容量负荷过重和心肌病变[1]。

由于对其认识不足,临床上RHF的治疗手段和治疗效果远不如左心衰竭,致残率和病死率高,建立可靠稳定的RHF动物模型,是研究RHF的发病机制、病理生理过程和疾病治疗的关键环节。

本文将对目前RHF小型啮齿类动物模型的构建和科研应用做一综述,为今后RHF研究的模型选择提供参考。

一、实验动物的选择小型啮齿类动物,如大鼠、小鼠是心血管研究领域广泛应用的疾病模型动物载体。

目前常选用的种系包括Sprague Dawley(S D)大鼠、Wistar大鼠和C57BL/6小鼠等。

大鼠约5~8周龄,体重范围为80克~100克至310克~360克,小鼠6~12周龄,体重约20克~25克。

由于雌激素在肺动脉高压(pulmonaryarterialhypertension,PAH)进展中的保护作用等因素,雄性动物更易发展为PAH[2],所以目前研究多选用雄性鼠。

国外动物疾病模型参阅表

国外动物疾病模型参阅表

十、国外动物疾病模型参阅表疾病名称、动物、作者及年份(一)心血管系统沙土鼠Shakibi 1969 1.动脉粥样硬化海豚Cray 1974小鼠Hummel 1962 3.心衰大鼠Thant 1970 地鼠a r k 9 7 3Koletsky 1977a j u s z 9 6 9Imai 1973 4.心肌病兔Minick 1973 猫o o k 9 8 1Dcfaria 1971 地鼠e r t z 9 7 9Haust 1970 狗、猫i u 9 7 9鸡Morgan 1969i l l e y 9 7 7Neumann 1970 火鸡o r 9 7nHo 1974 小鼠Joe 1 9 6 2鸽Lindsay 1971 大鼠Schwarczmann 1 9 7 2Patton 1974 6.结节性多发性动脉炎Santorre 1972 小鼠Wigley 1 9 7 0Clarkson 1961 (二)消化系统Wagner 1973 1.胃溃疡沙土鼠Wexler 1971 猪Norton 1 9 7 2狗Malmros 1968 Muggenb 1 9 6 4r g猪Gottlieb 1954 牛Lde 1 9 6 4Glorentin 1968 2.食道驰缓Lee 1971 狗Clifford 1 9 7 3猫Lindsay 1955 Osborne 1 9 6 7灵长类Wisster 1977 小鼠Fernandes 1 9 6 8Gresham 1976 3.结肠炎Newman 1974 狗Rubin 1 9 7 32.高血压Faman 1974 Van 1 9 7K r u i n i n g e n大鼠Okamoto 1974 Strande 1 9 5 41969 兔VanKruiningen 1 9 7 2Kolletsky 1973 灵长类Eagel Sackler 1974 4.胃肠炎Kozo 1972 猪Kel 1 9 7yY amori 1973 豚鼠Wattj 1 9 7 1兔Fox 1969 5.巨结肠Bishop 1979 小鼠Bolande 1 9 7 5灵长类Magakyan 1970 Bielshowsky 1 9 6 2猫V an der 1973 6.肝炎狗Clough 1970 狗Smetana 1 9 6 9Mulvihill 1971 Morris 1 9 7 2Patterson 1968 Preisig 1 9 6 6续表灵长类London 1972 猪Johnson1958Semlana 1965 8.脊柱裂、腭裂大鼠Margolis 1968 小鼠Bornstein 1970鸭Fabricant1957 Kalter1971 7.胰腺炎兔C1966r a r y狗Thordal 1956 灵长类Padget19728.胆石症、胆囊炎狗Sherwoos1971牛Mcgavin 1962 9.侏儒症兔Borgman 1968 小鼠Macarther 1944(三)肌、骨骼系统Feller19611.肌病Lame1968小鼠Michelson 1955 1.老年性骨质疏松Gibert 1973小鼠Siberberg 1980Harris 1974 (四)内分泌系统Jablecki 1974 1.柯兴氏综合症水貂Hamilton 1974C1975pen火鸡Sutherland 1974 Siegel1970地鼠Harris 1975 2.糖尿病Montgomery 1975地鼠Carpenter 1970豚鼠Webb 1975Gerritsen1970狗Wenlink 1972He1980berg鸡Cardinet 1972Schmidt1974Julian 1973大鼠Maner 1972鸭Ridgon 1966Hall19732.骨硬化症Hackel 1968大鼠Marks 1973Nakhooda1975牛Greene 1974 小鼠、地鼠Bulter 1970Leipoid 1970小鼠Butler 19723.骨肉瘤Chick 1970狗Thurman 1973Iwatsuka19744.骨肿瘤Herberg 1977灵长类Pappagianis1973Walkley1978小鼠Franks 1973Wehner19725.慢性骨髓炎Y amada 1969兔Andriole 1973Mittl19706.多趾、并趾畸形Coleman 1978小鼠Johnson 1971 灵长类Howard 1972Gruneberg 1964 1976 7.骨关节病豚鼠Munger 1973小鼠Silberberg 1962 狗Kramer1980续表猫Johnson 1973Karlinsky 1978兔Roth 198地鼠Hayes 1975K r a m e r 198其他Slauson 1980猪Lang 1977Slauson 19803.甲状腺功能减退3.肺炎狗Lombard 1962灵长类Pirie 1971鸡Cole 1966大鼠兔Johnson 19744.肥胖症狗Pinke1945t o n小鼠Sinha 19754.肺结核E i g h e r 1976灵长类Good 1968大鼠Zucher 1962Moreland 1970B r a y 19715.哮喘其他Bray 1977狗Patterson 19745.垂体机能改变6.肺萎缩小鼠Baroni 1972马Mahaffey 1957F i c h e 1976(六)神经系统S i n h a 19751.癫痫H u m m e l 1964小鼠Ward 1971狗Willeberg 1975兔Hohenboken 1970P o l l o c k 1951Sawin 19556.甲状腺机能改变灵长类Riche 1971狗Lombardi 1962鸡Crawford 1970鸡Cole 1966狗Bielfelt 1971W i c k 1974Croft 19687.睾丸女性化Vander1968小鼠Kes 1972.小脑病变大鼠Stanley 1973猫Kilham 1966(五)呼吸系统狗Corday19521.过敏性肺炎小鼠Sidman 1965兔Par 196Y oon 1972s hR i c h e r s o n 1971Rezai 1972豚鼠Wilkie 19733.衰老症大鼠Fink 197鹿、猫、狗、小鼠灵长类Hensley 1974Dayan 19712.肺气肿水貂、小鼠、牛牛Dickinson 1967Hirano 1971马Gi 19Okano 1971lespie5大鼠Palecek 1971Sung 1971G r o s s 1965狗Koppang 1974小鼠Fisk 1976Patel 1974续表猫Geen 1974地鼠Shirai 19674.脑积水水貂Henson 1974小鼠Borit 1972马Cochrane 1973R a i m o n d i 1973灵长类Poskitt 1973T a r a s z e w s k a 1973.肾盂积水5.白质营养不良症小鼠Wamer 1971小鼠Buumann 1968大鼠Cohen 1970B e n n e t t 1971Lozzio 1972H o g 1974.肾小球硬化an 0J o s e p h 1972大鼠A very 1973S i n g h 1971Elema 1971W a t a n a b e 1972小鼠TreSer 19681974地鼠、狗Ditscherlein 1970猪Blakemore 1974豚鼠Takeda 1970P a t t e r s 19735.肾皮质囊肿n6.脑疝兔Fox 1971小鼠Bennett 19596.多囊肾7.震颤症地鼠Gleiser 1970小鼠Braverman 19537.尿石症L o r d 1929大鼠Magnusson 1971(七)泌尿、生殖系统猫Jackson 19681.原发性小球肾炎8.肾盂肾炎大鼠VanRel 1972牛Thorp 1943羊Steblay 198狗Bloon 1937L e r n e r 19669.肾变性A n g u s 1975小鼠West 1965猫Slauson 1971Hulse 1965灵长类Burkholder 19710.雌雄间体P o s k i 1974狗Stewart 1972t狗Kurtz 1972猪Bagnall 19742.继发性肾小球肾炎Miyake1973小鼠Meblors 1971Melander 1971P o r t e r 197111.妊娠毒血症B u c h m e i e r 1978兔Wardle 1973C h e v i l 1978Creene 1938eL a m b e r t 1968豚鼠Jay 1963L i k e 197212.睾丸女性化W e h n e r 1972小鼠Lund 1970F a l c o n e r 1964Ohno 1974大鼠Valtin 1977大鼠Stanley 1973续表13.隐睾症Harvey 1974 猪Mcphee 1934 鹿Huetis 1956 (八)免疫系统大鼠Werth 1967 1.过敏性哮喘小鼠Martinell1981豚鼠,狗Patterson 1974 Edwards 1975 2.自体免疫性疾病Hutton 1973 小鼠Howie 1968 Grunebe1939rgPeterson 1972 Stevens 1958 狗Lewis 1971 Falconer 1962Hurvity 1980 Nash 1964Palmer 1980 兔Falconer 1979Dodds 1978 2.白血病大鼠Hajdu 1969 鸡Pomero1973y3.免疫功能缺陷疾病Shifrine 1973①T细胞功能缺陷小鼠Kufe 1972 裸小鼠Flangan 1936 Mellors 1969Fogh 1978 Rowe 1972 裸大鼠Festing 1981 Skipper 1972 裸豚鼠O&#39;Donoghue 1981 Wolman 1982 牛Brwmmerstedt 1978 大鼠Hoelzer 1973 ②B细胞功能缺陷Molone1974y鸡Luster 1977 Richter 19721972Benedict 1978 Rosenthal马Banks 1976 豚鼠Kaplow 1979Perrymen 1980 猫Olson 1980 牛Nansen 1972 Cotter 1977 小鼠Welles 1981 3.卟啉病③T和B淋巴细胞均缺陷牛Kaneko 1963 小鼠Erickson 1981 猪Jrgensen 1963Azar 1980 4.出血性疾病Kincade 1981 大鼠Tschopp 1972 马Mcguire 1976 小鼠Novak 1981 ④其他狗Dodds 1981 小鼠Daguesney 1972 Raymon1979dHelniger 1974 Benson 1976(九)血液病其他Rvdes 19811.红细胞异常和贫血Kociba 1976 狗动物疾病模型(部分)分类:默认栏目一、复制方法和应用动物疾病模型的复制,是用人为的方法,使动物在一定的致病因素(物理的、化学的、生物的)作用下,造成动物组织、器官或全身一定损害,出现某些类似人类疾病的功能、代谢、形态结构方面的变化或各种疾病,通过这种手段来研究人类疾病的发生、发展规律,为研究人类疾病的预防、治疗(包括新药物试用)提供理论依据。

心血管系统疾病的实验动物模型

心血管系统疾病的实验动物模型

心血管系统疾病的实验动物模型摘要:建立适当的动物模型是开展疾病的发病机制、治疗和预防等研究的重要工具。

心血管疾病作为困扰人类健康的一类慢性疾病,对人类的健康威胁很大,其中以高血压和动脉粥样硬化危害最大,本文对近年来国内外心血管疾病动物模型的制作及应用进行总结,为心血管疾病的防治与发病机制的研究具有参考价值。

关键词:高血压动脉粥样硬化动物模型一、高血压1、自发性高血压自发性高血压动物模型是指实验动物未经任何有意识的人工处置, 在自然培育的情况下产生高血压, 并具有一定的遗传性。

其高血压的发生发展与人类高血压很相似, 在高血压研究中应用最为广泛, 尤其适用于多基因引起的高血压发病机制的研究和以及筛选与高血压相关的基因。

大多数自发性高血压大、小鼠模型是经过近交系交配而获得的,其常见的品系有小鼠的BALB/cJ、SWR/J,大鼠的SHR、SHRSP、SHR、MHS等,其中以SHR(自发性高血压大鼠)应用最为广泛,其血压高达26.7kPa(200mmHg),与人的原发性高血压最为相似,外周阻力明显升高,常见有心血管并发症。

SHR主要表现为神经调节系统和血管系统发生病理生理的变化。

SHRSP为SHR的亚系,血压升高较明显,且易引发脑出血,脑栓塞。

MHS品系的大鼠只有轻微的高血压,但心脏肥大出现较早。

大鼠高血压品系还有SR、DS、SBH、LH、GH等。

鸡、火鸡、兔、狗也有高血压的模型,但不常使用。

2、诱发性高血压诱发的方法所建立的高血压动物模型主要是模拟了人类的某些继发性高血压的发生和发展过程。

此方法主要包括手术诱导、注射诱导、食物诱导等,最常见的诱导高血压的方法有两肾一夹(2K1C),其方法是完全闭塞两侧的肾动脉,此法可快速引起严重的高血压,并可伴有肾脏萎缩, 对于研究肥胖型高血压发生的潜在机制有一定应用价值。

肾源性高血压在高血压的发病中占有相当的比例, 因此动物肾动脉狭窄复制出的高血压模型, 为临床研发新药奠定了一定的基础。

常见心脑血管疾病的动物模型选择与建立

常见心脑血管疾病的动物模型选择与建立

常见心脑血管疾病的动物模型选择与建立学号:11311032 姓名:钱江平 班级:11中药(1)班摘要:目的:探讨常见心脑血管疾病的动物模型及其建立。

方法:通过查阅资料,了解常见心脑血管疾病的类型,进而再通过查阅论文等,理出常见心脑血管疾病模型的建立方法。

结论:通过对各种心脑血管疾病的动物模型的研究,可以看出不同动物在面对不同心脑血管疾病是,他们各有优缺点。

我们在选择动物时,应具体考虑。

关键词:心脑血管疾病 动物模型 动物模型建立我国老龄化的加快老年人心血管疾病日益突出其发病率和死亡率日趋升高,提高心血管疾病的防治水平刻不容缓"随着现代医学的快速发展心血管疾病的预防!诊断和治疗等方面都取得一定的进展。

我国每年因心脑血管疾病而死亡的人数大约为260万,约占总死亡比例的45%。

实验动物作为生命科学研究的基础和重要的支撑条件,广泛应用于临床医学和实验医学研究[2],通过建立实验动物模型,能为临床应用提供很多理论指导。

一、高血脂及动脉粥样硬化症动物模型(一)概述腹腔注射蛋黄乳液造成小鼠高血脂模型是一种适合于药物大面积初筛的高血脂动物模型。

通过在动物饲料中加入过量的胆固醇和脂肪,饲养一定时间后,它的主动脉及冠状动脉处会逐渐形成粥样硬化斑块,并出现高血脂症。

高胆固醇和高脂饮食,加入少量胆酸盐,可增加胆固醇的吸收,如再加入甲状腺抑制药--甲基硫氧嘧啶或丙基硫氧嘧啶可进一步加速病变的形成。

(二)方法:1.小型猪:猪在许多生物学指标上与人类非常相似,被认为是研究人类疾病最合适的实验动物模型,既经济实用,又克服了同种器官的短缺。

如在比较医学中,科学家根据猪自身生理病理发生的过程研究人类衰老的机理,根据猪与人共同感染的疾病研究人的疾病在猪中的发生发展规律,从而为人类疾病的诊断、防治和治疗提供理论依据。

小型猪建高血脂模型,一般选用选用Gottigen系小型猪较为理想,用1%~2%高脂食物饲喂6个月即可形成动脉粥样硬化病变。

心血管活动调节实验报告

心血管活动调节实验报告

心血管活动调节实验报告1. 实验目的本实验旨在探究心血管系统的自主调节功能,以及不同情况下心脏的反应和血管的调节机制。

2. 实验仪器和材料•实验动物(如小鼠或大鼠)•麻醉药物•注射针和注射器•血压计•血压传感器•数据采集系统3. 实验步骤步骤一:动物麻醉使用适当的剂量的麻醉药物,将动物麻醉。

确保麻醉剂量足够使动物进入无痛觉状态,并维持麻醉状态的稳定。

步骤二:测量基础血压将血压传感器连接到动物的尾动脉或其他适当的位置。

使用数据采集系统记录动物的基础血压。

步骤三:触发刺激通过注射适当的刺激物,如噪声、光线变化或电刺激等,触发动物的应激反应。

步骤四:记录血压变化使用数据采集系统实时记录动物的血压变化。

观察并记录刺激后血压的变化趋势和幅度。

步骤五:分析数据根据记录的数据,使用统计学方法分析不同刺激条件下动物的血压反应情况。

比较不同刺激条件下的平均血压、最高血压和最低血压等指标。

步骤六:讨论和结论基于实验结果,讨论动物在不同刺激条件下的血压反应。

分析可能的调节机制,并给出你对实验结果的结论。

4. 结论在本次实验中,通过触发不同的刺激条件,我们观察并记录了动物的心血管系统对外界刺激的反应。

根据数据分析结果,我们可以得出以下结论:1.不同刺激条件下,动物的血压反应存在差异。

2.动物的心血管系统具有自主调节功能,能够在外界刺激下快速调整血压。

3.不同动物个体和种类可能对刺激的反应存在差异。

通过本实验,我们对心血管系统的调节机制有了更深入的了解。

进一步的研究可以探索更多心血管系统调节的机制,并在临床上应用于心血管疾病的治疗和预防中。

5. 参考文献[参考文献1] [参考文献2] …以上是本次心血管活动调节实验的报告,希望能对你理解心血管系统的自主调节功能有所帮助。

小型猪的心血管的试验步骤包括

小型猪的心血管的试验步骤包括

小型猪的心血管的试验步骤包括小型猪的心血管试验步骤引言:心血管疾病是当今社会中常见的健康问题之一。

为了研究心血管系统的结构和功能,科研人员常常使用小型猪进行试验。

本文将介绍小型猪的心血管试验步骤,以帮助读者了解该领域的研究进展。

一、动物选取与准备在进行心血管试验之前,科研人员首先需要选择合适的小型猪进行研究。

通常选择体型健康、品种纯正的小型猪。

在选取过程中,需要充分考虑动物的年龄、性别、体重等因素,以确保实验结果的可靠性。

在动物选取完成后,需要对小型猪进行准备工作。

这包括体重测量、体检、麻醉等步骤。

通过体重测量可以了解小型猪的生长发育情况,为后续实验提供基础数据。

体检可以检查小型猪的身体状况,确保其健康状态适合进行试验。

麻醉是为了减少小型猪在实验过程中的疼痛和不适感,提高实验的可行性和稳定性。

二、心血管数据采集心血管试验的核心是采集心血管数据,以评估小型猪的心血管功能。

常见的数据采集手段包括心电图、血压测量和血流动力学参数监测。

心电图是通过电极贴附在小型猪身体的特定部位,记录心脏电活动的变化。

通过分析心电图的波形和时间间隔,可以获取心脏的基本功能信息,如心率、心律和心室收缩情况等。

血压测量是通过将血压计连接到小型猪的肢体或尾部,实时监测血压的变化。

血压的测量可以反映小型猪的血管张力、血液循环和心脏泵血功能等重要参数。

血流动力学参数监测是通过植入导管或使用超声等技术,实时监测小型猪的血流动力学状态。

这些参数包括心输出量、心脏指数、外周阻力等,可以全面了解小型猪的心血管功能。

三、药物注射与干预在心血管试验中,科研人员常常需要注射不同的药物,以模拟不同的疾病状态或评估药物的疗效。

药物的选择和注射方式要根据具体实验目的进行确定。

在药物注射过程中,需要注意合理的剂量和注射速度,以避免对小型猪产生不良反应。

同时,科研人员还需要观察小型猪的生理指标和行为变化,及时调整实验方案,确保实验的可靠性和安全性。

四、数据分析与结果呈现完成心血管试验后,科研人员需要对采集到的数据进行统计分析和结果呈现。

心血管疾病动物模型-模型建立.ppt.ppt

心血管疾病动物模型-模型建立.ppt.ppt
评价:模型损伤小,动物较易耐受,成功率高。
六、休克动物模型
1、低血容量性休克(失血) 2、心源性性休克 3、感染性休克 4、过敏性休克
1、低血容量性休克(失血) 急性失血20%-30%时,便可达到休克。 犬,总血量为体重的8%。股动脉放血造急性出血性
休克。 可用于休克的教学实验,也可应用于抗休克药物的
评价:
持续两周,均可引起主动脉病变,呈现血管 壁中层弱性纤维拉长、劈裂或断裂,病变中出现 坏死及钙化。
3.半胱氨酸法: 给兔皮下注射同型半胱氨酸硫代内酯每天
20 ~ 25mg/kg( 以 5 % 葡 萄 糖 溶 液 配 成 lmg/ml 的 浓 度),连续20~25天。
评价:
成年兔及幼兔均可出现动脉粥样硬化的典型 病变。冠状动脉管腔变窄、动脉壁内膜肌细胞增 生、纤维状异物质。如同时在饮料中加入20%的 胆固醇,则出现显著的动脉粥样硬化病变。
评价:本模型属于缓慢型心律失常模型,与临床窦综合症有一些类似。 模型较稳定,重复性好,可用于药物筛选。
造模方法: 3.无水乙醇诱发犬房室传导阻滞模型
机制:在犬心脏房室结部位注射一定量的无水乙醇可损害 心脏传导组织,从而造成传导阻滞。
方法:15kg左右的犬,呼吸麻醉机麻醉,仰卧固定,安装 心电图装置。常规打开胸腔,暴露心脏,用普通注射 器将无水乙醇注入房室结。
(2)特点:进程曲折,发展缓慢,直到20世纪30年代情况才发生变 化。
3.交通通讯变化的影响 (1)新式交通促进了经济发展,改变了人们的通讯手段和 ,出行 方式转变了人们的思想观念。
(2)交通近代化使中国同世界的联系大大增强,使异地传输更为便 捷。
肾源性高血压在高血压的发病中占有比例相当高,且肾 素血管紧张素系统的激活引发高血压中的发病机制已得到 举世公认。实验性肾动脉狭窄,能非常相似地复制出高血 压模型,为临床高血压的研究奠定了基础。

常见大、小鼠实验性心血管病模型专家共识

常见大、小鼠实验性心血管病模型专家共识

常见大、小鼠实验性心血管病模型专家共识中国心血管病患病率处于持续上升阶段,2020年《中国心血管健康与疾病报告》推算心血管病现患病人数3.3亿[1],其中脑卒中、冠状动脉性心脏病(冠心病)、心力衰竭的患病人数众多,而高血压、心房颤动、动脉粥样硬化、心肌病不仅是心血管病,也是缺血性和出血性脑卒中、冠心病和各种心力衰竭等心血管并发症的主要危险因素。

由于绝大多数心血管病的确切原因还不明确,动物模型为解开心血管病的发病机制和测试新型治疗策略提供了有效的解决方法。

为了提高动物模型的可靠性,2005年美国心脏协会(American Heart Association,AH A)制定了实验动物血压测量建议的科学声明[2],强调了准确而有意义的血压测量对于解释血管生物学、动脉粥样硬化和其他形式的心血管病研究的重要性。

2012年AHA发表了心力衰竭动物模型科学声明[3],建议建立动物模型的目的在于确定心力衰竭的原因或测试可能预防或治疗心力衰竭的措施。

2017年AHA在动物动脉粥样硬化研究设计、实施报告中指出[4]:为了避免不同研究组的结果矛盾,建议动物模型的选择应对人体疾病模拟的可靠性进行评述,并应关注实验设计及其资料解释,提高动脉粥样硬化病变测量和表型准确性的标准方法。

2019年AHA在高血压动物模型的科学声明中指出[5]:为了提高高血压及其合并症发病机制、预防和治疗的水平,动物模型的实用性取决于模型代表人类高血压类型的有效程度,包括对治疗的反应,模型的可重复性和实验设计等研究的质量问题。

由此可见,国际上越来越关注动物模型质量问题。

实验性大、小鼠动物能有效地模拟人类心血管病,由于繁殖能力强,易于检测等优点,目前是我国心血管病研究的主要动物模型之一。

为了提高实验性大、小鼠动物模型在我国心血管病转化医学研究中的临床参考价值。

中国心胸血管麻醉学会精准医疗分会组织标准委员会相关专家通过文献复习和论坛讨论,对高血压、动脉粥样硬化、心房颤动、心肌病和心力衰竭实验性大、小鼠心血管病模型的研究现状、存在问题和应用前景等进行概述,并撰写成共识,目的旨在为研究者规范实验性大、小鼠心血管病模型研究提供参考。

右心衰竭实验报告讨论

右心衰竭实验报告讨论

一、实验背景右心衰竭(Right Heart Failure,RHF)是指由于心脏右侧泵血功能不全导致心脏输出量减少,引起全身循环系统血液回流受阻,从而出现的一系列临床症状。

近年来,随着我国人口老龄化加剧,心血管疾病发病率逐年上升,RHF已成为严重影响患者生活质量及生命安全的疾病之一。

为了深入研究RHF的发生机制及治疗策略,本研究采用实验动物模型,通过观察和比较RHF模型组和正常对照组的心脏功能、血流动力学及组织器官机能代谢改变,探讨RHF的发病机制及治疗原则。

二、实验方法1. 实验动物:选取健康家兔30只,随机分为实验组(RHF模型组)和对照组(正常对照组),每组15只。

2. 实验分组:实验组采用快速增加右心室前、后负荷的方法复制RHF模型,具体操作如下:(1)采用快速输注中分子右旋糖苷(右旋70)的方式增加右心室前负荷;(2)缓慢静脉注射38℃液体石蜡,导致肺小动脉栓塞,增加右心室后负荷。

对照组给予相同剂量的生理盐水。

3. 实验指标:观察两组动物的心脏功能、血流动力学及组织器官机能代谢改变,包括:(1)心脏重量与体重比;(2)心脏射血分数(EF);(3)心输出量(CO);(4)平均动脉压(MAP);(5)肺动脉压(PAP);(6)肺血管阻力(PVR);(7)血清乳酸脱氢酶(LDH)和肌酸激酶(CK)活性;(8)肝、肾功能指标。

4. 数据分析:采用SPSS 22.0统计软件对实验数据进行分析,组间比较采用t检验,以P<0.05为差异具有统计学意义。

三、实验结果1. 心脏功能:实验组动物心脏重量与体重比、EF、CO均显著低于对照组(P<0.05),提示RHF模型组心脏功能明显受损。

2. 血流动力学:实验组动物MAP、PAP、PVR均显著高于对照组(P<0.05),提示RHF模型组全身循环系统血液回流受阻,肺循环阻力增加。

3. 组织器官机能代谢:实验组动物血清LDH和CK活性均显著高于对照组(P<0.05),提示RHF模型组心脏组织损伤严重。

血液系统疾病动物模型制备

血液系统疾病动物模型制备
2020/11/14
模型评估和应用
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模型评估和应用
1、 纤溶酶原的激活 外激活途经: t-PA,u-PA,
内激活途径: IIa, Ⅻf, K
纤溶酶原 2、 纤维蛋白的降解
纤溶酶
抑制物
2020/11/14
Fbg
FDP
Fbn
(A,B,C,X,Y,D,E)
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1.兔体外血栓形成模型
造模原理: Ø 血流缓慢或有涡流, 血小板进入边流,增加黏
附于管壁的可能性 Ø 凝血因子易于在局部堆积和活化,启动凝血
通过肌内注射5mg / kg赛拉嗪(甲苯噻嗪)和30mg / kg氯胺酮盐酸盐麻醉的兔子以 1.53mg / kg / hr的速率维持稀释的氯胺酮(2mg / ml,IV)
通过机械通气行气管切开术 用直肠探针监测体温,并使用水套加热毯维持在37℃。 体外循环(ECC,4小时),通过插管用于ECC流入的左颈动脉和用于ECC流出的左股
静脉(或右外颈静脉)
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2020/11/14
造模方法
15cm,1/4 inch polyurethane catheter 聚氨酯导管
颈总动脉
8cm,3/8inch聚亚安酯 catheter
股静脉
15cm,1/4ilatelet aggregation using a Chrono-Log optical aggregometer.
血流变慢,有利于血栓形成
2020/11/14
6
凝血系统
4万倍
凝血酶原激活 物的形成
凝血酶的形成
纤维蛋白的形成
图9-1 凝血瀑布反应过程:TF:组织因子;PL:磷脂;Fbg:纤维蛋白原;SFM:可溶性纤维蛋白单

家兔实验性心衰实验报告(3篇)

家兔实验性心衰实验报告(3篇)

第1篇一、实验背景心衰,即心力衰竭,是指心脏无法有效泵血,导致心脏供血不足,从而引起全身血液循环障碍的临床综合征。

为了研究心衰的发生机制和病理生理变化,本实验采用家兔作为实验动物,通过人为方法复制实验性心衰模型,观察心衰时的心血管动力学变化,以及心衰对组织器官功能的影响。

二、实验目的1. 复制家兔实验性心衰模型。

2. 观察心衰时的心血管动力学变化。

3. 分析心衰对组织器官功能的影响。

4. 探讨心衰的发生机制。

三、实验材料1. 实验动物:健康家兔6只,体重2.0-2.5kg。

2. 实验仪器:电子体重秤、血压计、心电图仪、超声心动图仪、生理信号采集系统、手术器械、输液器等。

3. 实验试剂:氯化钠、葡萄糖、肝素钠、肾上腺素、心得安等。

四、实验方法1. 实验分组:将家兔随机分为两组,每组3只。

对照组给予正常饲养,实验组给予复制心衰模型。

2. 心衰模型复制:实验组家兔采用心脏按压法复制心衰模型。

首先,采用心电图检测家兔心脏功能,确定心脏功能正常。

然后,将家兔麻醉后,进行心脏按压,每次按压30秒,间隔2分钟,重复3次。

心脏按压后,观察家兔的心脏功能变化,记录心率和血压。

3. 心血管动力学检测:采用血压计和心电图仪检测心衰组家兔的心率和血压,采用超声心动图仪检测心衰组家兔的心脏结构和功能。

4. 组织器官功能检测:采用生理信号采集系统检测心衰组家兔的心脏、肝脏、肾脏等器官的功能。

5. 数据分析:采用统计学方法对实验数据进行统计分析。

五、实验结果1. 心衰模型复制成功:实验组家兔在心脏按压后,出现心率减慢、血压下降、心电图异常等心衰症状。

2. 心血管动力学变化:心衰组家兔的心率和血压明显低于对照组,心输出量降低。

3. 心脏结构和功能变化:心衰组家兔的心脏大小、重量明显增加,心室壁厚度增加,心脏射血分数降低。

4. 组织器官功能变化:心衰组家兔的心脏、肝脏、肾脏等器官功能明显受损。

六、讨论与分析1. 心衰模型复制成功:本实验采用心脏按压法成功复制了家兔实验性心衰模型,为后续研究心衰的发生机制和病理生理变化提供了基础。

小型猪的心血管的试验步骤包括

小型猪的心血管的试验步骤包括

小型猪的心血管的试验步骤包括小型猪心血管试验步骤引言:心血管疾病是全球范围内的主要健康问题之一,而小型猪作为生物医学研究领域中的重要模型动物,被广泛应用于心血管疾病的研究中。

本文将介绍小型猪心血管试验的一般步骤,以期为相关研究提供参考。

一、实验前的准备工作在进行小型猪心血管试验之前,需要进行一系列的准备工作,包括:1. 选取合适的小型猪品种和数量,确保其与人类心血管系统的相似性;2. 提前购买所需的实验设备和试剂,并进行校准和质量控制;3. 制定详细的实验方案,明确实验目的、方法和数据分析等内容;4. 组织实验人员进行相关培训,确保实验操作的准确性和一致性;5. 准备好实验动物的住所和饲料,保证其生活环境的良好和饮食的合理。

二、手术前的准备工作在进行小型猪心血管试验之前,需要对实验动物进行一系列的术前准备工作,包括:1. 禁食禁水:在手术前一定时间内,将小型猪禁食禁水,以保证手术过程的顺利进行;2. 麻醉:使用合适的麻醉方法对小型猪进行麻醉,以确保其在手术过程中没有疼痛感受;3. 体温控制:在手术过程中,通过使用适当的保温设备,保持小型猪体温的稳定;4. 局部消毒:对手术部位进行彻底的局部消毒,以预防感染的发生;5. 术前检查:对小型猪进行心电图、血压等相关检查,以确定其心血管系统的基本状况。

三、手术过程小型猪心血管试验的手术过程主要包括以下几个步骤:1. 打开胸腔:通过对小型猪胸腔进行切开,暴露心脏和主要血管;2. 置入导管:在合适的位置,将导管置入心脏和主要血管,以便后续实验操作;3. 测量生理参数:使用合适的仪器和方法,对小型猪的血压、心率等生理参数进行测量;4. 给药和刺激:根据实验方案的要求,给小型猪注射相应的药物或进行刺激,以观察其对心血管系统的影响;5. 数据记录:及时记录小型猪的生理参数变化,并进行数据的整理和分析;6. 手术结束:在实验完成后,及时对小型猪的伤口进行缝合和处理,以促进伤口的愈合和恢复。

动物实验模型

动物实验模型

摘要:医学中的动物实验模型,为现代医学的发展作出了贡献,可以说每一种新的西药的出现和每一种新疗法的诞生,都离不开动物实验模型。

实验动物是活的仪器[1],其重要性已受到世界各国科学家的共同认可。

要合理正确选择实验动物,必须了解它的局限性。

为学习研究提供更广阔的思路是今后进行学习研究的发展方向。

关键词:医学; 动物实验; 实验动物引言:医学科学研究按场合、层次可分为:实验研究、调查研究和临床研究三种。

动物实验模型研究是基础研究,是指在实验室内,为了获得有关生物学、医学等方面的新知识或解决具体问题而使用动物进行模拟的科学研究。

医学科研和临床工作的开展,特别是新技术、新疗法、新药物的应用离不开实验动物动物实验【2】。

而这些都必须由经过培训的、具备研究学位或专业技术能力的人员进行或在其指导下进行。

动物实验的特点是可由实验者根据不同的课题选择动物。

制成动物模型,可作严密的设计,包括目的、对象、方法、对照、随机分组、设定数量、指标、原始记录和统计方法等。

医学中的动物实验为现代医学的发展作出了贡献,可以说每一种新的西药的出现和每一种新疗法的诞生,都离不开动物实验。

同样,动物实验也为中医、针灸学的发展带来了新的希望。

但是,动物实验有它的局限性,不是所有医疗技术都需要进行动物实验,那些已经被临床实验证明有效的医疗方法,就没有必要再用动物实验来证实。

由于很多高级动物在生理和病理方面与人类有近似之处,因此可以通过动物实验寻找新的药物和新的疗法。

但是人和动物毕竟存在很大差异,动物实验的结果,只能给临床作为参考,而不能代替临床实践。

一般情况下,一种新药或新的疗法,能否试用于临床,必须有足够的动物实验依据,但判断这种新药或新疗法是否真正有效,能否推广使用,还必须经受临床实践的检验。

通常情况下,动物实验有效,临床实践也有效,但有时两者并不一致。

一种疗法,如动物实验证明有效,而临床实践证明无效,就应否定。

反过来,临床实践证明有效,而动物实验却无效,自然还应肯定。

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心血管系统疾病的实验动物模型摘要:建立适当的动物模型是开展疾病的发病机制、治疗和预防等研究的重要工具。

心血管疾病作为困扰人类健康的一类慢性疾病,对人类的健康威胁很大,其中以高血压和动脉粥样硬化危害最大,本文对近年来国内外心血管疾病动物模型的制作及应用进行总结,为心血管疾病的防治与发病机制的研究具有参考价值。

关键词:高血压动脉粥样硬化动物模型
一、高血压
1、自发性高血压
自发性高血压动物模型是指实验动物未经任何有意识的人工处置, 在自然培育的情况下产生高血压, 并具有一定的遗传性。

其高血压的发生发展与人类高血压很相似, 在高血压研究中应用最为广泛, 尤其适用于多基因引起的高血压发病机制的研究和以及筛选与高血压相关的基因。

大多数自发性高血压大、小鼠模型是经过近交系交配而获得的,其常见的品系有小鼠的BALB/cJ、SWR/J,大鼠的SHR、SHRSP、SHR、MHS等,其中以SHR(自发性高血压大鼠)应用最为广泛,其血压高达26.7kPa(200mmHg),与人的原发性高血压最为相似,外周阻力明显升高,常见有心血管并发症。

SHR主要表现为神经调节系统和血管系统发生病理生理的变化。

SHRSP为SHR的亚系,血压升高较明显,且易引发脑出血,脑栓塞。

MHS品系的大鼠只有轻微的高血压,但心脏肥大出现较早。

大鼠高血压品系还有SR、DS、SBH、LH、GH等。

鸡、火鸡、兔、狗也有高血压的模型,但不常使用。

2、诱发性高血压
诱发的方法所建立的高血压动物模型主要是模拟了人类的某些继发性高血压的发生和发展过程。

此方法主要包括手术诱导、注射诱导、食物诱导等,最常见的诱导高血压的方法有两肾一夹(2K1C),其方法是完全闭塞两侧的肾动脉,此法可快速引起严重的高血压,并可伴有肾脏萎缩, 对于研究肥胖型高血压发生的潜在机制有一定应用价值。

肾源性高血压在高血压的发病中占有相当的比例, 因此动物肾动脉狭窄复制出的高血压模型, 为临床研发新药奠定了一定的基础。

给予大鼠一定量的盐皮质激素能够较好地复制出内分泌、代谢及饮食型高血压,这种高血压常伴有心脏体积增加、内皮细胞功能紊乱、蛋白尿和肾小球硬化症等症状。

给予大鼠高糖饮食也可引起高血压,但这种方法只对部分品系的大鼠起效,这种特性对研究遗传与高血压的关系有重要的意义。

采用电、声波等慢性刺激中枢神经系统也可引起血压的明显升高, 该模型对了解高血压的发病机制及危险因素有十分重要的价值, 而且适用于降压药物的筛选。

二、动脉粥样硬化
1、自发性动脉粥样硬化
自发性动脉粥样硬化见于兔、鸽、猴、猪等,但作为动物模型的品系较为少见。

2、诱发性动脉粥样硬化
多种动物均可以诱发产生动脉粥样硬化,目前可以作为模型的动物有:大白兔、鸡、鼠、猪和猴等。

其中猪和猴的系统发育和饮食结构类似于人.能够产生自发性的动脉粥样硬化,是研究人类动脉粥样硬化的理想模型。

家兔和鼠是现在研究动脉粥样硬化最常用的模型动物,两者比较各有优缺点:家兔不易自发性产生动脉粥样硬化,但它对高脂饮食特别敏感,但是家兔的动脉粥样硬化病变只与人的病变表面上相似,其病变中的脂
类和巨噬细胞含量远比人类大。

鼠具有抗动脉粥样硬化性,但是作为实验动物,具有经济效益比较高,生存能力强,死亡率低的特点。

为此,人们不断摸索建立造型简便且重复性好的动脉粥样硬化模型。

(1)、兔动脉粥样硬化模型:给家兔喂含高脂肪、高胆固醇的饲料,这种方法可以使血胆固醇水平升高近40倍,此法价格便宜、容易获得,可以在短期内多次复制,但兔为食草动物,与人胆固醇代谢不同,所以模型并非很理想。

(2)、猪动脉粥样硬化模型:用高胆固醇饲料喂养猪,并配合胸部X射线照射而引起冠状动脉痉挛,由于猪食性接近人,是进行人动脉粥样硬化的较好的模型。

(3)、狗动脉粥样硬化模型:在狗的饲料中添加大量的胆固醇,并抑制甲状腺功能,可以得到狗的动脉粥样硬化模型。

(4)、大鼠动脉粥样硬化模型:可以通过高脂肪饲料配合使用维生素D3得到大鼠的动脉粥样硬化模型,若配合在球囊处损伤动脉,则效果更佳。

可呈较典型的与人类动脉粥样硬化相似的成熟动脉粥样硬化斑块。

(5)、鸽动脉粥样硬化模型:给与鸽少量胆固醇即可使使其血清脂类含量明显上升,这与人类早期动脉粥样硬化相似,对研究人类病变早期代谢变化有特殊价值。

三、总结
心血管系统疾病由于其发病机制尚不完全清楚,诱发受多种因素影响,无特效的治疗药物,因此对于心血管疾病的预防及治疗等不能对症下药达到很好的效果,因此建立与人类相似的成熟的心血管疾病动物模型对预防与治疗有重要意义。

参考文献:
[1]杨鹏远 ,芮耀诚 ,焦亚斌第二军医大学学报2003年7月
[2]徐也鲁中国动脉硬化杂志2001年第9卷
[3]刘磊,焦向英,张炜芳,赵荣瑞山西医科大学学报2005年12月
[4]周颖,陈虹高血压动物模型研究进展中国现代实用医学进展 2006年5月
[5]张艳荣, 张连峰, 杨志伟高血压实验动物模型中华高血压杂志2008年3月。

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