磷酸化蛋白质

前述的固相金属离子亲和色谱法也是选择性检测磷 酸肽的方法。它有一个好处是可以直接用MALDITOF-MS分析，即直接用此IMAC填料与肽混合物共孵 育，使磷酸肽与色谱填料结合，离心后填料与磷酸 肽共同沉淀在底部，弃上清，将沉淀清洗几遍后， 可直接与MALDI-MS的基质溶液混合并进行质谱分析。 或者使用IMAC柱将磷酸肽富集洗脱后质谱分析。通 过比较IMAC处理前后肽谱的变化找到磷酸肽。
e) 蛋白质的鉴定 为了鉴定检测出的磷酸化蛋白质，可以平 行运行两块2D胶。其中一块作为分析胶、另一 块作为制备胶。将分析胶分离的细胞蛋白质电 转印到PVDF膜上，进行免疫印迹反应．检测出 磷酸化蛋白质，再染色显出其他全部蛋白质。 制备胶分离的蛋白质直接染色后，与分析胶转 膜后的谱图及免疫印迹后的 x 胶片进行对比， 在制备胶上找出相应的磷酸化蛋白质进行进一 步分析、鉴定。
第六章
蛋白质翻译后修饰的鉴定
许多蛋白质在翻译中或翻译后在氨基 酸链上共价结合各种非肽类基团，形成 翻译后修饰。修饰约有30多种类型。
Post-Translational Modifications (PTM)
酰胺化 甲硫基化
氨甲酰化 瓜氨酸化
硫辛酸化 豆蔻酸化 亚硝基化 辛基化 棕榈酰化 磷酸吡哆醇化 磷酸泛酰巯基乙胺化
三棕榈酸
次磺酸
亚磺酸
脱酰胺化 三棕榈酸化
甲酰化
最常见修饰包括磷酸化，糖基化。 蛋白质的糖基化修饰和磷酸化修饰在生命活 动中具有重要的调控作用，因此也是目前蛋 白质组中翻译后修饰研究的热点。
第一节
磷酸化蛋白质的鉴定
一· 生物体内的蛋白质磷酸化修饰及其功能
Analysis of the entire complement of phosphorylated proteins in cells:“phosphoproteome”。
样品制备 制备型2D胶电泳 CBB染色 分析型2D胶电泳 膜转印 磷酸氨基酸抗体免疫检测 磷酸化蛋白质 找出相应的 磷酸化蛋白质
图谱比较
CBB染色得到 全部蛋白质点
磷酸化蛋白质鉴定
磷酸化蛋出质组的抗体免疫印迹分析策略
四、蛋白质磷酸化位点的分析
1．磷酸肽的分离和富集 常用的分析方法是将蛋白质酶解成肽段， 找到被磷酸化修饰的肽段，并对该肽段进行 序列分析，确定发生磷酸化的氨基酸位点。 由于蛋白质磷酸化的化学计量值较低， 磷酸化肽段的信号丰度会比相应未磷酸化肽 段的丰度要低。因此需要分离富集磷酸肽。
b) 一维或二维电泳分离细胞蛋白质 按照常规SDS-PAGE或双向电泳的操作步 骤进行蛋白质分离。 c) 转膜：电泳结束后将胶上蛋白质电转印到膜 上，如：PVDF膜(Po1yvinylidene fluorine 聚偏二氟乙烯)。
d) Western blotting 反应转印完成后转印膜 要进行封闭及与抗体反应。
磷酸肽的串联质谱图例
五、蛋白质磷酸化的定量分析
蛋白质磷酸化的定量问题，即磷酸化 蛋白质与其相应非磷酸化蛋白质的比例， 也是蛋白质组研究非常关心的问题。
下面介绍一种稳定同性素标记磷酸化 蛋白质定量的方法。
15N稳定同位素标记法
将两种细胞在不同的培养基中分别培养， 一种为正常培养基，另一种培养基的氮源有 15 N 提供，混合两种培养物，提取细胞蛋白。 分离目标蛋白质 ( 磷酸化蛋白 ) 后，酶解，提 取肽段，用质谱分析。因为两种细胞蛋白分别 掺入14N和15N ，所以在质谱图中，每个水解肽 段表现为一对峰。 14N/15N 的同位素丰度比可以体现出两种细胞 来源蛋白质表达量的相对水平。
2．抗体免疫印迹检测法 用抗磷酸氨基酸抗体与磷酸化蛋白质 进行免疫印迹反应来检出磷酸化蛋白质 也是目前较常用的磷酸化蛋白质分析方 法。 1. 抗酪氨酸磷酸盐抗体的特异性最好 2. 抗磷酸化丝氨酸和苏氨酸抗体的特 异性不太高。
一般步骤：
a) 细胞蛋白质样品的制备 细胞培养结束后加裂解液提取细胞蛋 白质。裂解液中要加入一定浓度的酶抑 制剂。以避免细胞裂解后发生的蛋白质 磷酸化或去磷酸化作用。

真核细胞蛋白质中常见的几种磷酸 化修饰氨基酸残基的结构
二. 磷酸化蛋白质分析概述
传统的磷酸化蛋白质的分析有许多是利用 体外激酶反应使蛋白质被磷酸化修饰，产生足 够用于分析的磷酸化蛋白，经化学或质谱分析 确定磷酸化位点，例如 Edman 测序和串联质谱 测序。同时为了证明体外研究确定的磷酸化位 点确实具有生物学意义，还必须证实在体内存 在相同的磷酸化位点。 通常通过比较磷酸化蛋白质的二维磷酸肽 图得以证实。当体内和体外同一磷酸化蛋白质 酶切后各自的磷酸肽在二维谱图中共迁移时， 可认为体内、体外磷酸化蛋白有相同的磷酸化 位点。
(1) 反相液相色谱(RP-HPLC)分离磷酸肽
Baidu Nhomakorabea
经RP-HPLC分离，肽混合物成分可以被简化， 磷酸肽可根据其疏水性被分离。 RP-HPLC 系统 可以与电喷雾(ESI)质谱连接，使用HPLC-MS／ MS串联系统，可以直接检测和鉴定肽混合物中 的磷酸肽，尤其适用于没有被放射性标记的分 析样品。
(2)IMAC分离／富集磷酸肽 固相金属亲和色谱（immobilized metal affinity chromatography IMAC)原来用来纯 化含组氨酸的蛋白质，现在也常被用来选择 性富集磷酸肽。 磷酸基团与固相化的金属离子有高亲和力， 可被选择性地吸附在上面，用高pH溶液或 磷酸盐洗脱后即为富集的磷酸肽。 L Limitation: non-specific binding to acidic side chains (D, E). Solution: Derivatize all peptides by methyl esterification to reduce non- specific binding by carboxylate.groups.
传统分析方法的局限性
这个方法间接确定了体内蛋白质的磷酸 化位点，并未直接分析体内磷酸化蛋白 质； 在分析中为了追踪磷酸化蛋白质和磷酸 化肽段，一般都要采用放射性标记，所 以存在放射性污染的问题； 一次只能分析一个目的蛋白质，不适应 蛋白质组大规模、整体分析的策略。

现在技术
从蛋白质组的规模上分析磷酸化蛋白质， 目前最常用的分离技术还是二维凝胶电泳技术。 细胞蛋白质经二维凝胶电泳分离后，磷酸 化蛋白质的检测通常用32P放射性标记放射自 显影和抗磷酸氨基酸抗体免疫反应的方法。磷 酸化蛋白质的鉴定可以用肽质量指纹谱方法或 串联质谱测序方法；磷酸化位点的鉴定可用磷 酸酶法、串联质谱侧序法等。有些情况下，在 质谱分析前还需要对磷酸肽进行富集，如金属 螯合离子亲和提取法。
磷酸化蛋白质染料
2．磷酸肽的识别 (1) MALDI-TOF-MS结合磷酸酶水解分析 法，这是蛋白质磷酸肽鉴定的常用手段。 首先将磷酸化蛋白用蛋白水解酶水解为 肽片段，再用磷酸(酯)酶处理肽段，使肽段 脱磷酸。磷酸化氨基酸残基脱磷酸后，肽段 失去了一个HPO3分子，相应肽段的质量减少 80Da用质谱分析磷酸酶作用前后肽质量谱的 差异，寻找质量数减少80Da或80倍数的肽段。 这样不仅可以用 PMF 的方法鉴定蛋白质，又 可基本确定发生磷酸化的肽段及磷酸化的数 目。肽谱分析最常用的质谱仪是MALDI-TOFMS质谱仪。
局限性
对某些磷酸转换速率较低的磷酸化蛋白质，只
能掺入少量的放射性磷酸盐，有可能检测不到。 不同的氨基酸有不一样的磷酸化／去磷酸化代 谢速率，所以掺入32P磷酸盐的速率也是不一 样的，在不同磷酸化氨基酸之间进行定量比较 时要注意这一问题。 放射性标记方法虽然灵敏而且直观，但是因为 存在放射性污染的问题，所以在相当多的实验 室是不适用的。
m/z 2061.9
用MALDI-TOF-MS分析ZipTip处理前后的肽段
33到48位，序列为FQSEEQQQTEDELDK，该肽段质荷比的理论值为 m／z 1981.9，但是在其中的第35位丝氨酸残基上有一个磷酸基 团，使该肽段的质量数增加了80而成为质荷比为m／z 2061.9的 峰
(3) 磷酸化氨基酸位点的确定 要确定其磷酸化位点，需要用串联质谱 产物离子扫描模式（product ion scanning) 对磷酸肽进行序列分析。
Trypsin
GTVQPASNFNDDSSQGLGTDEGSIVLTQR
MS/MS spectra
GTVQPASNFNDDSSQGLGTDEGSIVLTQR SNAQAVEGAGTDESTLIELMATRILVSLALG NRDEGPENLTQAVVAETLNKLLALXGGDDF KLMAAG
将选定的磷酸肽在碰撞诱导解离(CID)室打 碎。检测其产生的全部碎片离子，根据碎片 离子质量数推断肽段序列和磷酸化位点。磷 酸肽在CID室碰撞诱导解离．易产生丢失80 Da(HPO3)和98Da(H3PO4)的子离子，此离子峰 的丰度很高，往往在整个碎片离子谱中占据 主导地位。一般较短的磷酸肽比较长的磷酸 肽更易于丢失磷酸．
三. 磷酸化蛋白质的检测
1.
32P放射性标记法
从蛋白质组水平检测磷酸化蛋白质最 经典的方法是32P放射性标记法。也就是 用放射性32P标记的ATP处理细胞，使32P 接入磷酸化蛋白质。
具体方法是： 培养待标记的细胞至适当的生长期， 在生长旺盛的细胞中磷酸盐的转运达到 最高峰．用不含磷酸盐的标记培养液 (如DMEM)替换原来的细胞培养液，并加 入32P标记磷酸盐共培养，使细胞ATP库 与32P平衡，蛋白激酶利用被放射标记的 ATP使底物磷酸化。培养约2h后裂解细 胞提取蛋白质，随后进行2D电泳分离， 放射自显影检测磷酸化蛋白质。
生物素
生物素
另一种方法是通过化学反应在磷酸 基 团 上 连 接 一 个 半 胱 胺 基 团 (cysteamine)，修饰的磷酸肽用固相 化的碘乙酰凝胶亲和提取。这种方法 适合各种磷酸氨基酸的修饰。
(二碳酸二叔丁酯)
(半胱胺基)
（碘乙酰凝胶）
这两种亲和取代方法都需要进行 化学反应，为了避免副反应的影响， 都需要对蛋白质中的一些活性基团进 行保护，所以整个反应体系还是比较 复杂的。
真核细胞蛋白质的磷酸化翻译后修饰 一般是O-磷酸化．即磷酸化位点在蛋白 质的丝氨酸(Ser)、苏氨酸(Thr)和酪氨 酸(Tyr)残基侧链的羟基上。 原核生物中蛋白质的磷酸化位点常在 组氨酸(His)、天冬氨酸(Asp)和谷氨酸 (Glu)，此外，在赖氨酸(Lys)、精氨酸 (Arg)和半胱氨酸(Cys)也会发生磷酸化 修饰。 不同的蛋白激酶可识别和修饰不同蛋 白质的不同位点(不同的氨基酸顺序)。
(3) 磷酸基团亲和取代 将磷酸肽上的磷酸基团用另一种亲和 配基取代，再用亲和提取的方法从混合 中分离富集磷酸肽。目前有2种亲和配基 取代方法。
一种方法是使磷酸基团在碱性条件下发 生 β 消除，然后由疏基乙醇取代磷酸基团的位 置，最后在疏基上通过交联剂连接上生物素， 生物素取代的磷酸肽由亲和素色谱柱分离。这 种方法只适合于磷酸化丝氨酸和磷酸化苏氨酸 磷酸肽的取代。
图7-4是这一方法的简要示意图。
(2) PSD-MALDI-MS分析 源后衰变(PSD)是指发生在源内离子化之后的分子 裂解，也就是 MALDI-TOF-MS 离子源内产生的离子在真 空无电场飞行管道飞行过程中发生结构断裂，丢失一 个中性分子后产生了碎片离子。由于是在无电场区飞 行,所以碎片离子都具有与其前体离子相同的飞行速度， 但由于质量小，所以其动能比前体离子的动能小，称 为亚稳离子。由于前体离子和碎片离子具有相同的表 观质荷比，飞行速度也一样，所以将同时到达线性检 测器．在线性TOF分析器中，不能分辨碎片离子与前体 离子。而碎片离子与前体离子存在动能差异，所以在 具有反射器的 MALDI-TOF-MS 质谱仪上可以通过改变反 射器电压分析到碎片离子。
蛋白质磷酸化是最常见、最重要的共价修饰方式。在 哺乳动物细胞周期中，大约有1／3的蛋白质发生过磷酸 化的修饰，在脊推动物基因组中，有5％的基因编码的蛋 白质是参与磷酸化和去磷酸化过程的蛋白激酶(kinase) 和磷酸(酯)酶(phosphatase)。
蛋内质的磷酸化和去磷酸化这一可逆过程几乎调节 着生命活动的所有过程，包括细胞的增殖、发育和分化 ， 细胞骨架调控、细胞凋亡等。