酶工程 动植物细胞培养产酶

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在原生质体制备过程中, 为了防止原生质体被破坏, 一般要采用用高渗溶 液, 以利于完整原生质体的释放。配制高渗溶液的溶质称为渗透压稳定剂。 常用的渗透压稳定剂有甘露醇、山梨醇、蔗糖、葡萄糖、盐类等。
20世纪80年代以后,植物细胞培养技术迅速发展, 已成为 生物工程研究开发的新热点。
主要内容
1. 植物细胞的特点 2. 植物细胞培养的特点 3. 植物细胞培养的工艺条件及其控制
植物细胞培养的工艺流程 植物细胞培养的培养基
4. 植物细胞培养产酶的工艺过程
一、植物细胞的特点
植物细胞结构
动物细胞模式图
动物细胞
获得:离心分离技术、杂交瘤技术、胰蛋白酶消化处理技术 等
培养方式:悬浮培养、贴壁培养和微载体培养等
植物细胞
获得:机械捣碎、酶解和诱导愈伤组织的方法 培养方式:固体培养、液体浅层培养、液体悬浮培养等,在
次级代谢物的生产过程中通常采用液体悬浮培养。
第一节 植物细胞培养产酶
植物是各种色素、药物、香精和酶等天 然产物的主要来源:
三、植物细胞培养的工艺条件及其控制
(一) 植物细胞培养的工艺流程
一般为:
外植体-----细胞的获取-----细胞培养----分离纯化-----产物
1. 外植体的选择与处理
外植体:指从植株取出, 经过预处理后, 用于植物组织和细胞 培养的植物组织(包括根、茎、叶、芽、花、果实、种子 等) 片段或小块。
2. 植物细胞的获取
直接分离法, 愈伤组织诱导法 原生质体再生法
直接分离法:
植物细胞可以直接从外植体中分离得到。分为机械法和酶 解法两种。
1)机械捣碎法分离植物细胞是先将叶片等外植体轻轻捣碎, 然 后通过过滤和离心分离细胞。
优点: 获得的植物细胞没有经过酶的作用, 不会受到伤害; 不需要经过质壁分离, 有利于进行生理和生化研究。
1. 提高产率 2. 缩短周期
植物细胞生长的倍增时间一般为12~60h, 一般生产周期15~30天。
3. 易于管理, 减轻劳动强度
不受地理环境和气候条件等的影响。
4. 提高产品质量
主要产物的产率较高, 杂质较少; 减少环境中有害物质的污染和微生物、昆虫等的侵蚀; 产物易于分离纯化。
5. 其他
对剪切力敏感、生产周期长等缺点; 许多植物细胞的生长和代谢需要一定的光照。
核苷酸、酶等 多肽药、酶等
三者之间的差异主要有:
•植物细胞>动物细胞>微生物细胞。 •动物细胞、植物细胞的生产周期比微生物长。 •植物细胞和微生物细胞的营养要求较简单。 •植物细胞的生长以及次级代谢物的生产要求一定的 光照。 •植物细胞和动物细胞对剪切力敏感。 •植物、微生物和动物细胞的主要目的产物各不相同。
二、 植物细胞培养的特点
植物细胞培养技术首先从植物外植体中 选育出植物细胞, 再经过筛选、诱变、原 生质体融合或D N A 重组等技术而获得 优良的植物细胞。然后, 在人工控制条件 的植物细胞反应器中进行植物细胞培养, 从而获得各种所需的产物。
植物细胞培养生产各种天然产物, 与从植物中提 取分离这些物质相比, 具有如下显著特点。
原生质体再生法
原生质体再生法: 原生质体(protoplast) 是除去细胞壁后得到的微球体。
植物原生质体的获得:可从培养的植物单细胞、愈伤组织和植物的组织、 器官中获得。
分离方法:机械分离法和酶解法两种, 一般都采用酶解法。
酶解法:植物细胞的细胞壁的基本成分是纤维素、半纤维素和果胶物质。 为使细胞壁降解释放原生质体, 必须使用能催化纤维素、半纤维素和果胶物 质水解的酶制剂, 最常用的有纤维素酶和果胶酶混合物。
缺陷: 由于受到机械的作用, 细胞结构会受到一定的伤害, 获得完整的细胞团或细胞数量少, 其使用不普遍。
2)酶解法分离细胞是利用果胶酶、纤维素酶等处理外植体, 分 离出具有代谢活性的细胞。该法不仅能降解中胶层, 而且 还能软化细胞壁。所以用酶解法分离细胞的时候, 必须对 细胞给予渗透压保护, 如甘露醇等。
植物、动物、微生物细胞的特性比较
细胞种类 植物细胞 微生物细胞 动物细胞
细胞大小/um 200~300
1~10
1Biblioteka Baidu~100
倍增时间/h ﹥12
0.3-6
﹥15
营养要求 简单
简单
复杂
光照要求 对剪切力
大多数要求 敏感
不要求 大多数不敏感
不要求 非常敏感
主要产物
色素、药物、 醇、有机酸、氨 疫苗、激素、 香精、酶等 基酸、抗生素、 单克隆抗体、
目前已知的天然化合物超过30 000种, 其中80 % 以上来自于植物; 从植物中得到的最普遍又必不可缺 的药物有17 类, 我国普遍使用的中草药及其制剂80 % 以上来源于植物,美国每年使用的植物来源的药物 超过30 亿美元; 全世界每年使用的植物来源的芳香化 合物的价值超过15 亿美元。
研发历史
愈伤组织诱导法
愈伤组织是一种能迅速增殖的无特定结构和功能的薄壁细 胞团。
通过愈伤组织诱导法获得植物细胞的基本过程:
将选择好含有一定量的生长素和分裂素的液体培养基加入 0.7 % ~0.8 % 的琼脂, 制成半固体的愈伤组织诱导培养基。 灭菌、冷却后, 将上述外植体植入诱导培养基中, 于25℃左 右培养一段时间, 即从外植体的切口部位长出小细胞团, 此 细胞团称之为愈伤组织。一般培养1~3 周后, 将愈伤组织 分散接种于新的半固体培养基中进行继代培养, 以获得更多 的愈伤组织。
选择:首先要选择无病虫害、生长力旺盛、生长有规则的植 株, 如果植物细胞是用于生产次级代谢物, 则需从产生该次 级代谢物的组织部位中切取一部分组织, 经过清洗, 除去表 面的灰尘污物。
操作:将上述外植体切成0. 5~1c m 左右的片段或小块, 用 70 % ~75 % 乙醇溶液或者5 % 次氯酸钠、10 % 漂白 粉、0. 1 % 升汞溶液等进行消毒处理, 再用无菌水充分漂 洗, 以除去残留的消毒剂。
1902 年, 哈勃兰德( Haberlandt) 首次提出分离植物 单细胞并将其培养成植株的设想, 100 年来, 随着培养 基的研制和培养技术的发展, 已经从200 多种植物中 分离出细胞, 不仅可以通过细胞的再分化生成完整的 植株, 而且可以通过细胞培养, 获得400 多种人们所需 的各种物质。
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