猪细小病毒1

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母猪六种繁殖障碍病鉴别诊断与防制

母猪六种繁殖障碍病鉴别诊断与防制

母猪六种繁殖障碍病的鉴别诊断与防制一、概况常见的母猪繁殖障碍病有乙型脑炎、细小病毒病、伪狂犬病、蓝耳病、猪瘟、布鲁菌病等。

二、母猪胎儿的发育1、30天之前,胚胎分裂发育,胎儿未成形,若感染病毒、细菌,胎儿死亡被母体吸收,母猪会出现重新发情等;2、30天~50天之间,胎儿分化成型,但器官尚未形成,若此时感染病毒、细菌,则形成木乃伊胎;3、50天~70天,胎儿组织器官形成,但此时胎儿免疫系统尚不具免疫能力,若感染病毒、细菌,则想成死胎;4、70天后,由于胎儿免疫系统形成且具备免疫应答能力,若此时感染,则产弱仔或先天性疾病仔猪。

三、鉴别从流行特点1、细小病毒感染:猪是已知的惟一易感动物,不同年龄、性别的家猪和野猪都可感染,病猪和带毒猪是主要传染源,病毒可通过胎盘传给胎儿,感染母猪所产死胎、活胎、仔猪及子宫分泌物中均含有高滴度的病毒。

本病主要经消化道、呼吸道传播,常见于初产母猪,一般呈地方流行性或散发,一旦发生本病后,猪场可能连续几年不断出现母猪繁殖障碍。

2、猪伪狂犬病:多种动物易感,妊娠母猪和新生仔猪最易感,感染率高,发病严重,病猪、带毒猪以及带毒鼠类为重要传染源,健康猪与病猪、带毒猪直接接触可感染本病。

本病亦可经皮肤伤口传染,猪配种时也可传染本病,也可经空气传播。

该病流行期长,无季节性,仔猪死亡率高,母猪多为流产;3、乙型脑炎:本病为自然疫源性传染病,初产母猪、仔猪和育肥猪多发,人畜共患,夏秋季节多见,主要通过带病毒的蚊虫叮咬而传播,散发,感染率高,发病率低,绝大多数在病愈后不再复发成为带毒猪;4、猪瘟:猪是本病惟一的自然宿主,不同品种、年龄和性别的猪均可感染,此病无季节性,发病率、死亡率均高,常呈流行性,流行期长,可垂直传播,当感染妊娠母猪时,起初常不被察觉,但病毒可侵袭胎儿,造成死产或出生后不久即死去的弱仔,分娩时排出大量的猪瘟病毒;5、蓝耳病:本病只感染猪,各种年龄和品种的猪均易感,但主要感染妊娠母猪和新生仔猪,仔猪死亡率高,母猪无死亡,感染母猪可明显排毒,如鼻分泌物、粪便、尿均含有病毒。

《猪细小病毒感染》课件

《猪细小病毒感染》课件
通过补充葡萄糖、电解质溶液等,维持猪只正常的生理功能 。
调节酸碱平衡
根据猪只酸碱平衡状况,适当使用酸碱调节剂进行治疗。康复猪的管理 Nhomakorabea01
02
03
隔离饲养
将康复猪只隔离饲养,避 免与易感猪接触,防止病 毒再次感染。
加强饲养管理
提供营养均衡的饲料,保 持猪舍清洁卫生,提高猪 只的抵抗力。
定期检测
对康复猪进行定期检测, 确保病毒不再存在。
繁殖障碍
感染猪细小病毒会导致母猪出现繁殖障碍,如发情期延长、配种率降低等。
感染猪细小病毒会导致胚胎发育不良,出现死胎、畸形胎等问题,影响繁殖效率。
感染猪细小病毒会影响母猪的卵巢和子宫健康,导致母猪提前淘汰或生产能力下降 。
死亡率高
感染猪细小病毒会导致母猪和 仔猪的死亡率上升,给养殖业 带来巨大经济损失。
疗并发症。
谢谢聆听
《猪细小病毒感染》 PPT课件
目录
• 猪细小病毒感染概述 • 猪细小病毒感染对猪场的影响 • 猪细小病毒感染的预防与控制 • 猪细小病毒感染的治疗 • 猪细小病毒感染的案例分析
01 猪细小病毒感染概述
定义与特点
定义
猪细小病毒感染是由猪细小病毒 引起的一种传染病,主要影响母 猪和仔猪。
特点
该病毒具有高度传染性,主要通 过直接接触和空气传播,可在猪 群中迅速传播。
案例三:某实验室感染情况
01
感染情况概述
某实验室进行猪细小病毒感染实验时,由于实验操作不慎导致感染。
02
临床症状
感染者出现发热、头痛、咳嗽等症状,严重者可出现肺炎、心脏疾病等
并发症。
03
防控措施
及时采取隔离治疗措施,对实验室进行全面消毒,加强实验室安全管理

猪细小病毒PPT1株免疫原性研究

猪细小病毒PPT1株免疫原性研究

变收 获 毒 液 , 测 定 其 T I 并 CD。 。
1 材料 和方 法
11 材 料 .
1 . 病 毒 液 的灭 活 及 测 定 将 增 殖 的 病 毒 作 5 .2 2 倍 体 积 浓 缩 后 , 终 浓 度 01%加 入 甲醛 , 加 边 按 . 5 边 摇 晃。置 3 7℃振 荡 灭 活 7 , 灭 活 毒 液 样 品 稀 2h 取
11 毒 种 猪 细 小 病 毒 P T .. 4 P I株 , 美 国 的 南 G yl 士 赠送 。 oa 博
I2 方 法 .
带 来 严 重 的 经 济 损 失 。预 防 本 病 的 唯 一 办 法 是
应 用 疫 苗 。经 过 几 年 的 研 究 应 用 , 细 小 病 毒 油 猪 乳 剂 灭 活 疫 苗 的 工 艺 也 在 不 断 改 进 。 本 试 验 用
Z HANG iW ANG — iYAN n — u . L. Lil。 Mi g h a HAN i We
(ini stt A i l ubn r n eeia ce c, ini 3 0 , hn) Taj I tueo nma H sa dyadV tr t SineTaj 0 12 C ia nni f nT n 1

要 : P T 株制 备猪 细小病毒油乳剂灭活疫苗 , 用 P1 并将其 与市售灭活疫苗免疫豚 鼠, 定期采集 , 血清用血凝抑制 试验 测定
抗 体 效 价 。试 验 结 果 表 明 , l 在 P — 5 胞 上 病 毒 增 殖 效 价 可 达 到 1 6 1 CD ] L 两 种 疫 苗 二 免 后 1 , 体 效 价 P 株 K l细 . x 0 T I m , 9 4d 抗 均 可 以 达 到 8 o g。 l 关 键 词 : 细 小 病 毒 ; 疫 原 性 ; 体 猪 免 抗

猪病毒性传染病:猪细小病毒病

猪病毒性传染病:猪细小病毒病

猪病毒性传染病:猪细小病毒病病原本病是由猪细小病毒感染所致。

其病毒粒子直径为20nm左右。

能凝集猴、豚鼠、小鼠、鸡、狗、猫、猪等动物和人O型红细胞,但不能凝集牛和绵羊红细胞。

猪细小病毒通常在扁桃体、颌下淋巴结、肾、肝、脊髓和肠系膜淋巴结内增殖。

用免疫荧光技术可以查出组织细胞浆和胞核内的病毒包涵体。

猪感染后3-7天开始通过粪便排出病毒,以后呈不规则排毒。

感染猪的脏器、分泌物、排泄物以及种公种的精液中都含有病毒,猪感染后6-10天,即可产生高滴度的抗体,经感染前后抗体水平监测比较即可发现猪群的感染状况。

猪细小病毒对各种不良环境因素具有较强的抵抗力。

70℃2h、胰酶及pH3-9时都不能破坏其感染力。

2%NaOH热溶液能杀灭该病毒。

流行特点1.猪是已知的惟一的易感动物。

不同年龄、性别的家猪和野猪都可感染,尤以初产母猪为典型。

2.传染源主要是感染本病毒的种公猪和母猪。

带毒猪经粪、尿、鼻涕、唾液、精液以及死胎、弱胎、胎衣、胎水向环境排毒,污染水源、饲料、土壤、猪舍等。

病毒一般可在猪舍存活数月。

阴性猪场一旦引入带毒猪,通常于3个月内全场所有的猪只都会被感染,后呈地主流行或散发,并持续多年。

3.本病既可水平传播,又可垂直传播。

一般经口鼻为主传播。

带毒种公猪也可通过交配传染母猪,怀孕母猪也可通过胎盘感染胎猪。

鼠类也可机械性带毒散毒。

4.本病可见于一年四季(尤其是规模化猪场),但农村散养为主的地区,仍为春、秋两季产仔时多见。

临床症状仔猪和母猪感染后通常表现为亚临床感染。

主要症状为病猪母源性繁殖障碍。

妊娠初期(10-30天)的母猪感染后,可能重新发情而屡配不孕,或窝产仔数明显减少。

妊娠中前期(30-50天)感染,分娩时大部分胎儿为木乃伊。

回顾性分析可知,怀孕过程中怀孕母猪腹围逐渐缩小。

妊娠中期(50-60天)感染时,大部分胎儿为死胎。

妊娠70天时感染,母猪主要表现为流产。

妊娠70天后感染,此时的胎儿已具备产分免疫应答能力,能产生抗体,因此不宜送检以分离病毒。

一例猪细小病毒的诊治与体会

一例猪细小病毒的诊治与体会

死 胎 、 弱 胎 为特 征 ,疑 似 猪 细 小 病 毒
病 ,取 流 产 胎 儿 组 织病 料 , 处 理 后 接
种 P K一1 5传 代 细 胞 .产 生 了明 显 的 细
保存备用 。 22 病毒 分 离 培 养 .2 .
取 2 . 理 的病 料 上 清液 2 , . 1处 3 mL 接种于 P 1 K一 5传 代 细 胞 , 3  ̄ 7C、5 %
猪 场 严 格 实 行 程 序 化 免 疫 ,后 备 种猪配种前 l 5天 进 行 免 疫 接 种 。 经 产 母 猪在产后 l 5天 进 行 免 疫 接 种 ,每 年 接 种 2次 : 种 公 猪 每 年 春 秋 两 季 进 行 免 疫 接 种 , 免 疫 方 法 :猪 细 小 病 毒 灭
1 4 口匣嗣匦盈囤 21. 0 01 9
离 ,mi。 取 上 清 ,经 酚 : 仿 : 戊 l f5 n 氯 异 醇 = 5 : 4 : 再 次 抽 提 后 用 2倍 体 积 2 2 1 的 异 丙 醇 沉 淀 , 一 O 放 置 3mi, 2℃ 0 n 10 0/ i 2 0 r n离 心 1ri,7 %乙 醇 洗 涤 m 0 n 0 a 2次 , 干 燥 ,加 入 2 1 0 L超 纯 水 溶 解 , x 贮存于一0 2 ℃备 用 。
带 清 晰 .无 非 特 异 性 扩 增 出 现 , 与 预
期 片 段 大 小 相 一 致 ( 图 1 , 同 时 结 如 )
检 疫 等 综 合 防 治 措 施 .取 得 了 较 好 的 效 果 ,没 有 再 出现 新 的 病 例 。
参 考 文献 :
猪 细 小 病 毒 可 引起 母 猪 繁 殖 障 碍 , 但 只 根 据 这 些 临 床 症 状 常 无 法 判 断 病 因 。 因 猪 伪 狂 犬 、猪 蓝 耳 病 、 乙 脑 、 猪 瘟 、衣 原 体 病 等 也 可 引 起 繁 殖 障 碍 症 状 ,所 以 必 须 进 行 实 验 室 检 测 才 能 确 诊 。 本 次 诊 断 以 无 菌 采 集 的 流 产 和 死 胎 胎 儿 脏 器 组 织 为 病 料 ,经 无 菌 处

十二、猪细小病毒检测方法

十二、猪细小病毒检测方法

十二、猪细小病毒检测方法猪细小病毒血凝抑制试验操作方法(一)材料准备1.抗原:猪细小病毒浓缩抗原2.PPV阳性及阴性血清3.被检血清:自被检猪的前腔静脉血或自耳静脉采血分离血清。

4.红细胞:按抗凝剂与血液1:4的比例心脏采集豚鼠血液,用PBS洗三次,沉积红细胞配成0.5%悬液备。

5.稀释液:用灭菌的PH7.2磷酸盐缓冲液(PBS)。

6.25%白陶土:取白陶土25克,置离心瓶中,加入适量1mol/L盐酸溶液,充分搅匀,2 000转/分钟离心10分钟,弃上清,再加1mol/L盐酸溶液,搅匀,离心,反复洗三次,沉淀白陶土,用0.15mol/L生理盐水100毫升配成25%悬液,然后用5mol/L氢氧化钠溶液调pH7.2左右,高压灭菌,置4℃备用,保存期不超过半年。

7.器材:96孔U型滴定板或V型滴定板,25微升稀释棒,25微升滴管,微量振荡器,普通离心机。

(一)试验操作HA:用滴管在滴定板上从第一孔至试验所需稀释倍数孔,每孔滴加稀释液25微升于第一孔再滴加抗原25微升,用稀释棒从第一孔开始依次稀释。

置微量振荡器上振荡15秒,最后每孔滴加0.5%豚鼠红细胞25微升,振荡30分钟,置室1小时判定并记录结果。

HI:用滴管在滴定板上从第一孔至所需稀释倍数孔各加稀释液25微升,于第一孔滴加被检测血清25微升,然后每孔加4单位抗原25微升,振荡15秒,置4℃13小时或室温4小时,每孔加0.5%的豚鼠红细胞悬液25微升,振荡30秒,置室温1小时判定结果。

以完全抑制的最高稀释倍数做为HI价。

同时设已知阳性血清、已知阴性血清、不加抗原的被检血清及抗原、红细胞对照。

抗原对照亦即第二滴定,复核使用单位。

(二)判定标准及注意事项1.判定时先检查对照是否正确,唯有对照各孔准确方可证明操作和使用材料无误。

2.红细胞凝集现象的判定(1)红细胞均匀的平均铺于孔底者可判为“++++”。

(2)基本上与(1)相同,但边缘有下滑皱缩者为“+++”。

猪细小病毒病的症状 猪细小病毒病的诊治与预防 - 养猪技术

猪细小病毒病的症状 猪细小病毒病的诊治与预防 - 养猪技术

猪细小病毒病的症状猪细小病毒病的诊治与预防-养猪技术猪细小病毒是一种只能在来源于猪的生长分裂旺盛的细胞上增殖,其体外复制是杀细胞性的,细胞病变表现为细胞隆起、变圆、核固缩和溶解,最后许多细胞碎片黏附在一起,使受感染的细胞单层外形不整,呈破布条状。

另外,不同毒株间存在培养温度依赖性差异,从而可以解释不同分离株在猪体内的复制能力和毒力差异的现象。

传染源主要来自感染细小病毒的母猪和带毒的公猪,后备母猪比经产母猪易感染,病毒能通过胎盘垂直传播,感染母猪所产的死胎、仔猪及子宫内的排泄物中均含有很高滴度的病毒,而带毒猪所产的活猪可能带毒、排毒时间很长,甚至终生。

下面就具体来了解一下:猪细小病毒病的症状猪细小病毒病的诊治与预防。

1、患病症状这种病毒主要攻击成年猪的生殖器官及生长旺盛的细胞,如精子,对于胎盘中的仔猪主要攻击仔猪的肝、脏、肺,以及生殖器官,不但具有很强的致命性还有很高的感染性。

患有此种病毒,对于成年猪来说没有什么明显的特征,但过了数个月之后成年猪也会发生明显的特征反应,母猪表现为不孕不育,子宫溃烂,身体不适,严重时会出现死亡。

公猪表现为性欲底下,身体不适,严重将会导致死亡。

对于胎盘中的仔猪,情况比较严重,出现流产,生出死猪、畸形胎、病猪或生理虚弱的仔猪,有些猪在生出不久就夭折,还有出现木乃伊的现象。

只有少数猪在生出之后才能免于一死,幸运存活,绝大多数猪都难逃厄运,给养殖者带来巨大的经济损失。

2、诊断猪患上细小病毒的可能性总会存在,为了及早发现患病猪,应该经常对猪群进行抽样检查,以防病毒在猪群内传播,造成巨大损失。

对猪细小病毒的诊断方法有很多,这里笔者就简单介绍几种经常用到的,主要有血清学诊断包括了血凝试验和血凝抑制试验、血清中和试验、酶联免疫吸附试验、免疫荧光技术、乳胶凝集试验。

分子生物学诊断技术包括了PCR检测技术、核酸探针技术、单克隆抗体技术、基因芯片技术。

这些技术在检测中准确率高,速度快,但是成本相对来说比较高。

猪细小病毒(PPV)

猪细小病毒(PPV)
猪细小病毒(PPV)
• 讲课人 动医101
• 张云
主要讲解内容
• 1,该病毒主要特征 • 2,致病性 • 3,该病毒的培养 • 4,抗原性及传播 • 5,微生物学诊断 • 6,防控
1.猪细小病毒主要特征
• 病毒颗粒无囊膜,直径20-23nm • 呈20面体对称 • 基因组为单分子线状DNA • 病毒粒子外观呈六角形或圆形 • 核衣壳由32个壳粒组成
弱毒疫苗:在细胞培养上经过50多代已驯化成为一种活疫苗。将疫苗 经口服、鼻内接种血清阴性的怀孕小母猪不引起胎儿感染,但子宫内 接种对胎儿有致病性。 灭活疫苗:细胞培养的病毒用β丙内酯、福尔马林、乙酰乙烯亚胺 (AEI)以及二乙烯亚胺(BEI)灭活,加入佐剂如氢氧化铝胶可制成灭活 疫苗。用β丙内酯灭活病毒,加氢氧化铝佐剂而制成的灭活疫苗可使 猪产生HI抗体,至少持续4个月 。
不同阶段的木乃伊和死胎
该病的防控
• 猪细小病毒感染,目前无特效药进行治疗。为避免该病的 发生,只能采取预防措施,主要是加强饲养管理、环境消 毒和疫苗免疫。疫苗目前主要分灭活苗和弱毒疫苗。 • 坚持经常性消毒,用0.5%漂白粉或1%烧碱可杀灭病原 体,减少猪与病毒的接触 • 种群管理,加强检疫工作,引进种猪,要隔离观察并检疫, 从未发生过猪细小病毒病的猪场和地区,应该杜绝引进病 猪和带毒猪,发病猪场应特别防止小母猪在第1胎受孕时 被感染,或把其配种期拖延到9月龄,此时母源抗体己消 失,自动免疫力已经产生,经免疫后方可正常饲养。
诊断
• 如果发生流产,死胎,胎儿发生异常情况而母猪没有明显 的临床症状同时有其他症状确定是一种传染病时,应该考 虑到本病的可能性,但最后确诊必须通过实验室检验。快 速诊断可用标准化的荧光抗体检测胎儿冰冻切片。 • 另外还有病毒的培养和鉴定 • 血清学诊断方法中有:血清中和试验,血凝抑制试验,酶 联免疫吸附试验,琼脂扩散试验等均可检测本病毒

猪细小病毒病

猪细小病毒病

流行病中心 2003/07/28
13
临床症状
• 病猪的临床症状和病程随年龄不同而有很大差 异。 • 哺乳仔猪最为敏感,15日龄以内的仔猪常表现 为最急性型,病程不超过72h,死亡率100%, 主要表现为体温升高、拉稀、发抖、运动不协 调、流涎、颈部肌肉僵硬、四肢划水样运动, 最后昏迷死亡。
流行病中心 2003/07/28
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病理变化
妊娠初期(1-70日龄)感染胎儿出现死
亡、木乃伊化、骨质溶解、腐败等病理变 化,母猪流产,有轻度子宫内膜炎变化, 胎盘部分钙化,胎儿在子宫内被溶解吸收。 大多数死胎、死产、弱仔皮肤皮下充血或 血肿。 胸膜腔积有淡黄色或淡红色渗出液。
流行病中心 2003/07/28
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病理变化
流行病中心 2003/07/28
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灭活疫苗
细胞培养的病毒用福尔马林、乙酰乙烯
亚胺等灭活,加入佐剂制成灭活疫苗。 最为有效的控制方法。
流行病中心 2003/07/28
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流行病中心 2003/07/28 6
病毒的血凝性
PPV能凝集鼠、豚鼠、鸡、鹅和人O型红
细胞。 55℃经30min加热处理病毒凝集红细胞的 能力均无明显的改变,75 ℃以上,病毒 的血凝价几乎全部消失; 弱酸性到中性的介质适于血凝特性的保 持。
流行病中心 2003/07/28 7
病毒的培养
病毒感染后主要症状表现为母源性繁殖
失能,感染母猪可重新发情而不分娩或 只产少数仔猪、大部分死胎、弱仔、木 乃伊胎等。怀孕中期胎儿死亡后被母体 吸收,唯一可见母猪腹围减少。在同窝 仔猪中有木乃伊存在时,可使怀孕期和 分娩间隔延长,易造成外表正常的同窝 仔猪死亡。

猪细小病毒油乳剂灭活疫苗

猪细小病毒油乳剂灭活疫苗
采用酶联免疫吸附试验( ELISA)检测疫苗免疫后 的抗体水平,以判断疫苗 的免疫效果。
PCR检测
通过PCR方法检测疫苗接 种后猪体内病原的数量, 以评估疫苗的防疫效果。
临床效果观察
发病率和死亡率
观察疫苗接种猪群与未接种猪群 的发病率和死亡率差异,评估疫
苗的保护效果。
增重和饲料转化率
比较疫苗接种猪群与未接种猪群的 生长性能,如增重和饲料转化率等 ,以评估疫苗对生产性能的影响。
THANKS
谢谢您的观看
接种剂量与接种途径
接种剂量
按照疫苗说明书推荐剂量进行接种,一 般为1-2ml/头份。
VS
接种途径
肌肉注射,注射部位可选颈部或后腿肌肉 丰满处。接种前应充分摇匀疫苗,确保接 种剂量准确。
接种后观察与护理
01
观察时间
接种后应持续观察猪群状态,至少观察3-5天,以确保无异常反应发生

02
观察内容
注意观察猪群的精神状态、食欲、呼吸、排泄等方面,如出现异常情况
在疫苗研发过程中,需要对疫苗的安全性、有效性和质量进 行全面评价,确保疫苗对目标动物具有良好的免疫保护效果 ,同时符合相关法规和标准要求。
02
疫苗特点与优势
高效预防猪细小病毒
高抗原含量
疫苗中含有高浓度的猪细小病毒抗原 ,能够刺激机体产生强烈的免疫反应 ,有效预防猪细小病毒感染。
交叉保护
疫苗对猪细小病毒不同血清型具有一 定的交叉保护效果,降低因病毒变异 导致的免疫失败风险。
应及时处理。
03
护理措施
保持圈舍干燥、通风良好,避免应激因素。对于出现轻微反应的猪只,
可适当增加营养和护理,一般可自行恢复。对于严重反应的猪只,应及

简述猪细小病毒检测方法的研究情况

简述猪细小病毒检测方法的研究情况

简述猪细小病毒检测方法的研究情况1. 引言1.1 研究背景猪细小病毒是一种严重危害猪类健康的病原体,能够引起猪的呼吸道感染和消化道症状。

该病毒对猪的生长发育和生产性能造成严重影响,给养殖业造成了巨大的经济损失。

及时有效地检测猪细小病毒具有重要的意义。

当前主要的病毒检测方法包括PCR技术检测、ELISA技术检测、试纸条快速检测等。

每种方法都有其特点和适用范围,能够为猪细小病毒的快速检测提供有力支持。

还有一些新兴检测方法正在不断发展和完善,也为病毒检测领域带来了新的思路和可能性。

在这样一个背景下,研究猪细小病毒检测方法的优化和创新具有重要的现实意义和理论意义。

希望通过本文的介绍,可以更好地了解目前猪细小病毒检测领域的研究情况,为日后的深入研究和技术应用提供参考和支持。

1.2 研究意义猪细小病毒是一种常见的猪传染病,能导致猪群集体发病,严重影响养殖业的发展。

研究猪细小病毒检测方法具有重要的意义。

及早发现和准确检测猪细小病毒,能够有效控制疾病的传播,帮助防疫部门及时制定相应的防控措施,减少疫情对养殖业的影响。

研究猪细小病毒检测方法,可以提高疫情的监测水平,加强对潜在疫情的预警能力,有利于提高养猪业的生产效益和经济效益。

不断探索新的检测方法也可以促进科学研究的进展,为疫情防控提供更多技术支持和科学依据。

研究猪细小病毒检测方法对于提升养殖业的安全生产水平、帮助疫情防控工作具有重要意义。

2. 正文2.1 病毒检测方法病毒检测方法是研究猪细小病毒的关键步骤之一,目前常用的检测方法主要包括PCR技术检测、ELISA技术检测、试纸条快速检测和新兴检测方法。

PCR技术检测是一种高灵敏度、高特异性的检测方法,可以快速准确地检测出猪细小病毒的存在。

通过PCR技术可以扩增病毒基因组中的特定片段,从而进行病毒的检测和鉴定。

ELISA技术是一种常用的免疫学检测方法,通过检测样品中的病毒抗体或抗原来间接或直接检测猪细小病毒的存在。

猪细小病毒的症状和治疗防控

猪细小病毒的症状和治疗防控

猪细小病毒的症状和治疗防控猪细小病毒是一种传染病,会引发母猪繁殖机能的障碍,这个猪病在后期其实没有什么特别明显的症状,就是因为这一点,让很多篇养猪户朋友都吃过大亏。

下面一起学习了解下猪细小病毒的症状以及防控治疗。

猪细小病毒是一种传染病,会引发母猪繁殖机能的障碍,这个猪病在后期其实没有什么特别明显的症状,就是因为这一点,让很多篇养猪户朋友都吃过大亏。

下面一起学习了解下猪细小病毒的症状以及防控治疗。

一、猪细小病毒病临床症状猪细小病毒病可以导致妊娠母猪繁殖异常或者失去繁殖能力。

患病母猪常发生不孕、流产,产死胎、木乃伊胎、畸形胎或者弱胎。

部分妊娠母猪在染病初期会有体温升高,也有可能造成屡配不孕、发情异常等。

未妊娠母猪和公猪感染此病,通常没有明显的临床症状,公猪的精液带毒,不影响受精率。

二、猪细小病毒病的防控和治疗1.免疫接种灭活疫苗有猪细小病毒油乳剂灭活疫苗和猪细小病毒氢氧化铝灭活疫苗。

猪细小病毒油乳剂灭活疫苗肌肉注射,种公猪和母猪要在6月龄和配种前半个月进行接种。

成年公猪和经产母猪每年要接种1次,但是此疫苗不适合妊娠母猪。

氢氧化铝灭活疫苗可在母猪妊娠前几周接种,可以保证妊娠期都有抗体。

初产母猪在6月龄时母源抗体会消失,应在这时接种疫苗。

如果不打算马上配种,可以先不免疫,在7月龄后再进行免疫。

对于发病的猪场,每年要进行2次抗体检测,对抗体浓度低的猪要及时补接疫苗。

2.加强饲养管理猪场按时清扫卫生,定期对猪舍和饲喂用具消毒。

猪场应实行封闭式管理,对来往的人员和车辆进行消毒。

猪场应坚持自繁自养模式,如果必须引种的话,一定要从非疫区引进,而且种猪需要有检疫证明。

新引进来的种猪需要先隔离一段时间,观察无问题后进行合群。

综上所述,猪细小病毒病传播率高、发病广泛,其对养猪业造成的影响巨大,严重影响养猪业效益。

此病暂无特效药,所以免疫接种是最有效的防控手段。

养殖人员应提高防病意识,积极采取措施预防此病,制定合理的消毒计划和免疫计划,降低此病的发病率。

猪细小病毒

猪细小病毒

猪细小病毒(Porcine parvovirus,PPV)是一类小DNA病毒,是引起猪繁殖障碍的主要病原之一,其危害主要表现为受感染的母猪,特别是初产母猪及血清学阴性经产母猪发生流产、不孕、产死胎、畸形胎、木乃伊胎及弱仔等。

该病毒对理化因素有很强的抵抗力,广泛分布于世界各地并在大多数猪场呈地方性流行,严重地影响着养猪业的发展,该病的严重危害受到了国内外许多学者的关注,对PPV诊断方法及免疫防制的研究成为了热点之一。

猪细小病毒感染可依据临床症状和流行病学作出初步诊断,一般认为,如果仅妊娠猪发生流产、死胎、木乃伊胎、胎儿发育异常,同时有证据表明是传染性疾病时,则应考虑到PPV感染的可能,但进一步确诊必须进行实验室诊断。

自1967年,Cartwright等首次报道PPV病以来,有关该病诊断方法的研究报告较多,从最初的病毒分离鉴定,到血凝及血凝抑制试验、酶联免疫吸附试验等免疫学方法,直到核酸探针、聚合酶链式反应等分子生物学技术应用到PPV病的诊断中。

病毒分离和鉴定用于诊断PPV感染的最大优点是结果准确可靠,可以作为最后确诊。

用于分离PPV的病料,一般为流产或死产胎儿的脑、肾、肝、肺、睾丸、胎盘及肠系膜淋巴结等,其中以肠系膜淋巴结和肝脏的分离率最高。

虽然此方法是最准确的诊断方法,但是其费时费力,并且需要一定的技术条件和设备,另外,其感染力会随着胎儿死亡时间而降低从而限制了临床应用;红细胞凝集试验(HA)操作简便易行,且能进行快速、大量的诊断,但是其灵敏度低、特异性不强,只能作为辅助诊断方法。

血凝抑制(HI)试验是检测PPV抗体最常用的经典方法,一般采用试管法和微量法。

利用HI试验检测人工感染PPV的猪,发现感染后5d即可检测到相应抗体,12~14d 抗体滴度高达1024~4096,并能持续多年检出抗体。

待检血清进行HI试验时需要首先进行热灭活处理,然后再用红细胞吸附,以除去血清中的非特异性血凝素,进一步用高岭土吸附以除去或减少血清中非特异性抑制因子。

2021-2022年河南省猪细小病毒1~7型检测与分析

2021-2022年河南省猪细小病毒1~7型检测与分析

2021-2022年河南省猪细小病毒1~7型检测与分析郭全海;许夕雅;石蒙蒙;杨寒;高冬生;王永生;陈陆【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2024(45)6【摘要】旨在了解猪细小病毒1~7型(PPV1~PPV7)在河南省的流行情况。

利用PCR检测了2021-2022年河南省猪场送检的748份样品,并对检测数据进行了分析。

结果表明,PPV1/2/3/5/6/7在河南省各地区一年四季广泛流行,而秋、冬季节是感染高峰期,PPV2(16.04%)的感染率最高,PPV7(15.11%)次之。

产房仔猪未检出PPV1/3/5,PPV2/6/7在各生长阶段猪群中均有检出,患呼吸系统疾病的保育和育肥猪中PPV各型检出率均较高,尤以PPV2常见。

PPV2和PPV7在口腔液、血样、肺脾淋巴结中检出率均较高,血样中较低,PPV3常存在于血清和组织中,PPV5多见于口腔液,PPV6多见于血样。

研究证实,除PPV4未检出外,其他6种PPV在河南均存在,并且多与其他病原混合感染,PPV2、PPV7可与多种病原混合感染,PPV7与PCV2混合感染最常见。

【总页数】7页(P123-129)【作者】郭全海;许夕雅;石蒙蒙;杨寒;高冬生;王永生;陈陆【作者单位】商丘职业技术学院牧医学院;河南农业大学动物医学院【正文语种】中文【中图分类】S852.659.2;S858.28【相关文献】1.多重PCR检测猪瘟病毒、猪细小病毒和猪伪狂犬病病毒的研究--猪瘟病毒、猪细小病毒和猪伪狂犬病病毒多重PCR引物设计2.多重PCR方法用于检测猪圆环病毒2型、猪细小病毒、猪伪狂犬病病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒诊断方法的建立3.猪圆环病毒2型、猪伪狂犬病病毒、猪细小病毒多重PCR检测方法的建立4.同时检测猪圆环病毒2型、猪细小病毒和伪狂犬病毒连接酶检测反应-PCR基因芯片检测方法的建立5.同时检测猪圆环病毒2型、猪细小病毒、猪伪狂犬病病毒和猪细环病病毒1型和2型的多重SYBR Green Ⅰ实时荧光定量PCR方法的建立因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

(动物传染病学)猪细小病毒病

(动物传染病学)猪细小病毒病

实验室诊断
➢ 病原学诊断:病毒分离培养鉴定、PCR、荧光 抗体染色检查等。
➢ 血 清 学 诊 断 : 血 凝 和 血 凝 抑 制 试 验 、 SN、 ELISA、琼扩、补体结合试验等。
➢ 鉴别诊断:注意与PRV、乙脑、蓝耳病、布病 等鉴别。
猪病毒性繁殖障碍性疾病的鉴别诊断
疾病 母猪症状 胎儿年龄 胎儿及胎盘病象 诊断
感染途径:除了胎盘感染和交配感染外,还可通 过呼吸道和消化道感染。
易感动物:猪是唯一的易感动物。不同年龄,性 别的猪都可感染。
猪细小病毒流行特点
常见于初产母猪,一般呈地方流行性或散发。大多数猪都感 染,其感染率与年龄呈正相关,5~6月龄阳性率8~29%, 11~16月龄阳性率80~100%,猪群感染后很难净化,可连续几 年内持续发病。
隔2~3周。 ➢ 经产猪通常抗体水平高,不必要接种,但在清
主要发生于春、夏或母猪产仔交配后一段时间。
母猪怀孕早期感染时,胚胎和胎猪死亡率可达80~100%。妊 娠期55天前感染可产生免疫耐受,感染胎儿出生后无抗体, 终生带毒排毒。
4.症状与病变
仔猪和母猪自身的急性感染通常都表现为亚临床形 式,母猪不同孕期感染,可分别造成死胎,木乃伊 胎和流产等不同症状。
PRRSV
发热、不吃, 任何年龄,通 皮肤发红发绀 常是相同年龄
脐带动脉坏死炎症、 水肿
病毒分离
细小病毒 感染

胎儿常在不同 发育阶段死亡
胎儿被再吸收,木 乃伊胎常见,死胎, 胎盘紧裹胎儿
病毒分离
伪狂犬
轻度到严重打
胎儿炎性坏死区,
喷嚏,咳嗽, 胎儿常在不同 木乃伊胎,死产。
不吃,呕吐, 发育阶段死亡 胎儿被吸收,坏死

一株猪细小病毒的分离鉴定

一株猪细小病毒的分离鉴定

摘要:2020年从黑龙江省某猪场的流产胎儿采集病料,经预处理后,接种猪肾原代细胞,能产生明显的致细胞病变作用。

经过血凝活性、病毒含量、荧光抗体检查、电镜观察、分子生物学等项测定,证明分离的病毒为猪细小病毒(PPV )。

该病毒的HA 效价≥1:256,TCID 50≥107.0,呈PPV 特异性荧光,电镜观察到呈六角形或圆形、无囊膜、直径20nm 左右的病毒粒子,可以被PPV 特异性抗血清中和,PCR 扩增产物经琼脂糖凝胶电泳,出现一条445bp 特异性电泳条带,并与7909株相符。

对其进行了VP2基因克隆和测序,序列分析表明,VP2基因片段与其它PPV 毒株的VP2基因片段的核苷酸同源性均在99%以上,氨基酸同源性在98%以上。

其与NADL-2株和China 株的亲缘关系最近。

毒株耐热,对胰蛋白酶有抵抗力,对乙醚、氯仿不敏感,pH 3~9,病毒稳定,该毒株纯净,无外源病毒污染。

本研究为该病疫苗的研发奠定了基础。

关键词:猪细小病毒;分离;鉴定一株猪细小病毒的分离鉴定孙心,梁宛楠*(哈药集团生物疫苗有限公司哈尔滨150040)doi:10.3969/j.issn.1008-4754.2023.08.050收稿日期:2023-03-29作者简介:孙心(1977—),女,动物医学本科,主要从事动物疫病临床诊断与实验室检测,动物疫苗应用等工作。

E-mail:***************。

*通讯作者:梁宛楠(1987—),女,动物医学硕士,主要从事动物疫病临床诊断与实验室检测,动物疫苗应用等工作。

E-mail:139****************。

猪细小病毒感染是引起母猪繁殖障碍的原因之一,很早就被世界各国所证明[1,2],1983年,我国在上海首次发现猪细小病毒感染,并进行了病毒的分离和鉴定[3],后来侯世宽等[4]和李宝启等[5]也报道在吉林和黑龙江分离到猪细小病毒。

目前在我国已有较多猪场存在该病。

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• 最近的一些研究表明:细小病毒和其它病原(特 别是圆环病毒II型)混合感染,可加重圆环病毒II 型感染所引起的各种临床表现,各级种猪场都很 重视猪细小病毒病的防控 。该病最早于1967年在 英国报道,目前呈世界流行,给养猪业造成较大 的经济损失。
(2)
2ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ病原简介
形态特征: 猪细小病毒属于细小病毒科, 为单分子线状单 股DNA病毒,外观呈六角形或圆形,无囊膜,直 径为18-26nm,核衣壳呈20面体等轴立体对称。
( 17 )
( 14 )
6 防控措施
猪细小病毒感染,目前无特效药进行治疗。为避 免该病的发生,只能采取预防措施,主要是加强 饲养管理、环境消毒和疫苗免疫。疫苗目前主要 分灭活苗和弱毒疫苗。 ① 严格种群管理,加强检疫工作,杜绝引进病猪和 带毒猪。 ②目前对易感猪进行疫苗免疫是最有效的。现主要 使用灭活疫苗,分为组织灭活苗和细胞培养灭活 苗,以油佐剂细胞灭火苗最为常用。 ③ 坚持经常性消毒,用0.5%漂白粉或1%烧碱可杀 灭病原体,减少猪与病毒的接触
(9)
不同阶段的感染
母猪主要为繁殖障碍,母猪流产,产出死胎、畸 形或木乃伊胎 –如在怀孕30-50天期间感染,主要产木乃 伊胎; –如在怀孕50-60天期间感染,主要死产 –如在怀孕60-70天期间感染,主要流产 –如在怀孕70天以上感染,多能正常产仔 ,其带有抗体和病毒。 –怀孕中期胎儿死亡,当胎儿被液化吸收 ,怀孕母猪腹围减小,妊娠中止
( 15 )

补充说明
• 用于分离PPV的病料,一般为流产或死产胎儿的脑 、肾、肝、肺、睾丸、胎盘及肠系膜淋巴结等, 其中以肠系膜淋巴结和肝脏的分离率最高。
• 虽然此方法是最准确的诊断方法,但是其费时费 力,并且需要一定的技术条件和设备,另外,其 感染力会随着胎儿死亡时间而降低从而限制了临 床应用;
(5)
3 流行病学
• 传染源 带毒猪是本病的主要传染源,其分泌物、排泄 物及被污染的饮水、饲料、器具均可引起本病的 传播。 • 传播途径 可通过胎盘垂直感染和交配感染,也可通过被 污染的食物、环境,经呼吸道、消化道感染。 • 易感动物 猪是猪细小病毒唯一宿主,不同年龄、性别、 品种的猪均可感染,常见于初产母猪。 本病一年四季均可发生,春秋两季及母猪配种后更 易感染。
( 10 )
早期感染PPV,胎儿在母体内死亡
( 11 )
产下不同木乃伊胎和死胎
( 12 )
产下不同组合胎儿
( 13 )
5 诊断
⑴根据繁殖母猪无其他症状,仅表现为产胎数少、 木乃伊胎、死胎可怀疑PPV感染。 ⑵对本病进行确诊时需将木乃伊、死胎儿肺(胎儿 长度小于16cm)送实验室做病毒分离鉴定。 分离培养:仔猪原代肾细胞等 鉴定: HA和HI试验、荧光抗体试验 ⑷血清学试验 –病毒中和试验 –HA和HI试验:血清需非特异性处理
易感猪经口腔感染
经 胎 盘 传 给 胎 儿 经血液传入子宫
(8)
4 症状及病理变化
① 仔猪:通常无症状,偶尔可见弱仔,产死仔猪增 加,木乃伊仔猪增加。
②母猪:如果繁殖母猪无其它症状,仅表现为窝产仔 数减少,以及产出大小不一的木乃伊胎,就应怀疑 为PPV感染。
③易感母猪感染后会导致胚胎吸收和木乃伊胎。所以 ,主要症状包括窝产仔数下降、大小不一的木乃伊 胎、假怀孕和不孕。
猪细小病毒
演讲人: 演讲人:毛晓丽
(0)
猪细小病毒
1 2 3 4 5 6 概述 病原简介 流行病学 症状及病理变化 诊断 防控措施
(1)
1 概述

猪细小病毒病(PPV):是由细小病毒科猪细小 病毒引起的母猪繁殖障碍性疾病,主要发生于初 产母猪,其特征为流产,产死胎、木乃伊胎及病 弱仔猪,但母猪通常不表现其他临诊症状,其他 猪感染后也无明显的临诊症状。
(3)
猪细小病毒的形态
(4)
2 病原简介
抗原特性:只发现一个血清型 血凝性: 可以凝集豚鼠、大鼠、小鼠、鸡、鹅、猫、 猴和人O型红细胞,其中以豚鼠的红细胞最好。 抵抗力: 对热、消毒药抵抗力强,耐PH2-9,70℃2h 失活,80℃可耐受5分钟
• 红细胞凝集试验(HA)操作简便易行,且能进行快 速、大量的诊断,但是其灵敏度低、特异性不强 ,只能作为辅助诊断方法。
( 16 )
• 经PPV感染后母猪会获得很高的抗体水平,并且会 维持很长时间。 • 很高的抗体水平并不意味着猪群正在或已经发病 ,也不意味着更好的免疫保护。比如1:20的滴度 与1:80,000的滴度所提供的免疫保护是一样的。 • 某一时间对所有母猪进行血清学检查,仅能得出 母猪当中曾经感染过病原的比例,并反映出整体 的免疫水平或易感程度。猪只接触PPV之后,免疫 力会维持一生。
(6)
PPV的传播
初产母猪早期感染时,可产生病毒血症引起繁 殖障碍,病毒经血液穿过胎盘感染胎猪,有选择 性地杀死胎猪,由于此时胚胎骨骼还没有发育, 胎儿在母体内死亡后被母体完全吸收,最终形成 一块很小的形似垃圾的凋落物被排出体外,引起 母猪再次发情。
(7)
PPV的传播
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