佐剂及灭活疫苗的制作
佐剂及灭活疫苗的制作

佐剂及灭活疫苗的制作一、选取病毒株在制备灭活疫苗时,需要选择合适的病毒株。
通常情况下,选择病毒株需要考虑以下几个方面:病毒的毒力、流行性和稳定性等。
二、繁殖病毒繁殖病毒是生产灭活疫苗的关键步骤之一、病毒可以在细胞培养物中繁殖,通常选择猴肾细胞等。
此外,还可以使用鸡胚等进行病毒繁殖。
三、灭活病毒通过将繁殖好的病毒暴露于灭活剂,如甲醛、β-普鲁兰、二乙二硫磷等,可以灭活病毒。
灭活剂的选择需要考虑到其能够有效灭活病毒同时又不破坏病毒表面抗原。
四、纯化病毒将灭活的病毒经过纯化处理,可以去除不必要的杂质,提高灭活疫苗的纯度。
常用的方法有超速离心、凝胶过滤和柱层析等。
五、选择佐剂佐剂是用于增强灭活疫苗的免疫原性的物质。
常见的佐剂有铝盐和油水乳剂等,它们可以激活免疫系统,促进抗原的吸收和提高抗原的持久性。
六、灭活疫苗将灭活的病毒与佐剂混合后,可以制备灭活疫苗。
灭活疫苗在注射给人体后,通过刺激免疫系统产生抗体和记忆性T细胞等免疫应答,从而提高人体对病毒的免疫能力。
七、灭活疫苗的质量控制灭活疫苗的质量控制是确保疫苗安全有效的重要环节。
常见的质量控制方法有:病毒滴度测定、病毒变异性测定、灭活效果检测、病毒残留测定等。
总结起来,制作灭活疫苗主要包括选取合适的病毒株、繁殖病毒、灭活病毒、纯化病毒、选择佐剂、灭活疫苗以及进行质量控制等一系列步骤。
这些步骤的顺序和操作方法都需要精确控制,以确保最终产品的质量和安全性。
同时,不同的灭活疫苗也可能会有一些差异性,因此实际制备时需要根据具体的病毒株和制备工艺进行调整。
佐剂及灭活疫苗的制作

佐剂及灭活疫苗的制作
抗生素辅助剂是用来预防細菌感染的药物,它可以减少抗生素抗菌效果的不足。
它也有助于改善有效的抗菌药物在身体中的游离状态,从而增加其有效的細菌防护能力。
抗生素辅助剂的生产和使用可以减少抗生素抗菌剂量,因此减少有害的副作用。
抗生素辅助剂的制作大致如下:
1、首先,根据要制作的抗生素辅助剂类型选择合适的原料,如抗菌素(溶液或固体),补充剂(离子交换树脂或膜),厌氧剂(维生素和矿物质),水解酶(或能抗菌酶)等。
2、配置抗生素配方,计算抗生素的百分比,选择最佳的原料比例。
3、选择合适的装置进行混合,如搅拌机,球磨机,切削机等。
4、将混合物灌装到容器中,容器的选择要根据抗生素的类型和稳定性而定,如瓶,罐,袋等。
5、最后,将抗生素辅助剂放入热冲洗液中进行热冲洗,以提高抗生素的无菌性和稳定性。
灭活疫苗制作。
精品文档鸡新城疫灭活疫苗的制备

鸡新城疫灭活疫苗的制备制备油佐剂灭活苗1 材料1.1毒种:鸡新城疫病毒弱毒La sota株。
1.2实验动物:9-10日龄鸡胚若干。
1.3主要试剂:碘酊,1%硫柳汞溶液,7号白油,司盘-80,硬脂酸铝,吐温-80,甲醛等。
主要仪器:孵化箱、1ml注射器、蛋架、打孔器、蜡烛、胶体。
2.实验步骤2.1种毒繁殖:将毒种用灭菌生理盐水作适当稀释,尿囊内接种10日龄SPF鸡胚,每胚0.1mol.选种后72-120小时之间死亡且病痕明显的鸡胚,分别收获鸡胚液,装于灭菌器内定量分装于安领瓶,冷冻保存。
2.2接种前准备;种毒稀释,照蛋,打孔。
2.3接种;取生产用毒种,用灭火理盐水适当稀释(10-4或10-5),每胚尿囊内接种0.1ml.接种。
后密封针孔,置36-37继续孵育。
2.4孵育和观察;鸡胚接种后,每日照室1次,将24小时内死亡的鸡胚弃去,此后,每天照蛋2次,死亡的鸡胚随时取出,4摄氏度保存,冷却24小时。
2.5收获:将冷却的鸡胚取出,用碘酐消毒气室部位,然后以无菌手术剥除气室部卵壳,捐去卵壳膜。
剪破绒毛尿至膜及羊膜(谨防卵黄破裂)。
吸取胚液。
对每个鸡胚在吸取胚液前均应注意检查、凡胎儿腐败、胚液混浊及有任何污染可疑者,弃去不用。
吸取胚液放于同一灭菌的容器内。
(凝集试验和无菌试验)2.6 灭活:可以过滤,再加甲醛溶液,甲醛溶液的最终浓度为0.1%。
然后在37℃灭活16小时,期间振摇3~4次,在4℃保存,应不超过1个月。
(无菌检验和灭活检验)2.7 制苗2.7.1 油相制备:将7号白油与司盘- 80 ( Span - 80)按94 ∶6比例混合再加总量2%的硬脂酸铝溶液混匀后,121 ℃高压灭菌15 min即为油相。
2.7.2 水相制备:将灭活胚液(抗原液)和吐温- 80 ( Tween - 80)以96 ∶4的比例混合,充分搅拌,使吐温-80完全溶解为止,作为水相。
2.7.2 水相制备:将灭活胚液(抗原液)和吐温- 80 ( Tween - 80)以96 ∶4的比例混合,充分搅拌,使吐温-80完全溶解为止,作为水相。
甲流灭活疫苗制备工艺流程
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甲流灭活疫苗制备工艺流程英文回答:Influenza vaccine inactivated production process.1. Seed Preparation.Collection and isolation of influenza virus strains from clinical samples.Propagation of viruses in embryonated chicken eggs (ECE) or cell culture.Characterization and selection of high-yielding and antigenically representative strains.2. Virus Propagation.Expansion of selected virus strains in large-scale bioreactors.Optimization of growth conditions for maximum virus yield.3. Virus Harvest and Clarification.Removal of cellular debris and impurities from the virus suspension.Concentration and purification of viral particles through filtration or centrifugation.4. Inactivation.Chemical (e.g., formalin) or physical (e.g., heat) treatment of the virus suspension.Inactivation of viral infectivity while preserving antigenicity.5. Purification.Removal of residual inactivation agents and other impurities.Further concentration and purification of viral antigens.6. Adjuvant Formulation.Addition of adjuvants (e.g., aluminum salts) to enhance immune response.Stabilization of vaccine formulation for long-term storage.7. Filling and Packaging.Aseptic filling of vaccine into vials or syringes.Labeling and packaging for distribution.8. Quality Control and Release.Rigorous testing to ensure vaccine safety, potency, and stability.Compliance with regulatory standards and guidelines.中文回答:甲流灭活疫苗制备工艺流程。
新冠灭活疫苗生产详细流程

新冠灭活疫苗生产详细流程新冠疫苗的生产是一项复杂而又精密的过程,下面将详细介绍其生产的流程。
首先,疫苗的生产需要根据新冠病毒的基因序列设计疫苗的候选物。
科研人员通过对病毒的结构和功能的研究,确定了病毒表面的特定抗原蛋白,如刺突蛋白。
这些抗原蛋白可以作为疫苗的候选物,用于引起人体免疫系统的应答。
接下来,需要制备病毒的灭活疫苗母液。
科研人员将新冠病毒分离出来,并在实验室中进行培养和繁殖。
然后,在特定条件下,对病毒进行灭活处理,杀死病毒的活性,以确保其安全性。
这一步骤是非常关键的,因为病毒必须被灭活,以免引起疾病。
第三步是疫苗的制备和过滤。
在这一步骤中,灭活的新冠病毒被处理成疫苗的形式。
科研人员将灭活病毒与适当的辅料,如佐剂混合,并使用特定的生产方法制备疫苗。
此外,疫苗在生产过程中会经过过滤步骤,以去除残余的病毒颗粒或其他杂质。
接着,进行疫苗的瓶装和包装。
制备好的疫苗会被装入小瓶中,并通过专业的自动化装瓶设备完成。
瓶装疫苗需要符合特定的质量控制标准,以确保每瓶疫苗的安全性和有效性。
经过瓶装后,疫苗需要进行临床试验。
临床试验是一个非常重要的环节,它需要通过一系列的人体实验,评估疫苗的安全性和有效性。
这些试验的结果将直接决定疫苗是否能够投入使用。
临床试验通常分为三个阶段,分别在小规模的志愿者和大规模的人群中进行。
最后,是疫苗的生产和分发。
一旦疫苗通过了临床试验并获得了批准,它将开始大规模的生产。
这包括疫苗的大批量生产、灌装和包装。
随后,疫苗将根据指定的分发计划,进行全球范围的分发和使用。
总结起来,新冠灭活疫苗的生产流程包括病毒的灭活处理、疫苗的制备和过滤、瓶装和包装、临床试验以及生产和分发。
这个流程的每个环节都需要精确的操作和严格的质量控制,以保证疫苗的安全性和有效性。
只有科学、规范地进行疫苗生产,我们才能更好地抗击新冠疫情,保护人民的健康。
鹅巴氏杆菌油佐剂灭活疫苗的研制

鹅巴氏杆菌油佐剂灭活疫苗的研制摘要:为了有效控制霍尔多巴吉鹅巴氏杆菌病(pasteurellosis)的发生,将内蒙古通辽地区分离鉴定的巴氏杆菌作为菌种,采用液体增菌培养后灭活,加入佐剂制成油乳剂灭活疫苗,经无菌和安全检验合格后免疫20日龄雏鹅(0.5ml/只)。
结果表明,该疫苗免疫效果良好,1次免疫后保护率达73.3%,2次免疫后保护率达96.7%。
关键词:巴氏杆菌(pasteurellamultocida);霍尔多巴吉鹅;疫苗studyonoil-adjustinactivatedvaccineagainstgoosepasteurella multocidaabstract:tocontrolpasteurellosisinfectioninholzerbuggygoose,theoil-adjustinactivatedvaccineofpasteurellamultocidaisolatedfromtongliaowasinoculatedto20-day-oldholzerbuggygoose at adoseof0.5mlaftersterilitytestandsafetyinspection.theresultsshowedthatthevaccinewasefficient,with a protectionrateof73.3%afterinitialimmunizationand96.7%aftersecondaryimmunization.keywords:pasteurellamultocida;holzerbuggygoose; vaccine鹅巴氏杆菌病(pasteurellosis)是由禽多杀性巴氏杆菌(pasteurellamultocida)引起的一种鹅的急性、败血性、高度接触性传染病。
常引起鹅的急性败血症及组织器官出血性炎症,其特征是高热、下痢、呼吸困难[1]。
鹅大肠杆菌油佐剂灭活疫苗的研制

鹅大肠杆菌油佐剂灭活疫苗的研制陈育峰;刘艳芬;陈绍红;刘铀【摘要】2 pathogenic Escherichia coli strains O86K61 and O44X74 were isolated from geese colibacillosis suspect cases in Zhanjiang area, and were used to produce oil adjuvant inactivated vaccine. 20-day-old geese were inoculated with the vaccine and boosted 15 days late. The blood samples were collected and the serum agglutination antibody titers of the geese were determined to evaluate the immune efficiency, then the geese were challenged with 1010/mL pathogenic Escherichia coli to confirm the immune protection effect of the emulsion vaccine. The results showed that the vaccine above was safe and reliable, the serum antibody titers of the immunized birds came to 1 ∶ 32 and 1 ∶ 128 respectively inoculated 15 and 30 days late. Moreover, the vaccine inoculated birds were all protected against the challenge of the pathogenic bacteria, whereas the control animals exhibited visible clinical signs of colibacillosis, and the pathogenic Escherichia coli O86 and O44 subtypes could be isolated from the sick geese.%从湛江地区疑似大肠杆菌病的病死鹅组织中分离鉴定2株致病性大肠杆菌O86 K61和O44 K74,以此制备油佐剂灭活疫苗.用上述疫苗接种20日龄雏鹅,35日龄加强免疫一次,分别于27、35、42、50日龄检测免疫鹅血清抗体水平,并进行攻毒保护试验.结果表明,制备的大肠杆菌油佐剂灭活疫苗安全可靠,免疫后15、30 d后,免疫鹅血清抗体水平分别达到1∶32和1 ∶ 128;且免疫鹅能抵抗1010/mL的致病性大肠杆菌攻击,对照组鹅全部发病,有明显临床症状,从发病鹅组织中分离到致病性大肠杆菌.【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2011(038)008【总页数】3页(P100-102)【关键词】鹅;大肠杆菌病;油佐剂;灭活疫苗【作者】陈育峰;刘艳芬;陈绍红;刘铀【作者单位】广东海洋大学农学院,广东湛江524088;广东双林生物制药有限公司实验动物中心,广东湛江524009;广东海洋大学农学院,广东湛江524088;广东海洋大学生化中心,广东湛江524088;广东海洋大学农学院,广东湛江524088【正文语种】中文【中图分类】S858.28鹅大肠杆菌病是由致病性大肠杆菌引起的急性接触性传染病,各种年龄的鹅均可感染发病,但对种鹅的危害尤为严重,可导致种鹅产蛋量减少甚至死亡。
灭活、减毒疫苗工艺流程

病毒性疫苗(一)疫苗原液生产区:1、细胞操作间(C级洁净度,无毒区)。
进行细胞复苏,细胞CO2培养箱培养,为细胞大量培养做准备;检测细胞恒温室、发酵罐中细胞生长状态。
2、细胞培养恒温室(C级洁净度,无毒区)。
使用转瓶机进行细胞培养,为病毒接种准备细胞。
3、细胞罐培养间(C级洁净度,无毒区)。
利用20L发酵罐进行细胞大量培养,为病毒接种准备细胞。
4、毒种操作间(C级洁净度,有毒区)。
复苏含有毒种的细胞,为毒种的扩增做准备;检测病毒感染后细胞的生长状态。
5、种毒间(C级洁净度,有毒区)。
将病毒按照适宜比例接种于细胞恒温室、细胞发酵罐培养得到的细胞中。
6、病毒培养恒温室(C级洁净度,有毒区)。
将种毒后的细胞置于温室中转瓶培养。
7、病毒罐培养室(C级洁净度,有毒区)。
种毒后的细胞在50L发酵罐中大量培养,培养至适宜程度,将发酵物泵入离心间。
8、离心间(C级洁净度,有毒区)。
使用大容量冷冻离心机,将病毒发酵罐内发酵物进行离心,分离上清液与细胞沉淀。
9、病毒粗纯间(C级洁净度,有毒区)。
对于分泌于细胞培养液中的病毒,使用超滤膜包过滤澄清细胞上清液,得到粗纯后的病毒液;对于胞内病毒,利用细胞冻融、超声破碎技术破碎细胞,释放病毒,并使用有机溶剂抽提法抽提得到病毒。
10、病毒精纯间(B级洁净度,有毒区)。
对粗纯后的病毒液进行超滤浓缩等操作,得到减毒活疫苗原液。
9、灭活前纯化间(C级洁净度,有毒区)。
对灭活疫苗进行纯化(粗纯、精纯)10、灭活间(C级洁净度,有毒区)。
灭活病毒11、灭活后纯化间(B级洁净度,无毒区)。
灭活后疫苗纯化间。
(二)减毒疫苗西林瓶分装单元1、西林瓶灌装间(三)减毒活疫苗中试生产辅助区1、称量间(C级洁净度,无毒区)。
存放减毒活疫苗原液中试生产所需的试剂;利用不同精度的电子天平称量所需的试剂,用于后续生产或溶液配制。
2、配液间(C级洁净度,无毒区)。
将称量的试剂配制成溶液,或对原液进行稀释等,用于后续减毒活疫苗的中试生产。
一种火麻油佐剂灭活疫苗的制备方法

一种火麻油佐剂灭活疫苗的制备方法哇塞,今天我要和你讲讲一种超厉害的火麻油佐剂灭活疫苗的制备方法哟!你知道疫苗有多重要吗?就好比是我们身体的小卫士!
先来说说准备材料吧,那可真是不能马虎呀。
想象一下,这就像是为一场大战准备精良的武器装备。
火麻油,这可是关键的角色呢!然后就是要选取病毒样本啦,小心谨慎得就像在挑选最珍贵的宝贝。
接下来,就是神奇的灭活过程啦。
这就好像是给小怪兽施了魔法,让它不能再作恶啦!然后把火麻油和灭活后的病毒混合起来,这个过程就好像是在调配一杯独特的鸡尾酒,精心又细致。
之后就是一系列的处理和加工啦,每一步都要格外用心哦,就如同呵护一个小生命成长。
等一切都搞定,神奇的火麻油佐剂灭活疫苗就诞生啦!
嘿,这可不是随随便便就能做到的呀,得靠专业的技术和满满的责任心呢!我觉得这种疫苗的制备方法真的超棒,为我们的健康带来了有力的保障呀!。
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氢氧化钠合成法。其中,用铝粉加烧碱合成法最为常用,其基本原理为:
2Al(OH)3 十 12H2O 十 3H2SO4→Al2(SO4)3·18H2O。 Al2(SO4)3·18H2O 十 6NaOH→2Al(OH)3 十 2Na2SO4 十 18H2O。 用三氯化铝与氢氧化钠合成,此法合成的铝胶含量低,透明无沉淀,目前广泛用于制备人用生物
二、实验内容
1、配制白油佐剂; 2、配制氢氧化铝胶佐剂; 3、配制蜂胶佐剂。
三、实验原理
油佐剂、氢氧化铝胶和蜂胶常用于兽用灭活疫苗。佐剂活性与质量密切相关,优质佐剂应具备分子
细腻、胶体性良好、稳定和吸附力强等特点。 (一)油佐剂由矿物油和乳化剂组成。矿物油应不含多环芳烃化合物、粘度低、无色、无味和无毒性。
六、注意事项
1、灭活要彻底,以免影响疫苗的安全性。 2、水相制备时,使抗原与 Tween-80 充分混匀。 3、乳化时,注意将油相冷却后再乳化,以防油温过高使抗原性降低。 4、注意先加入油相后再加入水相,充分搅拌。
七、实验结果记录
八、实验总结
——本资料由王印整理,难免错误——
6
《动物生物制品学》实验课程
实验三、兔病毒性出血症组织灭活疫苗的制备
专业:
姓名:
学号:
成绩:
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一、实验目的
1、了解并掌握兔病毒性出血症组织灭活疫苗的制备程序。
二、实验内容
1、兔病毒性出血症病毒增殖和组织灭活疫苗的制备。
三、实验原理
兔病毒性出血症病毒可引起兔严重疾病,病毒培养困难,现仍然没有发现适应病毒体外培养的细胞
六、注意事项
1、硫酸有很强的腐蚀性,应放在耐酸搪瓷缸配置,操作要十分小心,防止爆沸时溅出,造成伤害。 2、氢氧化铝具有较强的吸附力,所以制胶过程中一般用软化水或去离子水洗涤。 3、氢氧化铝胶为两性化合物,过酸或过碱都会失去胶态,故要掌握好化合时的 pH。 4、油相制备时,温度和时间要掌握好,要使 Span-80 和硬脂酸铝充分溶解。
3、纯粹检验:将培养的细菌菌液接种于琼脂培养基表面,36-37℃保温 24h。观察菌落大小,应均
匀一致。
4、细菌计数:用麦氏比浊管法测定菌数,将菌数调整为 15 亿个/ml。(即与麦氏比浊管的第 5 管
相同)
(二)细菌灭活
1、按菌液体积加入终浓度为 0.3%的甲醛溶液,于 37℃温箱中灭活 24h,其间振荡数次。灭活后取
系或组织细胞。最适应病毒生长的是乳鼠和青年兔,所以现仍然采用本动物兔来增殖病毒制备疫苗。兔
感染病毒后 18-24h 组织中出现病毒,其中肝组织病毒含量最高,感染后 18h 达高峰,其次为脾、肺、 肾、血液和心脏等,而肌肉、脑、淋巴结、胸腺等组织含毒量均很低。
病毒组织经 0.4%甲醛处理后仍保持免疫原性。
《动物生物制品学》实验课程
《动物生物制品学》
实验课程资料
专业: 姓名:
动物检疫实验室
2009年5月
——本资料由王印整理,难免错误——
1
《动物生物制品学》实验课程
实验一、佐剂的制备
专业:
姓名:
学号:
成绩:
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一、实验目的
1、掌握白油佐剂的制备方法; 2、掌握用铝粉加烧碱合成法制备氢氧化铝胶的方法; 3、掌握蜂胶佐剂的制备方法。
配制时应注意:
(1)氢氧化铝具有较强的吸附力,所以,制胶过程中一般用软化水或去离子水洗涤; (2)氢氧化铝胶为两性化合物,过酸或过碱都会失去胶态。故要掌握好化合时的 PH 值; (3)贮存铝胶应放在耐酸搪瓷缸或耐酸池中,并严密封盖,贮存期不超过 3 个月; (4)铝胶室温保存,以免破坏胶态。 (5)必须根据反应式 A1Cl3+3NaOH→Al(OH)3+3NaCl 计算出氢氧化铝胶的量,以备后期按量使用 。 (四)蜂胶佐剂的配制 1、用市售蜂胶,放于 4℃以下低温存放,制备前用粉碎机或垫板和锤头在 4-8℃下粉碎。 2、过筛(100-120 目铜纱筛滤网),按 1:4(w/v)加入 95%乙醇,室温浸泡 24-48h。 3、冷却,过滤或离心取上清液,即得透明栗色纯净蜂胶浸液。 4、除去干渣,计算出浸液中蜂胶含量,浸液置 4℃以下保存备用。 5、必须计算出蜂胶的量,以备后期按量使用。
管号
试剂
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
1%BaCl2 溶液(ml) 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1.0
1%H2SO4( ml) 9.9 9.8 9.7 9.6 9.5 9.4 9.3 9.2 9.2 9.0
相当于细菌的浓度
单位 108 个/ml
3
6
9
12 15 18 21 24 27 30
——本资料由王印整理,难免错误——
5
《动物生物制品学》实验课程
少量菌液,接种于普通营养琼脂平板,37℃培养 24-48h,进行灭活检验。菌液灭活后应无菌生长。 (三)油乳剂灭活疫苗的配制
1、油相准备:实验一所准备的油相。 2、水相准备:菌液 96 份,Tween-80 4 份,充分振荡,使吐温完全溶解。 3、乳化:加入油相 1 份,开动胶体磨(采用组织捣粹机),慢速转动,徐徐加入水相 1 份 ,7000-10000r /min 搅拌 5min。 (四)氢氧化铝胶灭活疫苗的配制 1、将实验一所制备好的铝胶弃去上清液后,加入适量的灭活抗原液(一般抗原与铝胶体积比为 4: 1),混匀,即成。(或按实验一佐剂制备方法二制备的铝胶,用量一般为终浓度是 0.5~2.0mg/ml。) (五)蜂胶灭活疫苗的配制 1、在灭活菌液中加入蜂胶乙醇浸液,使每毫升菌液中含蜂胶 10mg,边加边摇荡,成为乳浊状,即 为蜂胶佐剂疫苗。
五、实验步骤
(一)大肠杆菌菌液培养
1、种子液:将大肠杆菌菌种,分别于小管或小瓶普通肉汤培养基中,置 36-37℃保温 18-24h,经
纯粹检验后作为种子液。
2、细菌培养(小量培养):将种子液接于营养琼脂培养基表面,36-37℃保温 24h。加适量灭菌生
理盐水将细菌洗下,装入玻瓶中,充分振荡菌液,使细菌分散开。
制品,佐剂效果良好,注射部位无硬结反应。其化学反应式为:A1Cl3+3NaOH→Al(OH)3+3NaCl。 (三)蜂胶是蜜蜂采自柳树、杨树、栗树和其他植物幼芽分泌的树脂,并混入蜜蜂上顎腺分泌物以及蜂
蜡、花粉及其他一些有机与无机物的一种天然物质,含有多种黄酮类、酸类、醇类、酚类、脂类、烯烃 和萜类等化合物及多种氨基酸、酶、多糖脂肪酸、维生素及化学元素,是一种优良的天然药物。
七、实验结果记录
——本资料由王印整理,难免错误——
3
八、实验总结
《动物生物制品学》实验课程
——本资料由王印整理,难免错误——
4
《动物生物制品学》实验课程
实验二、鸡大肠杆菌灭活疫苗的制备
专业:
姓名:
学号:
成:
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一、实验目的
1、了解细菌性灭活疫苗制造的基本原理及程序。
蜂胶具有抗菌、抗病毒、抗肿瘤、消炎、增强机体免疫功能和促进组织再生等作用,同时具有广泛
的生物活性和药理作用。作为免疫佐剂,蜂胶具有良好的免疫增强作用。它能保持抗原特性,增强巨噬
细胞的吞噬能力,促进抗体的产生,提高机体的特异性和非特异性免疫力。
四、实验材料
1、设备:高压灭菌锅、电炉、搪瓷缸、100-120 目铜纱筛滤网、吸管、玻璃瓶、粉碎机或垫板和锤头、 研磨器、量筒、玻璃捧、离心机等。
四、实验材料
1、设备:兔笼、超净工作台、恒温培养箱、冰箱、摇床、高压锅、组织匀浆器、微量加样器、酒精灯、 试管、灭菌纱布、三角瓶、l-5m1 注射器若干、疫苗瓶等。
2、试剂:磷酸盐缓冲液(PBS)( 0.01mol/L,pH7.4)、甲醛溶液、0.5%鼠红细胞等。 3、实验一所制备的氢氧化铝胶、蜂胶。
四、实验材料
1、设备:超净工作台、恒温培养箱、冰箱、摇床、胶体磨(采用组织捣粹机)、压盖机、高压锅、显微 镜、酒精灯、温度计、普通试管、三角瓶、平皿、疫苗瓶、瓶盖、记号笔等。 2、试剂:营养琼脂培养基、普通肉汤培养基、甲醛溶液等。 3、实验一所制备的油乳剂、氢氧化铝胶、蜂胶。 4、菌种:鸡大肠杆菌灭活疫苗菌种。 5、麦氏比浊管制备:选取口径、壁厚一致的洁净试管 10 支按如下操作。
二、实验内容
1、大肠杆菌培养与细菌的灭活; 2、大肠杆菌油乳剂灭活疫苗的配制; 3、大肠杆菌氢氧化铝胶灭活疫苗的配制; 4、大肠杆菌蜂胶灭活疫苗的配制。
三、实验原理
细菌性灭活疫苗制备的基本程序为菌种的选择和种子的生产、菌液培养、灭活、配苗和分装。 大量生产的细菌培养方法有:固体表面培养法、液体静置培养法、液体深层通气培养法、透析培养 法及连续培养法等。灭活菌苗通常根据细菌的特性加入最有效的灭活剂,采取最适当的灭活条件进行。 灭活疫苗的佐剂不同,所以配苗方法也不相同。
4、种毒:兔病毒性出血症灭活疫苗病毒株
5、实验动物:健康青年兔 13 只。
五、实验步骤
(一)兔病毒性出血症病毒增殖和组织灭活疫苗的制备
1、病毒增殖:取生产用毒种,用无菌生理盐水做 l0 倍稀释,选择非免疫的健康青年兔,肌肉注射 ,
接种剂量 0.5ml/只。隔离饲养观察 3-7d。
2、组织悬液的制备:分别无菌采取死亡兔的肝脏、脾脏、肺脏,加 l0 倍的灭菌 PBS 缓冲液,用 组织捣碎机粉碎搅拌,冻融 3 次。
1、称取氢氧化铝干粉 50g,加入煮至沸腾的 60ml 沸水中(搪瓷缸)拌均匀。
——本资料由王印整理,难免错误——
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《动物生物制品学》实验课程