2020外泌体miRNA研究进展及诊断价值

2020外泌体miRNA研究进展及诊断价值

恶性肿瘤是一个全球性的重大公共健康问题, 2018年全球约有1 819万肿瘤新增病例以及960万肿瘤死亡病例[1]。在我国, 恶性肿瘤对社会的影响也不容小觑, 肺癌、胃癌、食管癌、肝癌是我国最常见的恶性肿瘤[2]。大多数恶性肿瘤早期一般无特异性表现, 并且多数恶性肿瘤患者被确诊时已处于晚期, 失去最佳治疗时机。故早期诊断对于提高恶性肿瘤患者的生存率、减少治疗费用至关重要[3]。病理活检诊断是恶性肿瘤的金标准, 但因其有创性, 患者需承担较大的风险, 如出血、刺激肿瘤进展、转移等。现有的体液生物标志物, 如癌胚抗原和甲胎蛋白等肿瘤标志物在临床已被广泛应用, 但对肿瘤的诊断敏感性和特异性不高, 而体液中循环肿瘤细胞和游离细胞DNA 虽然可以较好地反映肿瘤的发生、发展, 但是其在体液中丰度较低, 不是微创恶性肿瘤诊断的良好生物标志物[4]。因此, 找到具有特异性强和敏感性高的恶性肿瘤生物标志物作为非侵入性诊断指标至关重要, 而近年来, 外泌体微小RNA（microRNA, miRNA）引起了越来越多的关注。

外泌体是细胞分泌并进入体液或细胞外环境的小囊泡。这些囊泡可以从供体传递到受体细胞中, 在细胞间的通讯中发挥关键作用。外泌体的内容物有不同的组分, 例如DNA、RNA、脂质和蛋白质, 其可以一定程度上反映细胞的代谢、癌变、凋亡等。miRNA是外泌体内容

物中的一种, 参与恶性肿瘤发生、发展的不同过程, 如癌细胞增殖、血管生成和肿瘤的转移[5]。由于外泌体miRNA的特性, 是恶性肿瘤诊断中极具潜力的非侵入性生物标志物之一。本文对外泌体miRNA 及其在恶性肿瘤中的作用, 外泌体miRNA在恶性肿瘤诊断中的优势与劣势作一综述。

1 外泌体miRNA及其提取方法

1.1 miRNA与外泌体miRNA

外泌体在1983年被Pan等首先发现并命名[6], 其膜是由脂质双层结构组成, 直径为30~150 nm。外泌体可由多种细胞分泌, 包括B淋巴细胞、T淋巴细胞、树突状细胞、肿瘤细胞、内皮细胞和间充质干细胞等, 并且在人体内大多体液中都可以发现外泌体的存在, 如尿液、血浆、血清、唾液、脑脊液、腹腔积液和细胞培养上清液等[7]。外泌体也是细胞之间传递信息的手段之一。在正常生理情况下, 供体细胞可以将遗传物质通过外泌体的“运输”功能转移到靶细胞, 并对靶细胞进行精确调节, 而在病理情况下, 非正常细胞也可以将其包含的病毒、miRNA和癌基因等物质转移至正常状态的细胞中, 从而导致正常细胞被感染、病变或者癌变。由于miRNA在基因表达中重要的调节作用, 所以外泌体miRNA也被广泛研究, 2007年VALADI等[8]首先发现了外泌体中存在miRNA, 并且可以转移到受体细胞中, 发挥相关的作用。到目前为止, 在外泌体中已发现2 838种miRNA,

并且这些外泌体miRNA在不同疾病和生理条件中表达的水平不同。外泌体miRNA在恶性肿瘤的进程中也发挥重要调节作用, 更重要的是外泌体中的miRNA可以稳定存在, 免受体液中RNA酶的降解, 在4 ℃条件下外泌体miRNA可以稳定保存48 h[9], 这同样有利于实验前的标本质量控制, 因此其具有作为体液诊断生物标志物的潜力。

1.2 外泌体miRNA的提取

虽然外泌体miRNA具有较高的稳定性, 但是其提取方法是对miRNA最终质量的影响因素之一, 不同的提取方法利用外泌体不同的特征进行分离, 例如形状、密度、大小和表面蛋白标记, 因此不同方法对最终提取的外泌体miRNA的种类与含量有着较大差别。超速离心法是实验中常用的一种分离方法, 并且可以通过与其他过滤步骤组合或使用蔗糖密度梯度进一步去除其他杂质来改进, 但其步骤较复杂、耗时较长, 所以并不适合应用于临床实验室。类似的密度梯度离心法可以产生高纯度的外泌体, 但是目前的操作步骤也不适用于检验科的应用, 需要进一步对方法进行改进。商业试剂盒标准化的流程, 较高的分离纯度以及较少的时间更适合临床实验室的应用[10]。

2 外泌体miRNA对恶性肿瘤的影响

恶性肿瘤的发生、发展通常与恶性肿瘤细胞本身的增殖、侵袭、转移能力有关, 也和肿瘤生长的环境有很大的联系, 恶性肿瘤细胞所分泌

的外泌体miRNA可以调节其他恶性肿瘤细胞以及生长的环境, 最后促进恶性肿瘤的发展。

2.1 外泌体miRNA对肿瘤细胞的影响

恶性肿瘤患者与正常人群外泌体所携带的miRNA有很大的区别, 并且这些miRNA差异在恶性肿瘤的进程中可以起到重要调节作用, 癌细胞可以通过外泌体释放具有肿瘤抑制作用的miR-23, 这提示肿瘤细胞可以通过这种自我调节, 降低细胞内肿瘤抑制相关的miRNA的浓度以稳定自身状态, 促进自身增殖, 维持肿瘤的持续生长。在恶性肿瘤细胞中的敲低Rab27基因抑制肿瘤细胞的增殖与侵袭, miR-23的外泌体输出减少, 细胞内miR-23进一步升高[12], 因此恶性肿瘤的发生会伴随着外泌体miRNA的释放, 以便在细胞内部创造较好的增殖环境。

外泌体miRNA的分泌除了为自身创造较好环境外, 也会影响其他肿瘤细胞, 促进恶性肿瘤细胞相关功能。鼻咽癌患者体内高表达的外泌体包括miR-24、miR-891、miR-106、miR-20、miR-1908和miR-302, 其可以通过调节丝裂原活化蛋白酶（mitogen-activated protein kinase, MAPK）以及转化生长因子-βⅡ受体（transforming growth factor-beta receptor Ⅱ, TGFβRⅡ）/ 细胞外调节蛋白激酶（extracellular regulated protein kinase, ERK）信号通路来调控受体细胞, 进而达到促进恶性肿瘤细胞增殖的

作用[13, 14]。外泌体miRNA也可以在恶性肿瘤的侵袭和转移中发挥作用。miR-21是研究较为广泛的外泌体miRNA之一, 在肝细胞癌中有较高的特异性和诊断价值, 其可通过靶向调控程序性细胞死亡4蛋白（programmed cell death 4, PDCD4）并激活其下游c-Jun 氨基端激酶（c-Jun N-terminal kinase, JNK）信号通路, 显著增强受体癌细胞的迁移和侵袭能力[15], 值得注意的是外泌体miR-10可以靶向抑制Krüppel样因子4（Krüppel-like factor 4, KLF4）和同源框蛋白D10（homeobox D10, HOXD10）mRNA的表达, 最终也可以促进恶性肿瘤细胞的侵袭能力[16]。在对抗恶性肿瘤化疗药物中, 恶性肿瘤细胞可以通过外泌体进行调控, 从多西紫杉醇抗性乳腺癌中分离的外泌体细胞中含有几种上调的miRNA可降低乳腺癌细胞的化疗敏感性, 但这种特性同时也可以成为监测恶性肿瘤患者特定化疗药物耐药性的手段, 并调节耐药性, 外泌体miR-122可以被运输到肝细胞癌（hepatocellular carcinoma, HCC）细胞对其进行负调控, 提高HCC细胞化疗药物的敏感性, 这方面的应用值得更多的研究, 有较大的临床意义[17]。

2.2 外泌体miRNA对血管和免疫细胞的影响

外泌体miRNA还可以通过影响肿瘤微环境为增殖、转移创造较好的环境。血管生成作为恶性肿瘤的主要标志, 是恶性肿瘤进展的重要因素。恶性肿瘤来源的外泌体miRNA, 有助于血管形成。肺癌细胞释放的外泌体miR-21可用通过STAT3依赖性机制诱导血管内皮生长