大鼠一般操作技术

称重 编号 随机分组
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实验动物染毒途径和方法
经口染毒
（喂饲、灌胃、吞咽胶囊等）
经呼吸道染毒（静式、动式和气管内注入） 经皮肤染毒
注射染毒
（皮下、皮内、肌内、腹腔和鼠尾静脉注射等）
其它
（直肠内、鼻腔等）
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灌胃
抓取老鼠时应是鼠 成竖直线
灌胃成功时，所遇阻 力较小
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心脏采血法
动物仰卧→固定器固定→剪左侧心区毛→ 皮肤消毒→小号针头注射器在3-4肋间刺入。可达
0.5mL
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动物的处死
脊椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台 上，右手抓住尾根部，快速、不间断地向后、 略向上使劲拉，使动物的颈椎以致脊椎脱臼死 亡。
过量麻醉法
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动物的抓取和固定
单手固定 双手固定 固定器 固定板
注意抓取动物的 手法
抓取固定时力量 大小适宜
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性别鉴定
未成熟鼠生殖器发 育不明显，肛门与 生殖器之间的距离 来区分。远——♂、 近——♀。
成年鼠：雄性卧位 可见睾丸，雌性可 见腹部有12个乳头。
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动物的编号标记
常用标记，两种染 料（苦味酸和中性 红或品红）
注射）
✓ 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、心脏采血、眼眶取血） ✓ 7. 实验动物的处死
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实验流程
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动物的选择
动物物种选择基本原则：
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外观观察
健康动物首先看外观： 体形丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛 明亮，反应行动灵活。
有无明显疾病症状 体重、年龄
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血管由红变白 ，按压止血
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皮下注射
俯卧固定，左手拇指和 食指捏住颈背部皮肤提 起，右手持针沿纵轴方 向刺入皮下，进针时感 觉有阻力，继续刺入， 突然阻力消失，活动针 头，确认刺入皮下即可 注射药液。
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皮内注射
俯卧保定，与皮肤平行 刺入捏住的皮肤，注射 部位局部形成皮丘。为 避免药液流出，停留片 刻，再将针头拨出
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生物标本的采集
血液采集
（断尾采血、眼眶采血、心脏采血等）
尿液采集
粪便采集
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尾尖静脉采血法
固定→用手轻揉鼠尾→静脉充血后剪尾尖（12mm）→用手从尾根向尾尖推挤→采血→干棉 止血。每次0.1mL
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眼眶后静脉丛采血
左手固定动物→滴少量10%可卡因于动物眼内→ 右手持消毒过毛细吸管→以抗凝剂湿润内壁→ 眼睑和眼球间旋转刺入→采血后消毒纱布止血 30秒。每次0.2-0.3mL
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抓 称 给采麻 解 取 重 药血醉 剖
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注意事项：
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被 咬伤需立即用清水冲洗并用碘酒消毒。
2. 抓取动物时用力要恰当,防止动物窒息死亡。 3. 注射给药时要注意安全，注射器不用时要盖
上盖子，不要被扎伤。 4. 实验动物在做完所有操作后才进行处死，处
死后的动物不要与其他垃圾混合丢弃。
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脏器标本的采集
将动物固定于解剖台上，从耻骨联合至下颌沿 正中线切开皮肤，再从耻骨联合至肋骨下缘沿 腹正中线切开腹壁肌肉（不要用力过猛，以免 切破腹腔脏器，特别是膀胱）。从肋骨下端向 脊柱方向，将两侧腹壁剪开，以便观察腹腔内 脏器。应注意不可将腹腔内脏器翻乱，应有次 序地检查。
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灌胃时注意胃容量 0.1ml/10g-0.3ml/10g ，
＜1mL
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腹腔注射
腹下1/3外侧，避 免损伤实质器官
30-45°角刺入 扎入时有“落空
感”，回抽无尿 液或血液
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尾静脉注射
酒精擦拭尾部
左手食指，拇 指配合按住尾 端
右手持注射器 ，针尖轻轻抬 起与血管平行 刺入
大鼠常规操作技术
来自百度文库
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一、实验目的：
1.了解动物实验的目的和意义 2.了解实验动物选择和染毒途径。 3.掌握大鼠实验的基本操作技术。
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二. 实验内容：
1. 实验动物的选择 ✓ 2. 实验动物的抓取和固定 ✓ 3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记 ✓ 5. 实验动物给药途径和方法（灌胃、腹腔、皮下注射、尾静脉
先左后右，先上后 下
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穿耳孔法
左耳代表十位，右耳代 表个位
应注意防止孔口愈合， 多使用消毒滑石粉涂抹 在打孔局部
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实验动物的分组
原则： 同一实验中，实验动物的年龄尽可能一致，实验动物 体重大致相近； 同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%； 不同组间同性别动物体重均值差异小于5%；♀♂动物 各半，且♀♂实验结果分开统计、分析。