产前诊断中心 PPT课件

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CVS方法—经腹取样


双针活检系统由1根长15cm、外径1.2mm 的18号引导套针,及1根长20cm、外径 0.8mm的22号活检针组成。 在超声引导下,先将引导套针经腹壁及子 宫穿刺入胎盘绒毛边缘部分,拔出针芯, 然后将活检针经引导套针内送入胎盘绒毛 组织,连接含2-4ml生理盐水的20ml注射器, 以5ml的负压上下移动活检针吸取绒毛组 织
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脐带血细胞培养


量少于外周血(一般5ml注射器小于14滴) 其他同外周血
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Thanks!
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羊水细胞培养中存在的问题 ——细胞不生长、不贴壁


最常见的原因是支原体污染 培养基PH不适当,偏酸(<6.4或偏碱> 7.4均不利 最合适的穿刺时间16-20周
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羊水细胞培养中存在的问题 ——细胞及染色体收获少




每天观察细胞生长(梭形细胞背景上有透 明透亮的圆形细胞) 滚圆的细胞与有丝分裂的圆形细胞鉴别 操作应轻柔,胰酶消化法要掌握好胰酶消 化的时间 羊水中胎脂多时3-5天可轻轻动一动,减少 胎脂贴壁占据空间 低渗时间短于外周血(一般3-5分钟)
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产前诊断的方法



胎儿组织取样(皮肤、肝脏) 胎儿镜(fetoscope) 胚胎镜(embryoscope) 胎儿超声波图象(fetal ultrasound imaging) 母体外周血胎儿细胞检测(cell-storing)
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绒毛穿刺取样—历史
穿刺前孕妇俯卧位摇动腹部 超声波定位引 导 采用22号或21号带芯长腰穿刺针头 垂直、快速进针 抽取羊水2ml弃置,换空针抽取羊水
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羊膜腔穿刺—并发症



胎儿丢失 羊膜腔感染 羊水渗漏 穿刺部位的出血、血肿
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羊穿并发症---胎儿丢失



1976年,Nihd Registry 报道流产率3.5% 1986年,Tabor et al 报道流产率1.7% 1995年,Bombard et al 报道流产率1.3% 2000年, Antsaklis 报道流产率2.1%
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脐带穿刺部位
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脐血穿刺—确定胎儿血样


血红蛋白电泳 Kleihauer-Betke试验:胎儿红细胞在酸中稳 定 APT试验:NaOH中胎儿血为粉红色 有核红细胞的出现
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脐血穿刺—排除脐血中母血污染
X染色体DMD基因内部5对CA重复
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脐带血穿刺—并发症



穿刺部位的出血 脐带血肿 短暂性胎心减慢 宫内感染 胎儿丢失(流产、早产) 大多数并发症为短暂性和非致命性
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脐带血穿刺并发症—胎儿丢失


Maxwell 1991年报道胎儿超声结构筛查示 正常超声者脐穿的流产率为1%(1/76); 异常超声者流产率为7%(5/76);胎儿结 构明显异常者流产率为25%(9/36) Antsaklis 1998年报道胎儿超声结构筛查示 正常超声者脐穿的流产率1%(2/191); 异常超声者流产率为13%(11/84)
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脐带血穿刺—时间
16周—分娩(最佳24—28周)
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脐带血穿刺—取血量

3—5ml 20周后抽取6—8ml对胎儿循环无不良影响
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脐带血穿刺—适应症


胎儿核型分析或基因检测(胎儿畸形、严重的 FGR、羊水或绒毛细胞培养失败、羊水或绒毛培 养结果为嵌合体、非免疫性胎儿水肿、脆性X综合 症等) 胎儿血液疾病分析(血型、血小板计数等) 胎儿感染(弓形虫、病毒感染等) 胎儿情况评估(酸碱平衡、甲功等) 遗传性疾病(单基因病、凝血障碍、血红蛋白病、 代谢性疾病等) 胎儿治疗(宫内输血、宫内药物治疗等)



1975年 我国鞍山钢铁公司铁东医院首次问 世(经宫颈盲吸法,准确率95%,自然流 产率9.3%,出生婴儿未发现异常) 莫斯科产科研究所(超声引导下经宫颈吸 样) 1983您 Ward 和 Brambati 分别于英国和意 大利发表文章介绍绒毛取样及核型分析
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绒毛穿刺取样—时间
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脐带血穿刺—历史



1972年,Valenti用儿科膀胱镜在中期妊娠 孕妇行子宫切开术插入羊膜腔,获取脐血 标本。 1979年,Rodeck和Campell应用胎儿镜行脐 带血管穿刺,但由于并发症高,应用受到 限制。 1983年,Ternand Daffos超声引导下经皮 脐血管穿刺取血(Cordocentesis)





细菌 真菌 支原体 病毒 其他细胞
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羊水细胞培养中存在的问题 ——母体细胞污染


若胎儿为男性,由于母体细胞污染误将胎 儿诊断为嵌合体 母体细胞在培养中占优势
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羊水细胞培养中存在的问题 ——母体细胞污染的预防


羊水穿刺时,把最先抽得的1-2ml羊水弃掉 染色体多态现象的测试 羊水细胞、母体细胞 的HLA组织定型鉴别
产前诊断中绒毛、脐血、 羊水取样及标本培养
南京大学附属鼓楼医院妇产科 产前诊断中心 李 洁 副主任医生 2006年11月
产前诊断指征



夫妇任一方有染色体异常; 曾生育过染色体病患者; 夫妇任一方为单基因病患者; 曾生育过单基因病患者; 有不明原因的自然流产史、畸胎史、死产 或新生儿死亡史;
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绒毛组织的染色体检查—直接法

绒毛组织的分离洗脱 加秋水仙素(终浓度2ug/ml,可一次加,也可分 次少量加) 37OC 5%CO2培养箱培养45分钟 低渗(1%枸橼酸钠低渗10分钟或1%枸橼酸钠和 0.075mol/l 1:1低渗40分钟) 预固定(甲醇:冰醋酸 3:1)10分钟 固定(甲醇:冰醋酸 3:1)10-20分钟 冰醋酸解离绒毛细胞(轻吹打) 制片


CVS的流产率不比amniocentesis高 经宫颈和经腹取样安全性相同 (Jackson,1992) 多胎取样高于单胎取样(Pergament,1992)
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CVS并发症-LRD



1999年WHO发布CVS综合性资料认为CVS 与LRD无关(216,381例CVS中115例出现 LRD发生率1:1881,总的人群发生率1: 1642) 世界各地相关资料综合,9周以下CVS出现 LRD的机会高,但原因尚不清楚 CVS不应在小于孕10周的条件下进行
妊娠9—11周
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绒毛穿刺取样—抽取量
20mg左右
(染色体核型分 析约需10mg,DNA分析约需 5mg,生化测定约需5-10mg)
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绒毛穿刺取样—并发症
胎儿丢失 胎儿肢体发育缺陷(LRD)
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CVS并发症—胎儿丢失
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绒毛穿刺取样—方法
经宫颈(transcervical) 经腹(transabdorminal)
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CVS方法—经宫颈取样



B超采用高分辨的扇扫式或凸阵式实 时超声诊断仪,经腹探头频率 3.5MHz,经阴道探头频率5 - 7MHz。 采用特制较细的滋养层活检导管 (多聚乙烯导管),其塑料导管外 径1.4 – 1.6 mm,长20cm,带有导管 芯,导管前端稍弯,外形似宫腔探 子。 导管另一端连接10-20ml含有2-4ml 生理盐水的注射器
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羊水细胞培养—细胞类型


成纤维样细胞(F细胞) 上皮样细胞(密集型上皮样细胞-E细胞、镰 刀样上皮细胞、圆形上皮细胞) 羊水样细胞(AF细胞)
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羊水细胞培养—收获方法


原位法 消化法 刮取法
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羊水细胞培养中存在的问题 ——污染
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产前诊断指征



羊水过多的孕妇; 夫妇任一方曾接触致畸因素; 孕妇年龄大于35岁; 有遗传病家族史的近亲婚配的夫妇。 产前筛查高风险的孕妇 超声胎儿结构筛查胎儿有结构异常的孕妇
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产前诊断的方法



羊膜腔穿刺取样(amniocentesis) 绒毛穿刺取样(chorion villus sampling,cvs) 脐带血取样(periumbilical cord blood sampling,PUBS) 植入前诊断(preimplantaton genetic diagnosis,PGD)
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羊膜腔穿刺—时间
16—20周
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Байду номын сангаас
羊膜腔穿刺—抽取量
20—30ml
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抽取的羊水用途



核型分析——诊断染色体病 DNA分析——诊断单基因病 生化测定——诊断NTD、代谢性疾病
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羊水穿刺


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CVS注意事项



动作要轻柔 穿刺部位在胎盘绒毛叶 抽吸次数不宜过多
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羊膜腔穿刺—历史


1956年 Fucks进行羊膜腔穿刺行胎儿性别 鉴定及胎儿Rh溶血诊断 1966年 Mark steele和Roy Breg从羊水中分 离出羊水细胞培养成功并行胎儿核型分析
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绒毛组织的染色体检查—悬浮培养法


绒毛挑选洗脱 绒毛组织剪成小块入培养瓶(25ml培养瓶 每瓶10mg) 加特定培养液3ml 培养3-6天 收获(加秋素、低渗、固定、制片)
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绒毛组织的染色体检查—贴壁培养法




绒毛组织挑选洗脱 绒毛组织剪成小块 加0.25%+0.02%EDTA 5ml 37OC 摇床中20 分钟 加培养基终止消化,离心后弃上清加培养 基接种培养5-10天 收获
序列的连锁分析
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绒毛组织、羊水细胞、 脐血细胞培养
绒毛组织的培养

直接法 培养法(悬浮培养、贴壁培养)
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绒毛组织的染色体检查—直接法

孕早期Langhan’s细胞有较高的有丝分裂活 性,能提供足以分析的良好有丝分裂相, 较绒毛培养简易可靠、操作简单快速
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