水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化_庞荣丽

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果胶含量的测定

果胶含量的测定

果胶含量的测定配制1mg/ml 半乳糖醛酸标准液,之后分别吸取0,2,4,6,8,10mL ,分别移入100mL 容量瓶中用蒸馏水定容;然后于8支20mL 刻度试管中,分别加入浓度为0,20,40,60,80,100ug/mL 的半乳糖醛酸标准液1mL ;然后小心地沿试管壁加入浓硫酸6mL ,混匀,在沸水浴中加热20min ,冷却至室温后;各加入0.5mL 0.15%咔唑乙醇溶液摇匀。

在暗处放置2小时,在530nm 波长处测定消光值,绘制标准曲线。

样品测定:称取样品2.5g(不需研磨),置于50mL 三角瓶中,加入40mL 95%乙醇,在沸水浴上加热30min ,除去糖分及其它物质。

用滤纸过滤,弃去滤液,沉淀放入原三角瓶中,加水30mL ,在水浴上50℃保温30min ,以溶解可溶性果胶。

过滤,用少量水洗涤滤纸和沉淀。

滤液移入100mL 容量瓶中加水定容。

此为可溶性果胶液。

沉淀放入原三角瓶中,加40mL 0.5mol/L 浓硫酸,在沸水浴上加热1小时,以水解不可溶性果胶,冷却后移入100mL 容量瓶中,加0.5mol/l 硫酸定容,此为不可溶性果胶测定液。

吸取可溶性果胶液和不可溶性果胶液各0.1mL ,加入0.9mL H 2O 到20mL 的刻度试管中。

接着按标准曲线的操作步骤进行测定,然后小心地沿试管壁加入浓硫酸6mL ,混匀,在沸水浴中加热20min ,冷却至室温后,各加入0.5mL 0.15%咔唑乙醇溶液摇匀。

在暗处放置2小时,在530nm 波长处测定消光值,绘制标准曲线。

并从标准曲线上查出相应的含量,按进行计算。

重复三次测定。

果胶=不可溶性果胶+可溶性果胶;果胶含量(mg/g)=VcW V C *10*t*3C ——从标准曲线上查得的半乳糖醛酸含量(ug/mL )Vt ——样品的最终体积(mL)——可溶性果胶为100mL ,原果胶为100mL Vc ——测定时所用的体积(mL) W ——样品重量(g )0.15%咔唑:0.15g 溶于100ml1mg/ml 半乳糖醛酸:0.1g 溶于100ml 0.5mol/L 硫酸:28ml 定容到1000ml。

《园艺产品贮藏与保鲜》课件——1.2.3园艺产品果胶物质含量的测定

《园艺产品贮藏与保鲜》课件——1.2.3园艺产品果胶物质含量的测定
适用范围 各种食品。
优点 方法稳定可靠。
缺点 操作较繁琐费时,果胶酸钙沉淀中易夹杂其他胶态物质,使本法选择性差。
仪器 布氏漏斗、G2垂融坩埚、抽滤瓶、真空泵。
测定方法 测 定 方 法
样品处理 提取果胶
干燥样品 新鲜样品 水溶性果胶的提取 总果胶的提取
测定
测定方法
样 新鲜 样品

称取试样 30-50g
热过滤和热洗涤沉淀
加501mml,ol放/置LC5Hm3CinO是度O为,H 了加降快低过加L溶滤C1a液和mCl的洗o22l黏涤/5ml
速度,并增大杂质的
趁热恒 溶解度,使其易洗去
重滤纸 过滤
加热煮沸5min
(m1-m2)×0.9233
结果计算:X=
×100
m×(25 250)×1
式中:X——果胶物质(以果胶酸计)的含量,g/100g m1——果胶酸钙和滤纸或垂融坩埚质量,g m2——滤纸或垂熔坩埚的质量,g m——样品质量,g 0.9233——由果胶酸钙换算为果胶酸的系数
来源的试样得到的果胶酸钙中钙所占的比例并不相同,从而测得的钙量不能准确 计算出果胶物质的含量,用法受到一定限制。
蒸馏滴定法 蒸馏时有一部分糖醛分解了,使回收率较低,故此法也不常用。
测定方法
重量法
原理 将果胶物质从样品中提取出来,加入氯化钙生成不溶于水的果胶酸钙,测其果胶酸钙质 量或换算成果胶酸的质量。
充分混合,室温 放置30min
流动水冷却至室温
在530nm下
以0号为空白 测定吸光度
果胶提取液
稀释
沸水浴加热 10min
混合,冷却
绘制标准工作曲线
含半乳糖醛 酸约 10-70ug ml

食品中果胶含量的检测及分析

食品中果胶含量的检测及分析

食品中果胶含量的检测及分析近年来,随着人们对健康意识的提高,食品安全问题备受关注。

其中,果胶作为一种常见的食品添加剂,被广泛应用于食品工业中,起到增稠、保湿、增加食品口感等作用。

然而,果胶的合理使用量一直是个难题,因此,准确检测和分析食品中果胶的含量,具有重要的意义。

首先,我们需要了解果胶的特性。

果胶是一种天然的多糖,主要存在于植物的细胞壁中,其化学结构复杂,通常由果糖、半乳糖和葡萄糖等单糖单体组成。

由于果胶具有良好的增稠性和水胶性,因此常被用于制作果酱、果冻、果汁等食品。

然而,由于果胶的含量难以直接测定,我们需要采用科学的方法进行检测和分析。

一种常用的果胶检测方法是通过紫外分光光度法。

该方法的原理是利用果胶的特定吸收峰进行定量测定。

首先,将待测样品与硫酸交联,使果胶形成一种深紫色化合物。

然后,使用紫外分光光度计测定在特定波长下的吸光度值,并与标准曲线进行比对。

通过该方法,可以快速准确地检测食品中果胶的含量。

除了紫外分光光度法外,还可以采用高效液相色谱法(HPLC)进行果胶的分析。

该方法主要利用不同样品在液相色谱柱中的保留时间差异来测定果胶含量。

首先,将样品经过预处理,如提取、纯化等步骤,然后通过HPLC系统进行分析。

该方法能够同时检测多种含量不同的果胶,具有更高的灵敏度和准确度。

除了以上两种方法外,还可以通过核磁共振波谱(NMR)技术对果胶进行定性和定量分析。

核磁共振技术能够提供果胶的详细结构信息,并能够精确测定果胶的含量。

通过NMR技术,我们不仅可以了解果胶的基本组成,还能够探究果胶与其他成分之间的相互作用,为果胶的合理使用提供科学依据。

在食品工业中,合理使用果胶是确保产品质量和口感的重要因素。

因此,对于食品中果胶含量的检测和分析十分必要。

通过紫外分光光度法、HPLC和NMR等各种方法的结合应用,可以提高果胶检测的准确度和全面性。

同时,针对不同食品的果胶应用特点,应对果胶的使用量进行研究和控制,以确保食品的质量和安全。

果胶提取工艺优化及其对冷冻面包品质的影响

果胶提取工艺优化及其对冷冻面包品质的影响

果胶提取工艺优化及其对冷冻面包品质的影响魏姜勉【摘要】对橘皮中果胶的提取工艺进行了优化,通过纤维素酶和超声波的辅助处理使果胶产率得以提升,实验条件如下:纤维素酶用量25 U/mL,酶解时间35 min,酶解温度50℃,酶解pH值2.0,超声提取时间35 min,超声提取温度55℃.果胶的添加可使面包品质发生变化,添加果胶的面团在最大拉伸阻力和二氧化碳产气能力方面均有明显提升,添加果胶与否对面包的比容影响较小,冷冻面包与新鲜面包相比,以上指标变化情况基本一致.【期刊名称】《平顶山学院学报》【年(卷),期】2017(032)005【总页数】4页(P58-61)【关键词】果胶;工艺优化;冷冻面包【作者】魏姜勉【作者单位】黄淮学院生物与食品工程学院,河南驻马店463000【正文语种】中文【中图分类】TS201.1面包被称为人造果实,品种繁多,各具风味,是一种营养价值高,受大众欢迎的食品,但面包行业始终存在一个让消费者和经营者都苦恼的难题——面包的老化[1-3].刚出炉的面包松软,放置一段时间会变硬,风味口感都下降,因此,近年来冷冻面包开始出现.冷冻面包可以保证每位消费者都能吃到热气腾腾的面包,但冷冻过程会给面包的品质带来伤害,如:面团强度减弱,酵母活力降低,产品质构特性劣变,等等.改善冷冻面包的品质,使其可以在长时间冻藏后依然保持较强的发酵活力和较好的结构特性,是目前研究的热点[4-5].果胶是一种亲水性植物胶,广泛存在于高等植物的根、茎、叶和果的细胞壁中.果胶具有良好的乳化、增稠、稳定和胶凝作用,已经被广泛应用于食品、纺织、印染、烟草、冶金和医疗卫生等行业.果胶应用于烘焙食品中,不仅能改善食品的品质,还具有一定的营养价值.此外,国内果胶资源丰富,但加工利用率低,大部分原料都被直接丢弃,如能加以综合利用,将会带来巨大的经济效益[6-8].面包的改良在世界范围内从来没有停止过:法国曾生产出货架期为90 d的面包;在日本,人们将豆渣加入面包,使得面包风味得以改善,同时实现了蛋白质的互补.我国的面包行业起步较晚,与国外相比还存在相当大的差距,风味欠佳、老化严重、口感一般、保质期短是消费者和经营者都难以接受的事实.改善面包风味、延缓面包老化是我国面包行业亟须解决的一个重要问题[9] .随着各行各业的快速发展,我国每年的果胶需求量在不断增加,果胶销量预计每年将以3%~6%的速度递增,但国内果胶商业化起步较晚,产品质量较差,生产动力不足,每年大约80%的果胶仍需要进口.面对这一形势,改进我国的果胶生产工艺,提高我国果胶的生产力已经迫在眉睫.将果胶应用于面包制作,既可以让面团量增加,还可以提高面团的新鲜度、安定性和柔软性.不仅如此,考虑到果胶在冷冻食品中的应用可以达到减缓冷冻时晶体的生长速度,减少融化时糖分的损失和改善冷冻面团质量的目的,笔者拟对果胶的提取工艺加以优化,并对其在冷冻面包中的作用效果及机理进行探讨,明确果胶在冷冻面包中的作用与适用范围,为果胶在冷冻面包中的实际应用提供一定的理论指导[10-11].1.1 仪器与试剂电子分析天平,超声波清洗机,pH计,离心机,纤维素酶(11 000 U/g),95%乙醇,柠檬酸.1.2 原料新鲜砂糖橘橘皮,高筋粉,燕子酵母,甘汁园绵白糖,盐(原料均购自本地超市). 1.3 实验方法1.3.1 果胶提取新鲜砂糖橘橘皮于沸水中煮6~8 min,用蒸馏水漂洗至无色,置于恒温干燥箱中烘干(55 ℃),粉碎备用.准确称取处理过的橘皮粉末1.000 g,放入50 mL比色管中,加入25 mL蒸馏水,将比色管置于50 ℃水浴锅,加入纤维素酶酶解,用柠檬酸调节pH值,超声提取,冷却后加入浓度为95%的食用酒精,搅拌静置,过滤,产物于55 ℃恒温干燥箱中烘干至恒重,计算产率.1.3.2 冷冻面包的制作1.3.2.1 面包配方高筋粉、水(每100 g面粉加60 g水)、糖(10%)、盐(1%)、干酵母(2%)、果胶粉(1%),添加量参照文献[12]及预实验确定.1.3.2.2 冷冻面团的制作精确称取(±0.01 g)面粉300 g、干酵母6 g、糖30 g、水180 g以及果胶粉3 g,放入面包机中,选择面包机的和面功能,25 min后得到光滑有弹性,可以拉成均匀透明的薄膜的面团(未加果胶的面团也依照此法制作). 将调制完成的面团,分割成50 g左右的小面团,搓成圆形,置于自封袋中,放入-40 ℃的冰箱中速冻90 min,冻藏保存.实验时,将面团从自封袋中取出,置于烤盘中,在温度为25 ℃,相对湿度为80%的条件下解冻50 min.为作空白对比,需在相同条件下制作未加果胶粉的冷冻面团.1.3.2.3 面包制作将面团放入瓷盆,盖上一层保鲜膜,于25 ℃发酵40 min.称取适量发酵好的面团,滚圆后松弛15 min,用擀面杖压片,排气,并从一端将面片卷起呈圆柱状.在烘烤面包的模具内侧涂一层油,面团接缝处朝下置于模具中,在(37±1) ℃,相对湿度为80% 的醒发箱中醒发40 min.醒发完成的面包坯连同模具放入烤箱进行烘烤,上火160 ℃,下火180 ℃ ,烘烤30 min.添加果胶和不添加果胶的冷冻面团处理方式一致.1.3.3 果胶添加对冷冻面包品质的影响分别从面团拉伸特性、面团中二氧化碳产气能力和面包比容3个方面对添加果胶的冷冻面包加以考查.1.3.3.1 面团拉伸特性面团拉伸特性用质构仪进行测定,起始力0.1 N,测试距离60 nm,测试速度1 mm/s,面团最大拉伸抗力单位,N.1.3.3.2 面团中酵母产气能力的测定采用二氧化碳吸收滴定法[13].1.3.3.3 面包比容的测定参照GB14612—2008,在面包出炉5 min内,称取面包的质量,记为 M(g),测量面包的体积,记为V(cm3),面包比容S(cm3/g)的计算公式为:2.1 果胶提取工艺的优化选择纤维素酶用量、酶解时间、酶解pH值、酶解温度、超声波提取时间和超声波提取温度等6个因素对果胶的提取工艺进行优化.2.1.1 纤维素酶用量对果胶产率的影响分别选择0、10、15、20、25、30、35 U/mL的纤维素酶用量,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查纤维素酶用量对果胶产率的影响.由图1可知,添加纤维素酶时,果胶提取量明显提升,说明纤维素酶的加入对果胶的提取有显著效果.当纤维素酶用量为25 U/mL时,果胶产率最高,之后产率提升效果不太明显,说明纤维素酶对细胞壁的离解程度已经达到最大,故选择25U/mL的纤维素酶对橘皮进行处理.2.1.2 酶解时间对果胶产率的影响分别在20、25、30、35、40、45 min的时间内利用纤维素酶对橘皮进行酶解,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查酶解时间对果胶产率的影响. 由图2可知,酶解时间为35 min时,果胶提取量最大,之后果胶产率降低,说明纤维素酶的作用需要一定的时间,但是随着时间的延长,果胶会有所分解,从而使得果胶产率降低,故选择35 min作为果胶提取的优化条件.2.1.3 酶解pH值对果胶产率的影响选取1.4、1.6、1.8、2.0、2.2、2.4这6个pH值,用纤维素酶对橘皮进行酶解,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查酶解时的pH值对果胶产率的影响.由图3可知,果胶产率随着pH值的增大而减小,理应选择较低的pH值.但在实际操作中,过低的pH值会导致洗涤困难,酸的残留也会影响果胶的品质,并且,果胶在pH值较低的情况下也容易分解,故选择2.0作为果胶提取的pH值.2.1.4 酶解温度对果胶产率的影响分别选择30、40、50、60、70 ℃这5个酶解温度,用纤维素酶对橘皮进行酶解,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查酶解温度对果胶产率的影响. 由图4可知,酶解温度为50 ℃时,果胶提取量最大,较低的温度和较高的温度都不利于果胶的提取.这说明纤维素酶在50 ℃时对植物细胞壁的处理效果较好,温度较低时酶活力不足,温度较高时酶活力受损且果胶分解加剧,故选择50 ℃作为果胶提取的酶解温度.2.1.5 超声波提取时间对果胶产率的影响分别选择15、20、25、30、35、40 min的超声提取时间,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查超声波提取时间对果胶产率的影响.由图5可知,随着提取时间的延长,果胶产率增大,在35 min时果胶产率最大,之后会有所降低,这说明,超声时间延长会导致果胶的降解,故选择35 min作为超声提取的时间.2.1.6 超声温度对果胶产率的影响选择40、45、50、55、60、65 ℃作为果胶提取工艺中的超声温度,按照1.3.1中的实验条件,固定其余各因素参数,考查超声温度对果胶产率的影响.由图6可知,当超声温度在55 ℃时,果胶产率最高,随着超声温度的提高,果胶的产率有下降趋势,这说明过高的超声提取温度会导致果胶的分解作用加剧,故选择55 ℃作为超声提取的温度.2.2 果胶添加对冷冻面包品质的影响2.2.1 面团拉伸特性的测定添加果胶和未添加果胶的面团最大拉伸阻力如图7所示.由图7可知,对新鲜面团和冷冻面团而言,添加果胶都能使面团拉伸阻力增大,其中,新鲜面团拉伸阻力增大85%,冷冻面团拉伸阻力增大53.8%,说明果胶的添加能促使面团中的水分黏度增加,使得面团硬度和筋力增大,较高的面团硬度和筋力能促进面团的醒发和面包在烘烤过程中的膨胀.2.2.2 面团中二氧化碳的产气能力添加果胶和未添加果胶面团中二氧化碳的产气能力如图8所示.由图8可知,冷冻面团较新鲜面团而言,产气能力会有所下降,这主要是因为温度的降低导致酵母活性下降.果胶对新鲜和冷冻面团中二氧化碳的产气能力均有显著影响,其中新鲜面团二氧化碳产气能力增加117%,冷冻面团二氧化碳产气能力增加213%,说明果胶的加入对酵母而言起到了很好的保护作用.2.2.3 面包比容添加果胶和未添加果胶面包的比容如图9所示.由图9可知,冷冻面包和新鲜面包的比容在添加果胶之后均有所下降,但总体差异不大,说明果胶的添加与否对面包比容影响较小.通过纤维素酶和超声波的辅助处理,实现了橘皮中果胶提取工艺的优化,在纤维素酶用量为25 U/mL,酶解时间为35 min,酶解温度为50 ℃,酶解pH值为2.0,超声提取时间为35 min,超声提取温度为55 ℃时,果胶产率可以达到最大.果胶的添加可以让面包品质发生变化,通过新鲜面包和冷冻面包的对比,可以得出以下结论:添加果胶的面团在最大拉伸阻力和二氧化碳产气能力方面均有明显提升,添加果胶与否对面包的比容影响较小,冷冻面包与新鲜面包相比,以上指标变化基本一致.【相关文献】[1]李里特,江正强.烘烤食品工艺学[M].2版.北京:中国轻工业出版社,2010.[2]王仲礼,赵晓红.面包的老化及其影响因素[J].面粉通讯,2006(1):52-54.[3]SANZ PENELLA J M,COLLAR C,HAROS M.Effect of wheat bran and enzyme addition on dough functional performance and phytic acid levels in bread[J].Journal of Cereal Science,2008,48(3):715-721.[4]詹冬玲,任玉雪,闵伟红,等.面包老化机理及其分析技术的研究进展[J].食品工业科技,2013,34(23):353-355.[5]孙伟,金茂国,许素芬.提高冷冻面包面团稳定性的研究[J].粮食与饲料工业,1997(5):34-35.[6]谢明勇,李精,聂少平.果胶研究与应用进展[J].中国食品学报,2013,13(8):1-14.[7]MOHNEN D.Pectin structure and biosynthesis[J].Current Opinion in PlantBiology,2008,11(3):266-277.[8]陈豆弟,张露,代红灵.果胶提取工艺的研究进展[J].饮料工业,2012,15(2):8-11.[9]李小满.国内外面包工业的发展与市场现状[J].粮油食品科技,2001,9(6):17-19.[10]魏海香.甘薯果胶的制备及其理化性质研究[D].雅安:四川农业大学,2006.[11]赵延伟,耿欣,陈海华,等.面包及蛋糕的质构与感官评价的相关性研究[J].中国农学通报,2012,28(21):253-259.[12]RIBOTTA P D,PEREZ G T,LEON A E,et al.Effect of emulsifier and guar gum on micro structural,rheological and baking performance of frozen bread dough [J].FoodHydrocolloids,2004,18 (2):305-313.[13]陈潇淳.预处理条件影响面包酵母冷冻及冻藏过程发酵能力的研究[D].北京:中国农业大学,2011.。

NYT2016-2011水果及其制品中果胶含量的测定分光光度法

NYT2016-2011水果及其制品中果胶含量的测定分光光度法

NY/T 2016—2011 水果及其制品中果胶含量的测定 分光光度法1 范围本标准规定了用分光光度法测定水果及其制品中果胶含量的方法。

本标准适用于水果及其制品中果胶含量的测定。

本标准方法线性范围为1 mg/L~l00 mg/L,检出限为0.02 g/kg。

2 规范性引用文件下列文件对本文件的应用是必不可少的。

凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。

凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法3 原理用无水乙醇沉淀试样中的果胶,果胶经水解后生成半乳糖醛酸,在硫酸中与咔唑试剂发生缩合反应,生成紫红色化合物,该化合物在525 nm处有最大吸收,其吸收值与果胶含量成正比,以半乳糖醛酸为标准物质,标准曲线法定量。

4 试剂除非另有说明,所用水应达到GB/T 6682规定的三级水要求,所用试剂均为分析纯试剂。

4.1无水乙醇(C2H6O)。

4.2 硫酸(H2SO4,优级纯)。

4.3 咔唑(C12 H9N)。

4.4 67%乙醇溶液:无水乙醇+水= 2+1。

4.5 pH0.5的硫酸溶液:用硫酸调节水的pH至0.5。

4.6 40 g/L氢氧化钠溶液:称取4.0g氢氧化钠,用水溶解并定容至100 mL。

4.7 1 g/L咔唑乙醇溶液:称取0.100 0 g咔唑,用无水乙醇溶解并定容至100 mL。

作空白实验检测,即1 mL水、0.25 mL咔唑乙醇溶液和5 mL硫酸混合后应清澈、透明、无色。

4.8 半乳糖醛酸标准储备液:准确称取无水半乳糖醛酸0.100 0 g,用少量水溶解,加入0.5 mL氢氧化钠溶液(4.6),定容至100 mL,混匀。

此溶液中半乳糖醛酸质量浓度为1 000 mg/L。

4.9半乳糖醛酸标准使用液:分别吸取0.0 mL、1.0 mL、2.0 mL、3.0 mL、4.0 mL、5.0 mL半乳糖醛酸标准储备液(4.8)于50 mL容量瓶中,定容,溶液质量浓度分别为0.0 mg/L、20.0 mg/L、40.0 mg/L、60.0 mg/L、80.0 mg/L、100.0 mg/L。

香蕉皮果胶提取条件的优化

香蕉皮果胶提取条件的优化

香蕉皮果胶提取条件的优化摘要:以香蕉皮作为原料,对果胶提取条件进行优化,分别探讨了提取时间、提取温度、ph、料液比等因素对香蕉皮中果胶提取的影响。

然后通过正交试验得出,香蕉皮中果胶提取的最佳条件为提取时间90 min、提取温度85 ℃、ph 1.5、料液比1∶3(m/v,g∶ml),影响果胶产率的因素为ph>提取温度>提取时间>料液比。

在此优化条件下,香蕉皮果胶产率可达到6.23%,提取的果胶含量为82.6%。

关键词:香蕉皮;果胶;提取条件;正交试验;优化中图分类号:tq432.7+1 文献标识码:a 文章编号:0439-8114(2013)02-0415-03果胶是一种天然的高分子化合物,其是由d-吡喃半乳糖醛酸以1,4甙链连接而成的长链,通常以部分甲酯化状态存在,分子式为c14n+14h2on+22o12n+13(n=30~300),相对分子质量为50 000~300 000[1]。

果胶因具有良好的乳化、增稠、稳定和凝胶作用,被广泛应用于食品工业中,作为糖果、果冻、果汁、罐头及饮料的胶凝剂、增稠剂、稳定剂及蛋黄乳化剂等,果胶还是医药和化妆品工业的生产辅料。

茂名市高州盛产香蕉,香蕉皮是香蕉食用和加工后的废弃物,若得不到及时处理,不仅浪费资源而且污染环境,香蕉皮中果胶含量较高,若进行提取并加以利用,将会给香蕉皮的综合利用提供新的途径,促进香蕉产业的可持续发展。

1 材料与方法1.1 材料1.1.1 原料香蕉购于茂名市超市。

1.1.2 仪器 jy2502电子天平、re-52旋转蒸发仪、85-2数显恒温磁力搅拌器、722n型分光光度计、shz-d(ⅲ)循环水式真空泵、dhg-9246a电热恒温鼓风干燥箱、ds-1型高速组织搅碎机。

1.2 方法1.2.1 香蕉皮果胶提取工艺流程与步骤利用果胶在酸性溶液中的可溶性,将果胶从植物组织中萃取出来,利用果胶不溶于乙醇等有机溶剂的性质,将果胶沉淀析出[2],再经过相关工序可得到成品果胶。

水果果实中主要有机酸提取条件的优化

水果果实中主要有机酸提取条件的优化

水果果实中主要有机酸提取条件的优化庞荣丽;方金豹;郭琳琳;谢汉忠【期刊名称】《中国农业科学》【年(卷),期】2014(000)013【摘要】建立一种能同时测定水果果实中主要有机酸(柠檬酸、酒石酸、苹果酸、琥珀酸)含量的有效提取方法。

以柑橘、葡萄等为试材,以乙醇的水溶液为提取剂,采用超声提取的方法,对提取剂提取效果(乙醇溶液浓度配比、纯水提取效果及主要有机酸的稳定性、不同浓度乙醇溶液提取效果、10%乙醇溶液提取效果及主要有机酸的稳定性等)、提取条件(提取方式、超声提取时间等)进行优化试验研究。

用优化的提取方法对方法技术参数(检出限、精密度、重复性、准确度等)进行测试,并将测定结果与已有国标法测定结果进行比较分析。

水果果实中有机酸提取的适宜方法为乙醇溶液超声提取法:样品用10%乙醇溶液在超声波提取器中提取30 min,提取后加入硫酸溶液,使提取液中含有和流动相一致的硫酸质量浓度,然后用10%乙醇溶液定容,混匀后离心过滤。

取部分滤液用0.22μm水性滤膜针头过滤器过滤,供离子色谱分析用。

在此条件下,主要有机酸提取完全,且提取液在室温条件下稳定性好,至少在15 d内各主要有机酸不会转变为乳酸和乙酸。

优化后的提取方法精密度高(RSD为0.28%-1.20%),重复性好(变异系数为0.236%-3.02%(n=5)),准确度高(回收率为88.9%-101.2%),有机酸组分测定效果优于已有国标测定结果。

该方法快速、简便,准确度高、重现性好,适合水果果实中主要有机酸含量的测定。

【总页数】9页(P2625-2633)【作者】庞荣丽;方金豹;郭琳琳;谢汉忠【作者单位】中国农业科学院郑州果树研究所/农业部果品及苗木质量监督检验测试中心,郑州 450009;中国农业科学院郑州果树研究所/农业部果品及苗木质量监督检验测试中心,郑州 450009;中国农业科学院郑州果树研究所/农业部果品及苗木质量监督检验测试中心,郑州 450009;中国农业科学院郑州果树研究所/农业部果品及苗木质量监督检验测试中心,郑州 450009【正文语种】中文【相关文献】1.温室条件下桃果实发育过程中主要营养成分的动态变化与果实生长的关系 [J], 常美花;霍书新;曹熙敏;张素英2.桃果实发育过程中主要糖及有机酸含量的变化分析 [J], 沈志军;马瑞娟;俞明亮;蔡志翔;宋宏峰;李晓3.响应面法优化超声辅助提取果梅果实有机酸工艺 [J], 靳志飞;陈红4.乌梅有机酸提取条件优化及其对生物膜形成的抑制作用 [J], 薄晓玮;杨志萍;綦国红5.工艺条件对柿果醋中主要有机酸含量的影响 [J], 鲁周民;刘月梅;赵文红;白卫东;史清华因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

果胶含量的测定方法

果胶含量的测定方法

果胶含量的测定方法嘿,小朋友们!我来给你们讲讲果胶含量怎么测定啦。

嘿,你们知道吗?这就像是一场小小的侦探游戏呢。

有一种方法是重量法。

就好像我们要称一称果胶有多重一样。

首先呢,我们要把含有果胶的东西,比如水果或者蔬菜,弄成小小的碎块。

这就像我们把积木拆成一个个小方块一样。

然后,我们把这些碎块放在一种特别的液体里。

这种液体可以把果胶从其他东西里面分离出来。

等果胶都出来之后,我们再用一种神奇的方法,让果胶变成固体。

就像把水变成冰一样。

这个时候,我们就可以用一个小秤来称一称果胶有多重啦。

就像我们称自己的小玩具一样。

比如说,我们要测苹果里的果胶含量。

我们把苹果切碎,放进液体里,果胶跑出来后,我们把它变成固体,称出重量,再和苹果原来的重量比一比,就能知道果胶占了多少啦。

还有一种是比色法呢。

这就更有意思啦。

果胶有一种本领,它能和一些化学物质发生反应,反应之后会变出颜色来。

我们先把含有果胶的样品准备好,还是像前面一样弄成碎块。

然后,我们加入那些能和果胶反应的化学物质。

等反应完了,我们就会看到有颜色出现啦。

颜色的深浅和果胶的含量是有关系的。

就像我们画画的时候,颜料用得多,颜色就深;颜料用得少,颜色就浅。

我们可以用一种专门的仪器,看看颜色有多深,然后就能算出果胶有多少啦。

比如说,我们用橙子来测。

把橙子弄碎后,加入化学物质,有了颜色变化后,通过仪器看颜色深浅,就能知道橙子里果胶的含量啦。

另外,还有容量法。

这就像是用量杯量东西一样。

我们把含有果胶的东西处理一下,让果胶和其他化学物质反应。

这个反应会消耗一些液体。

我们通过知道消耗了多少液体,就能算出果胶的含量啦。

就像我们知道喝了多少果汁,就能算出还剩下多少一样。

这些方法都能帮助我们找到果胶这个小调皮鬼,知道它藏在食物里有多少呢。

2016年中国科技核心期刊综合大学学报类综合评价排序

2016年中国科技核心期刊综合大学学报类综合评价排序

间的延长,果胶提取率增加,但当提取率增加到一定程度后开始放缓[13].因此,应根据试验结果选取最适合的料液比,达到最大的提取效率.经直观分析和方差分析确定了毛樱桃果胶最佳提取工艺为料液比为1ʒ6㊁提取时间为2h㊁提取温度为90ħ,测得毛樱桃果胶含量为4.613%,此结果对进一步开发毛樱桃资源有重要意义,可为实际生产提供参考.致谢:本文是北华大学大学生创新创业项目(201617)研究成果的一部分,杨昊霖,李英娜,李晓,黄宝晶,兰击重同学参加了本实验研究工作.参考文献:[1]于丽红,赵伟,黄肖霄,等.毛樱桃叶化学成分的分离与鉴定[J].沈阳药科大学学报,2015,32(4):256-260.[2]杨新周,陆礼和.毛樱桃的化学成分研究[J].江苏农业科学,2014,42(4):264-265.[3]张成义,邵世和,史玉玲.长白山毛樱桃总黄酮对冻伤及炎症相关性的影响[J].中国免疫学杂志,2010,26(11):977-979.[4]高海生,赵希艳,郑立红.毛樱桃果实营养成分分析研究[J].河北职业技术师范学院学报,2000,14(4):38-40.[5]赵春艳.果胶在食品中的应用及其生产工艺分析[J].现代食品,2016(1):71-73.[6]张学杰,郭科,苏艳玲.果胶研究新进展[J].中国食品学报,2010,10(1):167-174.[7]曹锦萍.樱桃果肉中抗氧化和免疫调节活性物质的分离与结构鉴定[D].杭州:浙江大学,2015.[8]陈熠,熊远福,文祝友,等.果胶提取技术研究进展[J].中国食品添加剂,2009(3):80-84.[9]孙元琳,汤坚,吴胜芳,等.高效阴离子色谱法测定当归果胶多糖中的糖醛酸含量[J].中国食品学报,2008,8(6):128-132.[10]周倩,何小维,罗志刚.果胶的制备及其应用[J].食品工业科技,2007(9):240-247.[11]徐金瑞.苹果渣中果胶的提取及纯化技术研究[D].杨凌:西北农林科技大学,2003.[12]庞荣丽,张巧莲,郭琳琳,等.水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化[J].果树学报,2012,29(2):302-307.[13]邓朝霞,李亚格,赵丹华,等.水果皮果胶提取工艺研究[J].山东化工,2015,44(15):28-30.ʌ责任编辑:陈丽华ɔ2016年中国科技核心期刊综合大学学报类综合评价排序∗期刊名称综合评价总分排序期刊名称综合评价总分排序武汉大学学报信息科学版71.701上海大学学报自然科学版38.4021北京大学学报自然科学版67.902复旦学报自然科学版37.9022吉林大学学报地球科学版66.503重庆理工大学学报自然科学版37.8023JOURNAL OF ZHEJIANG UNIVERSITY SCIENCE B 60.104云南大学学报自然科学版37.5024成都理工大学学报自然科学版54.205内蒙古大学学报自然科学版36.2025武汉大学学报理学版53.906山东大学学报理学版35.5026中国海洋大学学报自然科学版50.807河北科技大学学报35.5026兰州大学学报自然科学版50.508辽宁工程技术大学学报自然科学版34.7028中山大学学报自然科学版50.409河北大学学报自然科学版34.3029西南大学学报自然科学版48.8010北华大学学报自然科学版34.0030暨南大学学报自然科学与医学版48.3011山西大学学报自然科学版34.0030南京大学学报自然科学版47.4012宁波大学学报理工版33.7032浙江大学学报理学版45.5013陕西科技大学学报33.7032中国科学院大学学报44.7014中国科学技术大学学报33.6034JOURNAL OF ZHEJIANG UNIVERSITY SCIENCE A 44.3015安徽大学学报自然科学版33.0035西北大学学报自然科学版42.2016石河子大学学报自然科学版32.0036济南大学学报自然科学版41.7017河南科技大学学报自然科学版31.4037厦门大学学报自然科学版41.0018河南大学学报自然科学版31.3038福州大学学报自然科学版39.6019 昆明理工大学学报自然科学版39.2020共59种∗源于中国科学技术信息研究所‘2017年版中国科技期刊引证报告(核心版)“,2017:114-115.623北华大学学报(自然科学版)第19卷。

果胶去除率测试方法

果胶去除率测试方法

果胶去除率测试方法
果胶去除率的测试方法有多种,以下是其中一种常用的方法:
使用咔唑比色法测定织物果胶含量,具体步骤如下:
1. 称取预先在105℃烘箱中烘至恒重的棉织物10g(精确到),放在以滤纸做成的纸筒中,纸筒置于脂肪萃取器中。

2. 在脂肪萃取器的烧瓶中加入120mL三氯甲烷,并置于恒温水浴中,调节温度,保持溶剂每小时虹吸循环3~4次,萃取6h后冷却。

3. 将萃取前后的织物在105℃烘干1h后,放入干燥器冷却30min后,称重。

4. 通过公式计算果胶去除率:果胶去除率 = $\frac{M_{0} - M_{1}}{M_{0}} \times 100\%$。

其中,$M_{0}$为精练前织物上果胶的量,$M_{1}$为精练后织物上果胶的量。

以上步骤仅供参考,建议咨询专业人士获取准确信息。

橘皮提取果胶实验报告(3篇)

橘皮提取果胶实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 了解果胶的化学性质和提取原理。

2. 掌握从橘皮中提取果胶的实验方法。

3. 分析影响果胶提取效率的因素,如提取时间、提取温度、pH值等。

二、实验原理果胶是一种天然高分子多糖,广泛存在于植物细胞壁中,尤其在柑橘类果皮中含量丰富。

果胶具有良好的凝胶性能,在食品、医药、化妆品等领域具有广泛的应用。

本实验通过酸浸提法从橘皮中提取果胶,并对其纯度和含量进行测定。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜橘皮、无水乙醇、盐酸、氢氧化钠、硫酸铜、碘液等。

2. 实验仪器:电子天平、恒温水浴锅、高速离心机、冰箱、研钵、烧杯、漏斗、滤纸等。

四、实验步骤1. 原料处理:将新鲜橘皮洗净,去籽,切成小块,置于冰箱中冷冻保存。

2. 酸浸提:将冷冻后的橘皮块放入烧杯中,加入适量的盐酸,搅拌均匀,室温下浸泡一段时间(如4小时)。

3. 离心分离:将酸浸提后的混合液以3000r/min离心10分钟,取上清液。

4. 沉淀果胶:在上清液中加入适量的乙醇,搅拌均匀,静置过夜,使果胶沉淀。

5. 过滤与洗涤:将沉淀的果胶用滤纸过滤,并用无水乙醇洗涤沉淀物。

6. 干燥与称重:将洗涤后的果胶沉淀物置于烘箱中干燥至恒重,称重。

7. 果胶含量测定:采用碘液滴定法测定果胶含量。

五、实验结果与分析1. 提取时间对果胶提取率的影响:实验结果表明,随着提取时间的延长,果胶提取率逐渐提高,但超过一定时间后,提取率增长缓慢。

这可能是由于橘皮中的果胶含量有限,延长提取时间并不能显著提高提取率。

2. 提取温度对果胶提取率的影响:实验结果表明,在室温下(约25℃)提取果胶的提取率最高。

温度过高或过低都会影响果胶的提取率。

3. pH值对果胶提取率的影响:实验结果表明,在酸性条件下(pH值约为1.5)提取果胶的提取率最高。

pH值过高或过低都会影响果胶的提取率。

六、实验结论1. 从橘皮中提取果胶的实验方法可行,酸浸提法具有较高的提取率。

2. 提取时间、提取温度和pH值是影响果胶提取率的关键因素。

水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化_庞荣丽

水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化_庞荣丽
70 mg·L-1 100 mg·L-1 1.5 1.2 0.9 0.6 0.3 0.0 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1.0 咔唑-乙醇溶液加入量 Carbazole - ethanol solution/mL
要从植物中分离出天然果胶难度大,因此,传统的果 胶定量测定都采用间接方法, 以测定果胶水解后生 成的各种产物的含量为基础,然后转换为果胶含量, 主要有重量法、容量法、比色法[4-6]。近年来,又陆续出 现 了 高 效 液 相 色 谱 法 (HPLC)[7]、 气 相 色 谱 法 (GC)[8]、 流动分析法[9]等。其中重量法操作繁冗、不稳定、回收 率低,容量法测定时,若样品中有颜色则不容易确定
Study on the colorimetry determination conditions of pectin in fruits and derived products
PANG Rong-li1, ZHANG Qiao-lian2, Байду номын сангаасUO Lin-lin1, FANG Jin-bao1*, XIE Han-zhong1, LI Jun1, LUO Jing1, WU Feng-kui1
收稿日期: 2011-07-13 接受日期: 2011-10-18 基金项目: 农业部 2006 年农业行业标准制修定项目(农财发[2006]64 号) 作者简介: 庞荣丽,女,副研究员,硕士。 Tel: 0371-66816453, E-mail: prlpang@ 觹 通讯作者。 Author for correspondence. Tel: 0371-65330995,E-mail: fangjinbao@
50 mg·L-1 90 mg·L-1

果胶的提取与果胶含量的测定

果胶的提取与果胶含量的测定

资料范本本资料为word版本,可以直接编辑和打印,感谢您的下载果胶的提取与果胶含量的测定地点:__________________时间:__________________说明:本资料适用于约定双方经过谈判,协商而共同承认,共同遵守的责任与义务,仅供参考,文档可直接下载或修改,不需要的部分可直接删除,使用时请详细阅读内容果胶的提取与果胶含量的测定一、引言果胶广泛存在于水果和蔬菜中,如苹果中含量为0.7—1.5%(以湿品计),在蔬菜中以南瓜含量最多(达7%-17%)。

果胶的基本结构是以α-1,4苷键连接的聚半乳糖醛酸,其中部分羧基被甲酯化,其余的羧基与钾、钠、铵离子结合成盐。

在果蔬中,尤其是未成熟的水果和皮中,果胶多数以原果胶存在,原果胶通过金属离子桥(比如Ca2+)与多聚半乳糖醛酸中的游离羧基相结合。

原果胶不溶于水,故用酸水解,生成可溶性的果胶,再进行提取、脱色、沉淀、干燥,即为商品果胶。

从柑橘皮中提取的果胶是高酯化度的果胶(酯化度在70%以上)。

在食品工业中常利用果胶制作果酱、果冻和糖果,在汁液类食品中作增稠剂、乳化剂。

二、实验材料、试剂与仪器材料:桔皮,苹果等;试剂:0.25% HCL,95%乙醇(AR),精制乙醇,乙醚,0.05mol/L HCl,0.15%咔唑乙醇溶液,半乳糖醛酸标准液,浓硫酸(优级纯)仪器:分光光度计,50mL比色管,分析天平,水浴锅,回流冷凝器,烘箱等三、实验步骤(一)果胶的提取1、原料预处理:称取新鲜柑橘皮20g(或干样8g),用清水洗净后,放入250mL容量瓶中,加水120mL,加热至90℃保持5-10min,使酶失活。

用水冲洗后切成3~5mm的颗粒,用50℃左右的热水漂洗,直至水为无色、果皮无异味为止(每次漂洗必须把果皮用尼龙布挤干,在进行下一次的漂洗)。

2、酸水解提取:将预处理过的果皮粒放入烧杯中,加约60mL 0.25% HCL 溶液,以浸没果皮为宜,调pH至2.0~2.5,加热至90℃煮45min,趁热用100目尼龙布或四层纱布过滤。

pectin检测方法

pectin检测方法

pectin检测方法
对于pectin(果胶)的检测方法,常见的有以下几种:
1. 高甲氧基果胶(HMP)法:这是一种常用的测定果胶含量的方法。

它通过酸水解样品中的果胶,然后使用高甲氧基化试剂与水解产物反应,形成可溶性复合物,并通过测定光密度或比色法来确定果胶的含量。

2. 基于葡萄糖单元的分析方法:此方法通过将果胶样品酸水解为葡萄糖单元,并使用酶反应或高效液相色谱等技术,测定葡萄糖单元的含量从而间接测定果胶的含量。

3. 紫外光谱法:该方法利用果胶在紫外光下吸收的特征波长,通过测定样品在特定波长下的吸光度来确定果胶的含量。

4. 比色法:这是一种常用的简便快速的果胶测定方法。

它通过与某种染料(如甲基纤维素蓝)反应,形成着色物质,通过比色测定样品的吸光度来确定果胶的含量。

需要注意的是,不同的检测方法在灵敏度、准确性和适用范围等方面可能有所差异,选择合适的方法应根据具体需求和实验条件来确定。

同时,还可以结合多种方法进行综合分析,以提高果胶检测的准确性和可靠性。

1。

果胶含量测定方法

果胶含量测定方法

果胶含量测定方法嘿,你问果胶含量测定方法啊?这事儿咱可得好好唠唠。

首先呢,你得准备好材料和仪器。

比如说要测的样品,像水果啊、蔬菜啊啥的,还有一些化学试剂,像酒精啊、盐酸啊啥的。

仪器呢,要有天平、烧杯、漏斗、离心机啥的。

就像你做饭得先准备好食材和锅碗瓢盆一样,测果胶含量也得把东西准备全乎了。

然后呢,把样品处理一下。

如果是水果,就把它切成小块,然后用榨汁机榨成汁。

如果是蔬菜,就把它切碎,加点水煮熟。

这样可以把果胶从样品里提取出来。

就像你从水果里挤果汁一样,把果胶也挤出来。

接着,把提取出来的汁液倒进烧杯里,加入一些酒精。

酒精可以让果胶沉淀下来。

就像你往水里加盐,盐会沉淀下来一样。

加完酒精后,搅拌一下,让果胶充分沉淀。

再然后,把烧杯里的混合物倒进漏斗里,过滤一下。

把沉淀下来的果胶留在漏斗里,把液体倒掉。

就像你用滤网过滤豆浆一样,把豆渣留下来。

接着,把漏斗里的果胶用清水冲洗一下,把上面的杂质洗掉。

然后把果胶放在纸上晾干,或者用烘箱烘干。

就像你把衣服晾在太阳下晒干一样,把果胶也晒干。

最后,用天平称一下干果胶的重量。

然后根据样品的重量和干果胶的重量,就可以算出果胶的含量了。

就像你知道了苹果的重量和苹果核的重量,就可以算出苹果核占苹果的比例一样。

我给你举个例子哈。

我有个朋友,他在做水果加工的生意。

他想知道他买的水果里果胶的含量高不高,就用了我上面说的方法来测。

他先把水果处理好,提取出果胶,然后沉淀、过滤、烘干、称重。

最后算出了果胶的含量。

他发现有些水果的果胶含量很高,有些水果的果胶含量很低。

他就根据这个结果,来决定用哪些水果做加工。

你看,测果胶含量并不难,只要按照步骤来,就能得到准确的结果。

菠萝皮提取天然果胶的优化条件研究

菠萝皮提取天然果胶的优化条件研究

菠萝皮提取天然果胶的优化条件研究
孙悦;任铁强
【期刊名称】《北方园艺》
【年(卷),期】2012(000)021
【摘要】采用酸法从菠萝皮中提取果胶,研究料液比、浸提时间、浸提温度、浸提液pH值4个因素对果胶收率的影响;再在单因素试验基础上进行正交实验设计,以期获得最佳提取工艺.结果表明:浸提温度是影响果胶收率的最为显著因素.最佳提取条件为:以盐酸为萃取剂,浸提温度90℃、浸提时间60 min、pH=2、料液比1∶ 20,该条件下果胶收率达5.1%.
【总页数】3页(P22-24)
【作者】孙悦;任铁强
【作者单位】辽宁石油化工大学石油化工学院,辽宁抚顺113001;辽宁石油化工大学石油化工学院,辽宁抚顺113001
【正文语种】中文
【中图分类】TS255.43
【相关文献】
1.超声波法协同提取菠萝皮果胶的研究 [J], 孙悦;荆慧;任铁强;贾卓慧
2.超声波-表面活性剂协同提取菠萝皮果胶的研究 [J], 赵梅;王晨霞
3.菠萝皮渣果胶的盐析法提取及理化性质研究 [J], 杭瑜瑜;王玉杰;孙国铮
4.响应面法优化乳酸辅助提取菠萝皮果胶的工艺研究 [J], 郑振峰;施伟梅;曾勤;
5.响应面法优化乳酸辅助提取菠萝皮果胶的工艺研究 [J], 郑振峰;施伟梅;曾勤
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热带水果中果胶的抽提、提纯和测定

热带水果中果胶的抽提、提纯和测定

热带水果中果胶的抽提、提纯和测定
陈葆新
【期刊名称】《食品工业科技》
【年(卷),期】1987(000)004
【摘要】作者以葡萄柚皮为原料,测定了抽提和提纯果胶的最适pH,处理时间和酸
溶液果皮的比例。

用乙醇沉淀法和果胶酸钙沉淀法分别对13种和7种热带水果测定了果胶含量。

还测定了6种水果从青转黄到成熟的不同阶段中果胶含量的变化。

最后,对8种最有希望的水果测定了作为果胶胶凝力指标的甲氧基含量。

【总页数】5页(P59-63)
【作者】陈葆新
【作者单位】
【正文语种】中文
【中图分类】R28
【相关文献】
1.热带亚热带水果胶孢炭疽菌对多菌灵的抗药性测定 [J], 张新怡;李雪;高兆银
2.抽提条件对酶制剂中果胶酶活力测定的影响 [J], 王清吉;王世成
3.粤北山区五种特色水果果皮中果胶含量的测定 [J], 严汉彬; 韩珍; 徐艳; 周舒萍
4.QuEChERS-UPLC-MS/MS法测定热带和亚热带水果中5种三唑类杀菌剂 [J], 田金凤;尚远宏
5.常见热带水果芒果果皮中果胶的提取 [J], 张影;夏晓彤;黄桂莲;李爱英;羊广兰;王颖
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mg·L-1;V—果胶沉淀 A 定容体积, 单位为 mL;m—
试样质量,单位为 g。
1.3 显色条件试验
设吸收波长 (360~700 nm)、0.1%咔唑-无水乙
醇 溶 液 用 量 (0.0~1.0 mL)、硫 酸 用 量 (1.0~9.0 mL)、
显色温度(40~100 ℃)、显色时加热时间(0~40 min)、
要从植物中分离出天然果胶难度大,因此,传统的果 胶定量测定都采用间接方法, 以测定果胶水解后生 成的各种产物的含量为基础,然后转换为果胶含量, 主要有重量法、容量法、比色法[4-6]。近年来,又陆续出 现 了 高 效 液 相 色 谱 法 (HPLC)[7]、 气 相 色 谱 法 (GC)[8]、 流动分析法[9]等。其中重量法操作繁冗、不稳定、回收 率低,容量法测定时,若样品中有颜色则不容易确定
收稿日期: 2011-07-13 接受日期: 2011-10-18 基金项目: 农业部 2006 年农业行业标准制修定项目(农财发[2006]64 号) 作者简介: 庞荣丽,女,副研究员,硕士。 Tel: 0371-66816453, E-mail: prlpang@ 觹 通讯作者。 Author for correspondence. Tel: 0371-65330995,E-mail: fangjinbao@
管中。 另分别移取 1.0 mL 各个浓度的半乳糖醛酸标
准系列溶液于玻璃试管中。 于试样及标准溶液中各
加入 0.25 mL 0.1%咔唑-无水乙醇溶液,产生白色絮
状沉淀,不断摇动试管,再快速加入 5.0 mL 硫酸。 立
刻将试管放入 85 ℃水浴振荡器内加热 20 min,取出
后放入自来水浴中使之迅速冷却,在 1.5 h 时间内用
果 树 学 报 2012,29(1): 302~307 Journal of Fruit Science
水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化
庞荣丽 1,张巧莲 2,郭琳琳 1,方金豹 1*,谢汉忠 1,李 君 1,罗 静 1,吴丰魁 1
(1 中国农业科学院郑州果树研究所/农业部果品及苗木质量监督检验测试中心(郑州),郑州 450009; 2 许昌职业技术学院园林园艺系,河南许昌 461000)
Study on the colorimetry determination conditions of pectin in fruits and derived products
PANG Rong-li1, ZHANG Qiao-lian2, GUO Lin-lin1, FANG Jin-bao1*, XIE Han-zhong1, LI Jun1, LUO Jing1, WU Feng-kui1
摘 要:为研究水果及其制品中果胶测定方法,以半乳糖醛酸为标准物质,对硫酸-咔唑比色法测定水果及其制品中 果胶含量的比色条件如吸收波长、咔唑-无水乙醇溶液用量、硫酸用量、显色温度、显色时间、显色后稳定时间等进行 了优化和系统研究。 结果表明,最佳显色条件为在 1.0 mL 滤液中,加入 0.25 mL 0.1%咔唑-无水乙醇溶液,迅速加入 5.0 mL 硫酸,在 85 ℃水浴中加热 20 min,自来水浴中冷却,显色后 1.5 h 内在 525 nm 波长条件下测定。 在此条件下, 标准曲线线性范围广、相关性良好,精密度和准确度高,均符合相关标准要求。 关键词: 果胶; 比色法; 硫酸; 咔唑 中图分类号:S66 文献标志码:A 文章编号:1009-9980(201荣丽等: 水果及其制品中果胶含量的比色法测定条件优化
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滴定终点,应用范围也受到限制,而 HPLC、GC 和流 动分析法都要求用特定的检测仪器, 并且运行成本 较高。目前,已有关于比色法对果胶含量进行测定的 研究报道[10-11],但没有针对水果及其制品中果胶的测 定方法标准。 我们按照国家有关测定方法标准的要 求,对测定和显色条件进行了试验,以期为制定水果 及其制品中果胶物质的测定方法标准提供科学依 据。
Abstract: In order to research the determination method of pectin content in fruits and derived products, coloring conditions of sulfuric acid-carbazole colorimetry including absorption wavelength, amount of carbazole-ethanol solution and sulfuric acid, temperature, reaction time, and stabilization time after coloring were optimized using galacturonic acid as standard substance. The results showed that the optimum coloring conditions were adding 0.25 mL 0.1% carbazole -ethanol solution and adding 5.0 mL sulfuric acid quickly to 1.0 mL filtrate, water bathing for 20 min at 85 ℃, cooling down quickly with running tape water bath, and measuring at 525 nm wavelength within 1.5 h after coloring. Under the conditions, it had wide linear range standard curve, good correlation, high precision and accuracy,and were in line with relevant standards. Key words: Pectin; Colorimetry; Sulfuric acid; Carbazole
果胶广泛分布于水果、蔬菜等植物中,未成熟果 实内的原果胶在细胞壁内与纤维素和半纤维素结合 在一起[1],不溶于水。当果实成熟时,原果胶变为可溶 性果胶[2],能溶于水,但不溶于乙醇和乙醚。 新鲜水 果、植物的根、叶和绿茎中果胶含量特别丰富,由于 含有亲水基团,果胶与水有强大的结合力,是有力的 凝 胶 化 剂 ,广 泛 应 用 于 食 品 、制 药 和 化 妆 品 等 行 业 [3]。
(1Zhengzhou Fruit Research Institute, CAAS/ Monitor & Test Center of Fruit and Nursery Stock Quality , the Ministry of Agriculture, Zhengzhou, Henan 450009 China; 2Department of Landscape & Horticulture, Xuchang Vocational Technical College, Xuchang, Henan 461000 China)
70 mg·L-1 100 mg·L-1 1.5 1.2 0.9 0.6 0.3 0.0 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1.0 咔唑-乙醇溶液加入量 Carbazole - ethanol solution/mL
50 mg·L-1 90 mg·L-1
吸光度 A
波长 Warelength/nm 图 1 半乳糖醛酸吸收曲线 Fig. 1 Galacturonic acid absorption curve
吸光度 A 吸光度 A
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果树
行吸收波长扫描,结果见图 1。 可以看出,50 mg·L-1 和 90 mg·L-1 的半乳糖醛酸溶液表现出一致的规律, 即与咔唑试剂发生缩合反应后, 生成的紫红色络合 物 在 394 nm 附 近 和 525 nm 附 近 处 各 有 1 个 吸 收 峰, 在 525 nm 附近吸光度最大。 因此本方法选择 λmax=525 nm 作为合适的工作波长。 2.1.2 咔唑无水乙醇溶液用量的确定 咔唑无水乙 醇溶液为显色剂,其加入量严重影响显色效果。按试 验方法,在显色温度 85 ℃,加热时间 20 min,硫酸加 入量 5.0 mL 条件下,改变 0.1%咔唑-无水乙醇溶液 用量,测其吸光度 A,重复 3 次,结果见图 2。 可以看 出,无论是 70 mg·L-1 还是 100 mg·L-1 的半乳糖醛酸 溶液, 在咔唑-无水乙醇溶液用量为 0.20~0.35 mL 时吸光度较大,用量为 0.25 mL 时吸光度最大。 故选 择咔唑-无水乙醇溶液最佳用量为 0.25 mL。
1 材料和方法
1.1 材料 标准物质:半乳糖醛酸(分析纯)。 试验样品:香蕉;猕猴桃;桃;甜樱桃;橙汁;葡萄 汁。 试剂:无水乙醇(优级纯);氢氧化钠(分析纯);
硫酸(优级纯,与咔唑-无水乙醇溶液不应产生颜色 反应);咔唑(分析纯)。
仪器:水浴振荡器;离心机;分光光度计。 1.2 方法 1.2.1 方法原理 用无水乙醇沉淀试样中的果胶, 在碱性条件下,经水解后生成半乳糖醛酸,后者在硫 酸中与咔唑试剂发生缩合反应,生成紫红色络合物, 该络合物在 525 nm 处有最大吸收,其吸收值与果胶 含量成正比,以半乳糖醛酸为标准物质,标准曲线法 定量。 1.2.2 样品预处理 称取 1.0 g~5.0 g(精确至 0.001 g)试样于 50 mL 刻度离心管中,加入少量滤纸屑,再 加入 35 mL 约 75 ℃的无水乙醇, 在 85 ℃水浴振荡 器中加热 10 min,充分振荡。 冷却,再加无水乙醇使 总体积接近 50 mL, 在 4 000 r·min-1 的条件下离心 15 min,弃去上清液。 在 85 ℃水浴中用 67%乙醇溶 液洗涤沉淀,离心分离,弃去上清液,此步骤反复操 作,直至上清液中不再产生糖的穆立虚反应为止,保 留果胶沉淀 A。 同时做试剂空白试验。 1.2.3 果 胶 提 取 液 的 制 备 将 果 胶 沉 淀 A 用 去 离 子水全部洗入 100 mL 容量瓶中。加入 1.0 mol·L-1 氢 氧化钠溶液 5.0 mL,用水稀释至刻度,混匀。 至少放 置 15 min,并不时摇荡。 过滤,保留滤液 B,用于比色 测定。 1.2.4 标准系列配制 以 1 000 mg·L-1 的半乳糖醛 酸溶液为标准储备溶液, 制备系列质量浓度为 0.0、 20.0、40.0、60.0、80.0、100.0、120.0 mg·L -1 的 标 准 使 用溶液。 1.2.5 测定 移 取 1.0 mL 滤 液 B 于 25 mL 玻 璃 试
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