琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物演示课件

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琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物

琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物

琼脂糖凝胶浓度对电泳结果的影响
总结词
琼脂糖凝胶浓度对DNA分子的迁移速度和分离效果具有重要影响。
详细描述
不同浓度的琼脂糖凝胶对DNA分子的迁移速度和分离效果不同。高浓度的琼脂糖凝胶可以增加DNA分子的阻力, 减缓其迁移速度,从而提高分辨率。而低浓度的琼脂糖凝胶则会使DNA分子迁移速度加快,但分辨率降低。因此, 应根据DNA分子的大小和数量选择合适的琼脂糖凝胶浓度。
可视化
通过染色剂染色,可以 将DNA片段可视化,便 于观察和记录结果。
缺点
分辨率有限
琼脂糖凝胶电泳的分辨率有限,对于一些长度相近的DNA片段可能无 法区分。
易产生误差
由于操作过程中涉及到人为因素,如加样、凝胶制作等,容易产生误 差。
对小片段DNA检测效果不佳
对于小片段的DNA,琼脂糖凝胶电泳的检测效果不佳,可能会漏检。
电泳温度对电泳结果的影响
总结词
电泳温度对DNA分子的运动速度和琼脂糖凝胶的黏度有影响,进而影响电泳结 果。
详细描述
在一定范围内,较高的电泳温度可以提高DNA分子的运动速度,从而提高分辨 率。但温度过高可能导致凝胶变形和DNA分子变性,影响电泳结果。因此,应 根据DNA分子的大小和性质选择适宜的电泳温度。
在电场中,DNA分子会受到正极的吸引,向正极方向移动。
迁移速度与DNA分子大小相关
02
DNA分子越小,迁移速度越快;DNA分子越大,迁移速度越慢。
分离效果
03
通过琼脂糖凝胶的孔径大小和电场强度,可以将不同大小的
DNA分子进行分离。
琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物的原理
琼脂糖凝胶孔径大小
DNA染料染色
琼脂糖凝胶具有不同孔径大小,可分离不 同大小的DNA分子。

实验三琼脂糖凝胶电泳ppt课件

实验三琼脂糖凝胶电泳ppt课件
2、将溶解的琼脂糖(约50℃)倒入制胶模具中,直至厚度为4-6 mm,插 入适当的梳子,在室温下冷却凝固。
3、充分凝固后小心垂直向上拔出梳子,以保证点样孔完好。将凝胶置入电 泳槽中,加0.5TBE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2 mm。
(二)点样
用微量取液器(P20)吸取质粒DNA样品2 l于点样板小孔中,再加入8 l TE及1 l的载样缓冲液,混匀后,小心加入点样孔,蓝色样品混合物将沉 入点样孔下部。同时点5 l MarkerⅢ作为分子量标准。
5、必须保证琼脂糖充分完全熔解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 6、电泳槽中缓冲液使用次数过多,缓冲能力下降。特别是TAE缓冲液,
一般用2-3次就要更换,TBE缓冲液则可使用10次左右。 7、为了节约成本,没有跑过DNA的凝胶部分可切下来重复利用,但反复
熔化会降低分辨效率,建议时向哪一极移动? 2、什么是迁移率?影响迁移率的因素有哪些?什么是分辨率?
分辨率与凝胶浓度的关系? 3、DNA荧光染料的发光原理? 4、质粒DNA存在哪些构型?其迁移率有何差异? 5、loading buffer成分是什么?各成分有何作用?
注意:如何判断单酶切是否完全? 如何判断双酶切是否完全?
质粒DNA三种构型:环状超螺旋、开环和线性。 质粒电泳三条带:超螺旋、开环和复制中间体(即2个没有复制完全的质粒 连在了一起)。 同一种酶切后电泳谱带的规律:从高分子量到低分子量条带亮度逐渐减弱 由于DNA Marker与酶切产物所含成分不同,因此迁移率不一定相同!
不同波长的紫外光
短波紫外光:254nm 中波紫外光:302nm 长波紫外光:365nm
1、为什么分光光度计测定的浓度很高,但电泳检测浓度却很低?
GoldViewI GoldViewII

琼脂糖凝胶电泳原理 PPT

琼脂糖凝胶电泳原理 PPT

琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
凝胶准备
胶床准备
铺胶
静置
胶床置于电泳槽中 加电泳缓冲液 拔梳子 上样
电泳 取出凝胶 拍照
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
琼脂糖凝胶电泳结果分析
结果初步分析 数量分析:条带的宽度,
荧光的亮度。 质量分析:纯度
分子量
影响因素: DNA分子的大小:实验证明,DNA片段迁移距离与其 分子量的对数成反比; 琼脂糖的浓度:一定大小的DNA片段在不同浓度的琼 脂凝胶中,电泳迁移率不相同; DNA分子的构型:不同构型的DNA在琼脂糖凝胶中的 电泳速度差别较大
⑵可提取大分子DNA 利用琼脂糖凝胶制成凝胶块提取基因组DNA能够获得足够大 胶上进行的电泳检测。
3、琼脂糖在其他方面的应用 ⑴ 、琼脂糖在免疫扩散法中的应用。 ⑵ 琼脂糖在双链DNA探针的合成方法中的作用琼脂糖凝胶电泳ຫໍສະໝຸດ 果分析及其应用口腔1402
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
琼脂糖凝胶电泳是常用的用于分离、鉴定DNA、 RNA分子混合物的方法,主要是应用琼脂糖凝胶 作为支持物的电泳法,借助琼脂糖凝胶的分子筛 作用,核酸片段因其分子量或者分子形状的不同, 电泳速度有差异而分离,利用DNA、RNA分子在 泳动时的电荷效应和分子筛效应,达到分离混合 物的目的。 与其他支持物电泳最主要区别是:它兼有“分子 筛”和“电泳”的双重作用。
大家有疑问的,可以询问和交流
可以互相讨论下,但要小声点
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琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
1、DNA的制备. ⑴ 适合分离大片段DNA. 琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段,其分辨率虽比聚 丙烯酰胺凝胶低,但它制备容易,分离范围广,尤其适于分离大 片段DNA.普通琼脂糖凝胶分离DNA的范围为0.2-20kb,利用 脉冲电泳,可分离高达10^7bp的DNA片段.

3.2.3实验PCR扩增和琼脂糖凝胶电泳课件-高二下学期生物人教版选择性必修3

3.2.3实验PCR扩增和琼脂糖凝胶电泳课件-高二下学期生物人教版选择性必修3

D.两种限制酶在载体上识别的序列可能相同
跟踪训练
根据图示可知,200 bp的DNA分子量小, 800 bp的DNA分子量较大,200 bp的 DNA移动速度快,所以在电泳时,核酸 的移动方向是从负极到正极的,A错误; 当仅用一种限制酶切割载体时,仅产生 一种长度的DNA片段,因此该载体最有 可能为环状DNA分子,B正确;
蒸馏水和移液器等在使用前都必须进行高压灭菌处理 D.电泳时,电泳缓冲液不能没过凝胶,以免凝胶加样孔中的电泳样液流
PCR反应体系中需加入耐高温的DNA聚合酶,该酶主要在延伸过程 中起作用,B错误; 为避免外源DNA等因素的污染,PCR实验中使用的微量离心管、枪 头、蒸馏水等在使用前都必须进行高压灭菌处理,移液器不需要高 压灭菌,C错误; 电泳时,电泳缓冲液以没过凝胶1 mm为宜,D错误。
跟踪训练
例7. 为优 化目 的 基因(700 bp)的 PCR条件,研究者设计不同的复 性温度进行实验,产物的琼脂糖 凝胶电泳结果如图。据图分析, 下列有关说法错误的是 A.对照组可用无菌蒸馏水代替模板,其他成分相同
√B.电泳条带的宽度、亮度与扩增产物大小呈正相关
C.复性温度的高低会影响PCR扩增产物的纯度 D.58 ℃是本实验中扩增该基因的最佳复性温度
跟踪训练
例6.下列有关电泳的叙述,不正确的是 A.电泳是指带电粒子在电场的作用下发生迁移的过程 B.待测样品中DNA分子的大小和构象、凝胶的浓度等都会影响DNA在电
泳中的迁移速率
√C.进行电泳时,带电分子会向着与其所带电荷相同的电极移动
D.PCR的产物一般通过琼脂糖凝胶电泳来鉴定
由于同性相斥、异性相吸,带电分子会向着与其所带电荷相反的电 极移动,C错误。
例2 用PCR方法检测转基因植株是否成功导入目的基因时,得到以下电 泳图谱,其中1号为DNA标准样液(Marker),10号为蒸馏水,PCR时加入 的模板DNA如图所示。据此作出的分析,不合理的是

琼脂糖凝胶电泳 ppt课件

琼脂糖凝胶电泳  ppt课件
• 有热可逆性
• 机械强度差,易破碎,浓度 不能太低。
• 易被细菌污染,不易保存, 临用前配制。
• 琼脂糖支持层上的区带易于 扩散,电泳后必须立即固定 染色。
• 与PAGE相比,分子筛作用小, 区带少。
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ppt课件
琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要,配置合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂 糖粉。
注意:总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意:必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡,停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间,核准正确的凝胶
易分辨
浓度
DNA带缺失 3) DNA 变性
电泳前请勿高温加热DNA链,以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
4) DNA链巨大,常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
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注意:不要产生气泡,溶液温度太高(>60℃),会使得水 分过分蒸发,改变凝胶离子浓度,影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固(大约30 分钟),然后放置 于电泳槽中进行电泳。
注意: 凝胶不立即使用时,用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存,或者放在制胶的缓冲液中,一般可保存2~5 天。
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ppt课件
琼脂糖凝胶缓冲液
电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后 在冰上冷却5分钟
不规则DNA带迁移 2) 电泳条件不合适
电泳电压不超过20V/cm;温度<30℃; 经常更换电泳缓冲液

实验六-PCR产物的琼脂糖凝胶电泳检测ppt课件

实验六-PCR产物的琼脂糖凝胶电泳检测ppt课件
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实验试剂:0.5×TBE(PH8.0)缓冲液 、1.0%琼脂糖溶液、
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实验步骤
琼脂糖凝胶的配制
1g琼脂糖
100mlTBE缓冲液
5µl GoldView
冷却到60℃
.
点样
1.将适量的DNA Marker用移液枪加入凝胶的第一个孔中。 2.在PCR产物中加入6×DNA LodingBuffer(每5ul产物加 入1ul),混匀后,用移液枪加入到样品孔内,每孔加2ul。
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2. DNA分子进行染色的原理(以溴化乙锭为例)
观察琼脂糖凝胶中DNA最常用的方法是利用荧光染料溴化乙锭进行染色。 溴化乙锭是一种高度灵敏的荧光染色剂,用于观察琼脂糖凝胶中的DNA分 子。溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA样品在琼脂糖凝胶中从 负极向正极泳动时,溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭分子就会嵌 入到DNA分子中的碱基对之间形成络合物,这种络合物在紫外光下发射的 荧光要比单纯的DNA分子要强的多,便于DNA的检测。
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电泳、观察
肉眼可见指示剂泳至距制胶板前端约2-3cm处即可停止电泳。切断电源, 取出凝胶,置于紫外线透射仪上观察电泳结果,或用凝胶成像分析系统拍照ห้องสมุดไป่ตู้保存。
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注意事项
1.琼脂糖融化时,档位不宜太高。 2. 制胶和加样过程中要防治气泡的产生。 3. 操作过程必须戴手套操作,严格注意防护。 4. 加样时,Tip 头不宜插入样品孔太深,也不要穿破
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实验原理
(1)电荷效应 DNA分子在PH值高于其等电点的溶液中带负电荷,在
电泳时向阳极移动。
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(2)分子筛效益 在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度主要取决
于分子筛效益,即DNA分子本身的大小和构象(共价闭环 DNA>线状DNA>开环DNA),而且其迁移速度与其相对分子 质量的对数值成反比,所以不用相对分子质量的DNA分子可 以在琼脂糖凝胶电泳中分离。

DNA的琼脂糖凝胶电泳分析ppt课件

DNA的琼脂糖凝胶电泳分析ppt课件
❖ 上样量不宜过多,会造成条带的相互挤压;
❖ 如果点样孔多余,将样点到中间,尽量避免边缘 效应 ,中间电场比较均匀 ;
❖ 做胶的缓冲液和跑胶的缓冲液浓度应该一致;
❖ 加样时不要太快,让其自然沉底,均匀分布在电 ห้องสมุดไป่ตู้孔内 ;
❖ 电泳开始时可以采用低电压使其跑出孔后,再调 高电压。
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
琼脂糖凝胶 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 浓度(%)
可分辨的线
10~ 7~ 6~ 4~ 3~
性DNA大小 60~5 20~1 0.8 0.7 0.4 0.2 0.1 范围(kb)
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
❖ 2、 50×TAE电泳缓冲液:称取242gTris碱 (即三羟甲基氨基甲烷, Tris为弱碱,在室 温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理 论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到 9.2之间。Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一 般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得 该pH值的缓冲液。但同时应注意温度对于 Tris的pKa的影响 ), ,加H2O800ml,待 完全溶解后,加57.1ml冰乙酸, 100ml0.5mol/LEDAT(pH8.0),用H2O定 容至1000ml。临用前用H2O稀释成1×TAE 电泳缓冲液。

实验琼脂糖凝胶电泳的原理与方法 PPT

实验琼脂糖凝胶电泳的原理与方法 PPT

六、血浆脂蛋白琼脂糖凝胶电泳
按电泳法分:
按超速离心法分:
乳糜微粒(CM)
乳糜微粒CM ( < 0、96 )
-脂蛋白 (-位) 极低密度脂蛋白VLDL(0、961、006)
前-脂蛋白(2-位) 低密度脂蛋白LDL (1、0191、063) -脂蛋白 (1-位) 高密度脂蛋白HDL(1、0631、21)
进行印迹转移电泳时,要注意缓冲液得离子强度要低,pH要远 离pI,使蛋白质带有较多电荷,一般用稳定性较好得Tris-缓冲体 系。还要注意凝胶与支持膜之间不能有气泡。适当提高电压或 电流可以提高转移速度,但亦会增加热效应,故电压或电流不可过 高。
五、交变脉冲电场凝胶电泳
一般琼脂糖凝胶电泳只能分离小于20kb得DNA。 这就是因为在琼脂糖凝胶中,DNA分子得有效直径超 过凝胶孔径时,在电场作用下,迫使DNA变形挤过筛孔, 而沿着泳动方向伸直,因而分子大小对迁移率影响不 大。如此时改变电场方向,则DNA分子必须改变其构 象,沿新得泳动方向伸直,而转向时间与DNA分子大小 关系极为密切。
D-半乳糖
3,6-脱水-L-半乳糖
琼脂糖链依分子内与分子间氢键及其它力得作 用使其互相盘绕形成绳状琼脂糖束,构成大网孔型凝 胶。
冷却
松散,随机地,盘绕地琼脂糖链
双螺旋结构区域与线性链相链接
淬火
溶胶状态
初级胶
最终得凝胶结构
琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳,其优点如下: (1)琼脂糖凝胶电泳操作简单,电泳速度快,样品不需事
按支持物得装置形式不同,区带电泳可为: ➢平板式电泳,支持物水平放置,就是最常用得 电泳方式; ➢垂直板式电泳,聚丙烯酰胺凝胶常做成垂直 板式电泳; ➢垂直柱式电泳,聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳即 属于此类; ➢连续液动电泳,首先应用于纸电泳,将滤纸垂 直竖立,两边各放一电极,溶液自顶端向下流, 与电泳方向垂直。

DNA的琼脂糖凝胶电泳资料ppt课件

DNA的琼脂糖凝胶电泳资料ppt课件
2)琼脂糖呈透明状,无紫外吸收,电泳后的样品可直 接用紫外检测;电泳后区带易染色,样品易洗脱,便 于定量测定。
3)操作简单,电泳速度快,样品不需事先处理就可进 行电泳。
琼脂糖凝胶电泳的应用
用于分子量较大的样品,如大分子核酸、病毒等的电泳分 离。现广泛应用于核酸的研究中。
按相对分子质量大小分离DNA 的凝胶电泳技术,是分析 鉴定基因工程重组DNA 分子的重要实验手段。
是现在通用的许多分子生物学研究方法,如DNA核苷酸 序列分析、限制性内切酶片段分析等的技术基础,受到科 学界的高度重视。
二、试剂与器材
电泳仪
缓冲液 琼脂糖
凝胶槽
梳子
电泳槽
溴酚蓝
取液器
试剂
1、Tris-硼酸-EDTA缓冲液(TBE缓冲液),pH8.3:称取 10.78gTris,5.50g硼酸,0.93g EDTA-Na2溶于去离子水, 定容至1000mL。
图像的实时观测
三、操作方法
1、琼脂糖凝胶液的制备:称1g 琼脂糖,置于三角烧 瓶中,加入100mL TBE缓冲液,瓶口扣上一小烧杯, 加热至微沸,琼脂全部融化。取出摇匀,即为1%琼脂 糖。
注意 要完全融化混匀
2、凝胶板的制备
置水平板于工作台面上,将样品槽模板(梳子)插进水
平板上凹槽内,距一端约0.5cm。梳子底边与水平板表
四、实验结果
打印凝胶电泳图,贴于实验报告上,并对实 验结果进行讨论,分析所测未知DNA的大小。
五、课后研讨题
1、总结本实验操作的关键环节和注意事项。 2、实验所用DNA染料EB具有潜在的致癌性,查阅
资料,查找可替代EB的染料并说明优缺点。 3、查阅资料,举例说明DNA琼脂糖凝胶电泳的应
用和发展。

细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳PPT课件

细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳PPT课件
与细胞坏死区别
细胞坏死是被动的过程,通常由外界因素如物理、化学损伤引起 ,而细胞凋亡是主动过程,由基因调控。
细胞凋亡的过程
起始阶段
细胞受到凋亡信号刺激,开始进入凋亡过程。
执行阶段
细胞内部发生一系列生化反应,如DNA断裂、蛋白 质降解等。
降解阶段
细胞被分解成小碎片,即所谓的“死亡小体”,随后 被周围的巨噬细胞或邻近细胞吞噬。
物种鉴定
通过DNA琼脂糖凝胶电泳对物种进行鉴定,如 PCR-RFLP、DNA指纹分析等。
细胞凋亡研究
通过DNA琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡相关的 DNA片段,如梯状带等。
03
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳检测
细胞凋亡DNA的提取
细胞凋亡过程中,DNA会经历一系列的降解过程, 形成凋亡小体。
提取凋亡细胞中的DNA,是进行琼脂糖凝胶电泳检测 的重要步骤。
凋亡机制探讨
02
结合实验结果,可以探讨细胞凋亡的机制,如内源性途径和外
源性途径等。
影响因素分析
03
分析实验过程中可能影响结果的因素,如温度、pH值、DNA提
取方法等。
实验结论与讨论
01
02
03
实验结论
根据实验结果,可以得出 关于细胞凋亡的结论,如 凋亡诱导剂或抗凋亡剂的 作用效果、凋亡机制等。
实验意义
细胞凋亡的意义
80%
维持内环境稳定
细胞凋亡有助于清除不再需要的 或异常的细胞,维持内环境的稳 定。
100%
发育和组织成熟
在胚胎发育和组织成熟过程中, 细胞凋亡有助于塑造和修剪多余 或异常的细胞。
80%
防御和免疫
细胞凋亡有助于清除被感染或发 生癌变的细胞,从而维持机体的 健康。

实验二 琼脂糖凝胶电泳PPT课件

实验二 琼脂糖凝胶电泳PPT课件
实验二
琼脂糖凝胶电泳的制备 及核酸检测
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 1学
带电荷的物质在电场中的趋向运动称为电泳。电泳一 般分为自由界面电泳和区带电泳两大类:自由界面电泳 不需支持物,这类电泳目前已很少使用;而区带电泳则 需用各种类型的物质作为支持物,常用的支持物有滤纸、 醋酸纤维薄膜、非凝胶性支持物、凝胶性支持物及硅胶 -G薄层等,分子生物学领域中最常用的是琼脂糖凝胶 电泳其优点主要在于操作简单、快速、灵敏。
Tris 108g ,硼酸 55g , EDTA.2H2O 7.44g,
加蒸馏水定容至1000ml )
EB:5 µl / 100 ml TBE
电泳样品:标准分子量核酸(DL2000)
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 9学
四. 操作步骤
(1)制胶(以20 mL为例)
准备: 将制胶板放入制胶槽中,插入适当的梳子,
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 7学
2.溴化乙锭(EB):致癌剂,操作时应戴手套,尽
量减少台面污染。
3.电泳指示剂:核酸电泳常用的指示剂有两种,溴酚
蓝(bromophenol blue, Bb)呈蓝紫色;二甲苯青(
xylene cyanol, Xc)呈蓝色,它携带的电荷量比溴酚蓝
少,在凝胶中的的迁移率比溴酚蓝慢。
泳槽中。
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 10 学
(2)点样:用微量移液器取1-2µl载样液,和5 µl质粒混匀 , 加入点样孔。
(3)电泳:打开电源开关,调节电压至3~5 V/cm(约100- 120 V), 可见到溴酚蓝条带由负极向正极移动,约25分钟 即可观察结果。
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是一种荧光染料,EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间, 在紫外线激发下,发出红色荧光。其荧光强度与DNA的含 量成正比。据此可粗略估计样品DNA浓度。 琼脂糖凝胶EB染色,肉眼可见核酸电泳带,其DNA量一般 >5ng。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染环境。
上样缓冲液
电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色,一 般与蔗糖、甘油或聚蔗糖400组成上样缓冲液。
此外在琼脂糖凝胶电泳中其它注意事项还有:
1.)凝胶中加入EB进行电泳,便于紫外线下观 察电泳状态,但EB会导致线形DNA迁移率下降。
2.)电泳过程中,溴化乙锭向负极移动,与 DNA泳动的方向相反,较长时间的电泳会造成靠 正极方向的凝胶中溴化乙锭含量低,会对含量 较少的小分子DNA片段检测困难。处理方法是: 将凝胶在0.5ug/ml的EB溶液中染色30-45分钟。
12. 取出凝胶,在紫外观测仪上观察电泳结果。
13.. 根据需要切下DNA条带,放入1.5ml Ep管中, 放于4℃保存,以备下实验用。
PCR产物的 琼脂糖凝胶电泳
使用3 mg的DNA Marker DL 2,000(500 ng/条带)进行1%的 琼脂糖凝胶电泳后,各DNA条带自上至下分别为2kb,1Kb, 750Байду номын сангаасp,500bp,250bp,100bp。
3.)判断正负极的另一方法是负极气泡(H2) 比正极气泡(O2)多一倍。
复习思考题
问答题 1.影响电泳迁移率的因素有哪些? 2.试述琼脂糖凝胶电泳分离DNA的原理。
琼脂糖凝胶电泳是基因工程操作中常规的实 验方法,它能检测少量的DNA(如用肉眼观察, 可检测到10 ng的DNA),且检测的范围很广。
琼脂糖是一种天然聚合长链状分子,沸水中溶解, 45℃ 开始形成多孔性刚性滤孔,凝胶孔径的大小 决定于琼脂糖的浓度。
DNA分子在碱性环境中带负电荷,在外加电场作用 下向正极泳动。DNA分子的迁移速度与相对分子质 量的对数成反比。
琼脂糖是一种线性多糖聚合物。 浓度越高,孔隙越小,其分辨能力就越强。
琼脂糖浓度(%)
0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 12.0
线型DNA分子的分离范围 (Kb)
5~60 1~20 0.8~10 0.5~7 0.9~6 0.2~3 0.1~2
DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,有电荷效应与分 子筛效应。不同的DNA,分子量大小及构型不同, 电泳时的泳动率就不同,从而分出不同的区带。
(三) 试剂
1.琼脂糖
2. TAE电泳缓冲液(50×) (pH8.0)
Tris
242g
冰醋酸 57.1ml
0.5mol/L EDTA(pH8.0) 100ml
3. 溴化乙锭溶液 10mg/ml水溶液,室温,棕 色瓶或铝铂纸包装保存。
4. 10×DNA样品上样缓冲液
核酸染色剂
溴化乙锭(EB)
9.用移液器吸起离心管中溶液,移入凝胶的梳
孔中。
SUCCESS
THANK YOU
2019/6/26
10.插上导线,打开电泳仪电源,按照需要调节 电压至120V,电泳开始,观察电流情况或电泳槽 中负极的铂金丝是否有气泡出现。
11. 等溴酚蓝泳动至凝胶前沿后,将电压(或电 流)回零,关闭电源,停止电泳。
实验二 琼脂糖凝 胶电泳检测PCR产物
1. 实验目的 2. 实验原理 3. 实验仪器、材料与试剂 4. 实验步骤 5. 实验结果及讨论
实验目的
了解琼脂糖凝胶电泳的原理 掌握琼脂糖凝胶的制作及进行电泳的方法
实验原理
凝胶电泳是分离和纯化DNA片段最常用的技术。 根据制备凝胶的材料,分为琼脂糖电泳和聚 丙烯酰胺电泳。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染 环境。
实验过程中操作要保持安静、镇定,注意样 品不能污染。
实验仪器、材料与试剂
(一) 仪器 1. 水平式凝胶电泳槽 2. 稳压电泳仪 3. 电炉 4. 紫外检测仪 5. 台式离心机
(二) 材料 实验一中的PCR产物
6. 室温下约30-45分钟后,琼脂糖溶液完全凝 固,小心垂直拔出梳子和挡板,清除碎胶,将 凝胶放入电泳槽中。
7. 加入电泳缓冲液(1×TAE)至电泳槽中, 使液面高于胶面约1mm。
8.在DNA样品中加入2 μL (1/10体积)的10× DNA上样缓冲液(loading buffer),混匀,稍 甩一下,使溶液都处于离心管底。
琼脂糖凝胶电泳法分离DNA,是利用分子筛效应, 迁移速度与分子量的对数值成反比关系,可依据 DNA分子的大小使其分离。该过程可以通过把分子 量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测。
溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA 样品在琼脂糖凝胶中从负极向正极泳动时, 溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭 分子就会嵌入DNA分子中形成络合物,使DNA 在紫外光下发射很强的荧光。在溴化乙锭足 够的情况下,荧光的强度正比于DNA的含量, 这样就可以检测DNA的浓度。
作用: ①增加样品比重,以确保DNA均匀沉入加样孔内。 ②形成肉眼可见的指示带,预测核酸电泳的速度和位置。 ③使样品呈色,使加样操作更方便。
实验步骤:琼脂糖凝胶制备
1. 洗净电泳槽、制胶槽、梳子、挡板,晾干。 2. 插好挡板、梳子。 3. 根据实验所需称取0.4克琼脂糖,放入制
胶 的容器中(一般用三角瓶),然后加入 40ml电泳缓冲液(1×TAE)。 4. 加热煮沸,使琼脂糖完全溶解。 5. 溶液冷至约60℃时,加入溴化乙锭4 μL (终浓度为0.5 g/ml),轻轻摇匀,倒入制胶 槽上,检查有无气泡。
关于琼脂糖凝胶电泳的实验技巧和方法 几点注意事项:
1.)加样时枪头不要碰坏凝胶壁,否则DNA的带 型将不会整齐,加样前要用枪头吸打凝胶孔中的 溶液,以赶走样品空中的气泡。
2.)每孔最大DNA上样量决定于DNA样品片段的大 小、数目及样品孔形状与容量。
3.)应注意每孔最大上样容量及样品孔体积,以 免加样时样品流入附近样品孔造成交叉污染,影 响结果分析。
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