琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物演示课件
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琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物
![琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物](https://img.taocdn.com/s3/m/0370084a0640be1e650e52ea551810a6f524c8e8.png)
琼脂糖凝胶浓度对电泳结果的影响
总结词
琼脂糖凝胶浓度对DNA分子的迁移速度和分离效果具有重要影响。
详细描述
不同浓度的琼脂糖凝胶对DNA分子的迁移速度和分离效果不同。高浓度的琼脂糖凝胶可以增加DNA分子的阻力, 减缓其迁移速度,从而提高分辨率。而低浓度的琼脂糖凝胶则会使DNA分子迁移速度加快,但分辨率降低。因此, 应根据DNA分子的大小和数量选择合适的琼脂糖凝胶浓度。
可视化
通过染色剂染色,可以 将DNA片段可视化,便 于观察和记录结果。
缺点
分辨率有限
琼脂糖凝胶电泳的分辨率有限,对于一些长度相近的DNA片段可能无 法区分。
易产生误差
由于操作过程中涉及到人为因素,如加样、凝胶制作等,容易产生误 差。
对小片段DNA检测效果不佳
对于小片段的DNA,琼脂糖凝胶电泳的检测效果不佳,可能会漏检。
电泳温度对电泳结果的影响
总结词
电泳温度对DNA分子的运动速度和琼脂糖凝胶的黏度有影响,进而影响电泳结 果。
详细描述
在一定范围内,较高的电泳温度可以提高DNA分子的运动速度,从而提高分辨 率。但温度过高可能导致凝胶变形和DNA分子变性,影响电泳结果。因此,应 根据DNA分子的大小和性质选择适宜的电泳温度。
在电场中,DNA分子会受到正极的吸引,向正极方向移动。
迁移速度与DNA分子大小相关
02
DNA分子越小,迁移速度越快;DNA分子越大,迁移速度越慢。
分离效果
03
通过琼脂糖凝胶的孔径大小和电场强度,可以将不同大小的
DNA分子进行分离。
琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物的原理
琼脂糖凝胶孔径大小
DNA染料染色
琼脂糖凝胶具有不同孔径大小,可分离不 同大小的DNA分子。
实验三琼脂糖凝胶电泳ppt课件
![实验三琼脂糖凝胶电泳ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/5b246f2bf342336c1eb91a37f111f18583d00c35.png)
2、将溶解的琼脂糖(约50℃)倒入制胶模具中,直至厚度为4-6 mm,插 入适当的梳子,在室温下冷却凝固。
3、充分凝固后小心垂直向上拔出梳子,以保证点样孔完好。将凝胶置入电 泳槽中,加0.5TBE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2 mm。
(二)点样
用微量取液器(P20)吸取质粒DNA样品2 l于点样板小孔中,再加入8 l TE及1 l的载样缓冲液,混匀后,小心加入点样孔,蓝色样品混合物将沉 入点样孔下部。同时点5 l MarkerⅢ作为分子量标准。
5、必须保证琼脂糖充分完全熔解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 6、电泳槽中缓冲液使用次数过多,缓冲能力下降。特别是TAE缓冲液,
一般用2-3次就要更换,TBE缓冲液则可使用10次左右。 7、为了节约成本,没有跑过DNA的凝胶部分可切下来重复利用,但反复
熔化会降低分辨效率,建议时向哪一极移动? 2、什么是迁移率?影响迁移率的因素有哪些?什么是分辨率?
分辨率与凝胶浓度的关系? 3、DNA荧光染料的发光原理? 4、质粒DNA存在哪些构型?其迁移率有何差异? 5、loading buffer成分是什么?各成分有何作用?
注意:如何判断单酶切是否完全? 如何判断双酶切是否完全?
质粒DNA三种构型:环状超螺旋、开环和线性。 质粒电泳三条带:超螺旋、开环和复制中间体(即2个没有复制完全的质粒 连在了一起)。 同一种酶切后电泳谱带的规律:从高分子量到低分子量条带亮度逐渐减弱 由于DNA Marker与酶切产物所含成分不同,因此迁移率不一定相同!
不同波长的紫外光
短波紫外光:254nm 中波紫外光:302nm 长波紫外光:365nm
1、为什么分光光度计测定的浓度很高,但电泳检测浓度却很低?
GoldViewI GoldViewII
3、充分凝固后小心垂直向上拔出梳子,以保证点样孔完好。将凝胶置入电 泳槽中,加0.5TBE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2 mm。
(二)点样
用微量取液器(P20)吸取质粒DNA样品2 l于点样板小孔中,再加入8 l TE及1 l的载样缓冲液,混匀后,小心加入点样孔,蓝色样品混合物将沉 入点样孔下部。同时点5 l MarkerⅢ作为分子量标准。
5、必须保证琼脂糖充分完全熔解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 6、电泳槽中缓冲液使用次数过多,缓冲能力下降。特别是TAE缓冲液,
一般用2-3次就要更换,TBE缓冲液则可使用10次左右。 7、为了节约成本,没有跑过DNA的凝胶部分可切下来重复利用,但反复
熔化会降低分辨效率,建议时向哪一极移动? 2、什么是迁移率?影响迁移率的因素有哪些?什么是分辨率?
分辨率与凝胶浓度的关系? 3、DNA荧光染料的发光原理? 4、质粒DNA存在哪些构型?其迁移率有何差异? 5、loading buffer成分是什么?各成分有何作用?
注意:如何判断单酶切是否完全? 如何判断双酶切是否完全?
质粒DNA三种构型:环状超螺旋、开环和线性。 质粒电泳三条带:超螺旋、开环和复制中间体(即2个没有复制完全的质粒 连在了一起)。 同一种酶切后电泳谱带的规律:从高分子量到低分子量条带亮度逐渐减弱 由于DNA Marker与酶切产物所含成分不同,因此迁移率不一定相同!
不同波长的紫外光
短波紫外光:254nm 中波紫外光:302nm 长波紫外光:365nm
1、为什么分光光度计测定的浓度很高,但电泳检测浓度却很低?
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琼脂糖凝胶电泳原理 PPT
![琼脂糖凝胶电泳原理 PPT](https://img.taocdn.com/s3/m/4714a99da2161479171128bc.png)
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
凝胶准备
胶床准备
铺胶
静置
胶床置于电泳槽中 加电泳缓冲液 拔梳子 上样
电泳 取出凝胶 拍照
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
琼脂糖凝胶电泳结果分析
结果初步分析 数量分析:条带的宽度,
荧光的亮度。 质量分析:纯度
分子量
影响因素: DNA分子的大小:实验证明,DNA片段迁移距离与其 分子量的对数成反比; 琼脂糖的浓度:一定大小的DNA片段在不同浓度的琼 脂凝胶中,电泳迁移率不相同; DNA分子的构型:不同构型的DNA在琼脂糖凝胶中的 电泳速度差别较大
⑵可提取大分子DNA 利用琼脂糖凝胶制成凝胶块提取基因组DNA能够获得足够大 胶上进行的电泳检测。
3、琼脂糖在其他方面的应用 ⑴ 、琼脂糖在免疫扩散法中的应用。 ⑵ 琼脂糖在双链DNA探针的合成方法中的作用琼脂糖凝胶电泳ຫໍສະໝຸດ 果分析及其应用口腔1402
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
琼脂糖凝胶电泳是常用的用于分离、鉴定DNA、 RNA分子混合物的方法,主要是应用琼脂糖凝胶 作为支持物的电泳法,借助琼脂糖凝胶的分子筛 作用,核酸片段因其分子量或者分子形状的不同, 电泳速度有差异而分离,利用DNA、RNA分子在 泳动时的电荷效应和分子筛效应,达到分离混合 物的目的。 与其他支持物电泳最主要区别是:它兼有“分子 筛”和“电泳”的双重作用。
大家有疑问的,可以询问和交流
可以互相讨论下,但要小声点
9
琼脂糖凝胶电泳结果分析及其应用
1、DNA的制备. ⑴ 适合分离大片段DNA. 琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段,其分辨率虽比聚 丙烯酰胺凝胶低,但它制备容易,分离范围广,尤其适于分离大 片段DNA.普通琼脂糖凝胶分离DNA的范围为0.2-20kb,利用 脉冲电泳,可分离高达10^7bp的DNA片段.
3.2.3实验PCR扩增和琼脂糖凝胶电泳课件-高二下学期生物人教版选择性必修3
![3.2.3实验PCR扩增和琼脂糖凝胶电泳课件-高二下学期生物人教版选择性必修3](https://img.taocdn.com/s3/m/198acdcc70fe910ef12d2af90242a8956aecaa60.png)
D.两种限制酶在载体上识别的序列可能相同
跟踪训练
根据图示可知,200 bp的DNA分子量小, 800 bp的DNA分子量较大,200 bp的 DNA移动速度快,所以在电泳时,核酸 的移动方向是从负极到正极的,A错误; 当仅用一种限制酶切割载体时,仅产生 一种长度的DNA片段,因此该载体最有 可能为环状DNA分子,B正确;
蒸馏水和移液器等在使用前都必须进行高压灭菌处理 D.电泳时,电泳缓冲液不能没过凝胶,以免凝胶加样孔中的电泳样液流
PCR反应体系中需加入耐高温的DNA聚合酶,该酶主要在延伸过程 中起作用,B错误; 为避免外源DNA等因素的污染,PCR实验中使用的微量离心管、枪 头、蒸馏水等在使用前都必须进行高压灭菌处理,移液器不需要高 压灭菌,C错误; 电泳时,电泳缓冲液以没过凝胶1 mm为宜,D错误。
跟踪训练
例7. 为优 化目 的 基因(700 bp)的 PCR条件,研究者设计不同的复 性温度进行实验,产物的琼脂糖 凝胶电泳结果如图。据图分析, 下列有关说法错误的是 A.对照组可用无菌蒸馏水代替模板,其他成分相同
√B.电泳条带的宽度、亮度与扩增产物大小呈正相关
C.复性温度的高低会影响PCR扩增产物的纯度 D.58 ℃是本实验中扩增该基因的最佳复性温度
跟踪训练
例6.下列有关电泳的叙述,不正确的是 A.电泳是指带电粒子在电场的作用下发生迁移的过程 B.待测样品中DNA分子的大小和构象、凝胶的浓度等都会影响DNA在电
泳中的迁移速率
√C.进行电泳时,带电分子会向着与其所带电荷相同的电极移动
D.PCR的产物一般通过琼脂糖凝胶电泳来鉴定
由于同性相斥、异性相吸,带电分子会向着与其所带电荷相反的电 极移动,C错误。
例2 用PCR方法检测转基因植株是否成功导入目的基因时,得到以下电 泳图谱,其中1号为DNA标准样液(Marker),10号为蒸馏水,PCR时加入 的模板DNA如图所示。据此作出的分析,不合理的是
琼脂糖凝胶电泳 ppt课件
![琼脂糖凝胶电泳 ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/32dddf7bb7360b4c2e3f6489.png)
• 有热可逆性
• 机械强度差,易破碎,浓度 不能太低。
• 易被细菌污染,不易保存, 临用前配制。
• 琼脂糖支持层上的区带易于 扩散,电泳后必须立即固定 染色。
• 与PAGE相比,分子筛作用小, 区带少。
9
ppt课件
琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要,配置合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂 糖粉。
注意:总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意:必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡,停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间,核准正确的凝胶
易分辨
浓度
DNA带缺失 3) DNA 变性
电泳前请勿高温加热DNA链,以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
4) DNA链巨大,常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
31
注意:不要产生气泡,溶液温度太高(>60℃),会使得水 分过分蒸发,改变凝胶离子浓度,影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固(大约30 分钟),然后放置 于电泳槽中进行电泳。
注意: 凝胶不立即使用时,用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存,或者放在制胶的缓冲液中,一般可保存2~5 天。
11
ppt课件
琼脂糖凝胶缓冲液
电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后 在冰上冷却5分钟
不规则DNA带迁移 2) 电泳条件不合适
电泳电压不超过20V/cm;温度<30℃; 经常更换电泳缓冲液
• 机械强度差,易破碎,浓度 不能太低。
• 易被细菌污染,不易保存, 临用前配制。
• 琼脂糖支持层上的区带易于 扩散,电泳后必须立即固定 染色。
• 与PAGE相比,分子筛作用小, 区带少。
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琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要,配置合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂 糖粉。
注意:总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意:必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡,停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间,核准正确的凝胶
易分辨
浓度
DNA带缺失 3) DNA 变性
电泳前请勿高温加热DNA链,以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
4) DNA链巨大,常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
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注意:不要产生气泡,溶液温度太高(>60℃),会使得水 分过分蒸发,改变凝胶离子浓度,影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固(大约30 分钟),然后放置 于电泳槽中进行电泳。
注意: 凝胶不立即使用时,用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存,或者放在制胶的缓冲液中,一般可保存2~5 天。
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琼脂糖凝胶缓冲液
电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后 在冰上冷却5分钟
不规则DNA带迁移 2) 电泳条件不合适
电泳电压不超过20V/cm;温度<30℃; 经常更换电泳缓冲液
实验六-PCR产物的琼脂糖凝胶电泳检测ppt课件
![实验六-PCR产物的琼脂糖凝胶电泳检测ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/adb45b4ccdbff121dd36a32d7375a417866fc12a.png)
.
实验试剂:0.5×TBE(PH8.0)缓冲液 、1.0%琼脂糖溶液、
.
实验步骤
琼脂糖凝胶的配制
1g琼脂糖
100mlTBE缓冲液
5µl GoldView
冷却到60℃
.
点样
1.将适量的DNA Marker用移液枪加入凝胶的第一个孔中。 2.在PCR产物中加入6×DNA LodingBuffer(每5ul产物加 入1ul),混匀后,用移液枪加入到样品孔内,每孔加2ul。
.
2. DNA分子进行染色的原理(以溴化乙锭为例)
观察琼脂糖凝胶中DNA最常用的方法是利用荧光染料溴化乙锭进行染色。 溴化乙锭是一种高度灵敏的荧光染色剂,用于观察琼脂糖凝胶中的DNA分 子。溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA样品在琼脂糖凝胶中从 负极向正极泳动时,溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭分子就会嵌 入到DNA分子中的碱基对之间形成络合物,这种络合物在紫外光下发射的 荧光要比单纯的DNA分子要强的多,便于DNA的检测。
.
电泳、观察
肉眼可见指示剂泳至距制胶板前端约2-3cm处即可停止电泳。切断电源, 取出凝胶,置于紫外线透射仪上观察电泳结果,或用凝胶成像分析系统拍照ห้องสมุดไป่ตู้保存。
.
注意事项
1.琼脂糖融化时,档位不宜太高。 2. 制胶和加样过程中要防治气泡的产生。 3. 操作过程必须戴手套操作,严格注意防护。 4. 加样时,Tip 头不宜插入样品孔太深,也不要穿破
.
实验原理
(1)电荷效应 DNA分子在PH值高于其等电点的溶液中带负电荷,在
电泳时向阳极移动。
.
(2)分子筛效益 在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度主要取决
于分子筛效益,即DNA分子本身的大小和构象(共价闭环 DNA>线状DNA>开环DNA),而且其迁移速度与其相对分子 质量的对数值成反比,所以不用相对分子质量的DNA分子可 以在琼脂糖凝胶电泳中分离。
实验试剂:0.5×TBE(PH8.0)缓冲液 、1.0%琼脂糖溶液、
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实验步骤
琼脂糖凝胶的配制
1g琼脂糖
100mlTBE缓冲液
5µl GoldView
冷却到60℃
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点样
1.将适量的DNA Marker用移液枪加入凝胶的第一个孔中。 2.在PCR产物中加入6×DNA LodingBuffer(每5ul产物加 入1ul),混匀后,用移液枪加入到样品孔内,每孔加2ul。
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2. DNA分子进行染色的原理(以溴化乙锭为例)
观察琼脂糖凝胶中DNA最常用的方法是利用荧光染料溴化乙锭进行染色。 溴化乙锭是一种高度灵敏的荧光染色剂,用于观察琼脂糖凝胶中的DNA分 子。溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA样品在琼脂糖凝胶中从 负极向正极泳动时,溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭分子就会嵌 入到DNA分子中的碱基对之间形成络合物,这种络合物在紫外光下发射的 荧光要比单纯的DNA分子要强的多,便于DNA的检测。
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电泳、观察
肉眼可见指示剂泳至距制胶板前端约2-3cm处即可停止电泳。切断电源, 取出凝胶,置于紫外线透射仪上观察电泳结果,或用凝胶成像分析系统拍照ห้องสมุดไป่ตู้保存。
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注意事项
1.琼脂糖融化时,档位不宜太高。 2. 制胶和加样过程中要防治气泡的产生。 3. 操作过程必须戴手套操作,严格注意防护。 4. 加样时,Tip 头不宜插入样品孔太深,也不要穿破
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实验原理
(1)电荷效应 DNA分子在PH值高于其等电点的溶液中带负电荷,在
电泳时向阳极移动。
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(2)分子筛效益 在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度主要取决
于分子筛效益,即DNA分子本身的大小和构象(共价闭环 DNA>线状DNA>开环DNA),而且其迁移速度与其相对分子 质量的对数值成反比,所以不用相对分子质量的DNA分子可 以在琼脂糖凝胶电泳中分离。
DNA的琼脂糖凝胶电泳分析ppt课件
![DNA的琼脂糖凝胶电泳分析ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/d980a54115791711cc7931b765ce0508763275b8.png)
❖ 上样量不宜过多,会造成条带的相互挤压;
❖ 如果点样孔多余,将样点到中间,尽量避免边缘 效应 ,中间电场比较均匀 ;
❖ 做胶的缓冲液和跑胶的缓冲液浓度应该一致;
❖ 加样时不要太快,让其自然沉底,均匀分布在电 ห้องสมุดไป่ตู้孔内 ;
❖ 电泳开始时可以采用低电压使其跑出孔后,再调 高电压。
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
琼脂糖凝胶 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 浓度(%)
可分辨的线
10~ 7~ 6~ 4~ 3~
性DNA大小 60~5 20~1 0.8 0.7 0.4 0.2 0.1 范围(kb)
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
❖ 2、 50×TAE电泳缓冲液:称取242gTris碱 (即三羟甲基氨基甲烷, Tris为弱碱,在室 温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理 论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到 9.2之间。Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一 般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得 该pH值的缓冲液。但同时应注意温度对于 Tris的pKa的影响 ), ,加H2O800ml,待 完全溶解后,加57.1ml冰乙酸, 100ml0.5mol/LEDAT(pH8.0),用H2O定 容至1000ml。临用前用H2O稀释成1×TAE 电泳缓冲液。
❖ 如果点样孔多余,将样点到中间,尽量避免边缘 效应 ,中间电场比较均匀 ;
❖ 做胶的缓冲液和跑胶的缓冲液浓度应该一致;
❖ 加样时不要太快,让其自然沉底,均匀分布在电 ห้องสมุดไป่ตู้孔内 ;
❖ 电泳开始时可以采用低电压使其跑出孔后,再调 高电压。
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
琼脂糖凝胶 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 浓度(%)
可分辨的线
10~ 7~ 6~ 4~ 3~
性DNA大小 60~5 20~1 0.8 0.7 0.4 0.2 0.1 范围(kb)
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
采用PP管及配件:根据给水设计图配 置好PP管及配 件,用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ,边剪 边旋转 ,以保 证切口 面的圆 度,保 持熔接 部位干 净无污 物
❖ 2、 50×TAE电泳缓冲液:称取242gTris碱 (即三羟甲基氨基甲烷, Tris为弱碱,在室 温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理 论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到 9.2之间。Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一 般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得 该pH值的缓冲液。但同时应注意温度对于 Tris的pKa的影响 ), ,加H2O800ml,待 完全溶解后,加57.1ml冰乙酸, 100ml0.5mol/LEDAT(pH8.0),用H2O定 容至1000ml。临用前用H2O稀释成1×TAE 电泳缓冲液。
实验琼脂糖凝胶电泳的原理与方法 PPT
![实验琼脂糖凝胶电泳的原理与方法 PPT](https://img.taocdn.com/s3/m/1ed9bbc77e192279168884868762caaedd33bab0.png)
六、血浆脂蛋白琼脂糖凝胶电泳
按电泳法分:
按超速离心法分:
乳糜微粒(CM)
乳糜微粒CM ( < 0、96 )
-脂蛋白 (-位) 极低密度脂蛋白VLDL(0、961、006)
前-脂蛋白(2-位) 低密度脂蛋白LDL (1、0191、063) -脂蛋白 (1-位) 高密度脂蛋白HDL(1、0631、21)
进行印迹转移电泳时,要注意缓冲液得离子强度要低,pH要远 离pI,使蛋白质带有较多电荷,一般用稳定性较好得Tris-缓冲体 系。还要注意凝胶与支持膜之间不能有气泡。适当提高电压或 电流可以提高转移速度,但亦会增加热效应,故电压或电流不可过 高。
五、交变脉冲电场凝胶电泳
一般琼脂糖凝胶电泳只能分离小于20kb得DNA。 这就是因为在琼脂糖凝胶中,DNA分子得有效直径超 过凝胶孔径时,在电场作用下,迫使DNA变形挤过筛孔, 而沿着泳动方向伸直,因而分子大小对迁移率影响不 大。如此时改变电场方向,则DNA分子必须改变其构 象,沿新得泳动方向伸直,而转向时间与DNA分子大小 关系极为密切。
D-半乳糖
3,6-脱水-L-半乳糖
琼脂糖链依分子内与分子间氢键及其它力得作 用使其互相盘绕形成绳状琼脂糖束,构成大网孔型凝 胶。
冷却
松散,随机地,盘绕地琼脂糖链
双螺旋结构区域与线性链相链接
淬火
溶胶状态
初级胶
最终得凝胶结构
琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳,其优点如下: (1)琼脂糖凝胶电泳操作简单,电泳速度快,样品不需事
按支持物得装置形式不同,区带电泳可为: ➢平板式电泳,支持物水平放置,就是最常用得 电泳方式; ➢垂直板式电泳,聚丙烯酰胺凝胶常做成垂直 板式电泳; ➢垂直柱式电泳,聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳即 属于此类; ➢连续液动电泳,首先应用于纸电泳,将滤纸垂 直竖立,两边各放一电极,溶液自顶端向下流, 与电泳方向垂直。
DNA的琼脂糖凝胶电泳资料ppt课件
![DNA的琼脂糖凝胶电泳资料ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/e6db5fae6394dd88d0d233d4b14e852458fb391f.png)
2)琼脂糖呈透明状,无紫外吸收,电泳后的样品可直 接用紫外检测;电泳后区带易染色,样品易洗脱,便 于定量测定。
3)操作简单,电泳速度快,样品不需事先处理就可进 行电泳。
琼脂糖凝胶电泳的应用
用于分子量较大的样品,如大分子核酸、病毒等的电泳分 离。现广泛应用于核酸的研究中。
按相对分子质量大小分离DNA 的凝胶电泳技术,是分析 鉴定基因工程重组DNA 分子的重要实验手段。
是现在通用的许多分子生物学研究方法,如DNA核苷酸 序列分析、限制性内切酶片段分析等的技术基础,受到科 学界的高度重视。
二、试剂与器材
电泳仪
缓冲液 琼脂糖
凝胶槽
梳子
电泳槽
溴酚蓝
取液器
试剂
1、Tris-硼酸-EDTA缓冲液(TBE缓冲液),pH8.3:称取 10.78gTris,5.50g硼酸,0.93g EDTA-Na2溶于去离子水, 定容至1000mL。
图像的实时观测
三、操作方法
1、琼脂糖凝胶液的制备:称1g 琼脂糖,置于三角烧 瓶中,加入100mL TBE缓冲液,瓶口扣上一小烧杯, 加热至微沸,琼脂全部融化。取出摇匀,即为1%琼脂 糖。
注意 要完全融化混匀
2、凝胶板的制备
置水平板于工作台面上,将样品槽模板(梳子)插进水
平板上凹槽内,距一端约0.5cm。梳子底边与水平板表
四、实验结果
打印凝胶电泳图,贴于实验报告上,并对实 验结果进行讨论,分析所测未知DNA的大小。
五、课后研讨题
1、总结本实验操作的关键环节和注意事项。 2、实验所用DNA染料EB具有潜在的致癌性,查阅
资料,查找可替代EB的染料并说明优缺点。 3、查阅资料,举例说明DNA琼脂糖凝胶电泳的应
用和发展。
3)操作简单,电泳速度快,样品不需事先处理就可进 行电泳。
琼脂糖凝胶电泳的应用
用于分子量较大的样品,如大分子核酸、病毒等的电泳分 离。现广泛应用于核酸的研究中。
按相对分子质量大小分离DNA 的凝胶电泳技术,是分析 鉴定基因工程重组DNA 分子的重要实验手段。
是现在通用的许多分子生物学研究方法,如DNA核苷酸 序列分析、限制性内切酶片段分析等的技术基础,受到科 学界的高度重视。
二、试剂与器材
电泳仪
缓冲液 琼脂糖
凝胶槽
梳子
电泳槽
溴酚蓝
取液器
试剂
1、Tris-硼酸-EDTA缓冲液(TBE缓冲液),pH8.3:称取 10.78gTris,5.50g硼酸,0.93g EDTA-Na2溶于去离子水, 定容至1000mL。
图像的实时观测
三、操作方法
1、琼脂糖凝胶液的制备:称1g 琼脂糖,置于三角烧 瓶中,加入100mL TBE缓冲液,瓶口扣上一小烧杯, 加热至微沸,琼脂全部融化。取出摇匀,即为1%琼脂 糖。
注意 要完全融化混匀
2、凝胶板的制备
置水平板于工作台面上,将样品槽模板(梳子)插进水
平板上凹槽内,距一端约0.5cm。梳子底边与水平板表
四、实验结果
打印凝胶电泳图,贴于实验报告上,并对实 验结果进行讨论,分析所测未知DNA的大小。
五、课后研讨题
1、总结本实验操作的关键环节和注意事项。 2、实验所用DNA染料EB具有潜在的致癌性,查阅
资料,查找可替代EB的染料并说明优缺点。 3、查阅资料,举例说明DNA琼脂糖凝胶电泳的应
用和发展。
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳PPT课件
![细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳PPT课件](https://img.taocdn.com/s3/m/1c8bfbb4f80f76c66137ee06eff9aef8941e48f4.png)
与细胞坏死区别
细胞坏死是被动的过程,通常由外界因素如物理、化学损伤引起 ,而细胞凋亡是主动过程,由基因调控。
细胞凋亡的过程
起始阶段
细胞受到凋亡信号刺激,开始进入凋亡过程。
执行阶段
细胞内部发生一系列生化反应,如DNA断裂、蛋白 质降解等。
降解阶段
细胞被分解成小碎片,即所谓的“死亡小体”,随后 被周围的巨噬细胞或邻近细胞吞噬。
物种鉴定
通过DNA琼脂糖凝胶电泳对物种进行鉴定,如 PCR-RFLP、DNA指纹分析等。
细胞凋亡研究
通过DNA琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡相关的 DNA片段,如梯状带等。
03
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳检测
细胞凋亡DNA的提取
细胞凋亡过程中,DNA会经历一系列的降解过程, 形成凋亡小体。
提取凋亡细胞中的DNA,是进行琼脂糖凝胶电泳检测 的重要步骤。
凋亡机制探讨
02
结合实验结果,可以探讨细胞凋亡的机制,如内源性途径和外
源性途径等。
影响因素分析
03
分析实验过程中可能影响结果的因素,如温度、pH值、DNA提
取方法等。
实验结论与讨论
01
02
03
实验结论
根据实验结果,可以得出 关于细胞凋亡的结论,如 凋亡诱导剂或抗凋亡剂的 作用效果、凋亡机制等。
实验意义
细胞凋亡的意义
80%
维持内环境稳定
细胞凋亡有助于清除不再需要的 或异常的细胞,维持内环境的稳 定。
100%
发育和组织成熟
在胚胎发育和组织成熟过程中, 细胞凋亡有助于塑造和修剪多余 或异常的细胞。
80%
防御和免疫
细胞凋亡有助于清除被感染或发 生癌变的细胞,从而维持机体的 健康。
细胞坏死是被动的过程,通常由外界因素如物理、化学损伤引起 ,而细胞凋亡是主动过程,由基因调控。
细胞凋亡的过程
起始阶段
细胞受到凋亡信号刺激,开始进入凋亡过程。
执行阶段
细胞内部发生一系列生化反应,如DNA断裂、蛋白 质降解等。
降解阶段
细胞被分解成小碎片,即所谓的“死亡小体”,随后 被周围的巨噬细胞或邻近细胞吞噬。
物种鉴定
通过DNA琼脂糖凝胶电泳对物种进行鉴定,如 PCR-RFLP、DNA指纹分析等。
细胞凋亡研究
通过DNA琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡相关的 DNA片段,如梯状带等。
03
细胞凋亡的DNA琼脂糖凝胶电泳检测
细胞凋亡DNA的提取
细胞凋亡过程中,DNA会经历一系列的降解过程, 形成凋亡小体。
提取凋亡细胞中的DNA,是进行琼脂糖凝胶电泳检测 的重要步骤。
凋亡机制探讨
02
结合实验结果,可以探讨细胞凋亡的机制,如内源性途径和外
源性途径等。
影响因素分析
03
分析实验过程中可能影响结果的因素,如温度、pH值、DNA提
取方法等。
实验结论与讨论
01
02
03
实验结论
根据实验结果,可以得出 关于细胞凋亡的结论,如 凋亡诱导剂或抗凋亡剂的 作用效果、凋亡机制等。
实验意义
细胞凋亡的意义
80%
维持内环境稳定
细胞凋亡有助于清除不再需要的 或异常的细胞,维持内环境的稳 定。
100%
发育和组织成熟
在胚胎发育和组织成熟过程中, 细胞凋亡有助于塑造和修剪多余 或异常的细胞。
80%
防御和免疫
细胞凋亡有助于清除被感染或发 生癌变的细胞,从而维持机体的 健康。
实验二 琼脂糖凝胶电泳PPT课件
![实验二 琼脂糖凝胶电泳PPT课件](https://img.taocdn.com/s3/m/a0bd07541a37f111f0855bbb.png)
实验二
琼脂糖凝胶电泳的制备 及核酸检测
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 1学
带电荷的物质在电场中的趋向运动称为电泳。电泳一 般分为自由界面电泳和区带电泳两大类:自由界面电泳 不需支持物,这类电泳目前已很少使用;而区带电泳则 需用各种类型的物质作为支持物,常用的支持物有滤纸、 醋酸纤维薄膜、非凝胶性支持物、凝胶性支持物及硅胶 -G薄层等,分子生物学领域中最常用的是琼脂糖凝胶 电泳其优点主要在于操作简单、快速、灵敏。
Tris 108g ,硼酸 55g , EDTA.2H2O 7.44g,
加蒸馏水定容至1000ml )
EB:5 µl / 100 ml TBE
电泳样品:标准分子量核酸(DL2000)
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 9学
四. 操作步骤
(1)制胶(以20 mL为例)
准备: 将制胶板放入制胶槽中,插入适当的梳子,
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 7学
2.溴化乙锭(EB):致癌剂,操作时应戴手套,尽
量减少台面污染。
3.电泳指示剂:核酸电泳常用的指示剂有两种,溴酚
蓝(bromophenol blue, Bb)呈蓝紫色;二甲苯青(
xylene cyanol, Xc)呈蓝色,它携带的电荷量比溴酚蓝
少,在凝胶中的的迁移率比溴酚蓝慢。
泳槽中。
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 10 学
(2)点样:用微量移液器取1-2µl载样液,和5 µl质粒混匀 , 加入点样孔。
(3)电泳:打开电源开关,调节电压至3~5 V/cm(约100- 120 V), 可见到溴酚蓝条带由负极向正极移动,约25分钟 即可观察结果。
琼脂糖凝胶电泳的制备 及核酸检测
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 1学
带电荷的物质在电场中的趋向运动称为电泳。电泳一 般分为自由界面电泳和区带电泳两大类:自由界面电泳 不需支持物,这类电泳目前已很少使用;而区带电泳则 需用各种类型的物质作为支持物,常用的支持物有滤纸、 醋酸纤维薄膜、非凝胶性支持物、凝胶性支持物及硅胶 -G薄层等,分子生物学领域中最常用的是琼脂糖凝胶 电泳其优点主要在于操作简单、快速、灵敏。
Tris 108g ,硼酸 55g , EDTA.2H2O 7.44g,
加蒸馏水定容至1000ml )
EB:5 µl / 100 ml TBE
电泳样品:标准分子量核酸(DL2000)
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 9学
四. 操作步骤
(1)制胶(以20 mL为例)
准备: 将制胶板放入制胶槽中,插入适当的梳子,
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 7学
2.溴化乙锭(EB):致癌剂,操作时应戴手套,尽
量减少台面污染。
3.电泳指示剂:核酸电泳常用的指示剂有两种,溴酚
蓝(bromophenol blue, Bb)呈蓝紫色;二甲苯青(
xylene cyanol, Xc)呈蓝色,它携带的电荷量比溴酚蓝
少,在凝胶中的的迁移率比溴酚蓝慢。
泳槽中。
精选ppt
2010
分 子实 生验
物 10 学
(2)点样:用微量移液器取1-2µl载样液,和5 µl质粒混匀 , 加入点样孔。
(3)电泳:打开电源开关,调节电压至3~5 V/cm(约100- 120 V), 可见到溴酚蓝条带由负极向正极移动,约25分钟 即可观察结果。
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是一种荧光染料,EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间, 在紫外线激发下,发出红色荧光。其荧光强度与DNA的含 量成正比。据此可粗略估计样品DNA浓度。 琼脂糖凝胶EB染色,肉眼可见核酸电泳带,其DNA量一般 >5ng。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染环境。
上样缓冲液
电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色,一 般与蔗糖、甘油或聚蔗糖400组成上样缓冲液。
此外在琼脂糖凝胶电泳中其它注意事项还有:
1.)凝胶中加入EB进行电泳,便于紫外线下观 察电泳状态,但EB会导致线形DNA迁移率下降。
2.)电泳过程中,溴化乙锭向负极移动,与 DNA泳动的方向相反,较长时间的电泳会造成靠 正极方向的凝胶中溴化乙锭含量低,会对含量 较少的小分子DNA片段检测困难。处理方法是: 将凝胶在0.5ug/ml的EB溶液中染色30-45分钟。
12. 取出凝胶,在紫外观测仪上观察电泳结果。
13.. 根据需要切下DNA条带,放入1.5ml Ep管中, 放于4℃保存,以备下实验用。
PCR产物的 琼脂糖凝胶电泳
使用3 mg的DNA Marker DL 2,000(500 ng/条带)进行1%的 琼脂糖凝胶电泳后,各DNA条带自上至下分别为2kb,1Kb, 750Байду номын сангаасp,500bp,250bp,100bp。
3.)判断正负极的另一方法是负极气泡(H2) 比正极气泡(O2)多一倍。
复习思考题
问答题 1.影响电泳迁移率的因素有哪些? 2.试述琼脂糖凝胶电泳分离DNA的原理。
琼脂糖凝胶电泳是基因工程操作中常规的实 验方法,它能检测少量的DNA(如用肉眼观察, 可检测到10 ng的DNA),且检测的范围很广。
琼脂糖是一种天然聚合长链状分子,沸水中溶解, 45℃ 开始形成多孔性刚性滤孔,凝胶孔径的大小 决定于琼脂糖的浓度。
DNA分子在碱性环境中带负电荷,在外加电场作用 下向正极泳动。DNA分子的迁移速度与相对分子质 量的对数成反比。
琼脂糖是一种线性多糖聚合物。 浓度越高,孔隙越小,其分辨能力就越强。
琼脂糖浓度(%)
0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 12.0
线型DNA分子的分离范围 (Kb)
5~60 1~20 0.8~10 0.5~7 0.9~6 0.2~3 0.1~2
DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,有电荷效应与分 子筛效应。不同的DNA,分子量大小及构型不同, 电泳时的泳动率就不同,从而分出不同的区带。
(三) 试剂
1.琼脂糖
2. TAE电泳缓冲液(50×) (pH8.0)
Tris
242g
冰醋酸 57.1ml
0.5mol/L EDTA(pH8.0) 100ml
3. 溴化乙锭溶液 10mg/ml水溶液,室温,棕 色瓶或铝铂纸包装保存。
4. 10×DNA样品上样缓冲液
核酸染色剂
溴化乙锭(EB)
9.用移液器吸起离心管中溶液,移入凝胶的梳
孔中。
SUCCESS
THANK YOU
2019/6/26
10.插上导线,打开电泳仪电源,按照需要调节 电压至120V,电泳开始,观察电流情况或电泳槽 中负极的铂金丝是否有气泡出现。
11. 等溴酚蓝泳动至凝胶前沿后,将电压(或电 流)回零,关闭电源,停止电泳。
实验二 琼脂糖凝 胶电泳检测PCR产物
1. 实验目的 2. 实验原理 3. 实验仪器、材料与试剂 4. 实验步骤 5. 实验结果及讨论
实验目的
了解琼脂糖凝胶电泳的原理 掌握琼脂糖凝胶的制作及进行电泳的方法
实验原理
凝胶电泳是分离和纯化DNA片段最常用的技术。 根据制备凝胶的材料,分为琼脂糖电泳和聚 丙烯酰胺电泳。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染 环境。
实验过程中操作要保持安静、镇定,注意样 品不能污染。
实验仪器、材料与试剂
(一) 仪器 1. 水平式凝胶电泳槽 2. 稳压电泳仪 3. 电炉 4. 紫外检测仪 5. 台式离心机
(二) 材料 实验一中的PCR产物
6. 室温下约30-45分钟后,琼脂糖溶液完全凝 固,小心垂直拔出梳子和挡板,清除碎胶,将 凝胶放入电泳槽中。
7. 加入电泳缓冲液(1×TAE)至电泳槽中, 使液面高于胶面约1mm。
8.在DNA样品中加入2 μL (1/10体积)的10× DNA上样缓冲液(loading buffer),混匀,稍 甩一下,使溶液都处于离心管底。
琼脂糖凝胶电泳法分离DNA,是利用分子筛效应, 迁移速度与分子量的对数值成反比关系,可依据 DNA分子的大小使其分离。该过程可以通过把分子 量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测。
溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA 样品在琼脂糖凝胶中从负极向正极泳动时, 溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭 分子就会嵌入DNA分子中形成络合物,使DNA 在紫外光下发射很强的荧光。在溴化乙锭足 够的情况下,荧光的强度正比于DNA的含量, 这样就可以检测DNA的浓度。
作用: ①增加样品比重,以确保DNA均匀沉入加样孔内。 ②形成肉眼可见的指示带,预测核酸电泳的速度和位置。 ③使样品呈色,使加样操作更方便。
实验步骤:琼脂糖凝胶制备
1. 洗净电泳槽、制胶槽、梳子、挡板,晾干。 2. 插好挡板、梳子。 3. 根据实验所需称取0.4克琼脂糖,放入制
胶 的容器中(一般用三角瓶),然后加入 40ml电泳缓冲液(1×TAE)。 4. 加热煮沸,使琼脂糖完全溶解。 5. 溶液冷至约60℃时,加入溴化乙锭4 μL (终浓度为0.5 g/ml),轻轻摇匀,倒入制胶 槽上,检查有无气泡。
关于琼脂糖凝胶电泳的实验技巧和方法 几点注意事项:
1.)加样时枪头不要碰坏凝胶壁,否则DNA的带 型将不会整齐,加样前要用枪头吸打凝胶孔中的 溶液,以赶走样品空中的气泡。
2.)每孔最大DNA上样量决定于DNA样品片段的大 小、数目及样品孔形状与容量。
3.)应注意每孔最大上样容量及样品孔体积,以 免加样时样品流入附近样品孔造成交叉污染,影 响结果分析。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染环境。
上样缓冲液
电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色,一 般与蔗糖、甘油或聚蔗糖400组成上样缓冲液。
此外在琼脂糖凝胶电泳中其它注意事项还有:
1.)凝胶中加入EB进行电泳,便于紫外线下观 察电泳状态,但EB会导致线形DNA迁移率下降。
2.)电泳过程中,溴化乙锭向负极移动,与 DNA泳动的方向相反,较长时间的电泳会造成靠 正极方向的凝胶中溴化乙锭含量低,会对含量 较少的小分子DNA片段检测困难。处理方法是: 将凝胶在0.5ug/ml的EB溶液中染色30-45分钟。
12. 取出凝胶,在紫外观测仪上观察电泳结果。
13.. 根据需要切下DNA条带,放入1.5ml Ep管中, 放于4℃保存,以备下实验用。
PCR产物的 琼脂糖凝胶电泳
使用3 mg的DNA Marker DL 2,000(500 ng/条带)进行1%的 琼脂糖凝胶电泳后,各DNA条带自上至下分别为2kb,1Kb, 750Байду номын сангаасp,500bp,250bp,100bp。
3.)判断正负极的另一方法是负极气泡(H2) 比正极气泡(O2)多一倍。
复习思考题
问答题 1.影响电泳迁移率的因素有哪些? 2.试述琼脂糖凝胶电泳分离DNA的原理。
琼脂糖凝胶电泳是基因工程操作中常规的实 验方法,它能检测少量的DNA(如用肉眼观察, 可检测到10 ng的DNA),且检测的范围很广。
琼脂糖是一种天然聚合长链状分子,沸水中溶解, 45℃ 开始形成多孔性刚性滤孔,凝胶孔径的大小 决定于琼脂糖的浓度。
DNA分子在碱性环境中带负电荷,在外加电场作用 下向正极泳动。DNA分子的迁移速度与相对分子质 量的对数成反比。
琼脂糖是一种线性多糖聚合物。 浓度越高,孔隙越小,其分辨能力就越强。
琼脂糖浓度(%)
0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 12.0
线型DNA分子的分离范围 (Kb)
5~60 1~20 0.8~10 0.5~7 0.9~6 0.2~3 0.1~2
DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,有电荷效应与分 子筛效应。不同的DNA,分子量大小及构型不同, 电泳时的泳动率就不同,从而分出不同的区带。
(三) 试剂
1.琼脂糖
2. TAE电泳缓冲液(50×) (pH8.0)
Tris
242g
冰醋酸 57.1ml
0.5mol/L EDTA(pH8.0) 100ml
3. 溴化乙锭溶液 10mg/ml水溶液,室温,棕 色瓶或铝铂纸包装保存。
4. 10×DNA样品上样缓冲液
核酸染色剂
溴化乙锭(EB)
9.用移液器吸起离心管中溶液,移入凝胶的梳
孔中。
SUCCESS
THANK YOU
2019/6/26
10.插上导线,打开电泳仪电源,按照需要调节 电压至120V,电泳开始,观察电流情况或电泳槽 中负极的铂金丝是否有气泡出现。
11. 等溴酚蓝泳动至凝胶前沿后,将电压(或电 流)回零,关闭电源,停止电泳。
实验二 琼脂糖凝 胶电泳检测PCR产物
1. 实验目的 2. 实验原理 3. 实验仪器、材料与试剂 4. 实验步骤 5. 实验结果及讨论
实验目的
了解琼脂糖凝胶电泳的原理 掌握琼脂糖凝胶的制作及进行电泳的方法
实验原理
凝胶电泳是分离和纯化DNA片段最常用的技术。 根据制备凝胶的材料,分为琼脂糖电泳和聚 丙烯酰胺电泳。
注意事项:
EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染 环境。
实验过程中操作要保持安静、镇定,注意样 品不能污染。
实验仪器、材料与试剂
(一) 仪器 1. 水平式凝胶电泳槽 2. 稳压电泳仪 3. 电炉 4. 紫外检测仪 5. 台式离心机
(二) 材料 实验一中的PCR产物
6. 室温下约30-45分钟后,琼脂糖溶液完全凝 固,小心垂直拔出梳子和挡板,清除碎胶,将 凝胶放入电泳槽中。
7. 加入电泳缓冲液(1×TAE)至电泳槽中, 使液面高于胶面约1mm。
8.在DNA样品中加入2 μL (1/10体积)的10× DNA上样缓冲液(loading buffer),混匀,稍 甩一下,使溶液都处于离心管底。
琼脂糖凝胶电泳法分离DNA,是利用分子筛效应, 迁移速度与分子量的对数值成反比关系,可依据 DNA分子的大小使其分离。该过程可以通过把分子 量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测。
溴化乙锭在紫外光照射下能发射荧光,当DNA 样品在琼脂糖凝胶中从负极向正极泳动时, 溴化乙锭从正极向负极移动,这样溴化乙锭 分子就会嵌入DNA分子中形成络合物,使DNA 在紫外光下发射很强的荧光。在溴化乙锭足 够的情况下,荧光的强度正比于DNA的含量, 这样就可以检测DNA的浓度。
作用: ①增加样品比重,以确保DNA均匀沉入加样孔内。 ②形成肉眼可见的指示带,预测核酸电泳的速度和位置。 ③使样品呈色,使加样操作更方便。
实验步骤:琼脂糖凝胶制备
1. 洗净电泳槽、制胶槽、梳子、挡板,晾干。 2. 插好挡板、梳子。 3. 根据实验所需称取0.4克琼脂糖,放入制
胶 的容器中(一般用三角瓶),然后加入 40ml电泳缓冲液(1×TAE)。 4. 加热煮沸,使琼脂糖完全溶解。 5. 溶液冷至约60℃时,加入溴化乙锭4 μL (终浓度为0.5 g/ml),轻轻摇匀,倒入制胶 槽上,检查有无气泡。
关于琼脂糖凝胶电泳的实验技巧和方法 几点注意事项:
1.)加样时枪头不要碰坏凝胶壁,否则DNA的带 型将不会整齐,加样前要用枪头吸打凝胶孔中的 溶液,以赶走样品空中的气泡。
2.)每孔最大DNA上样量决定于DNA样品片段的大 小、数目及样品孔形状与容量。
3.)应注意每孔最大上样容量及样品孔体积,以 免加样时样品流入附近样品孔造成交叉污染,影 响结果分析。