酵母多糖的分离提取
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一.实验目的
1.初步了解微生物胞外多糖的概念。
2.学习并掌握显微操作技术及无菌操作技术。
3.掌握酵母菌株的摇瓶液体发酵技术。
4.学习微生物胞外多糖分离提取及测定的基本方法。
二.实验流程
菌株活化→液体种子培养→液体发酵培养→过程监测(形态、生物量、Ph、产物)
产物分离提取(上清、菌体)
培养基优化培养条件优化
三.实验材料
1.菌株:酵母菌
2.试剂:葡萄糖(AR)、酵母粉(BR)、蛋白胨(BR)、硫酸铵(AR)、丙三醇(AR)、
KH
2PO
4
(AR)、MgSO
4
`7H
2
0(AR)、3,5-二硝基水杨酸(CP)、NaOH(AR)、KOH
(AR)。
3.仪器设备:电热恒温培养箱、数显恒温摇床、压力蒸汽灭菌锅、低速离心机、
高速离心机、电子精密天平、Ph数显酸度计、电子恒温水浴锅、可见分光光度计、电脑型生物显微镜、超净工作台、旋转蒸发仪、气相色谱仪。
4.培养基
YPD培养基:1% Yeast Extract(酵母膏),2% Peptone(蛋白胨),2% Dextrose (glucose)(葡萄糖),若制固体培养基,加入2%琼脂粉。
种子培养基。葡萄糖10g,蛋白胨5 g,酵母膏15 g,氯化钠4g,pH7.0。
基础发酵培养基。葡萄糖20 g/L、硫酸铵8g/L、蛋白胨5g/L、KH
2P0
4
2.5 g/L、
MgSO
4·7H
2
0 0.5 g/L。
四.实验过程
1.条件优化及发酵培养
1.1.菌株活化
将保藏的菌株接种到固体平板培养。
1.2.制备种子液
进行液体种子培养,向装有150ml种子液体培养基的250ml的摇瓶中接入平板上的种子,30℃、150r/min震荡培养24h。
1.3.发酵培养
将活化好的种子液按培养条件的正交表接入100ml的基础发酵培养基,通过测定发酵培养条件的优化结果用于下一步的发酵培养基的优化。
1.4.培养优化
1.4.1.培养基的优化
温度、接种量、培养时间进行三水平三因素正交实验无交互作用。
1.4.
2.培养条件的优化
酵母发酵培养基的正交试验设计由葡萄糖、硫酸铵、KH
2P0
4
以及MgS04组成
发酵优化培养基,根据之前试验数据对每种成分设定4种水平,进行四因素四水平的正交实验,对培养基成分进一步优化,无交互作用。
1.5.发酵生产酵母多糖
将优化好的所有条件计算完成后按照优化好的培养基、培养条件发酵生产酵母多糖共生产400ml。
2.酵母多糖的分离提取及测定
2.1.试剂
氢氧化钾、35%醋酸、95%乙醇、丙酮、乙醚。
2.2.酵母胞壁多糖的提取工序
提取工艺路线为: 酵母悬液→冻融→超声波破碎→碱溶→中和→沉淀→洗涤→烘干。
1)酵母溶解:取发酵后的菌液10ml,3000rmin离心10min,取沉淀,将沉淀溶解
于25ml的容量瓶中。对上清液进行测定如果其中存在多糖则直接用菌液破壁提取多糖。
2)冻融: 将酵母沉淀置于- 20℃下冷冻2h, 再置于100℃水中骤然升温使其融
化, 如此反复3 次。
3)超声波破碎: 确定超声波破碎时间和功率,破碎最佳工艺参数是功率400~
500W、工作次数150 次,超声波开2s关1s。
4)碱溶: 确定碱浓度、温度、时间等条件,碱溶最佳工艺条件是碱液浓度3%、
温度100℃、时间1.5h。
5)中和: 室温放冷, 用醋酸中和至pH 值为6~7, 置于3 500r/min离心机中离
心10 min,静置, 收集上清夜。
6)沉淀: 以95%乙醇作沉淀剂, 沉淀12h, 乙醇与上清液的体积比为2: 1。
7)洗涤: 沉淀用丙酮洗涤2 次, 用乙醚洗涤1 次。
8)烘干: 30℃下干燥12h。
2.3.多糖的测定
苯酚硫酸法
2.3.1试剂
a)浓硫酸:分析纯,95.5%
b)80%苯酚:80克苯酚(分析纯重蒸馏试剂)加20克水使之溶解,可置冰箱中
避光长期储存。
c)6%苯酚:临用前以80%苯酚配制。(每次测定均需现配)
d)标准葡聚糖(Dextran,瑞典Pharmacia),或分析纯葡萄糖。
2.3.2操作
a)制作标准曲线
准确称取标准葡聚糖(或葡萄糖)20mg于500ml容量瓶中,加水至刻度,
分别吸取0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6及1.8ml,各以蒸馏水补至2.0ml,然后加入6%苯酚1.0ml及浓硫酸5.0ml,摇匀冷却,沸水浴显色15min以后于490nm测光密度,以2.0ml水按同样显色操作为空白,横坐标为多糖微克数,纵坐标为光密度值,得标准曲线。
b)样品含量测定
称取酵母粗多糖置20ml具塞试管中定容-摇匀,吸取0.2 ml的样品液,以蒸馏补至2.0ml,然后加入6%苯酚1.0ml及浓硫酸5.0ml,摇匀冷却室温放置20分钟以后于490nm测光密度。每次测定取双样对照。以标准曲线计算多糖含量。