生化实验基本操作
生化操作规程
生化操作规程生化操作规程一、操作前的准备工作：1. 阅读并熟悉相关实验方法和操作规程；2. 确保实验室内的所有设备和仪器处于正常工作状态；3. 准备和检查所需试剂和材料的完整性和质量；4. 穿戴并检查个人防护装备的完好性，包括实验外套、手套、眼镜、口罩等；5. 进入实验室前，将个人物品放置于指定的区域，并保证操作台面干净整洁；6. 在实验开始前，通风系统保持良好的工作状态。
二、基本操作规范：1. 严格按照实验方法要求的程序进行操作；2. 实验过程中，不得随意更改或调整实验方法，如有必要，需提前向上级主管或指导人员请示；3. 所有试剂和化学品需按照实验方法规定的浓度和量使用，严禁使用过期或变质的试剂；4. 在进行生化实验过程中，严禁吃东西、喝水和吸烟；5. 实验后及时清洗和消毒操作台面和所使用的仪器设备，将实验废弃物妥善处理；6. 对实验室内产生的有害废气、废液和固体废物，应按照相关规定进行储存和处理。
三、个人防护：1. 在进行任何生化实验前，必须穿戴个人防护装备，包括实验外套、手套、眼镜和口罩等；2. 所有个人防护装备应在实验前进行检查，确保完好无损；3. 长时间接触或操作有毒有害物质时，应戴防毒面具和长筒胶鞋；4. 操作过程中，严禁将有毒有害物质或试剂带出实验室，特别是工作服和鞋子；5. 实验结束后，要及时将个人防护装备取下并进行清洗和消毒。
四、仪器设备的使用：1. 对实验室内的仪器设备要进行正常使用和维护，使用完毕后归位，并及时清洗仪器面板和周围；2. 使用前要先检查设备是否处于正常状态，如有异常现象应停止使用，并及时向维修人员报修；3. 不得随意更改和调整仪器设备的工作参数，禁止在未经授权的情况下打开、关闭仪器设备；4. 对故障、损坏或超过维修周期的设备，应及时报修并停止使用。
五、安全意识与事故应急处理：1. 在操作过程中，严禁恶作剧、打闹、喧哗等行为，保持高度的安全和专注意识；2. 注意观察实验过程中是否出现异常情况，如气味、颜色、形态等，发现任何异常情况应立即停止实验，并向上级主管或指导人员报告；3. 发生事故时，应立即采取正确的急救措施，并及时报告上级主管或指导人员，同时参与事故调查并配合验收部门进行处理；4. 每位实验人员须熟悉实验室内的紧急撤离路线和逃生设施的使用方法，如火警或其他紧急情况发生时，要按照预先制定的应急预案执行。
《生物化学》实验-评分标准
《生物化学》实验评分标准（供参考）一、基本操作（供实验操作考核参考）：1、玻璃仪器的洗涤①用毛刷蘸去污粉、肥皂粉或去污剂将器皿内外两面彻底刷洗干净（30分）②用自来水将仪器冲洗干净。
洗干净的玻璃仪器应该表面光洁，淋洗的水成片的从仪器上流下来，不应该有水珠（水线）附着在内壁。
（40分）③用少量的蒸馏水淋洗内壁三次（20分）④将洗干净的器皿倒置放在干净的滤纸上或相应的器皿架上（10分）2、刻度吸管①左手控制吸耳球，右手控制吸管，用右手食指控制吸管上口，右手拇指和中指夹持管身。
（30分，左手优势者酌情考虑）②操作者眼睛与要观察的刻度线应该处于同一水平，应该观察液面凹陷处的最低点与刻度线平齐。
（30分）③吸管下方如有液滴附着应该处理掉（20分）④操作是否规范和熟练、善后工作是否做好（20分）3、移液器①更换并安装好移液器头，右手控制移液器，调节移液器上方的罗盘到需要的刻度。
（30分）②按移液器上方活塞到遇到明显阻挡的位置时停止，插入试剂中慢慢吸取溶液。
不应该有气泡或断层出现。
（30分）③移液器头如有液滴附着应该处理掉。
（10分）④将移液器上方活塞按到最低点，排尽移液器头内所有液体（20分）⑤善后工作（10分）4、离心机①将调节转数旋钮归零，时间旋钮应该自然归零。
（10分）②将离心管放入离心套管中，置于天平上加水配平后，对称放入离心机内。
（30分）③接通电源，调节时间选钮（应该比规定时间多1-2分钟，20分）④慢慢调节转数选钮到规定转数停止（20分，依照不同的离心机规格要求可略有不同）⑤善后工作（20分）5、分光光度计①接通电源→预热30分钟（教师预先做好，必要时询问下即可）②调节波长→将空白液、测定液倒入比色杯（液面距杯口约1cm）→擦镜纸擦干净比色杯→置于比色槽中（30分，注意放置的方向及拿比色杯的姿势）③空白管对准光路→开盖调节透光度“0”，闭盖调节透光度“100%”→反复校对一次→关闭盖子情况下将模式调节到“吸光度”→空白管吸光度应该为“0”→拉动拉杆→依次读出各测定管吸光度→每打开盖都要重新调节“0”和“100%”。
实验一生化实验基本操作(移液管、离心机,分光光度计的使用)
➢ 放置 检查离心机，机内应无异物和无用的套管，并 且运转平稳。将已配平的两管对称地放入离心机的离 心孔内，做好标记，盖好上盖，开启电源。
➢ 离心 顺时针慢慢旋动转速调节钮，增加离心机转速 。当离心机转速达到要求时，记录离心时间。
B：
• A.选用最大刻度的吸管
• B.应选用取液量最接近的刻度吸管
• C.选用最小刻度的吸管
• 3.离心时平衡好放入离心机时
A：Leabharlann • A.对称放置 B.分开放置 C. 紧挨放置
Lambert 定律 lgI0/I=K1L
Beer 定律 lgI0/I=K2C
Lambert-Beer 定律 lgI0/I=KCL
令A= lgI0/I 则 A= -lgT= KCL T为透光度； A为吸光度； K为消光系数
Fingure 1. The main elements of spectrometer
端旁；用橡皮球吸液体至刻度上，眼睛看着液面 上升；吸完后用食指顶住吸管顶端；吸管保持垂 直，尖端与试剂瓶接触，用食指控制液体下降至 所需体积的刻度处，液体凹面、刻度和视线应在 同一水平面上；吸管移入准备接受溶液的盛器中 ，放开食指，使液体自动流出
二、离心机的使用
➢ 装液 将待离心的液体置于玻璃离心管（刻度离心管 ）或短试管中。
➢ 直接计算法： C样=A样/A标*C标
➢ 标准曲线法：浓度为X轴，吸光度为Y轴绘制标 准曲线，在标准曲线上获得未知浓度CoSO4的浓 度。
结果
管号 空白管 1
Abs
0
生化基本操作方法
生化基本操作方法生化学作为一门重要的科学，广泛应用于医学、生物学、化学等领域。
生化基本操作方法是生化学研究中必不可少的一部分，其正确性和可靠性对于实验结果的准确性和科学性有着决定性的影响。
本文将介绍生化基本操作方法。
一. 实验前的准备在进行生化实验之前，首先需要进行实验前的准备工作。
这包括实验室的准备和实验物品的准备。
实验室的准备：实验室应该是整洁、干净和有序的，以防止实验过程中出现误差。
实验室应该要有充足的安全设施，例如事故处理设施和防护设施，以预防任何实验失误而导致的伤害。
实验物品的准备：实验物品是生化实验中必不可少的物品，包括试剂、器材、培养基等。
在准备实验物品时，需要考虑物品的纯度、存储条件和到期日等因素，并按照实验的需要正确选取和配制所需的物品，以确保实验的准确性和稳定性。
二. 实验操作的步骤1. 分配试样将待测试的样品分配到适当的量的试管或反应器中，这是生化实验的第一步。
2. 预处理样品为了得到准确的测试结果，通常需要对试样进行预处理。
例如，对于生化酶的活性测定，通常需要通过离心或超滤等步骤分离和浓缩酶的样品。
3. 装载试剂将所需的试剂和溶液配制好，并按照一定的比例加入到待测试的试样中。
为确保测试结果的准确性，必须严格控制每种试剂和溶液的质量和分量。
4. 开始测试开始测试前，首先需要对测试仪器进行预热和校准。
一旦测试仪器准备就绪，就可以将试样装入测试器中，开始进行测试。
在进行生化测试时，必须严格按照测试步骤和时间表的要求进行操作。
例如，在生化酶活性测定中，必须在恰当的时间内准确的读取试样的吸光度。
5. 结果分析在测试完成后，需要对结果进行分析和处理。
根据不同的实验要求和目的，分析和处理方法也有所不同。
例如，在酶活性测定中，可以使用Michaelis-Menten 方程式计算酶的动力学参数，如Km值和Vmax值，从而了解酶的性质和功能等。
三. 实验过程中的注意事项在进行生化实验时，需要特别注意以下几点：1. 实验操作过程中应保持实验室干净、整洁和有序，避免实验失误。
生化实验的基本操作和常用仪器使用-3
生化实验的基本操作和常用仪器使用-31、72型分光光度:72型分光光度计是可见光分光光度计，其波长范围为420—720毫微米。
（1）操作方法：① 按照接线要求，将稳压器和检流计连接在单色器上。
注意，将检流计与单色器相接时，应按三股接线的颜色准确连接。
而稳压器的输出接线柱与单色器相接。
② 在电源电压与仪器要求的电压相符时，分别插上稳压器和检流计的电源插头。
③ 将单色器的光路闸门找到黑点（关闭光路的指示）位置后，再将检流计上的电源开关旋到“开”处。
此时，指示光点即出现在标尺上，用零点调节器将光点中线准确地调至透光率标尺的。
“0”位上。
④ 打开稳压器的电源开关和单色器的光源开关，隔10分钟，再使用仪器。
⑤ 将比色杯架暗厢盖打开，取出比色杯架，将4支比色杯中的1支装入空白溶液或蒸馏水，其余3支装入待测液。
将比色杯置于架上，空白溶液杯应放在第一格内，放回暗厢内，盖好暗厢盖。
此时，空白溶液杯应在光路上。
⑥ 旋转波长调节器，将所需波长对准红线。
把光路闸门拨到红点（打开光路的指示）位置上，并以顺时针方向旋动光点调节器，使光点中线移至透光率“100”的刻度处。
数分钟后，待光电池趋于稳定，再轻轻转动光点调节器，使光点中线准确地处于透光率“100”的位置。
⑦ 将单色器的光路闸门拨回黑点处，校正检流计的光点中线于“0”位上。
然后，立即开启光路闸门，拨至红点处，校正检流计光点中线对准透光率“100”刻度上。
⑧ 调节好后，可以进行样品溶液的测定。
将比色杯定位装置的拉杆轻轻地拉出一格，使第二个比色杯内的待测液进人光路。
此时，检流计标尺上光点中心线所指示的读教，即为该溶液的光密度或透光率。
依此测定第二、第三个待测液，并读出数据。
重复2—3次后，取其平均值。
⑨ 在测定过程中，应经常关闭光路闸门，核对检流计的零点位置。
如有改变，及时用零点调节器核准。
⑩ 测定完毕，将每个旋钮、开关和调节器等复原或关闭。
拔掉电源插头，切断电源，并盖好仪器罩。
生化实验基本操作
生化实验基本操作目的要求：1．熟悉实验室规则及常用生化仪器2．清点洗刷实验用具。
3．掌握各种仪器的正规操作及维护实验操作1．玻璃仪器的洗涤(1) 洗涤液：①洗洁精，肥皂水，洗衣粉。
②玻璃仪器专用洗涤液：主要成份为中性稀氯氧化剂，上海日化研究所出品(2) 洗涤的要求与步骤：要求：洁净的玻璃器皿表面应不挂任何水滴。
步骤：不净的器皿：洗衣粉或肥皂水刷洗自来水冲净对使用过的仪器应养成及时清洗的习惯，特别是血液分析时用以吸取血液样本的吸管，用过后应当立即用水将所沾的血液冲去，否则放置过久，血液干燥硬结，就很不容易清除。
(3)玻璃仪器的干燥一般的玻璃仪器均可洗净后倒置架上，让其水分蒸发自然干燥，如需迅速干燥者应按仪器的不同类型按下述不同方法处理：①试管、离心管、烧杯、烧瓶等普通玻璃器皿可置烤箱中100—105℃烘烤②少量仪器如需急用也可在电炉上或酒精灯上烘烤。
烘烤时应将器皿时时转动，务使受热缓慢且均匀，并将管口(或杯口)倾斜向下，以便水蒸气冷凝成水滴，顺口流出，不致使水滴接触烘热了的器壁而使仪器爆裂。
③使用电吹风干燥一般玻璃仪器也很便利常用。
④下列玻璃仪器应避免烘烤：吸管：容易造成器壁变形而致容量不准。
比色杯：易在烘烤时发生破裂。
2．移液操作：(1)吸量管的使用①吸量管的选择：在一次完成转移的前提下，应选用容量较小的吸量管。
·对于同一次实验中同一种试剂的移取，应选用同一支吸量管②操作·用洗耳球将液体吸至超过标线·移开洗耳球，迅速用食指压紧管口·必要时将管尖端外围拭净·调液面至标线·放开食指，使液体流入容器·将最后液滴沿器壁而下或吹出③读数·吸量管保持垂直·视线与液面应水平·管中液面与刻度线应呈切线注：对于刻度由上至下的吸量管应尽量使用上端刻度管尖残液是否需吹出，(2)枪式移液器的使用①枪式移液器的结构1. 液体吸放钮2．体积选取钮3. 体积、显示4．枪头排放钮5. 枪头排放器6．枪头接嘴其内部柱塞分2段行程，第1档为吸液，第2档为放液，手感十分清楚。
生化实验的基本操作
生化实验的基本操作（一）搅拌和振荡1.配制溶液时，必须随时搅拌或振荡混合。
配制完了时，必须充分搅拌或振荡混合。
2.搅拌使用的玻璃搅棒，必须两头都烧圆滑。
3.搅棒的粗细长短，必须与容器的大小和所配制的溶液的多少呈适当比例关系。
不能用长而粗的搅棒去搅拌小离心管中的少量溶液。
4.搅拌时，尽量使搅棒沿着器壁运动，不搅入空气，不使溶液飞溅。
5.倾入液体时，必须沿器壁慢慢倾人以免有大量空气混入。
倾倒表面张力低的液体(如蛋白质溶液）时，更需缓慢仔细。
6.振荡溶液时，应沿着圆圈转动容器，不应上下振荡。
7.振荡混合小离心管中液体时，可将离心管握在手中，以手腕、肘或肩作轴来旋转离心管; 也可由一手持离心管上端用另一手弹动离心管；也可用一手大拇指和食指持管的上端，用其余三个手指弹动离心管。
手指持管的松紧要随着振动的幅度变化。
还可以把双手掌心相对合拢，住离心管，来回挫动。
8.在容量瓶中，混合液体时，应倒持容量瓶摇动，用食指或手心顶住瓶塞，并不时翻转容量瓶。
9.在分液漏斗中振荡液体时，应用一手在适当斜度下倒持漏斗，用食指或手心顶住瓶塞，并用另一手控制漏斗的活塞。
一边振荡，一边开动活塞，使气体可以随时由漏斗泄出。
10.研磨配制肢体溶液时，要使杵棒沿着研钵的单方向进行，不要来回研磨。
（二）沉淀的过滤和洗涤1.过滤沉淀一般使用滤纸。
2.应根据沉淀的性质选择不同的滤纸.胶状沉淀,应使用质松孔大的滤纸.一般大小颗粒的结晶形成沉淀,应使用致密孔小的滤纸。
而极细的沉淀，则应使用致密孔最小的滤纸。
滤纸越致密，过滤就越慢。
3.滤纸的大小要由沉淀量来决定，并不是由溶液的体积来决定。
沉淀量应装到滤纸高度的1／3左右。
最多不应超过1／2，通常使用直径为7-9厘米的圆形滤纸。
4.折叠滤纸应先整齐的对折，错开一点再对折，打开后形成一边一层，一边三层的圆锥体。
折叠尖端时不可过于用力，以免容易出洞。
放入漏斗中时，滤纸边缘应完全吻合。
撕去三层一边的外面两层部分的尖端，使滤纸上缘能更好的贴在漏斗的壁上，不留缝隙。
生化实验室操作流程
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收集所需的实验材料和试剂，包括细胞、培养基、酶、抗体、化学药品等。
生化实验室基本操作
生化实验室基本操作1 玻璃仪器的清洗实验中所用的玻璃仪器清洁与否，直接影响实验的结果，往往由於仪器的不清洁或被污染而造成较大的实验误差，有时甚至会导致实验的失败。
做生物化学实验对玻璃仪器清洁程度的要求，比一般化学实验的要求更高。
这是因为：①生物化学实验中蛋白质、酶、核酸等往往都是以“毫克”和“微克”计的，稍有杂质，影响就很大。
②生物化学实验对许多常见的污染杂质十分敏感，如金属离子（钙、镁离子等）、去污剂和有机物残基等，因此玻璃仪器（包括离心管等塑料器皿）是否彻底清洗净就是非常重要的。
⑴初用玻璃仪器的清洗新购买的玻璃仪器表面常附着有游离的碱性物质，可先用0.5％的去污剂洗刷，再用自来水洗净，然后浸泡在1％～2％盐酸溶液中过夜（不可少于四小时），再用自来水冲洗，最后用无离子水冲洗两次，在100℃～120℃烘箱内烘干备用。
⑵使用过的玻璃仪器的清洗先用自来水洗刷至无污物，再用合适的毛刷沾去污剂（粉）洗刷，或浸泡在0.5％的清洗剂中超声清洗（比色皿决不可超声），然后用自来水彻底洗净去污剂，用无离子水洗两次，烘干备用（计量仪器不可烘干）。
清洗后器皿内外不可挂有水珠，否则重洗，若重洗后仍挂有水珠，则需用洗液浸泡数小时后（或用去污粉擦洗），重新清洗。
⑶石英和玻璃比色皿的清洗决不可用强碱清洗，因为强碱会浸蚀抛光的比色皿。
只能用洗液或1％～2％的去污剂浸泡，然后用自来水冲洗，这时使用一支绸布包裹的小棒或棉花球棒刷洗，效果会更好，清洗干净的比色皿也应内外壁不挂水珠。
2 塑料器皿的清洗聚乙烯、聚丙烯等制成的塑料器皿，在生物化学实验中已用的越来越多。
第一次使用塑料器皿时，可先用8mol/L尿素（用浓盐酸调pH = 1）清洗，接着依次用无离子水、1 mol/L KOH和无离子水清洗，然后用10—3 mol/L EDTA 除去金属离子的污染，最后用无离子水彻底清洗，以后每次使用时，可只用0.5％的去污剂清洗，然后用自来水和无离子水洗净即可。
生化实验基本操作技术
生化实验基本操作技术一：玻璃仪器的洗涤及干燥：（一）意义：去除干扰物，提高实验结果的准确性。
（二）常用洗涤剂：1．洗衣粉，肥皂，洗洁精，去污粉----用于一般去污。
2．强酸，强碱，尿素------去除蛋白质，核酸。
3．铬酸洗液------见附2。
4．水（自来水，蒸馏水）------用来冲洗容器。
（三）洗涤方法：* 洗涤程序：泡→洗（→泡）→冲→漱1．新仪器的洗涤：2%的盐酸浸泡数小时→自来水冲净→洗涤剂溶液中浸泡过夜→试管刷蘸肥皂、洗衣粉或去污粉擦洗容器内外壁→自来水冲10 遍→蒸馏水漱洗内壁3 遍→包装、消毒→干燥备用。
2．非定量敞口仪器的洗涤（试管、烧杯等）用后立即放入洗涤剂溶液或清水中浸泡过夜→试管刷蘸肥皂、洗衣粉或去污粉擦洗容器内外壁→自来水冲10 遍→检查是否洗净→蒸馏水漱洗内壁3 遍→包装、消毒→干燥备用。
注意：检查毛刷顶部是否裸露，洗刷时用力不可过猛，以免戳破玻璃仪器。
3．窄口仪器的洗涤（容量瓶、试剂瓶）使用后立即在洗涤剂溶液或清水中浸泡过夜→洗涤剂溶液倒入容器内（约1/4）→小心转动或摇动仪器→自来水冲10 遍→检查是否洗净→蒸馏水涮洗内壁3 遍→包装、消毒→干燥备用。
4．刻度吸管的洗涤使用后立即用大量自来水冲洗（切勿使样品干在管内，否则难以洗净）→干燥后放入铬酸洗液中浸泡过夜→取出，在特制的容器中用自来水冲洗30 分钟→蒸馏水涮洗内壁3 遍→包装、消毒→干燥备用。
（四）判断洗净的标准：洗净的玻璃仪器管壁光洁、清亮，无污渍；被水湿润后，管壁呈现均匀水膜，无挂水珠。
（五）干燥方法1、晾干：仪器倒立放在特制架子上，自然晾干。
2、烘干：尽量倒净仪器内部的水，将其倒立放在托盘上，放入烘箱烘干。
普通仪器用80-100℃，容量分析仪器用37-40℃。
3、有机溶剂干燥：体积小的容器急需干燥时，可用此法。
洗净的仪器先用少量酒精洗一次，再用少量丙酮或乙醚洗涤，吹干（不必加热）。
二：吸管和微量移液器的使用及注意事项：（一）刻度吸管：1．作用：用于准确移取一定体积的溶液。
生物化学实验的基本操作
一、玻璃仪器的使用及清洁（一）玻璃仪器的洗涤及干燥1、一般仪器：烧杯、试管、离心管等普通玻璃仪器，可直接用毛刷蘸餐洗净刷洗，然后用自来水冲洗，直至容器内不挂水珠即可。
最后用少量蒸馏水冲洗内壁2－3次，倒置晾干即可。
2、容量分析仪器：容量瓶、滴定管及吸管等容量仪器，用后用自来水多次冲洗，如能清洁（壁不挂水珠），再用蒸馏水少量冲洗2~3次晾干即可备用。
若仍不干净附有油污等，则须于干后放入铬酸洗液内浸泡数小时，然后倒净（或捞出）洗液，用自来水充分冲洗至水不显黄色后再冲几次，最后用少量蒸馏水冲洗2~3次晾干备用。
在做酶学实验时，对仪器的清洁要求更高，因如有极微量的污物（如重金属离子）即可导致整个实验失败。
因此，必要时仪器经上述方法洗涤后，还需用稀盐酸或稀硝酸洗涤，以除去铬及其它金属离子，然后再用自来水、蒸馏水冲洗。
生化实验室常用的洗液有以下几种：（1）铬酸洗液：为最常用的洗液，由重铬酸钾、粗硫酸及水配制而成，去污力强，清洗效果好。
其配制方法有多种，可根据需要进行选择，常用的配方如下表。
重铬酸钾（ｇ）100 60 100水（ｍｌ）750 300 200粗硫酸（ｍｌ）250 460 800清洁性能较弱较强（常用）最强配制方法为：先将重铬酸钾溶于水，再慢慢加入浓硫酸。
因配制过程产生大量热，容器需放入冷水中，边加硫酸边搅动混合。
由于产热量很大，使用玻璃容器有破裂的危险，所以最好用耐高温的陶瓷或耐酸的搪瓷容器。
洗液可多次反复使用，如效力变弱，可加入少量重铬酸钾及浓硫酸继续使用，但如果变为绿色，则不宜再用。
（2）10%尿素液：为蛋白质良好溶剂，帮适用于洗涤盛血的容器。
（3）草酸盐液：用于清洗过锰酸钾的痕迹。
（4）硝酸液：用1：1的硝酸水溶液，用于清洗CO2测定器及微量滴定管。
（5）乙二胺四乙酸二钠（EDTA－Nａ2）液：5~10%的EDTA－Nａ2液可用于洗涤器皿内无机盐类。
玻璃仪器的干燥方法可根据不同仪器的种类而定。
(可直接使用)生化实验基本操作.ppt
优选
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2．实验报告
实验结束后，应及时整理和总结实验结 果，写出实验报告。下面列举实验报告的书 写格式，仅供参考。
优选
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实验报告书写要求：实验名称、实验日期、 目的和要求、原理、实验测定的数据、图纸 及结果、结果分析和讨论。
优选
ห้องสมุดไป่ตู้
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原理：实验原理简要归纳，一些可用化学反 应式表示。
数据、图纸及结果：将一定实验条件下获得 的实验结果和数据进行整理、归纳、分析和 对比，并尽量总结成各种图表，如原始数据 及其处理的表格、标准曲线图以及实验组与 对照组实验结果的比较图表等。
优选
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3．注意保持实验室的整洁。实验完毕，须 将药品试剂排列整齐，仪器要放好，将实验 台面抹拭干净。使用后的玻璃仪器要清洗干 净放好。
优选
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4．要爱护实验仪器，节约使用各种试剂、 物品。使用仪器时，应小心仔细，防止损坏 仪器。使用贵重精密仪器时，应严格遵守操 作规程，发现故障立即报告教师，不要自己 动手检修。仪器损坏时，应如实向教师报告。
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实验中使用仪器的类型、编号及试剂的规 格、化学式、分子量、准确的浓度等，也应 如实记录，以便在总结实验时进行核对和作 为查找成败原因的参考依据。
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如果发现记录的结果有可疑、遗漏、丢失 等，都必须重做实验。因为，将不可靠的结 果当做正确的记录，在实际工作中可能造成 难以估计的损失。所以，在学习期间就应一 丝不苟，努力培养严谨的科学作风。
优选
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9．使用浓酸、浓碱，必须极为小心地操作， 防止溅失。用吸量管取这些试剂时，必须使 用橡皮球，绝对不能用口吸。若不慎溅在实 验台或地面，必须及时用湿抹布擦洗干净。 如果触及皮肤，应立即治疗。
生化实验操作规程
生化实验操作规程一、实验目的本实验操作规程旨在确保生化实验的顺利进行，保证实验结果的准确性和可重复性。
二、实验前准备1. 确认所需实验器材和试剂的齐全性。
2. 检查实验室安全设备的完好性，如洗眼器、紧急淋浴等。
3. 穿戴实验室安全防护用具，如实验服、手套、眼镜等。
4. 清洁并消毒实验台面和各项实验器皿。
三、实验操作步骤1. 根据实验需求，准备好所需样本和试剂，并按照提供的配方准确称量。
2. 将准备好的样本和试剂按照实验器具要求加入相应容器中，并进行混匀。
3. 设置实验仪器或设备的参数，确保其正常运行。
4. 将准备好的样本和试剂按照实验要求进行处理，如加热、冷却、离心等。
5. 在实验过程中，保持实验操作区域的整洁，避免交叉污染。
6. 在实验操作完成后，根据实验要求及时保存或处理样本和试剂。
7. 清洁并消毒使用过的实验器具，确保下次使用前的准备工作。
四、实验安全注意事项1. 遵守实验室安全操作规范，严禁单独操作以及无指导下进行实验。
2. 注意个人防护，正确佩戴实验服、手套、眼镜等防护用具。
3. 使用化学试剂时，避免直接接触皮肤和吸入有害气体。
4. 注意实验仪器或设备的安全操作要求，避免损坏设备或引发事故。
5. 在实验过程中，及时清理溢出物和废弃物，并正确处理。
五、实验记录与结果分析1. 按照实验要求记录实验操作的步骤、试剂使用量等相关信息。
2. 将实验结果进行详细记录，并进行数据分析和解释。
3. 对实验结果进行总结，归纳出可能存在的误差和改进方向。
六、实验后处理1. 根据实验室规定，妥善处理产生的废弃物和实验材料。
2. 清洁实验器具并归位，确保实验室的整洁和安全。
七、实验注意事项1. 严格按照操作规程进行实验，不得随意更改实验过程或参数。
2. 在实验过程中严禁食品和饮品的摄入，以免引起误食或误呼吸。
3. 如在实验过程中遇到问题或意外情况，应立即向指导老师报告。
通过以上的实验操作规程，我们能够确保每一次生化实验的顺利进行，并获得准确可靠的实验结果。
《生化实验基本操作》课件
掌握实验操作过程中需要注意的细节，确保实验结果准确可靠。
3 实验安全注意事项
学习实验过程中的安全操作规范和紧急事故应急预案，保障实验人员安全。
实验结果分析
展示实验结果的图像，分析并解释数据，介绍数据统计和分析方法。
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实验结果的图像展示和解析
使用图像和图表向观众展示实验结果，并进行详细解析。
PCR扩增
使用聚合酶链反应（PCR）扩增DNA片段的基本操 作步骤。
Western blotting
了解Western blotting技术在蛋白质检测中的应用和 操作流程。
实验注意事项
掌握实验前准备工作、实验操作步骤注意事项以及实验安全注意事项，确保操作顺利进行。
1 实验前准备工作
了解实验前的材料准备、设备检查和实验环境准备等重要步骤。
《生化实验基本操作》 PPT课件
生化实验基本操作PPT课件
实验原理介绍
了解生物分子的基本组成、化学性质和特点，以及生化实验的实验原理。
生物分子的基本组成
探索DNA、Rቤተ መጻሕፍቲ ባይዱA、蛋白质等生物分子的基本组成和结构。
生物分子的化学性质和特点
研究生物分子的化学特性，如酶的催化作用和蛋白质的折叠。
生化实验的实验原理
生化实验的应用前景
介绍生化实验在医学、农业和环境保护等领域的广泛应用前景。
参考文献
推荐一些生化实验相关的书籍，以及在线可获取的生化实验资源。 • 生化实验教程 - 张三，ISBN 978-1234567890 • 实验技术手册 - 李四，ISBN 978-0987654321 • 生化实验资源网站
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数据统计和分析方法
介绍常见的生化实验数据统计和分析方法，如t检验和方差分析。
生化实验报告实验的操作
一、实验目的1. 熟悉生化实验的基本操作流程；2. 掌握常见生化实验仪器的使用方法；3. 学习并掌握相关生化实验的操作技巧；4. 培养严谨的科学态度和实验技能。
二、实验原理本实验主要涉及以下生化实验：1. 血液生化检测：通过测定血液中的生化指标，了解人体健康状况；2. 蛋白质定量分析：通过测定蛋白质浓度，了解蛋白质含量；3. 糖类定量分析：通过测定糖类含量，了解糖代谢情况；4. 酶活性测定：通过测定酶活性，了解酶的催化能力。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 血液样本；- 蛋白质标准品；- 糖类标准品；- 酶活性测定试剂盒；- 试剂：缓冲液、显色剂、终止剂等。
2. 实验仪器：- 酶标仪；- 恒温水浴箱；- 移液器；- 离心机；- 烧杯、试管等。
四、实验步骤1. 血液生化检测（1）采集血液样本，按照实验要求进行处理；（2）使用移液器将处理后的血液样本分别加入不同的试剂中，进行检测；（3）将加入试剂的样本放入酶标仪中，按照仪器操作规程进行检测；（4）记录检测结果，绘制曲线图。
2. 蛋白质定量分析（1）称取一定量的蛋白质标准品，按照实验要求进行稀释；（2）使用移液器将稀释后的蛋白质标准品和待测样品分别加入不同的试剂中，进行检测；（3）将加入试剂的样本放入酶标仪中，按照仪器操作规程进行检测；（4）记录检测结果，绘制曲线图。
3. 糖类定量分析（1）称取一定量的糖类标准品，按照实验要求进行稀释；（2）使用移液器将稀释后的糖类标准品和待测样品分别加入不同的试剂中，进行检测；（3）将加入试剂的样本放入酶标仪中，按照仪器操作规程进行检测；（4）记录检测结果，绘制曲线图。
4. 酶活性测定（1）按照试剂盒说明书进行试剂配制；（2）使用移液器将试剂和待测样品分别加入不同的试管中，进行反应；（3）将加入试剂的样本放入酶标仪中，按照仪器操作规程进行检测；（4）记录检测结果，绘制曲线图。
五、实验结果与分析1. 血液生化检测结果分析：根据曲线图，计算血液样本中的生化指标，与正常值进行比较，判断样本是否异常。
3-生化实验基本操作
禁止平放在实验台面上！ • 洗涤（操作结束后）放液示意图可调式微量加样器的使用
• 选择（大小合适） • 设置量程(动作轻缓）
先确定调节轮的方向，再调至大于或小于所需值一格，最后 调回所需值。
• 装吸嘴（套牢，避免间隙） • 取液（按至第一停点，缓慢吸液） • 放液（贴壁放液）先按至第一停点，再按至第二停点。 • 卸吸嘴（废物缸） • 将数轮调回最大值 • 放置（放在固定支架上，严禁平放或倒置）
生化实验基本操作技术
基本操作技术内容
1 玻璃器皿的洗涤 2 溶液的混匀技术 3 吸量管、加样器的使用
常用玻璃器皿的洗涤方法㈠
使用过的玻璃器皿洗涤（常规洗涤方法）
倒掉内容物→自来水冲洗→温肥皂水冲洗→自来水冲洗→蒸馏水 冲洗三次
新购置的玻璃器皿洗涤
2%盐酸浸泡数小时→自来水冲洗→常规洗涤
血清堵塞刻度吸管洗涤
禁用毛刷或强氧化剂或超声波洗涤）
干燥—自然干燥、烘烤干燥
量器自然凉干，容器烘干备用。
洗涤、干燥原则与判断方法
玻璃器皿洗涤原则：
对不同玻璃器皿，采用不同的洗涤方法。根据器皿污 染源的不同选择合适的洗涤液。
玻璃器皿干燥原则：
量器自然凉干，容器烘干备用。
器皿清洁的判断方法：
洗涤后倒置容器，其内壁无挂珠；干燥后器壁内外干 净、无污物痕迹。
刻度吸管的使用
• 选管（大小合适）总容量等于或稍大于取液量 • 执管（左球右管） • 取液（一下一上）
插入液面下0.5cm，吸至最高刻度上方1～2cm
• 调准刻度（三点一线）
吸量管操作执管姿势
溶液弯月面、视线和刻度线在同一水平上
• 放液（贴壁放液）
需要吹的则吹出，如要求不吹的则让吸量管尖 端停靠内壁约15s，同时转动吸管，重复一次。
生化实验基本操作
• 4.新购置的玻璃仪器，应先置于1-2%稀盐酸 溶液中浸泡2-6小时，除去附着的游离碱，再 用自来水冲洗干净，最后用蒸馏水冲洗2-3次。
总的原则：凡用过的玻璃仪器，均应立即洗 涤，久置干涸后洗涤十分困难。如不能及时洗 涤，先用流水初步冲洗后浸泡在清水中，待后 按常规处理。
• 3.粘附有血浆的刻度吸量管等，有三种洗涤方 法：
㈡ 混匀的方法通常有以下几种：
1. 颠倒混匀：用玻璃纸堵住管口，上下颠倒混 匀。
2.叩击混匀:左手执试管上端，用右手指轻击试 管下半部，使管内溶液作旋转运动。
3.利用旋涡混合（振荡）器混匀。 4.振荡混匀：右手执试管上部，手腕抖动混匀。 5.不得已时可用干燥清洁的玻璃棒搅匀。
㈢ 混匀的注意事项： • ⒈防止盛器内的液体溅出或被污染。 • ⒉严禁用手指堵塞管口或瓶口震荡混匀。
三. 溶液的混匀
㈠混匀的目的： • ⒈使反应体系内的各种物质分子很好地互相接
触，充分进行反应；
• ⒉使欲稀释的溶液成为浓度均一的溶液。
电动离心机的使用方法：
• 1.将欲离心的液体，置于离心管或小试管内。 并检查离心管或小试管的大小是否与离心机的 套管相匹配。
• 2.取出离心机的全部套管，并检查套管底部是 否铺有软垫，有无玻璃碎片或漏孔（有玻璃碎 片必须取出，漏孔应该用蜡封住）。检查合格 后，将盛有离心液的两个试管分别放入套管中， 然后连套管一起分置于粗天平的两侧，通过往 离心管与套管之间滴加水来调节两边的重量使 之达到平衡。
㈡ 定量吸(移料制成。目前，因产 地厂家不同其质量、价格差异十分悬殊。
• 1.定量吸液器的优点：使用方便，取、加样迅 速，计量准确，不易破损，能吸取多种样品 （只换吸嘴即可）。
2.定量吸液器的类型：有两种类型。
生物化学实验操作手册(生物科学专为业)
总论21世纪是生命科学的世纪,生物化学与分子生物学是当代生命科学领域中一门重要的基础学科,它涵盖的基础理论,基本知识,基本技术与医学研究各学科领域密切相关,其理论与技术的发展,推动了生命科学的发展,对人类的科技进步与文明产生巨大影响。
生物化学实验是医学院校学生必修的一门独立的基础实验技术课程，其研究技术的发展与应用是依据物理学、化学及生物学的基本理论和实验方法而建立起来的。
20世纪20年代微量分析的发展，30年代电子显微镜的出现，40年代层析技术和电泳技术的兴起，以及同位素示踪技术、各种光谱技术、核磁共振技术的应用，激光、超导等新技术的出现，电子计算机技术的突飞猛进，使生物化学实验手段提高到一个崭新的水平，掌握生物化学实验方法和研究技术，对医学院校学生来说是十分重要的。
本门课程主要侧重于给学生以基本的实验方法和技能的训练，让学生了解并掌握生物化学的四大基本实验方法，即：分光光度法、离心法、层析法和电泳法。
同时也注意引进一些新近发展起来的、重要的生物化学及分子生物学研究技术，作为学生学习其他专业课程和进入科学研究领域的准备。
一、实验要求1．实验前必须预习实验指导和有关理论，明确实验目的、原理、预期的结果，操作关键步骤及注意事项。
2．实验时要严肃认真专心进行操作，注意观察实验过程中出现的现象和结果，结果不良时，必须重做。
3．实验中，应及时将实验结果如实记录下来，并请老师当场审核。
根据实验结果进行科学分析，按时将实验报告交教师评阅。
二、实验时注意事项1．进实验室要穿好实验服，以免酸碱腐蚀衣服。
2．进实验室前准备好实验指导、课本、笔记、实验记录本、报告本、文具等。
3．要保持实验台整洁，试剂、仪器应整齐,按次序放置。
实验完毕要按各类仪器的清洗方法和要求将仪器清洗干净。
4．实验室是培养学生独立思考、独立工作能力及良好科学作风的重要场所，操作务必认真不得敷衍，室内应保持肃静，不得吸烟、玩闹，不得随地吐痰，乱丢纸屑。
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（4）调准刻度：将吸管从溶液中取出，吸 管轻轻刮于试剂瓶口，如液体粘性大，可用 滤纸擦干管尖外壁，然后用食指控制流量， 使液体缓慢下降至所需刻度（注意液体凹面 与视线和刻度应在同一平面，此时立即压紧 吸管上口，使液体不再流出）。
（5）放液：放松食指，让液体自然流入试 管内，管尖不要插入试管下部原有的溶液中， 以免污染吸管和试剂，当液体流出完后，让 吸管尖端停靠容器内壁3-5秒钟。刻度吸量 管未注明吹的不能吹出残液。
四、实验室基本操作和常识
（一）玻璃仪器的清洗 玻璃仪器是生物化学中不可缺少的器具。实 验中所使用的玻璃仪器清洁与否，直接影响 实验结果，往往由于仪器的不清洁或被污染 而造成较大的实验误差，甚至会出现相反的 实验结果。因此，玻璃仪器的洗涤清洁工作 是非常重要的。
（二）吸量管的使用
吸量管（简称吸管）是生化实验中最常用 的仪器，可分为三类：①奥氏吸管，②移液 管，③刻度吸管。
结果分析和讨论：讨论部分不是对实验结果 的重述，而是关于实验方法(或操作技术)和 有关实验的一些问题，如对实验的正常结果 和异常现象以及思考题进行探讨；对于实验 设计的认识、体会和建议；对实验课的改进 意见等。
1．新购置玻璃仪器的清洗 新购买的玻璃 仪器表面常附着有游离的碱性物质，可先用 肥皂水(或去污粉)洗刷，再用自来水洗净， 然后浸泡在l％～2％盐酸溶液中过夜(不少 于4h)，再用自来水冲洗，最后用蒸馏水冲 洗2～3次，在烘箱内 。
分光光度法具有操作简便，快速等特点，它 是生物化学分析的重要手段之一，也是其他 学科进行分析研究的重要手段之一，对医学 生来说是一项重要的操作技术。
原理 分光光度法作为定量分析的基本依据 是Lambert-Beer定律，他们根据一系列的 实验证明：当一束单色光通过溶液介质时， 部分光能被溶液吸收。吸收的比值（透射光 /入射光）和入射光的强度无关，但与介质 的厚度及介质的浓度成正比。
3．比色杯外壁的液体用擦镜纸或细而软的 吸水纸吸干，再放入比色槽。不能用吸水纸 擦比色杯内壁。 4．测定有色溶液时，一定要用少量的原液 （有色溶液）洗比色杯内壁1～2次，以免改 变有色溶液的浓度。另外，在测一系列溶液 时，通常是按从稀到浓的顺序测定，以减少 测量误差。
5．本型仪器A值在0.2～0.7之间误差较小， 准确度较高。所以在测定时，可根据溶液的 浓度选用不同厚度的比色杯）但同一实验中 应用同规格比色杯，中途不能更换)，使溶 液的吸光度控制在0.2～0.7之间．
6．调节T=100％。将比色杯放入比色杯架， 使空白管对向光路，盖好比色杯暗箱盖，转 动“100%T旋钮”。调准电表指针指向 T=100处。 7．测定，读数。拉动比色杯座的拉杆，使 测定杯进入光路，迅速从电表上读出吸光度 值，记录。测定过程中随时拉回拉杆到原位， 是空白进入光路，观察指针是否在T=100 处，如不在及时调节。
Hale Waihona Puke 7．使用电器设备(如恒温水浴、离心机、电 炉等)时，严防触电；绝不可用湿手或在眼 睛旁视时开关电闸和电器开关。检查电器设 备是否漏电应用试电笔或手背触及仪器表面。 凡是漏电的仪器一律不能使用。
8．可燃物，特别是易燃物(如乙醚、丙酮、 乙醇、苯等)时，应特别小心。不要大量放 在桌上，更不应放在近火焰处。低沸点的有 机溶剂不准在火焰上直接加热，只能在水浴 上利用回流冷凝管加热或蒸馏。
5．废弃液体(强酸强碱溶液必须先用水稀释) 可倒入水槽内，同时放水冲走。废纸及其他 固体废物和带有渣滓沉淀的废液都应倒入指 定的垃圾筐内，不得倒入水槽或到处乱扔。
6．对实验的内容和安排不合理的地方可提 出改进意见。对实验中出现的一切反常现象 应进行讨论，并大胆提出自己的看法，做到 生动、活泼、主动地学习。
刻度吸管的使用： （1）选择：使用前先根据需要选择适当的 吸量管，刻度吸管的总量最好等于或稍大于 最大取液量。临用前要看清容量和刻度。
（2）执管：用右手拇指和中指（辅以无名 指），拿住吸管的上部，用食指堵住管上口 和控制液流，刻度数字要对向自己。切忌用 大拇指堵住管口，控制流量。
（3）取液：另一左手捏压吸耳球，将吸管 插入所量取的试剂溶液中，用吸耳球下端出 口对准吸管的上口，将液体轻轻吸上至所需 取量刻度上端稍高处，立即用右手食指堵住 管口。
2．实验报告
实验结束后，应及时整理和总结实验结 果，写出实验报告。下面列举实验报告的书 写格式，仅供参考。
实验报告书写要求：实验名称、实验日期、 目的和要求、原理、实验测定的数据、图纸 及结果、结果分析和讨论。
原理：实验原理简要归纳，一些可用化学反 应式表示。 数据、图纸及结果：将一定实验条件下获得 的实验结果和数据进行整理、归纳、分析和 对比，并尽量总结成各种图表，如原始数据 及其处理的表格、标准曲线图以及实验组与 对照组实验结果的比较图表等。
9．使用浓酸、浓碱，必须极为小心地操作， 防止溅失。用吸量管取这些试剂时，必须使 用橡皮球，绝对不能用口吸。若不慎溅在实 验台或地面，必须及时用湿抹布擦洗干净。 如果触及皮肤，应立即治疗。
10．如果不慎倾出了相当量的易燃液体，则 应按下法处理：(1)立即关闭室内所有的火 源和电加热器。(2)关门，开启小窗及窗户。 (3)用毛巾或抹布擦拭洒出的液体，并将液 体拧到大的容器中，然后再倒入带塞的玻璃 瓶。
2．使用过的玻璃仪器的清洗 (1)一般玻璃仪器：如试管、烧杯、锥形瓶 等、，先用自来水冲洗至无污物，再选用大 小合适的毛刷沾取去洗衣粉或肥皂水，将器 皿内外(特别是内壁)细心刷洗，再用自来水 冲洗干净，洗至容器内壁光洁不挂水珠为止， 最后用蒸馏水冲洗2～3次，倒置在清洁处晾 干，急用时可用干燥箱烤干。
实验一
生化实验基本操作
临床生物化学与分子生物学教研室
生物化学基本技术及应用
一、实验常识 （一）、实验室规则及安全及防护知识 1．自觉地遵守课堂纪律，维护课堂秩序， 保持室内安静。必须穿白大褂，不能穿背心、 拖鞋进入实验室。
2．要认真、严肃、积极、主动地做实验， 要听从教师的指导。实验过程中要认真做好 观察、记录。完成实验后经教师检查同意， 方可离开。实验完成后要及时的按要求完成 实验报告。
1．玻棒搅动法 适用于烧杯内容物的混匀， 如固体试剂的溶解和混匀。 2．吸量管混匀法 用吸管将溶液反复吸放 数次，使溶液充分混匀。
3．倒转混匀法 适用于有塞量筒和容量瓶、 试管内容物的混匀。一般试管内容物的混匀 可用聚乙烯等薄膜封口，再用手按住管口倒 转混匀。
4．指弹混匀法 左手持试管上端多用右手 指轻轻弹动试管下部，使管内溶液作旋涡运 动。 5．旋转混匀法 用手持容器，使溶液作离 心旋转，适用于未盛满液体的试管或小口器 皿，如锥形瓶。旋转试管时最好用手腕旋转。
可见光分光光度计
722型分光光度计的使用： 1．接通电源预热20分钟(此时暗箱盖应打 开)。 2．转动波长选择扭，选用所需的波长。 3．固定灵敏度。(一般使用“灵敏度调节旋 钮”1档，如调不到“T=100”再选用较高 档，中途不再变动．)
4．调节“0”点。揭开比色杯暗箱盖（光门 自动关闭），转动“0%T旋钮”，使数字 显示为0.00处。 5．放置比色杯 将盛有溶液的比色杯放置 于比色杯架中。
8．关机。关上电源开关；取出比色杯，检 查比色杯架是否弄湿、弄脏，如比色杯架脏 或湿，应取出冲洗干净，擦干后放回原处， 然后将暗箱盖好，清洗比色杯并凉干。
注意事项：
1．为了防止光电管疲劳，不测定时必须将 比色槽暗箱盖打开，使光路切断，以延长电 管使用寿命。 2．拿比色杯时，手指只能捏住毛玻璃面、 不能碰比色杯的透光面，以免沾污。装溶液 时，液量为比色杯容积的3/4为宜。
实验中使用仪器的类型、编号及试剂的规 格、化学式、分子量、准确的浓度等，也应 如实记录，以便在总结实验时进行核对和作 为查找成败原因的参考依据。
如果发现记录的结果有可疑、遗漏、丢失 等，都必须重做实验。因为，将不可靠的结 果当做正确的记录，在实际工作中可能造成 难以估计的损失。所以，在学习期间就应一 丝不苟，努力培养严谨的科学作风。
6．用完比色杯应立即用自来水冲洗，再用 蒸馏水洗净。不能用碱性溶液或氧化性很强 的洗涤剂，以免损坏，也不能用毛刷洗，以 免损伤透光面。
离 心 技 术
基本原理 离心技术是利用微粒绕轴旋转时借惯性的离 心运动，产生的强大离心力，将混合物中密 度不同的各组分分离的方法。
离心力场的大小常用重力来表示，称为相 对离心力（RCF）。一般情况下，在低速或 高速离心时常用转速n即每分钟的转数（r／ min）来表示；超速离心时常用重力加速度 g的倍数来表示。
3．注意保持实验室的整洁。实验完毕，须 将药品试剂排列整齐，仪器要放好，将实验 台面抹拭干净。使用后的玻璃仪器要清洗干 净放好。
4．要爱护实验仪器，节约使用各种试剂、 物品。使用仪器时，应小心仔细，防止损坏 仪器。使用贵重精密仪器时，应严格遵守操 作规程，发现故障立即报告教师，不要自己 动手检修。仪器损坏时，应如实向教师报告。
6．甩动棍匀法 右手持试管上部轻轻甩动 振摇，即可混匀。 7．电磁搅拌混匀法 在电磁搅拌机上放置 烧杯梦在烧杯内放入封闭于玻璃或塑料管中 的小铁棒，利用磁力使小铁棒旋转以达到混 匀杯中液体的目的。适用于酸碱自动滴定， pH梯度滴定等。
8．振荡器混匀法 利用振荡器使容器中的 内容物振荡，达到混匀的目的。
11．实验中一旦发生火灾切不可惊慌失措， 应保持镇静。首先立即切断室内一切火源和 电源。然后根据具体情况积极正确地进行抢 救和灭火。
（二）、实验记录及实验报告
1．实验记录 实验中观察到的现象、结果和数据，应及时 地直接记在记录本上。原始记录必须准确、 简练、详尽、清楚。记录时，应做到如实正 确记录实验结果，不可夹杂主观因素。在定 量实验中观测的数据，如称量物的质量、滴 定管的读数、光度计的读数等，都应设计表 格准确记下读数，并根据仪器的精确度准确 记录有效数字。