药理实验报告
药理学实验报告讨论
一、实验目的本次实验旨在探究不同药物剂量对小白鼠的影响，以戊巴比妥为例，探讨药物剂量与药理效应之间的关系。
二、实验原理药物剂量与药理效应之间存在一定的关系，即剂量效应关系。
在一定范围内，药物剂量增加，药理效应也随之增强。
然而，药物剂量达到一定程度后，药理效应不再随剂量增加而增强，甚至可能产生毒副作用。
因此，合理掌握药物剂量对于临床用药具有重要意义。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠18-22g，2只/组；2. 试剂：苦味酸、1mL注射器、生理盐水、戊巴比妥0.2%、0.4%、0.8%戊巴比妥钠溶液；3. 仪器：鼠称、电子天平、秒表、实验记录表。
四、实验方法1. 将小白鼠分为4组，每组2只，分别编号；2. 第1组：给予0.2%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；3. 第2组：给予0.4%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；4. 第3组：给予0.8%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；5. 第4组：给予生理盐水0.1mL/10g作为对照组；6. 观察并记录各组小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间，以及活动情况；7. 对实验数据进行统计分析，得出结论。
五、实验结果1. 第1组：翻正反射消失时间约为5分钟，恢复时间约为10分钟；2. 第2组：翻正反射消失时间约为3分钟，恢复时间约为8分钟；3. 第3组：翻正反射消失时间约为1分钟，恢复时间约为5分钟；4. 第4组：翻正反射消失时间约为30分钟，恢复时间约为45分钟。
六、实验讨论1. 实验结果显示，随着戊巴比妥钠剂量的增加，小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间均呈缩短趋势，说明药物剂量与药理效应之间存在正相关关系。
这与药物剂量效应关系的原理相符。
2. 在实验过程中，我们发现0.8%戊巴比妥钠溶液组的小白鼠出现呼吸抑制现象，表明药物剂量过大可能产生毒副作用。
因此，在临床用药过程中，应根据患者的病情和体质，合理调整药物剂量，避免药物过量导致的毒副作用。
3. 本实验采用腹腔注射给药方式，与临床实际给药方式有所不同。
药学本科药理学实验报告
实验名称：传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响实验目的：1. 观察传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。
2. 掌握实验操作技能，加深对传出神经系统药物作用机制的理解。
实验材料：1. 家兔1只，体重2-3kg。
2. 生理盐水100ml。
3. 0.1%肾上腺素0.5ml。
4. 0.01%心得安0.5ml。
5. 0.01%酚妥拉明0.5ml。
6. 0.01%硝普钠0.5ml。
7. 心电图机1台。
8. 动物手术器械一套。
实验方法：1. 将家兔固定于手术台上，打开胸腔，暴露心脏。
2. 将心电图机连接到家兔心脏，记录基础心率。
3. 向家兔心脏注射生理盐水0.5ml，观察并记录心率变化。
4. 向家兔心脏注射0.1%肾上腺素0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
5. 向家兔心脏注射0.01%心得安0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
6. 向家兔心脏注射0.01%酚妥拉明0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
7. 向家兔心脏注射0.01%硝普钠0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
实验结果：1. 注射生理盐水后，家兔心率无明显变化。
2. 注射肾上腺素后，家兔心率明显加快，血压升高，心电图出现室性早搏。
3. 注射心得安后，家兔心率明显减慢，血压降低，心电图出现房性早搏。
4. 注射酚妥拉明后，家兔心率无明显变化，血压降低。
5. 注射硝普钠后，家兔心率明显减慢，血压降低，心电图出现室性早搏。
实验分析：1. 肾上腺素是一种α、β受体激动剂，可以兴奋心脏和血管，使心率加快、血压升高。
2. 心得安是一种β受体阻断剂，可以抑制心脏和血管，使心率减慢、血压降低。
3. 酚妥拉明是一种α受体阻断剂，可以降低血压，但对心率影响不明显。
4. 硝普钠是一种血管扩张剂，可以降低血压，但对心率影响不明显。
实验结论：通过本次实验，我们观察到传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。
肾上腺素可以兴奋心脏和血管，心得安可以抑制心脏和血管，酚妥拉明和硝普钠可以降低血压。
药理植物配置实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 理解药理植物的概念和重要性。
2. 掌握药理植物提取物的制备方法。
3. 学习药理活性成分的检测与鉴定。
4. 分析不同药理植物提取物的药理活性。
二、实验原理药理植物是指具有药理作用的植物，其提取物中含有多种活性成分，具有治疗疾病、保健养生的作用。
本实验旨在通过提取药理植物的有效成分，检测其药理活性，并分析其药理作用。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 药理植物（如金银花、甘草、丹参等）- 无水乙醇、甲醇、蒸馏水等溶剂- 醋酸乙酯、氯仿等有机溶剂- 纸层析板、硅胶G、薄层色谱（TLC）鉴定用试剂2. 实验仪器：- 超声波提取仪- 水浴锅- 离心机- 紫外分光光度计- 薄层色谱仪- 分析天平- 容量瓶- 试管、烧杯、滴管等四、实验步骤1. 药理植物提取物的制备- 称取一定量的药理植物粉末，加入适量无水乙醇或甲醇，超声提取30分钟。
- 将提取液过滤，滤液浓缩至一定体积，得到药理植物提取物。
2. 药理活性成分的检测与鉴定- 将药理植物提取物进行薄层色谱（TLC）分析，确定其主要活性成分。
- 通过比较已知活性成分的标准样品，鉴定提取出的活性成分。
3. 药理活性测定- 将药理植物提取物进行紫外分光光度计测定，确定其活性成分的含量。
- 通过体外实验（如细胞毒性实验、抗菌实验等）或体内实验（如动物实验）评估其药理活性。
4. 药理活性成分的分离纯化- 根据TLC分析结果，采用有机溶剂萃取法、柱层析法等方法对活性成分进行分离纯化。
五、实验结果与分析1. 药理植物提取物的制备- 通过超声波提取法，成功制备了药理植物提取物。
2. 药理活性成分的检测与鉴定- 在TLC分析中，成功鉴定出药理植物提取物中的主要活性成分。
3. 药理活性测定- 通过紫外分光光度计测定，确定提取出的活性成分含量。
- 体外实验和体内实验结果表明，药理植物提取物具有一定的药理活性。
4. 药理活性成分的分离纯化- 通过有机溶剂萃取法和柱层析法，成功分离纯化了药理植物提取物中的活性成分。
动物安全药理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在通过动物安全药理实验，对某新型药物进行安全性评价，包括急性毒性、亚慢性毒性、慢性毒性以及遗传毒性等方面，为该药物的临床应用提供科学依据。
二、实验材料1. 实验动物：健康昆明小鼠，体重18-22g，雌雄各半。
2. 药物：某新型药物，纯度≥98%，由某制药企业提供。
3. 试剂与仪器：生理盐水、苦味酸、戊巴比妥钠、注射器、灌胃针、电子天平、手术剪、止血钳、平皿、托盘、烧杯等。
三、实验方法1. 急性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重。
（3）观察指标：观察实验动物在给药后24小时内出现的死亡、中毒症状及体征。
2. 亚慢性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重，连续给药90天。
（3）观察指标：观察实验动物在给药期间及停药后30天内出现的死亡、中毒症状及体征，并进行血液学、血液生化、脏器系数等指标检测。
3. 慢性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重，连续给药6个月。
（3）观察指标：观察实验动物在给药期间及停药后30天内出现的死亡、中毒症状及体征，并进行血液学、血液生化、脏器系数、病理学等指标检测。
4. 遗传毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为2组，每组10只，分别为实验组（给药组）和对照组。
（2）给药方式：实验组灌胃给药，剂量为2.0g/kg体重，连续给药90天。
药理学实验报告范文(共6篇)
篇一：药理学实验报告 1实验三 1、地西泮抗惊厥作用【目的】观察地西泮的抗惊厥作用。
【原理】尼可刹米可吸收入血，以至出现兴奋、抽搐、惊厥。
地西泮作用于边缘系统，加强了gaba能神经元的抑制作用，可有效地对抗中毒性惊厥。
【动物】家兔1只，体重2kg~3kg。
【药品】0.5%地西泮溶液、25%尼可刹米。
【器材】兔固定箱、台式磅秤、注射器（5ml）、针头（6号）。
【方法】取家兔1只，秤重并观察正常活动情况，然后静脉注射25%尼可刹米（0.5ml/kg 给药）。
观察动物的活动姿势、肌张力及呼吸等变化。
当家兔出现明显惊厥后，由耳静脉缓慢推注0.5%地西泮（按0.5ml/kg~1ml/kg给药），直到肌肉松弛为止。
【结果】将实验结果填入下表。
表地西泮对兔惊厥作用的影响给药前家兔反应正常尼可刹米给药后惊厥、肌肉强直肌肉松弛、镇静、催眠注射地西泮【讨论题】地西泮抗惊厥作用、作用机制及用途有哪些？【注意事项】家兔出现强直性惊厥后，应缓慢推注地西泮，过快可抑制呼吸。
2、用化学刺激法观察药物的镇痛作用【目的】观察药物的镇痛作用；学习化学刺激法筛选镇痛药或比较药物镇痛效果的方法。
【原理】腹膜的感觉神分布广泛，把醋酸等化学刺激物注入腹腔，使小鼠产生疼痛反应，表现为腹部双侧凹陷，躯体扭曲，后肢伸展，臀部高起，称扭体反应。
曲马多有镇痛作用，可明显抑制扭体反应。
【动物】小鼠2只，体重28g~32g。
【药品】0.2%盐酸曲马多溶液、0.6%醋酸溶液、生理盐水。
【器材】天平、注射器（1ml）、针头（5号）、秒表。
【方法】1、取小鼠2只，称重后观察正常活动后标号。
2、甲鼠腹腔注射盐酸曲马多溶液0.1ml/10g；乙鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。
3、给药30min后两鼠均腹腔注射醋酸0.2ml/只，观察记录注射醋酸后15min内两鼠出现扭体反应情况。
【结果】表药物对醋酸所致小鼠疼痛作用的影响鼠号药物用药前扭体反应次数甲乙醋酸---盐酸曲马多醋酸---生理盐水 4 19 用药后扭体反应次数 0 16【讨论题】结合实验结果说明曲马多的镇痛效果与临床用途。
药理实验报告大鼠
一、实验目的本实验旨在研究某新型药物在大鼠体内的药代动力学和药效学特性，为该药物的临床应用提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性SD大鼠，体重200-220g，共20只。
2. 药物：某新型药物（以下称药物A），纯度≥98%，由某制药公司提供。
3. 试剂与仪器：生理盐水、注射器、电子天平、离心机、分光光度计、恒温箱等。
三、实验方法1. 动物分组：将20只大鼠随机分为两组，每组10只，分别为实验组（药物A组）和对照组（生理盐水组）。
2. 给药方法：实验组大鼠按照体重计算药物剂量，对照组大鼠给予等体积生理盐水。
采用尾静脉注射给药，注射速度为0.5ml/min。
3. 样本采集：给药后0.5、1、2、4、8、12、24、48小时，每组大鼠随机选取5只，眼眶取血，分离血清。
4. 药代动力学分析：采用高效液相色谱法测定血清中药物A的浓度，计算药代动力学参数，如峰浓度（Cmax）、达峰时间（Tmax）、半衰期（t1/2）、AUC0-t、AUC0-∞等。
5. 药效学分析：观察大鼠的一般行为变化，记录死亡率、体重变化等指标。
四、实验结果1. 药代动力学分析：- 实验组大鼠血清中药物A的Cmax、Tmax、t1/2、AUC0-t、AUC0-∞等药代动力学参数与对照组相比，均有显著差异（P<0.05）。
- 药物A在大鼠体内的药代动力学过程符合二室模型，具有明显的首过效应。
2. 药效学分析：- 实验组大鼠在给药后0.5小时出现轻微的兴奋症状，随后逐渐恢复正常。
- 对照组大鼠在给药后无明显行为变化。
- 实验组大鼠死亡率、体重变化等指标与对照组相比，无显著差异（P>0.05）。
五、讨论1. 本实验结果表明，药物A在大鼠体内具有明显的药代动力学和药效学特性。
2. 药物A在大鼠体内的Cmax、Tmax、t1/2等药代动力学参数符合预期，表明该药物具有较好的生物利用度。
3. 药物A在大鼠体内的药效学实验结果显示，该药物具有良好的安全性，无明显不良反应。
药理学实验报告
药理学实验报告一、实验目的本次药理学实验的主要目的是研究药物药物名称对动物生理机能的影响，通过实验观察和数据分析，深入了解药物的作用机制、药效特点以及可能产生的不良反应，为临床合理用药提供科学依据。
二、实验材料1、实验动物选用健康的动物种类，体重在体重范围，雌雄各半。
实验前动物在实验室适应环境适应天数。
2、药品与试剂药物名称，规格为规格详情，由生产厂家生产。
实验中所需的其他试剂，如生理盐水、试剂名称等。
3、实验仪器电子天平、注射器、手术器械、生理记录仪等。
三、实验方法1、动物分组将实验动物随机分为分组数量组，每组每组动物数量只。
分别标记为实验组和对照组。
2、给药途径与剂量实验组动物通过给药途径，如静脉注射、腹腔注射等给予药物剂量的药物名称；对照组动物给予等体积的生理盐水。
3、观察指标在给药后的不同时间点（如具体时间点 1、具体时间点 2等），观察并记录以下指标：（1）动物的一般行为表现，如活动情况、精神状态等。
（2）生理指标，包括体温、心率、血压等。
（3）生化指标，如血液中某些酶的活性、代谢产物的含量等。
4、实验操作步骤（1）动物称重后，用适当的麻醉剂进行麻醉。
（2）进行手术操作，如插管、安装传感器等，以监测生理指标。
（3）按照预定的方案进行给药，并密切观察动物的反应。
（4）在规定的时间点采集血液、组织等样本，进行相关指标的检测。
四、实验结果1、一般行为表现实验组动物在给药后具体时间出现了具体行为变化，如活动减少、嗜睡等，而对照组动物行为正常。
2、生理指标变化（1）体温：实验组动物体温在给药后时间开始下降，具体时间达到最低点，与对照组相比差异显著（P<005）。
（2）心率：实验组心率在给药后时间出现减慢，具体时间恢复到正常水平，与对照组相比有统计学差异（P<005）。
（3）血压：实验组血压在给药后时间出现短暂升高，随后逐渐下降，与对照组相比差异明显（P<005）。
3、生化指标结果（1）血液中酶名称的活性：实验组动物血液中该酶的活性在给药后时间显著降低（P<005），而对照组无明显变化。
药理学实验实验报告
实验名称：不同给药途径对戊巴比妥钠药效影响的研究一、实验目的1. 探究不同给药途径对戊巴比妥钠药效的影响。
2. 理解药物剂量与药效之间的关系。
3. 学习和掌握实验设计、操作和数据分析的方法。
二、实验原理药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理作用的强弱。
给药途径不同，吸收速度有差别，药物反应的潜伏期和程度亦有差别。
一般而言，腹腔给药大于皮下给药大于灌胃给药的药效。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠18-22g，2只/组。
2. 实验药物：戊巴比妥钠溶液（0.2%、0.4%、0.8%）。
3. 实验器材：苦味酸、1mL注射器、生理盐水、电子天平、计时器、实验记录表等。
四、实验方法1. 将小白鼠随机分为三组，每组2只，分别编号为A、B、C。
2. A组：腹腔注射0.2%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
3. B组：皮下注射0.4%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
4. C组：灌胃0.8%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
5. 给药后，分别观察记录各组小白鼠的睡眠时间、活动情况等。
6. 实验结束后，对各组小白鼠进行麻醉，观察并记录其呼吸、心率等生命体征。
五、实验结果与分析1. 实验结果A组：小白鼠睡眠时间为30分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
B组：小白鼠睡眠时间为25分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
C组：小白鼠睡眠时间为20分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
2. 实验分析本实验结果表明，随着戊巴比妥钠剂量的增加，小白鼠的睡眠时间逐渐缩短，活动逐渐减少，呼吸和心率保持平稳。
这说明药物剂量与药效之间存在一定的关系。
同时，实验结果也表明，腹腔注射、皮下注射和灌胃给药对戊巴比妥钠的药效有一定的影响，其中腹腔注射的药效最强，其次是皮下注射，灌胃给药的药效最弱。
六、实验结论1. 戊巴比妥钠的药效与剂量呈正相关，剂量越大，药效越强。
2. 不同给药途径对戊巴比妥钠的药效有一定的影响，其中腹腔注射的药效最强，其次是皮下注射，灌胃给药的药效最弱。
医学生药理实训实验报告
一、实验名称药理实训实验二、实验目的1. 熟悉药理学实验的基本操作和实验技能。
2. 掌握常见药物的药理作用及其临床应用。
3. 培养学生严谨的实验态度和良好的实验习惯。
三、实验时间2023年X月X日四、实验地点药理学实验室五、实验人员（此处填写实验人员姓名）六、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）2. 药物：肾上腺素、阿托品、心得安、氯化钾3. 仪器设备：注射器、血压计、心电图机、麻醉机、生理盐水、生理盐水稀释液等七、实验步骤1. 家兔麻醉：采用静脉注射氯胺酮进行麻醉，剂量为30mg/kg。
2. 血压测量：家兔麻醉成功后，用血压计测量家兔的血压，记录基础血压值。
3. 肾上腺素实验：a. 静脉注射肾上腺素0.5mg/kg，观察血压变化，记录血压峰值及恢复时间。
b. 静脉注射阿托品0.5mg/kg，观察血压变化，记录血压峰值及恢复时间。
4. 心得安实验：a. 静脉注射心得安0.5mg/kg，观察血压变化，记录血压峰值及恢复时间。
b. 静脉注射氯化钾0.5g/kg，观察血压变化，记录血压峰值及恢复时间。
5. 心电图观察：在实验过程中，使用心电图机记录家兔的心电图变化。
八、实验结果1. 基础血压值：家兔基础血压值为XX mmHg。
2. 肾上腺素实验：a. 静脉注射肾上腺素后，血压迅速升高至XX mmHg，约XX分钟后恢复正常。
b. 静脉注射阿托品后，血压无明显变化。
3. 心得安实验：a. 静脉注射心得安后，血压无明显变化。
b. 静脉注射氯化钾后，血压迅速降低至XX mmHg，约XX分钟后恢复正常。
4. 心电图观察：在实验过程中，家兔心电图出现不同程度的改变。
九、讨论分析1. 肾上腺素为α、β受体激动剂，具有升高血压、加快心率、加强心肌收缩力等作用。
实验结果显示，肾上腺素注射后血压升高，符合药理作用。
2. 阿托品为M受体阻断剂，具有抑制副交感神经的作用。
实验结果显示，阿托品注射后血压无明显变化，说明阿托品对肾上腺素升压作用无明显影响。
药理学教学专业实践报告(3篇)
第1篇一、前言药理学作为一门重要的医学基础课程，对于培养医学专业人才具有重要意义。
为了提高药理学教学质量，加强实践教学环节，我参加了为期一个月的药理学教学专业实践。
本文将对我此次实践的经历、收获和体会进行总结。
二、实践内容1. 实习单位简介本次实践单位为某知名医学院校药理学实验室，该实验室设备齐全，拥有一支高素质的师资队伍。
实践期间，我参与了实验室的日常教学工作，包括实验教学、课程设计、毕业论文指导等。
2. 实践过程（1）实验教学在实践过程中，我主要负责实验教学部分。
首先，我熟悉了实验室的实验设备和实验原理，了解了实验操作流程。
随后，我协助指导老师完成了实验课程的教学任务，包括实验演示、实验操作、实验报告批改等。
（2）课程设计课程设计是药理学教学的重要组成部分。
在实践过程中，我参与了课程设计的教学工作，包括选题、指导、答辩等环节。
通过课程设计，学生能够将理论知识与实际应用相结合，提高实践能力。
（3）毕业论文指导毕业论文是学生毕业前的重要环节。
在实践过程中，我参与了毕业论文的指导工作，包括论文选题、文献检索、论文撰写等。
通过指导学生完成毕业论文，我进一步巩固了药理学知识，提高了自己的教学能力。
三、实践收获1. 理论知识与实践相结合通过本次实践，我将药理学理论知识与实际操作相结合，加深了对药理学知识的理解。
在实验教学中，我学会了如何将抽象的理论知识具体化，使学生更容易理解和掌握。
2. 教学能力的提升在实践过程中，我参与了实验教学、课程设计、毕业论文指导等工作，提高了自己的教学能力。
通过与学生互动，我学会了如何调动学生的积极性，激发学生的学习兴趣。
3. 团队协作能力的培养在实践过程中，我与实验室的老师们共同完成了教学任务，培养了团队协作能力。
在团队中，我学会了如何与他人沟通、协调，共同完成工作。
4. 对药理学教学的思考通过实践，我对药理学教学有了更深入的认识。
我认为，药理学教学应注重以下几个方面：（1）理论联系实际，将抽象的理论知识具体化，提高学生的实践能力；（2）激发学生的学习兴趣，培养学生的自主学习能力；（3）注重教学方法的创新，提高教学质量；（4）加强师资队伍建设，提高教师的教学水平。
药理实验设计性实验报告(3篇)
第1篇实验名称：药理作用与药物代谢动力学研究实验目的：1. 探究某种药物对特定生理或病理过程的影响。
2. 分析药物在体内的代谢动力学特征。
3. 设计合理的实验方案，培养学生的实验设计能力和科学思维。
实验原理：本实验采用体外细胞培养和体内动物实验相结合的方法，研究某种药物对特定生理或病理过程的影响，并分析其代谢动力学特征。
通过比较不同剂量、不同给药途径下的药效和药动学参数，为临床用药提供理论依据。
实验材料：1. 体外细胞培养：细胞株、培养基、试剂等。
2. 体内动物实验：实验动物（如小鼠、大鼠）、药物、生理盐水等。
3. 实验仪器：细胞培养箱、显微镜、离心机、酶标仪、高效液相色谱仪等。
实验方法：1. 体外细胞实验：a. 将细胞株接种于培养皿，在细胞培养箱中培养至对数生长期。
b. 将药物分别以不同浓度处理细胞，观察药物对细胞生长、形态、功能的影响。
c. 通过酶联免疫吸附试验（ELISA）检测药物作用下的细胞因子、受体等指标。
d. 通过高效液相色谱法（HPLC）检测药物在细胞内的代谢产物。
2. 体内动物实验：a. 将实验动物随机分为实验组和对照组。
b. 实验组给予不同剂量的药物，对照组给予等体积的生理盐水。
c. 观察动物的一般生理状态，记录药物对动物生理指标的影响。
d. 收集血液、尿液等样本，通过HPLC检测药物在体内的代谢动力学特征。
实验步骤：1. 体外细胞实验：a. 将细胞株接种于培养皿，培养至对数生长期。
b. 分别设置不同药物浓度组，每组设置复孔。
c. 将药物加入培养皿，培养一段时间后观察细胞生长、形态、功能变化。
d. 收集细胞，通过ELISA检测细胞因子、受体等指标。
e. 收集细胞培养液，通过HPLC检测药物代谢产物。
2. 体内动物实验：a. 将实验动物随机分为实验组和对照组。
b. 实验组给予不同剂量的药物，对照组给予等体积的生理盐水。
c. 观察动物的一般生理状态，记录药物对动物生理指标的影响。
d. 收集血液、尿液等样本，通过HPLC检测药物在体内的代谢动力学特征。
药理学实验报告实验对象(3篇)
第1篇实验名称：某药物对实验动物血压的影响实验日期：2023年4月15日实验地点：药理学实验室实验对象：雄性SD大鼠，体重200-220g，共10只一、实验目的1. 了解药理学实验的基本操作流程。
2. 掌握血压测量的方法。
3. 研究某药物对实验动物血压的影响。
二、实验原理血压是衡量心血管系统功能的重要指标，血压的变化可以反映心血管系统的状态。
本实验通过观察某药物对实验动物血压的影响，探讨该药物对心血管系统的调节作用。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：雄性SD大鼠，体重200-220g，共10只。
2. 仪器：电子血压计、鼠夹、生理盐水、某药物、实验记录表。
四、实验方法1. 实验动物分组：将10只大鼠随机分为两组，每组5只，分别编号为A组和B组。
2. A组为实验组，B组为对照组。
3. 实验前，A组给予某药物，B组给予等体积的生理盐水。
4. 药物给予后，每隔1小时测量一次血压，连续测量4次。
5. 记录每组大鼠的血压值，并计算平均值。
五、实验结果1. A组大鼠血压变化情况：- 给药前：平均血压为120mmHg。
- 给药后1小时：平均血压为110mmHg。
- 给药后2小时：平均血压为100mmHg。
- 给药后3小时：平均血压为90mmHg。
- 给药后4小时：平均血压为85mmHg。
2. B组大鼠血压变化情况：- 给药前：平均血压为120mmHg。
- 给药后1小时：平均血压为118mmHg。
- 给药后2小时：平均血压为116mmHg。
- 给药后3小时：平均血压为114mmHg。
- 给药后4小时：平均血压为112mmHg。
六、实验分析1. 通过实验结果可以看出，某药物对实验动物血压有明显的降低作用。
2. 给药后，A组大鼠血压逐渐降低，与对照组相比，血压降低幅度较大。
3. 实验结果表明，某药物对心血管系统有良好的调节作用，可能具有降低血压的效果。
七、实验结论1. 某药物对实验动物血压有明显的降低作用。
2. 该药物可能具有降低血压的效果，具有潜在的临床应用价值。
药理实验报告
一、实验目的1. 了解药物的基本作用机制。
2. 掌握药理实验的基本操作方法。
3. 通过实验，观察药物的药理作用，验证其药效。
二、实验材料1. 实验动物：家兔一只（体重2-3kg）。
2. 药物：阿托品（0.5mg/kg）、新斯的明（0.05mg/kg）、氯化钾（0.1g/kg）。
3. 仪器：血压计、心电监护仪、注射器、注射针、生理盐水等。
4. 实验试剂：生理盐水、氯化钾溶液、阿托品溶液、新斯的明溶液。
三、实验方法1. 实验动物麻醉：将家兔置于实验台上，用麻醉药进行麻醉，使其进入麻醉状态。
2. 生命体征监测：将家兔放入心电监护仪中，实时监测其心率、血压等生命体征。
3. 药物给药：根据实验要求，依次给予阿托品、新斯的明、氯化钾等药物。
4. 观察记录：在给药过程中，密切观察家兔的生命体征变化，记录相关数据。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，得出结论。
四、实验结果1. 阿托品实验：- 给药后，家兔心率明显减慢，血压略有升高。
- 给药后5分钟，心率降至50次/分钟，血压升高至160/100mmHg。
- 给药后10分钟，心率降至40次/分钟，血压升高至180/120mmHg。
- 给药后15分钟，心率降至30次/分钟，血压升高至190/130mmHg。
2. 新斯的明实验：- 给药后，家兔心率明显加快，血压略有下降。
- 给药后5分钟，心率升至80次/分钟，血压降至130/90mmHg。
- 给药后10分钟，心率升至100次/分钟，血压降至120/80mmHg。
- 给药后15分钟，心率升至120次/分钟，血压降至110/70mmHg。
3. 氯化钾实验：- 给药后，家兔心率无明显变化，血压略有下降。
- 给药后5分钟，心率维持在60次/分钟，血压降至140/90mmHg。
- 给药后10分钟，心率维持在60次/分钟，血压降至135/85mmHg。
- 给药后15分钟，心率维持在60次/分钟，血压降至130/80mmHg。
药理基本实验报告
一、实验目的1. 了解药物的基本作用，包括兴奋和抑制作用。
2. 掌握药物剂量与药效的关系。
3. 学习观察和记录实验结果的方法。
4. 熟悉实验操作的规范和注意事项。
二、实验原理药物是用于预防、治疗和诊断疾病的化学物质。
药物的基本作用包括兴奋和抑制作用。
兴奋作用是指药物能增强组织或器官的功能活动，如提高心肌收缩力、增强神经传导等。
抑制作用是指药物能减弱组织或器官的功能活动，如降低血压、抑制神经传导等。
药物剂量与药效的关系是药理学研究的重要内容。
在一定范围内，药物剂量与药效成正比关系，即剂量越大，药效越强。
但当剂量超过一定范围时，药效不再随剂量增加而增强，甚至会出现毒副作用。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 药物：肾上腺素、心得安、咖啡因、戊巴比妥钠3. 仪器：电子天平、滴定管、量筒、秒表、观察室、记事本四、实验步骤1. 将小白鼠分为两组，分别命名为A组和B组。
2. A组给予肾上腺素，B组给予心得安。
3. 观察并记录两组小白鼠的兴奋或抑制作用，如活动度、呼吸频率、心率等。
4. 分别给予两组小白鼠咖啡因和戊巴比妥钠。
5. 观察并记录两组小白鼠的兴奋或抑制作用。
6. 对实验数据进行统计分析。
五、实验结果及分析1. A组给予肾上腺素后，小白鼠表现出兴奋症状，如活动度增加、呼吸加快、心率增加等。
2. B组给予心得安后，小白鼠表现出抑制作用，如活动度降低、呼吸减慢、心率降低等。
3. A组给予咖啡因后，小白鼠表现出兴奋症状，与肾上腺素作用类似。
4. B组给予戊巴比妥钠后，小白鼠表现出抑制作用，与心得安作用类似。
5. 对实验数据进行统计分析，结果显示肾上腺素、咖啡因对A组小白鼠具有兴奋作用，心得安、戊巴比妥钠对B组小白鼠具有抑制作用。
六、结论1. 药物的基本作用包括兴奋和抑制作用。
2. 药物剂量与药效的关系是药理学研究的重要内容。
3. 药物作用具有选择性，不同药物对不同器官或组织具有不同的作用。
七、讨论1. 药物作用的机制：药物作用的机制复杂多样，包括受体学说、离子通道学说、酶学说等。
药理化学实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解药理化学实验的基本操作方法和实验原理。
2. 掌握药物在体内的代谢过程及代谢产物。
3. 学会通过实验手段检测药物在体内的代谢情况。
4. 提高实验操作技能和实验数据分析能力。
二、实验原理药物在体内的代谢主要涉及氧化、还原、水解和结合等反应。
本实验通过模拟药物在体内的代谢过程，观察药物在代谢过程中产生的代谢产物，并对其进行分析和鉴定。
三、实验材料1. 仪器：紫外-可见分光光度计、高效液相色谱仪、旋转蒸发仪、恒温水浴锅、离心机、分析天平等。
2. 药品：药物样品、代谢产物标准品、实验试剂等。
3. 试剂：甲醇、乙腈、磷酸盐缓冲液、磷酸、盐酸等。
四、实验步骤1. 药物样品处理（1）称取一定量的药物样品，用甲醇溶解并定容至50mL容量瓶中。
（2）将溶液离心，取上清液待测。
2. 代谢产物检测（1）将代谢产物标准品用甲醇溶解并定容至10mL容量瓶中，制备成一系列标准溶液。
（2）取一定量的药物样品溶液和标准溶液，在紫外-可见分光光度计上测定其吸光度。
（3）以吸光度为纵坐标，浓度（μg/mL）为横坐标，绘制标准曲线。
（4）根据药物样品溶液的吸光度，从标准曲线上查出其浓度。
3. 代谢产物鉴定（1）将药物样品溶液进行高效液相色谱分析，记录色谱图。
（2）将色谱图与代谢产物标准品的色谱图进行比对，鉴定代谢产物。
4. 数据处理（1）计算药物样品中代谢产物的含量。
（2）分析实验结果，得出结论。
五、实验结果与分析1. 标准曲线绘制根据实验数据，绘制标准曲线，如图1所示。
图1 代谢产物标准曲线2. 代谢产物含量测定根据标准曲线，计算药物样品中代谢产物的含量，结果如表1所示。
表1 药物样品中代谢产物含量样品编号 | 代谢产物A浓度（μg/mL） | 代谢产物B浓度（μg/mL） | 代谢产物C浓度（μg/mL）--------|------------------------|------------------------|------------------------1 | 0.25 | 0.15 | 0.102 | 0.30 | 0.20 | 0.123 | 0.28 | 0.18 | 0.113. 代谢产物鉴定根据色谱图比对，鉴定药物样品中的代谢产物为代谢产物A、B和C。
动物药理测试实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在通过动物药理测试，了解药物对动物生理指标的影响，为药物的临床应用提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：成年雄性小鼠，体重（20±2）g，由XX实验动物中心提供。
2. 药物：某新型抗高血压药物，由XX制药公司提供。
3. 仪器：电子天平、电子血压计、电子体温计、热板测痛仪、电刺激器、离心机、显微镜等。
4. 试剂：生理盐水、药物溶剂等。
三、实验方法1. 分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验前处理：对实验动物进行适应性饲养，观察动物的行为、饮食、活动等情况。
3. 药物给药：实验组动物按体重给予某新型抗高血压药物，对照组动物给予等体积的生理盐水。
4. 生理指标检测：（1）血压检测：给药前后，采用电子血压计测量实验动物血压。
（2）体温检测：给药前后，采用电子体温计测量实验动物体温。
（3）热板测痛实验：给药前后，采用热板测痛仪检测实验动物痛阈。
（4）电刺激实验：给药前后，采用电刺激器检测实验动物痛阈。
5. 数据处理：采用SPSS软件对实验数据进行统计分析。
四、实验结果1. 血压变化：给药后，实验组动物血压较给药前明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 体温变化：给药前后，实验组动物体温与对照组相比，差异不具有统计学意义（P>0.05）。
3. 热板测痛实验：给药后，实验组动物痛阈较给药前明显升高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 电刺激实验：给药后，实验组动物痛阈较给药前明显升高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
五、讨论分析1. 本次实验结果表明，某新型抗高血压药物对动物血压有明显的降低作用，且痛阈升高，表明该药物具有良好的镇痛效果。
2. 与对照组相比，实验组动物血压降低、痛阈升高，说明该药物具有良好的抗高血压和镇痛作用。
3. 本次实验结果为该药物的临床应用提供了实验依据，为后续研究提供了参考。
凝血试验药理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 探究不同药物对凝血过程的影响。
2. 评估药物在调节凝血功能中的作用。
3. 了解药物在不同给药途径下的药效差异。
二、实验原理凝血过程是血液凝固形成血凝块的一系列复杂反应。
在此过程中，多种凝血因子参与其中，共同完成血液凝固。
本实验通过观察不同药物对凝血时间、凝血酶原时间（PT）、活化部分凝血酶原时间（APTT）等指标的影响，评估药物对凝血过程的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年小鼠，体重18-22g，雌雄不限。
2. 实验药物：肝素钠、华法林、阿司匹林、维生素K等。
3. 实验器材：毛细玻管、秒表、离心机、血凝分析仪等。
四、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为5组，每组6只。
分别为对照组、肝素钠组、华法林组、阿司匹林组和维生素K组。
2. 药物处理：对照组给予等体积的生理盐水；肝素钠组给予肝素钠溶液（100IU/kg体重）；华法林组给予华法林溶液（1mg/kg体重）；阿司匹林组给予阿司匹林溶液（100mg/kg体重）；维生素K组给予维生素K溶液（2mg/kg体重）。
各组动物均按相同途径给药。
3. 凝血试验：给药后，分别于0小时、1小时、2小时、4小时和8小时采集动物血液，测定PT、APTT和凝血时间。
4. 数据处理：采用统计学方法对实验数据进行统计分析。
五、实验结果1. 对照组：PT、APTT和凝血时间分别为（12.5±1.2）秒、（30.2±2.1）秒和（5.6±0.7）秒。
2. 肝素钠组：PT、APTT和凝血时间分别为（23.4±2.3）秒、（42.1±3.2）秒和（9.2±1.0）秒。
3. 华法林组：PT、APTT和凝血时间分别为（15.8±1.5）秒、（35.6±2.7）秒和（7.1±0.9）秒。
4. 阿司匹林组：PT、APTT和凝血时间分别为（11.7±1.3）秒、（29.8±2.5）秒和（6.8±0.8）秒。
药物血浆药理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在探讨不同药物在小白鼠体内的血浆药理作用，包括药物的吸收、分布、代谢和排泄过程，以及药物浓度与药理效应之间的关系。
通过本实验，旨在加深对药物药理作用机制的理解，为临床合理用药提供实验依据。
二、实验原理1. 药物吸收：药物从给药部位进入血液循环的过程称为吸收。
药物吸收的速度和程度受多种因素影响，如药物剂型、给药途径、给药剂量、生理状态等。
2. 药物分布：药物吸收进入血液后，通过血液循环到达靶组织或器官的过程称为分布。
药物分布受药物性质、器官血流动力学、组织结合等因素影响。
3. 药物代谢：药物在体内发生化学结构改变的过程称为代谢。
代谢主要发生在肝脏，其次是肾脏和其他器官。
4. 药物排泄：药物及其代谢产物从体内排出体外的过程称为排泄。
排泄途径包括肾脏、肝脏、胆汁、呼吸、汗液等。
5. 药物浓度与药理效应：药物浓度与药理效应之间存在一定的关系。
在一定范围内，药物浓度越高，药理效应越强。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠18-22g，每组6只。
2. 药物：阿司匹林、吗啡、地西泮。
3. 试剂：生理盐水、EDTA-K2、肝素。
4. 仪器：电子天平、高速离心机、紫外分光光度计。
四、实验方法1. 药物制备：将阿司匹林、吗啡、地西泮分别制成溶液，浓度为1mg/mL。
2. 给药：将小白鼠随机分为三组，每组6只。
分别给予阿司匹林、吗啡、地西泮溶液，剂量为10mg/kg。
3. 采血：给药后0.5、1、2、4、6、8、10、12小时，每组随机选取2只小白鼠，从眼眶静脉丛采集血液，立即加入肝素抗凝。
4. 血浆分离：将采集的血液离心分离血浆，置于-80℃冰箱保存。
5. 药物浓度测定：采用紫外分光光度法测定血浆中药物浓度。
6. 数据分析：采用SPSS软件进行统计分析。
五、实验结果1. 阿司匹林：阿司匹林在给药后0.5小时开始吸收，2小时达到血药浓度峰值，随后逐渐下降。
阿司匹林在体内的半衰期为4小时。
2. 吗啡：吗啡在给药后0.5小时开始吸收，1小时达到血药浓度峰值，随后逐渐下降。
大学药理实验报告模板
一、实验名称[实验名称]二、实验目的1. 理解[实验目的1]。
2. 掌握[实验目的2]。
3. 学习[实验目的3]。
三、实验原理[简要介绍实验原理，包括药物作用机制、实验方法等]四、实验材料1. 药品：[药品名称]，规格[规格]，批号[批号]。
2. 仪器：[仪器名称]，型号[型号]。
3. 试剂：[试剂名称]，浓度[浓度]。
4. 其他：[其他所需材料]。
五、实验方法与步骤1. 实验前准备- 检查实验器材是否齐全，功能正常。
- 配制实验所需溶液。
2. 实验步骤- 步骤一：[具体步骤1]1. [操作细节1]2. [操作细节2]3. [观察现象及结果]- 步骤二：[具体步骤2]1. [操作细节1]2. [操作细节2]3. [观察现象及结果]- 步骤三：[具体步骤3]1. [操作细节1]2. [操作细节2]3. [观察现象及结果]六、实验结果与分析1. 实验结果- [将实验观察到的数据、图表等结果进行详细描述]2. 结果分析- [对实验结果进行解释和分析，与理论预期进行对比，讨论可能的原因]七、讨论1. 实验成功与否- [总结实验是否达到预期目标，分析原因]2. 实验误差分析- [分析实验过程中可能出现的误差，并提出改进措施]3. 实验改进建议- [针对实验过程中的不足，提出改进建议]八、结论[总结实验结果，得出结论]九、参考文献[列出实验过程中参考的文献]十、附录[如有需要，可附上实验数据、图表等]---注意事项：1. 实验报告应简洁明了，重点突出。
2. 实验步骤应详细具体，便于他人复现。
3. 结果与分析应客观真实，避免主观臆断。
4. 讨论部分应结合理论知识和实验结果，深入探讨。
5. 结论应明确，与实验目的相呼应。
[实验报告撰写日期]。
细胞分子药理实验报告
一、实验目的1. 了解细胞分子药理实验的基本原理和方法。
2. 掌握细胞培养、细胞形态观察、细胞活力检测、细胞因子检测等实验技术。
3. 研究药物对细胞生物学功能的影响。
二、实验材料1. 细胞：小鼠成纤维细胞（NIH 3T3细胞）2. 试剂：DMEM培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、抗生素、MTT、DMSO、细胞因子试剂盒等3. 仪器：细胞培养箱、倒置显微镜、酶标仪、超净工作台等三、实验方法1. 细胞培养（1）将NIH 3T3细胞接种于培养皿中，放入细胞培养箱中培养。
（2）待细胞贴壁生长至80%左右，用胰蛋白酶消化细胞，按照1:10的比例传代培养。
2. 药物处理（1）将细胞分为对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组。
（2）将药物用DMSO溶解，按照一定浓度加入各组细胞中，培养24小时。
3. 细胞形态观察（1）用倒置显微镜观察细胞形态变化。
（2）比较各组细胞形态的差异。
4. 细胞活力检测（1）采用MTT法检测细胞活力。
（2）将MTT溶液加入细胞培养皿中，培养4小时。
（3）加入DMSO溶解MTT产物，用酶标仪检测吸光度。
5. 细胞因子检测（1）采用细胞因子试剂盒检测细胞因子水平。
（2）收集细胞培养上清液，按照试剂盒说明书进行检测。
四、实验结果1. 细胞形态观察对照组细胞形态正常，细胞生长旺盛；低剂量组细胞形态基本正常，细胞生长受抑制；中剂量组细胞形态明显异常，细胞生长严重受抑制；高剂量组细胞形态严重异常，细胞死亡。
2. 细胞活力检测对照组细胞活力为100%；低剂量组细胞活力为80%；中剂量组细胞活力为60%；高剂量组细胞活力为40%。
3. 细胞因子检测对照组细胞因子水平正常；低剂量组细胞因子水平略降低；中剂量组细胞因子水平明显降低；高剂量组细胞因子水平显著降低。
五、实验结论本研究结果表明，在一定浓度范围内，药物对NIH 3T3细胞具有明显的抑制作用，且抑制作用与药物浓度呈正相关。
同时，药物处理后，细胞因子水平明显降低，说明药物可能通过影响细胞因子水平来抑制细胞生长。
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药理学实验指导邵阳医专药理学教研室1前言药理学既是理论科学，又是实践科学。
药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。
它的目的一方面是验证理论，巩固并加强对理论知识的理解；另一方面是学习和掌握药效学与药代动力学实验的基本操作方法和技能，培养学生对科学工作严肃的态度，严密的方法、严格的要求及科学的思维方式，学习实验设计及实验数据统计处理的有关知识，初步具备客观地对药理学实验现象进行观察、比较分析、综合和解决实际问题的能力。
从而更深入、准确地理解和掌握药理学基本知识，指导临床合理用药；并为研究开发新药、发现药物新用途，为其他生命科学的研究探索奠定初步基础。
一、药理实验注意事项实验前①仔细阅读实验指导，了解实验的目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；②结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面的理论知识，达到充分理解；③估计实验中可能出现的情况和发生的问题。
实验时①严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错造成实验失败；②认真、细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出现时间、表现以及最后结果，联系理论内容进行思考；③实验过程中要注意节约药品及实验材料，避免造成浪费。
实验后①认真整理实验结果，经过分析思考，写出报告，按时交给指导教师；②整理实验器材，洗净擦干，妥为安放。
将实验后的动物按要求放到指定地点，课后认真做好实验室的清洁卫生工作。
二、实验报告的书写：每次实验后应写好实验报告，交给实验教师批阅。
实验报告要求结构完整、条理分明、文字简练、书写工整，措辞应注意科学性和逻辑性。
实验报告一搬包括下列几项内容：①实验题目与日期②实验目的实验的意义所在，要做什么，用什么方法，达到什么目的③实验材料包括动物、实验药品、主要使用仪器、也包括手术器材、玻璃器材等的数量，及实验条件。
④实验方法步骤要清晰、使别人能看懂、能重复。
如果实验方法临时有变更，或者由于操作技术方面的原因影响观察结果时，应做简要说明。
⑤实验结果可用文字，也可表格或图示多种方法表示，是实验报告中重要的部分，需保证其绝对的真实性。
应随时将实验中观察到的现象在记录本上记录，实验告一段落后2立即进行整理。
不可单凭记忆或将原始记录搁置很久之后再做整理，这样易致实验结果遗漏或错误。
实验报告上一般只列经过归纳、整理的结果。
但原始记录应保存备查。
⑥分析讨论应针对实验中所观察到的现象与结果，联系课堂讲授的理论知识，进行分析和讨论。
要根据实验内容详细讨论实验结果说明了什么，是否达到实验目的要求和观察到设计的现象；各项指标说明了哪些问题；实验成功或失败的原因，应吸取的经验教训。
讨论不可脱离实验结果空谈理论，讨论中要判断实验中出现的是否为与理论相一致的预期结果，如果属于非预期结果，则应该分析其产生的可能原因。
⑦结论应是简短的一两句话，实验是否达到预期的目的，实验观察药物作用的结果有无预期的药理作用。
实验结论是从实验结果归纳而得的概括性判断，也就是对本实验所能说明问题、验证的概念或理论的简要总结。
3实验一药理实验基本知识与技术1．实验动物的选择首先应根据实验目的选择动物，其次要考虑动物的来源、饲养及价格等方面条件。
选择实验动物的原则应选择对被试药物或被研究物质最敏感的动物作为实验对象，实验动物选择不当，则可导致实验得出不正确的甚至相反的结论。
（1）小白鼠（小鼠）医学实验中应用最广泛的动物。
特别适用于需要大量动物的药物筛选、半数致死量测定、药效评价等实验研究。
因其繁殖能力强，妊娠期仅为21天，因而也常用于避孕药的研究。
由于其器官易发实质性损害，常用于致畸、致癌药及抗癌药的研究。
(2) 大白鼠（大鼠）大鼠也是较常用的实验动物，常用作亚急性和慢性毒性实验。
大鼠的血压反应比家兔好，常用来直接描记血压，进行降压药的研究。
它的垂体–肾上腺系统功能发达，可作为应激反应和肾上腺、垂体及卵巢等内分泌实验。
大鼠无胆囊，因此用其做胆管插管收集胆汁，进行消化药的研究。
大鼠的踝关节对炎症反应敏感，也用于治疗关节炎的药物研究。
(3)青蛙和蟾蜍青蛙和蟾蜍为冷血动物又经济易得，其离体心脏对维持其正常功能的环境条件要求低，在人工营养液、室温及pH渗透压接近于它的血液等简单条件下，蛙心即能节律性搏动很久，因此常用于强心药物的实验；其腓肠肌和坐骨神经可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用；其腹直肌还可用于检测胆碱能神经系统药物的作用。
(4)豚鼠豚鼠对组织胺等收缩支气管物质很敏感，常用于平喘药及抗组织胺药的研究，以及进行过敏反应及免疫方面的实验。
又因豚鼠对结核分支杆菌较敏感，也用于抗结核药物的实验研究。
(5)家兔家兔驯服、易得，且便于静脉注射和灌胃给药，因而广泛用于科研教学中。
常用于直接描记呼吸、血压的药效学实验及进行卵巢、胰岛等内分泌实验。
家兔心脏在离体情况下可搏动很久，是观察药物对哺乳动物心脏直接作用较合适的模型。
家兔体温变化敏感，常用于体温实验及热源检查。
(6)猫猫有较发达的神经系统和循环系统，常用于如去大脑僵直，姿势反射实验；观察刺激交感神经、瞬膜及虹膜的反应实验，阿托品解除毛果芸香碱作用等实验。
猫血压比较稳定，观察血压反应时猫优于兔，因此猫也用于心血管及镇咳药物实验。
(7)狗狗具有发达的血液循环和神经系统,以及基本与人相似的消化过程，因此是药理学研究中常用的动物之一。
如药物对心血管作用的实验，由于动物较大，可用于同时记录多项指标，如血压、心电、心音、呼吸及血流量等的实验。
也可用于条件反射、高血压等慢性实验,手术造胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动、分泌及消化过程的影响等实验。
45图1-1 编号标记图不同种类动物对药物的反应是有差异的，不同药效反应在一定程度上可阐明药物作用机制。
因此，对一些药理作用尚不清楚的药物进行研究时，最好选用几种不同动物进行实验。
宜从小动物开始，然后在如狗等大动物身上进行反复验证。
2．实验设计原则（1）随机原则：按照机遇均等的原则进行分组。
其目的是使一切干扰因素造成的实验误差减少，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。
（2）对照原则：空白对照（指在不加任何处理的条件下进行观察对照）；阴性对照也称假处理对照（给予生理盐水或不含药物的溶媒）；阳性对照也称标准对照（指以已知经典药物在标准条件下与实验药进行对照）。
（3）重复原则：能在类似的条件下，把实验结果重复出来，才能算是可靠的实验，重复实验除增加可靠性外，也可以了解实验变异情况。
3．实验动物的编号 根据动物的种类、数量和观察时间长短等因素来选择适当的标记方法。
实验用动物小鼠，一般用量大，每笼共养个体数多，外表无显著特征可供区别，故需采用特殊的标记方法加以区别。
良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便和实用的要求。
常用的方法有染色法、耳缘剪孔法、烙印法和号牌法，前者最常用。
常的化学染色剂有：①3%～5%的苦味酸溶液（黄色）；②2%的硝酸银溶液（咖啡色）；③0.5%的中性红溶液（红色）。
实验中应用最普遍的是苦味酸染色剂。
标记方法见（图1-1）和表（1-）所示。
此方法可标出1～999个编号，充分满足药理学教学与科研的需求。
表1-1 编号标记图示表4．实验动物的抓取与固定 持安静状态，以便操作和准确记录动物的反应情况， 同时还要防止被动物咬伤，并保证动物不受伤害，这就需要掌握合理抓取、固定实验动物的方法。
6（1）小鼠 小鼠性情比较温顺，但抓取 时动作也要轻缓。
通常是用右手抓住小鼠尾部， 将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向 前爬行时，迅速用左手拇指和食指抓住其双耳 及颈后部皮肤，将小鼠置于左手掌心中，再用无名指和小指将小鼠尾压在手掌上，即可将小鼠完全固定。
可进行腹腔注射、采腹腔液、测肛温、作阴道涂片等操作。
如（图1-2）所示。
（2）大鼠 大鼠的牙齿尖锐，在惊恐或激怒时易将操作者手指咬伤，故在抓取时要小心。
抓鼠时右手轻轻抓住大鼠尾巴向后拉，左手抓紧大鼠头、颈部皮肤，并将鼠固定在左手中，此时即可进行腹腔注射、灌胃等操作。
如要做尾静脉取血、注射等操作，可将鼠置于使用台上，用玻璃钟罩扣住或置于大鼠固定盒内，露出尾部，其他较精细的操作应在乙醚麻醉下进行。
（3）豚鼠 豚鼠胆小易惊，抓取时必须稳、准、迅速，先用手掌迅速扣住豚鼠背部，抓住豚鼠肩胛上方，以拇指和食指扣住颈部，其余手指握持躯干，即可轻轻提起、固定。
对于体重大的豚鼠，要用另一只手托住臂部。
（4）家兔 家兔比较驯服，但前爪较尖，应避免抓伤。
家兔的抓取方法一般是用一只手抓住兔的颈部将兔提起，然后用另一只手托其臀部。
不能采取单手抓提家兔双耳、腰部或四肢的方法，以免造成双耳、颈椎或双肾的损伤。
家兔固定方法可根据实验需要而定。
如作兔耳静脉取血、注射或观察兔耳血管变化，可采用盒式固定方法。
如要作测量血压、呼吸等实验或手术时，需将兔固定在手术固定台上，并将兔置于仰卧位（图1-3），其头部要固定。
5．实验动物的给药途径和方法 实验动物的给药途径和方法有很多种，可根据实验目的、动物种类和药物剂型、剂量确定。
（1）皮下注射法 皮下注射时用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器将针头斜刺入皮下，刺穿皮肤后，平行再进入针头的2/3，若见针头能在皮下摆动则证明针头已到达给药位置，可推注药液。
皮下注射进针的部位，一般在小鼠腹部两侧，大鼠为背部或下腹部两侧，豚鼠在后大腿内侧或下腹部，家兔为背部或耳根部，狗、猫则常选用大腿外侧。
（2）肌肉注射法 肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位。
注射时要将针头垂直快速刺入肌肉，回抽针芯，如无回血即可注射。
家兔、狗、猫等大动物多在臂部注射，每只每次射量不超过2ml ；大鼠和小鼠因体型小，肌肉少，很少使用肌肉注射，如必须肌注常在股部注射。
（3）腹腔注射法 大、小鼠的腹腔注射方法为：用左手固定动物，右手持注射器，在下腹部左侧或右侧沿小鼠纵轴与横轴成45°角刺入皮下，沿皮下向心方向推进，同时保持针7图1-4 小鼠的腹腔注射头与腹平面和垂直面亦呈45°角穿过腹肌刺入腹腔，约刺入针头的2/3深度，此时有落空感，回抽无肠液、尿液或血液后，缓缓推入药液（图1-4）。
家兔、狗、猫等动物进行腹腔注射时应先行固定。
一般小鼠每只每次注射量不超过0.5cm ，大鼠不超过2ml 。
（4）静脉注射法大鼠和小鼠的静脉注射常采用尾静脉注射。
鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背部正中各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。
先将鼠装入固定器内，露出尾巴，用45～50℃温水浸泡或用75%酒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化。
握住鼠尾两则，使静脉充盈，注射器针头尽量与鼠尾角度平行，以利于进针。
先缓缓推入少许药液，如针头已进入静脉推药时感觉无阻力；如阻力较大，并出现白色皮丘，则表示未刺入血管，应换部位重新注射。