蛋白质含量的测定

Coomassie G-250
NH
PROTEIN
+
+ CH3CH2 N CH2
CH3
C
CH3
N CH2CH3 CH2
SO 3
SO 3Na
Acid
BLUE
Amax = 595nm
Protein - Dye Complex
源自文库 三、 操作方法
1.标准曲线制作 取14支试管，分两组按下表平行操作。
试管编号 标准蛋白含量(g) 标准蛋白溶液(mL) 待测蛋白质溶液(mL) 蒸馏水(mL) 考马斯亮蓝试剂(mL) 0 0 0 1 10 0.01 2 20 0.02
实验十一 蛋白质含量的测定
一、目的要求
1.学习和掌握蛋白质含量测定的原理 2.掌握考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度的操 作技术
二、原理
微量凯氏定氮法测定蛋白质总含量
被测的天然含氮化合物与浓硫酸共热时分解出氨，
氨与硫酸反应生成硫酸铵。在凯氏定氮仪中加入强 碱碱化消化液，使硫酸铵分解出氨。用水蒸汽蒸馏 法将氨蒸入无机酸溶液中，然后再用标准酸溶液进 行滴定，滴定所用无机酸的量(mol)相当于被测样品 中氨的量(mol)，根据所测得的氨量即可计算样品的 含氮量。 因为蛋白质含氮量通常在16 %左右，所以将凯氏定 氮法测得的含氮量乘上系数6.25，便得到该样品的 蛋白质含量。
Folin—酚试剂法(Lowry法)测定蛋白质浓 度
蛋白质含有两个以上的肽键(—CO—NH—)，因此
有双缩脲反应，在碱性溶液中，能与Cu2+形成络合 物。Folin酚反应是在双缩脲反应的基础上，引进 Folin试剂(磷钼酸—磷钨酸试剂)，蛋白质—铜络合 物能还原磷钼酸—磷钨酸试剂，生成蓝色物质。在 一定条件下，蓝色强度与蛋白质的量成正比例。本 法的优点是操作简便、灵敏度高、较紫外吸收法灵 敏10—20倍，较双缩脲法灵敏100倍。其不足之处 是此反应受多种因素干扰。
考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度
考马斯亮蓝在一定蛋白质浓度范围内，蛋白
质和染料结合符合比尔定律 ，因此可以通过 测定染料在595nm处光吸收的增加量得到与 其结合的蛋白质量。该法简单、迅速、干扰 物质少、灵敏度高（比Lowry法灵敏4倍）。
Coomassie Dye-Based 蛋白质定量
O CH2CH3
五．思考题
(1)与其它测定蛋白质浓度的方法相比，考马斯 亮蓝染色法测定有何优点？
测定方法同上，取合适的未知样品体积，使其测定值 在标准曲线的直线范围内，根据所测定的OD595nm值， 在标准曲线上查出其相当于标准蛋白的量，从而计 算出未知样品的蛋白质浓度(mg/mL)。
四.注意事项
（ 1 ）如果测定要求很严格，可以在试剂加入 后的5-20 min内测定光吸收，因为再这段时 间内颜色最稳定。 （2）测定中，蛋白-染料复合物会有少部分吸 附于比色杯壁上，但此复合物的吸附量可以 忽略。测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗 干净。
大大节约样品和试剂用量
不受样品中离子型和非离子型去污剂影响 检测不同蛋白质分子的变异系数小于考马斯亮 蓝
基本原理： 碱性条件下，蛋白将Cu2+还原为Cu+， Cu+与BCA 试剂形成紫颜色的络合物，测定其在562nm处的 吸收值，并与标准曲线对比，即可计算待测蛋白 的浓度。
BCA蛋白质检测流程：
0.08
3 4 5 6 30 40 50 60 0.03 0.04 0.05 0.06
0.07 0.06 0.05 0.04 2.5 mL
0.1 0.09
摇匀，1 h内以0号试管为空白对照，在595nm处比色 OD595nm
以OD595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标，在坐标纸 上绘制标准曲线。
2. 未知样品蛋白质浓度的测定
总蛋白定量分析－BCA（Bicinchoninic acid，二辛可宁酸、二羧基二喹啉）
准确灵敏： BCA 试剂的蛋白质测定范围是 20 －
2000μg/ml ； Micro BCA 试 剂 测 定 范 围 是 0.520μg/ml 快速：45分钟内完成测定，比经典的Lowry法快 4倍而且更加方便 经济实用：除试管外，测定可在微孔板中进行，
紫外分光光度法测定蛋白质浓度
由于蛋白质分子中酪氨酸和色氨酸残基的苯环含有
共轭双键，因此蛋白质具有吸收紫外线的性质，吸 收高峰在280 nm波长处。在此波长范围内，蛋白质 溶液的光吸收值(OD280)与其含量呈正比关系，可用 作定量测定。 利用紫外吸收法测定蛋白质含量的优点是迅速、简 便、不消耗样品，低浓度盐类不干扰测定。