植物组织水势的测定(小液流法)知识讲解
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。
形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。
小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。
【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。
本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。
表1 小液流法原理表测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。
【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。
2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。
40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。
3、测定取干燥毛细管6支，分别从编号的带盖小药瓶中吸取蓝色溶液，当毛细管不在上升以后，用吸水纸将毛细管外壁的蓝色溶液擦干净，然后插入与编号的小药瓶相对应的10m 1 试管中，使毛细管内的液面高于试管内的液面约 1 -2cm ，然后缓慢放出蓝色溶液一小滴，保持毛细管静止不动（可将毛细管壁靠在试管口上），观察蓝色小液滴的移动方向, 然后缓慢取出毛细管插回5mL 试管中。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势一、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：小白菜、菠菜、油菜或其它作物叶片（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（三）试剂：1.0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L 蔗糖溶液；2.甲烯蓝粉末。
三、实验步骤（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4ml（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L 蔗糖溶液1ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度四、结果计算将求得的等渗浓度值代入如下公式：ψw＝ψπ＝－CRTi×1.013×0.1。
实验三小液流法测定植物组织的水势
实验三小液流法测定植物组织的水势1、原理植物组织的水分状况可用水势（代表水的能量水平）及含水量来表示，其中水势这一量度最为有用最为重要。
植物组织水势愈低，则吸水能力愈强，反之，水势愈高，则吸水能力弱而供水给其它较缺水细胞的能力愈强。
用小液流法测定叶子水势的方法和原理是：把作物组织浸入一系列递增的不同浓度的蔗糖溶液中，由于组织和溶液间进行水分交换，发生两种情况:(1) 由于渗透势差的存在引起溶液浓度的改变，因而引起溶液比重的改变，将浸过组织的溶液用甲烯兰着色后滴入另一组相应的与原来的浓度相等的溶液中，则带色液滴与溶液的比重不同，向上或向下移动，有小液流的产生。
(2) 当组织的水势与溶液的渗透压相等时，则比重不变，带色液在原来的溶液中停留不动，此溶液的渗透势即叶子组织的水势。
一般情况下，组织水势的增加，可以代表作物的吸水程度，如水势减少到某种程度，再不供应水就会影响它的正常生长，在农业生产实践上，常用水势作为灌溉指标。
2、仪器、药品及材料试管或指管，试管架，甲烯兰，量筒，蔗糖溶液，毛细吸管，植物材料等。
3、试验步骤1）取18个干净而干燥的试管，分两组标号排于试管架上，配制一系列递增浓度的蔗糖溶液（按表）个10ml，倒入第一组试管各8ml，第二组2ml，用棉花塞紧，防止蒸发。
2）把第二组试管拿到测定地点，将相同环境内同一层次，年龄大小相同的作物叶子剪下，打开试管塞，迅速将叶子剪成4*4（mm）2放入试管中，塞紧，不是摇晃，30分钟，将甲烯兰粉末少许加入各试管中，摇动，溶液即着色。
3）用干燥毛细吸管分别吸取着色糖液少许，将毛细吸管浸入第一组与原来浓度相同的溶液中，毛细吸管尖位于8毫升试管液柱一半，然后从毛细吸管中小心地慢慢放出溶液，并观察小液流向何方向移动，如果小液流向下移动，说明由于组织吸水使浓度变大，如果小液流向上移动，说明组织失水，溶液浓度稀释，如果小液流停止不动，则溶液浓度不变，此时组织的水势等于溶液的渗透势，用以上方法测定不同灌溉天数的叶子水势变化，将结果按下表填入表内。
试验一植物组织水势的测定小液流法
实验一植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψ s = - iCRT式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。
R ——气体常数，为0.008314MPa·L/（mol·K）。
T ——绝对温度，即273+ t℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以mol/kg为单位。
i ——为解离系数，CaCl2为2.6。
二、实验目的了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和优缺点。
三、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1、甲烯蓝粉末。
2、CaCl2溶液：包括0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，移液管（5ml），毛细吸管8支，培养皿，打孔器，剪刀l把，镊子1把，解剖针1支。
四、实验步骤1、编号贴标签取干燥洁净的大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，毛细吸管8支，编号贴标签，按序号排好。
2、打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约60片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把5-8个小圆片放到盛有4 ml不同质量摩尔浓度CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置30 min，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
3、染色到预定时间后，用解剖针尖蘸取微量甲烯蓝粉末，加入各青霉素小瓶中，并摇动，使溶液染色均匀。
4、测定把试管中的不同浓度的系列标准液分别倒入相同编号的小试管中，用毛细吸管吸取相同编号青霉素小瓶内的有色溶液少许，插入相同编号的小试管溶液中部，轻轻挤出有色溶液一小滴，小心取出毛细管（勿搅动有色液滴），观察有色液滴的升降情况，并记录于表中。
植物细胞水势测定方法
植物细胞水势测定方法植物细胞水势的测定可有趣啦。
一、小液流法。
这是比较常用的一种方法哦。
我们得先准备好蔗糖溶液，配成一系列不同浓度的，就像做魔法药水一样。
把植物组织切成小块，分别放入这些不同浓度的蔗糖溶液里。
放置一段时间后，植物组织和蔗糖溶液之间就会发生水分的交换。
然后我们从每个溶液里取一点溶液，用一种特殊的小液滴装置，把它滴到对应的没有放过植物组织的蔗糖溶液里。
如果小液滴下沉，就说明植物组织里的水势比这个蔗糖溶液的水势低，水就从蔗糖溶液跑到植物组织里去了；要是小液滴上浮呢，那就是植物组织水势比蔗糖溶液高，水从植物组织跑到蔗糖溶液啦。
通过这种方式，找到小液滴既不上浮也不下沉的那个蔗糖溶液浓度，就能根据公式算出植物细胞的水势啦。
二、压力室法。
这个方法有点像给植物细胞做个小压力测试呢。
把植物的茎或者叶柄切断，然后迅速把它放到压力室里面。
慢慢给压力室增加压力，就像给植物细胞打气一样。
当看到从切断的地方有汁液开始往外冒的时候，这个时候的压力数值就和植物细胞的水势有关系啦。
这个方法对于那些比较高大的植物的水势测定很有用哦。
不过操作的时候要小心一点，就像对待一个小宝贝，可不能太粗鲁啦。
三、露点法。
这就更神奇啦。
有专门的露点仪呢。
把植物组织放在一个小空间里，这个仪器可以检测这个小空间里的水汽情况。
植物细胞的水势会影响周围水汽的状态，通过测量水汽达到露点时的一些参数，就能算出植物细胞的水势。
就好像是通过水汽的小秘密来窥探植物细胞水势的小秘密一样。
不同的方法都有它们的特点，在实际测定植物细胞水势的时候，我们可以根据植物的种类、实验的条件还有我们自己的小喜好来选择合适的方法呢。
不管用哪种方法，都是为了更好地了解植物细胞里的小世界，就像打开一扇通往植物秘密花园的小窗户。
植物组织水势的测定 ( 小液流法 )
植物组织水势的测定( 小液流法)一、目的学会用小液流法来测定植物组织水势。
二、原理当植物组织浸入外界溶液中时，若植物的水势小于外液的水势，则细胞吸水, 使外液浓度变大；反之, 植物细胞失水，外液浓度变小，若细胞和外液的浓度相等，则外液浓度不发生变化。
溶液浓度不同其比重也不同，不同浓度的两溶液相遇，稀溶液比重小而会上升，浓溶液比重大而会下降。
根据此理, 把浸过植物组织的各浓度液滴滴回原相应浓度的各溶液中，液滴会发生上升、下降或基本不动的现象。
如果液滴不动，说明外液在浸过组织后浓度未变，那么就可根据该溶液的浓度计算出其水势。
此水势值也就是待测植物组织水势。
小液流法就根据这个原理，把植物组织浸人一系列不同浓度的煎糖液中, 由于比重发生了变化，通过观察滴出小液滴在原相应浓度中的反应而找出等渗浓度，从而就可算出溶液的水势。
三、材料指管木架、指形管( 带软木塞)、弯头毛细吸管( 带橡皮头)、小镊子、移液管、温度计、打孔器、不同浓度的蔗糖液(0.2～0.6mol/L)、甲烯蓝( 亚甲基蓝)、叶片。
四、方法与步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/l 各10ml 注入7支试管编号按顺序排列作为对照组。
2、另取7支试管 编号按顺序排列作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液5ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔 然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，摇动数次放置30分钟，后向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许并振荡此时溶液变成蓝色。
4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取蓝色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部。
缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液 观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了。
如果有色液滴向下移动则说明细胞从溶液中吸了，水溶液变浓比重变大。
小液流法
小液流法测定植物组织的水势
实验原理
当植物组织浸入一系列递增的不同浓度的蔗糖溶液 中时，如果植物组织的水势小于溶液的渗透势，则 组织吸水而使蔗糖溶液的浓度增高；反之，则降低； 若二者相等，则水分保持动态平衡，蔗糖溶液浓度 不变。溶液浓度发生变化，比重随之变化。 取浸过植物组织的溶液一小滴，放在原来浓度相同 而未浸植物组织的溶液中，比重减小的液流往上浮； 比重加大的液流往下沉；如液流停止不动，则说明 溶液浸过植物组织后浓度未变。可把这个溶液的渗 透势看作组织的水势，根据公式计算其渗透势。
实验目的
掌握植物组织水势的测定方法,并了解渗透系统中水 势大小是水分移动方向的决定因素.
实验器材和试剂
植物材料:菠菜
实验器材:吸水纸、容量管、试管、带盖青霉素小瓶、 胶头细玻璃弯管、移液管、打孔器、软木塞、试管 架、温度计、镊子 实验试剂:1mol/L蔗糖溶液、甲烯蓝粉末
实验步骤
1. 用1mol/L的蔗糖溶液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液如，0.1 、 0.2 、0.3 、0.4 、0.5 、0.6 、 0.7 、 0.8mol/L各十毫升，注入编 号的试管中，各管都要加塞子，并按编号顺序放在试管架上，作 为对照组。 2. 另取8个已编号的小瓶，按编号顺序排列，作为实验组。然后由对 照组的各个试管中用移液管分取4毫升溶液移入相同比编号的试验 组小瓶中。 3. 选取生长势一致的叶子，在其下面垫以橡皮塞，用打孔器钻取叶 圆片，迅速投入小瓶的蔗糖溶液中并盖紧，每瓶投入30片，数量 以占蔗糖溶液的1/4为宜。叶片应全部进入蔗糖溶液中。塞紧，定 时摇动。 4. 在室温下30分钟（等待时间内不断依次摇动有叶片的小瓶）。用 针挑起极少量甲烯兰粉末，投入各试验组小瓶中依次吸取着色的 液体少许，并用吸水纸吸掉吸管外壁的溶液；然后小心地伸入对 照组的相同编号试管内的液体的中部，缓慢地放出一滴蓝色试验 溶液。然后轻轻取出玻璃管，并观察小液滴流动的方向。 5. 按公式ψs=-iCRT计算出植物组织的水势
小液流法测定植物水势实验综述报告
小液流法测定植物水势实验综述报告植物水势是指植物细胞内外介质之间的水势差，它是描述植物细胞内水分状态的重要指标。
植物水势的测定对于了解植物的生理生态特性、适应能力以及对环境胁迫的响应具有重要意义。
小液流法是一种用来测定植物水势的方法，它通过观察毛细管内的水液移动情况来间接测定植物细胞的水势。
本文综述了小液流法测定植物水势实验的原理和方法，并总结了相关研究进展和应用情况。
一、小液流法测定植物水势的原理和方法小液流法是一种经典的测定植物水势的方法，其基本原理是利用毛细管作为介质，在一定条件下，水或含有植物细胞液的溶液会在毛细管内显示出特定的移动状态，通过这种状态的变化可以推断植物细胞的水势大小。
具体实验步骤如下：1. 实验材料的准备：需要准备好实验所需的植物样品、毛细管、容器、盐溶液等。
2. 样品处理：将植物样品切割成适当大小的块状，并迅速放入含有一定浓度的盐溶液中。
3. 检测毛细管状态：将处理好的植物样品放置在装有盐溶液的容器中，毛细管的一端浸入盐溶液中，另一端露出表面。
观察毛细管内水液的移动情况。
4. 数据记录：记录毛细管内水液上升或下降的距离，并结合实验条件和处理组的差异进行数据比较和分析。
通过上述实验步骤，可以间接测定植物细胞的水势，并进一步了解植物在不同环境条件下的水分调节机制和适应性。
二、相关研究进展和应用情况小液流法测定植物水势的方法已经在植物生理生态学和植物适应性研究中得到广泛应用。
有研究利用小液流法测定不同生长条件下植物细胞的水势，发现了植物在干旱和盐碱胁迫条件下的水分调节机制，为植物的抗逆育种提供了重要的理论依据。
小液流法还被应用于植物种子的贮藏与保存研究中，通过测定种子内外水势差异，探索了植物种子在不同贮藏条件下的生理变化和贮藏效果。
小液流法还被用于研究不同植物种类和生长阶段的水分调节特点，为了解和利用植物的水分利用效率提供了重要的数据基础。
在植物生长发育过程中，水势是细胞内外水分平衡的重要指标，通过对植物水势的测定，可以了解植物在不同生长阶段的水分需求和适应能力，为植物生长调控提供理论支持。
小液流法测定植物水势实验综述报告
小液流法测定植物水势实验综述报告植物水势的测定是植物生理学中非常重要的一项实验，通过测定植物水势，可以了解植物对水分的吸收和输送情况，从而帮助我们更好地理解植物的生长和发育过程。
小液流法是一种常用的测定植物水势的方法，本文将针对小液流法测定植物水势的实验进行综述，介绍其理论基础、操作步骤和实验应用。
一、小液流法的理论基础小液流法是通过测定植物细胞内液体在负压下的动力学变化，从而间接测定植物细胞的水势。
植物细胞内存在大量的液泡，通过测定负压下的液泡内液体的运动速率，可以间接推断出植物细胞内液体的水势大小。
小液流法是基于这一理论基础进行设计的一种实验方法，通过测定不同条件下植物细胞内液体的运动速率，可以得出植物水势的大小。
二、小液流法的操作步骤1. 实验材料准备进行小液流法实验，首先需要准备实验所需的材料和仪器，包括植物样品、离心机、显微镜、玻璃针管、甲苯和玻璃板等。
2. 细胞液体采集将植物样品切割成小段，用离心机离心，将植物细胞内的液体收集到玻璃针管中。
3. 液泡运动观察将采集到的细胞液体滴在玻璃板上，通过显微镜观察液泡内液体的运动状态，并记录其运动速率。
4. 实验条件设置在不同条件下进行实验，比如不同温度、不同光照强度等条件下进行液泡运动的观察和测量。
5. 数据处理和分析将实验得到的数据进行处理和分析，得出植物水势在不同条件下的变化规律，并进行统计学分析。
三、小液流法实验的应用小液流法作为测定植物水势的一种常用方法，在植物生理学研究中有着广泛的应用。
通过小液流法可以研究植物对不同环境条件的响应机制，比如光合作用、胁迫逆境等条件下植物水势的变化情况，从而帮助我们更好地了解植物的生长生理过程。
小液流法还可以用于植物抗旱和耐盐性的研究，在作物遗传育种中有着很大的潜在应用价值。
通过研究植物在干旱和盐碱胁迫条件下的水势变化情况，可以筛选出耐旱和耐盐性较强的品种，为作物育种提供理论依据。
11级植物生理实验讲解内容
植物生理实验讲解内容实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、原理（1）水分移动的总原则：从高水势到低水势。
当把植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，水势越大，越易失水；水势越小，越易得水；因此，会出现三种情况：植物组织的水势＜外液的水势，组织吸水，外液（a）浓度变大植物组织的水势＞外液的水势，组织失水，外液（b）浓度变小植物组织的水势＝外液的水势，组织既吸水又失水，外液（c）水分保持动态平衡（2）据比重大小判断小液流的移动方向：为判断以上三种情况，把侵有组织的溶液进行着色，当把着色的a、b、c三种外液用针管以小液流法放回对应的原溶液中，也出现三种情况：当浓度变大的外液（a）放入原溶液中↓，说明植物组织的水势＜外液的水势当浓度变小的外液（b）放入原溶液中↑，说明植物组织的水势＞外液的水势当水分保持动态平衡的外液（c）放入原溶液中≈（不动），说明植物组织的水势＝外液的水势2、材料：毛果含笑叶；梧桐树叶；丁香花或牵牛花4、方法（选用CaCl2溶液为外液）思考题1、试述小液流法测定植物组织水势的原理。
测定中应注意什么？（1）遵照两个原理：①水分移动的总原则—从高水势到低水势。
②根据比重大小判断小液流的移动方向。
（2）测定中应注意：①取材时尽量避开叶脉和伤口、部位要一致、要迅速（以免失水），材料要混匀；②母液要均匀，不能颠倒顺序；③放小液流时不能用力过大；④观察液流方向要细心等]。
2、某组实验出现了小液流法↓↑↑↓↑的情况，请分析出现错误的可能原因。
最有可能出错的应是第四支试管。
出错的原因有以下可能：(1)在配制甲组试管溶液时，试管没有充分的摇匀；(2)在配制甲组浓度梯度溶液时，第四支试管溶液不准确，浓度过低；(3)用注射器在甲组试管中挤出小液滴时，用力过猛。
3、测定水势的方法有：小液流法；电导仪法；折射仪法。
实验二植物组织中游离氨基酸总量的测定——茚三酮显色法（1.原理氨基酸(蛋白质)的游离-NH3可与水合茚三酮反应，生成蓝紫色的化合物；在一定范围内，颜色的深浅与游离氨基的含量成正比，因此，可用分光光度法测定其含量。
实验1小液流法测定水势
实验一小液流法测定植物组织水势一、实验目的了解植物体内不同组织和细胞之间、植物与环境之间水分的移动与植物组织水势的关系；掌握小液流法测定植物组织水势的基本方法。
二、实验原理植物组织的水势是表示植物水分状况的重要指标，植物各组织之间、各组织的细胞之间以及植物与土壤和大气环境之间的水分移动决定于它们的水势之差。
当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的水势，组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量降低而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
组织吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与重量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织水势相等的溶液。
测定植物组织水势的方法有小液流法（根据外液密度的变化）、折射仪法（根据外液浓度的变化）和电导率仪法（根据外液电导率的变化），这些方法都属于液相平衡法。
还可以通过气相平衡法（热电偶湿度计法、露点法和压力室法等）测定水势，主要是通过植物组织与周围气体的水势达到平衡，从而测定周围气体的水势。
小液流法是目前比较快速、简单且准确性较好的一种方法。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织水势相同的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的水势，即为植物组织的水势。
溶液水势的计算：Ψw = - icRT式中：Ψw——溶液的水势(MPa)；R——气体常数（0.00831 Kg· MPa·mol-1·K-1；0.00831 Kg·KJ·mol-1·K-1；0.0831 Kg·bars·mol-1·K-1；0.080205Kg·atm·mol-1·K-1；0.0357 Kg·cal·mol-1·K-1）；T——热力学温度(单位为K，K=273 + t)；i ——为解离系数（蔗糖为1）；c ——等渗溶液的质量摩尔浓度（mol· Kg -1）。
测定植物组织水势的方法
测定植物组织水势的方法
嘿，你知道不？测定植物组织水势可有不少方法呢！比如说小液流法，先准备好一系列浓度梯度的蔗糖溶液，把植物组织放入小试管中，让其和蔗糖溶液达到平衡。
然后取一滴小液流放到凹玻片上，观察小液流的移动方向。
要是小液流不动了，那这个蔗糖溶液的水势就和植物组织的水势相等啦！这过程中可得小心操作，别弄洒了溶液。
那安全性咋样呢？只要操作得当，就没啥大问题，稳定性也不错呢！这方法在农业生产中可有用啦！可以帮助农民伯伯了解植物的水分状况，调整灌溉策略。
就好比医生给病人看病，先得了解病人的身体状况，才能对症下药嘛！再说说压力室法，把植物叶片或枝条放入压力室，给它加压，直到有汁液从切口处流出。
通过测量压力值就能算出植物组织的水势。
这方法操作起来也不难，但是得注意压力的控制。
安全性也挺高，只要按照步骤来，不会有啥危险。
稳定性也杠杠的！在科研领域，这方法可是大显身手呢！能让科学家们更深入地研究植物的水分生理。
想象一下，这就像给植物做了个“体检”，能让我们更了解植物的健康状况。
测定植物组织水势的方法还有很多，各有各的优势和应用场景。
实际中，比如在干旱地区，通过测定植物组织水势，可以知道哪些植物更耐旱，从而选择合适的植物进行种植。
这多棒啊！总之，测定植物组织水势的方法很重要，能帮助我们更好地了解植物，为农业生产和科学研究提供有力支持。
植物组织水势测定
6、在数据测定过程中，可以按“Mode”键将屏幕切换到Screen#4查看测定的即时数值以及其它的相关参 数。
• Screen#4画面如下： 4 Record# xxxxPsy# X
yr=XX jda=XX XX:XX XX.X°C WP= X.XX Mpa（水势值） os XX.XX wbd XX.XX uV • （一般以测定3～4组重复值为最佳，第一组数值的可信度不高，当os>3时，测定的水势 ［WP］值即不可信） * #和X为数字
植物组织水势测定
1
实验二
植物组织水势测定—— 小液流、压力室、露点水势仪
测定植物组织水势的目的
一、小液流法
实验原理： • 植物细胞是一个渗透系统。当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，
小液流下沉。 • 当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。 • 当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小
Screen#8画面如下： 8 Backlight: always on
Logging: On
Screen#10画面如下: 10 PSYPRO number=XX(可输入1-99) (if several PSYPROs are Used, each needs a unique nember.)
7、当一组数据测量完成时，先将屏幕切换到Screen#8，并将光标移动至“logging”处，按 “Value”键使“logging”处于“Off”状态，此时水势仪停止工作。如果不再使用水势仪，只要将 屏幕切换到Screen#1后，将开关杆拨到“Off”位置并将“探测头”取下即可。如果还需要测定 其它数据，再按照步骤5至步骤6进行操作即可。
小液流法测定植物组织水势
各10ml，共8管。注入试管中，各管都加上塞子并编号，按编号顺序排成一列，放
在试管架上，作为对照组。
2.
另用8支试管，与前一组试管对应编号，作为试验组，然后由对照组各试管中分别
取溶液2ml，移入相同编号组的各试管中，再将各试管加上塞子。
3.
用解剖刀土豆剪成0.2 - 0.5cm大的小块，混合均匀后，向试验组的每个试管中投入
10-15块片，加塞并经常摇动，30min后，向试验组的每支试管中加一滴甲烯兰溶液，
摇动试管，使溶液均匀着色。
4.
用毛细滴管（或小量程移液管）吸取浸有材料的兰色溶液，然后插入对照组相同编
号的试管，在液体的中部轻轻放出一滴兰色试验溶液，仔细观察液滴移动的方向，
并记录之。
溶液浓度/M 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.4 0.5
I 小液流法测定植物组织水势
【实验原理】
水总是从水势高处向水势低处流。植物组织间、细胞 间、植物体及环境间的水分移动都是由水势决定的。 如果将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中， 当我们找到某一浓度溶液与植物组织之间水分保持动 态平衡，表现出无水分的单向移动，则可以认为植物 组织的水势等于此溶液的渗透势。
【思考与作业】
植物组织切块的大小和数量对组织水 势的测定结果是否有影响？
加入甲烯兰溶液会影响实验结果吗？ 为什么？
该实验具体操作中应该注意的事项主 要有哪些？
2. 测量
（1）把样品室旋钮调至OPEN/LOAD档并打开样品室。 （2）放入样品。检查杯子的边缘，确定没有样品残留。 （3）小心关闭样品室，尤其是液体样品。 （4）按右下角按钮，观察样品与样品室间温度差异。 （5）把样品室旋钮调至READ 档，密封样品室。仪器出
植物组织水势的测定 小液流法
植物组织水势的测定小液流法植物组织的水势测定在植物生理学研究中起着重要的作用。
小液流法是一种常用的测定植物组织水势的方法。
本文将介绍小液流法的原理、操作步骤和注意事项，帮助读者了解和掌握这一方法。
小液流法是通过测量植物组织的液体流动速度，来推断组织水势的高低。
其原理基于渗透压的作用。
渗透压是物质在溶液中扩散过程中产生的压力差，植物细胞内高浓度的溶液会吸引水分进入细胞，形成渗透压差。
根据渗透压差的大小，可以推断出细胞内部的水势。
液体在细胞内的扩散速度与细胞内水势成反比，因此，测量液体扩散速度可以间接得到组织水势的大小。
进行小液流法测定前，首先需要准备好实验所需的材料和仪器。
主要包括：测量液体（一般为含有示踪剂的染液）、试管、玻璃棒、显微镜和计时器等。
接下来，按照以下步骤进行实验：1. 取一根新鲜的植物茎段，并将其放入试管中。
2. 在试管内注入适量的测量液体，确保茎段完全浸泡其中。
3. 用玻璃棒轻轻搅拌试管内的液体，使其均匀分布。
4. 使用显微镜观察试管内液体的流动情况。
5. 同时启动计时器，并记录液体从茎段内向外扩散的时间。
6. 根据液体扩散的速度和时间，计算出液体的扩散速率。
7. 根据扩散速率，推断出植物组织的水势大小。
在进行小液流法测定时，需要注意以下几点：1. 选择合适的测量液体和示踪剂，以保证实验结果的准确性和可重复性。
2. 保证试管内液体的温度和浓度稳定，避免影响液体扩散速率的因素。
3. 在观察和记录液体扩散速度时，要尽量减小误差，可以多次进行实验并取平均值。
4. 当观察的茎段比较短时，可以考虑将茎段剪成一定长度，以增加实验的精确性。
5. 在实验过程中，要保持实验环境的稳定，避免外界因素对实验结果的干扰。
小液流法是测定植物组织水势的一种有效方法，其操作相对简单，结果可靠。
通过掌握这一方法，可以更好地理解植物的生理过程，为进一步研究植物的水分平衡和调节机制提供有力的支持。
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植物组织水势的测定
6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找 出与组织水分势相当的浓度，根据原理公 式计算出组织的水势。
植物组织水势的测定
溶液浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 液滴移动方向
具有平衡浓度结果
植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
外液浓度保持不变； ψ植物＝ψS
植物组织水势的测定
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与 植物组织相同水势的溶液浓度。根据以下公式 计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
【实验原理】
植物体细胞之间，组织之间以及植 物和环境之间的水分移动方向都由水势 差决定。
植物组织水势的测定
植物组织水势和渗透势的测定方法： 水 液相平衡法：小液流法、称重法、质壁分离法 势 压力平衡法：压力室法 测 定 气相平衡法：露点法
渗 冰点降低法 透 势 蒸气压渗透压计法
植物组织水势的测定
一、液体交换法测定植物组织水势
结果是否正确，为什么？
注意事项：
① 所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。 ② 试管、移液管和毛细管等要洗净烘干，移液管与毛细移液管应从低
浓度到高浓度依次吸取溶液。 ③ 甲烯蓝不宜加得过多（溶液呈稍深的蓝色即可），否则将使实验组
各管中溶液的比重均加大。 ④ 蔗糖溶液用前一定要摇匀，时间放久了的蔗糖溶液会分层，影响结
植物生物学实验
植物组织水势的测定 （小液流法）
植物组织水势的测定
目的要求:
1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点 2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法 3. 了解WP4露点水势仪测定植物组织水势
植物组织水势的测定
水势表示水分的化学势，象电流 由高电位处流向低电位处一样，水从水 势高处流向低处。
液滴移动方向
无平衡浓度结果
植物组织水势的测定
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
错误结果
植物组织水势的测定
溶液浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 液滴移动方向
结果是否正确，为什么？
植物组织水势的测定
溶液浓度 0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 液滴移动方向
（二）实验材料
灰莉叶片
植物组织水势的测定
【用具】
试管架；试管;打孔器;毛细管；镊子;青霉素 瓶
【试剂】
蔗糖溶液 甲烯蓝粉末
植物组织水势的测定
（三）操作步骤
1. 配制不同浓度的蔗糖溶液
试管
1
2
3
4
5
6
1mol·kg-1
0.5 1
2
3
4
5
蔗糖溶液（ml）
蒸馏水（ml）
9.5 9
8
7
6
5
浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
力 实验五 叶绿素定量测定 实验六 SOD活性测定 (三) 要求同学用所学的相关知识综合分析实验结果。
第三轮需要完成的实验内容
• 植物光合速率的测定--改良半叶法
必须掌握的技能 ：
1.学会使用网络进行相关专业资料的检索。 2.能运用所学的理论知识、实验方法来计设某一课题，并写 出切实可行、有依据的实验设计方案。 3.掌握电导率仪的使用方法。 4.便携式光合系统测定仪的使用方法。 5.作物无土栽培技术和要点。 6.掌握实验结果计算、实验现象的观察记载、实验结果的综 合分析。
5.观察液滴升降：
用毛细吸管取青霉素瓶有色液
插入相应试
管中部 缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴
蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移
动方向并记录。（用白纸划一直线置于试管背面，方
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
便观察）
毛细管放置稳定
挤出小液滴
取出毛细管 观察液滴升降
液滴 植物材料
ψw >ψS ψw <ψS ψw =ψS
溶液浓度变小 溶液浓度变大 溶液浓度不变 静止不动
2.用打孔器在灰莉叶的不同部位打120片，混匀，每个青霉素瓶各放入
20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）
3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶中（用一
只移液管由低
高，不要润洗）。放置20—30min，期间摇动数
次，以加速水分平衡。
植物组织水势的测定
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶 中，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿润， 加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）
小液流法
问题： 小液流法测定植物组织水势的原理？
植物组织水势的测定
（一）原理
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换： ★ 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质
势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS ★ 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质
势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS ★ 若两者相等，则水分交换保持动态平衡，
植物组织水势的测定
植物材料浸入 不同浓度溶液中
植物材料水势 低于溶液水势
植物材料水势 等于溶液水势
植物材料水势 高于溶液水势
材料吸水
材料失水
外界溶液浓度变大 比重变大
外界溶液浓度不变 比重不变
外界溶液浓度变小 比重变小
浸过材料的溶液 滴回
同一浓度而未浸过材料的溶液中
比重大的液流下沉
比重不变的液流静止 比重小的液流上浮
果。 ⑤ 叶片打孔及投入青霉素瓶中要快，防止水分蒸发影响实验结果。 ⑥ 释放蓝色液滴时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动。
植物组织水势的测定(小液流法)
第一轮需要完成的实验内容： 实验 小液流法测定植物组织 水势 实验 缺素培养 实验 膜透性鉴定
第二轮需要完成的实验内容：综合性实验
(一) 目的要求： 利用《植物生理学》课堂理论—植物的矿质营养、植物的 光合作用、植物的逆境生理等相关知识综合分析“玉米或 烟草等植株完全液培养和缺素培养苗的生理差异”。 (二) 需要完成的实验内容： 实验四 植物水溶液和缺素培养症状观察,TTC法测根系活
此溶液的水势即等于所测材料的水势
植物组织水势的测定
溶液渗透势的计算：
ψS=﹣iCRT
式中 ψS—溶液的渗透势，以MPa为单位； R＝0.008314MPa·L·mol﹣1·K﹣1 T—绝对温度，即273+t℃； C—溶液的摩尔浓度，以mol·kg－1 为单位 i－溶液的等渗系数，蔗糖=1。
植物组织水势的测定