动物生理学实验1 ppt课件

（2）观察心脏的结构 识别蛙心脏。自心脏腹面可观察到心室、
心房、动脉球和主动脉。用玻璃分针向前翻转 蛙心，暴露心脏背面可观察到静脉窦和心房。 （3）连接实验装置
将蛙心夹上的细线与张力换能器相连，让 心脏搏动信号传入计算机生物信号采集处理系 统。将铜丝与心室接触良好并固定稳妥后，与 刺激器的输出连接。
NaCl浓度 0.90 0.65 0.60 0.55 0.50 0.45 0.40 0.35 0.30 0.25 （%）
4.2 制备抗凝血：柠檬酸钠作抗凝剂。 4.3 加抗凝血：每只试管加1滴。 4.4 观察结果 ①未溶血试管：液体下层有大量红细胞下沉，上层为
无色透明，表明无红细胞破裂。 ②不完全溶血试管：液体下层有红细胞下沉，上层出
刀：姿势有指压式、执笔式及反挑式等。 剪：外科剪、眼科剪、毛剪、骨剪、普通剪。 镊：眼科镊、外科镊。 钳：止血钳、持针钳、创巾钳。 其他：探针、玻璃分针、蛙板、锌铜弓、蛙心夹、
动脉导管、气管插管、蛙肌槽等。 5.2 动物选择：健康动物。
5.3 动物的麻醉 麻醉前准备：P34。
（1）药物选择：熟悉药品特点，根据实验内容合 理选用麻醉药。
2 主界面
从上到下依次分为：标题栏、菜单栏、工具栏、 状态提示栏及采样窗、控制面板和数据窗等其他多个 相应的子窗口组成。
3 使用方法 3.1 设置：标准配置，恢复出厂时的配置。 3.2 新建：选择实验项目，填写实验信息，进入实验窗口，
开始实验。 3.3 采样：记录实验数据。 3.4 控制面板参数调节：
[1] 杨秀平. 动物生理学实验[M]. 北京：高等教育出版社，2004. 85-99. [2] 邹永新，郭予强. 我国鸭病毒性疾病的发生和流行概况[J].中国兽医杂
志，2002（6）：38-40.
实验四 心肌收缩的特点
【实验目的】 学习蟾蜍心脏活动描记的方法，观察心肌收缩的
特点。 【实验原理】
心肌的有效不应期特别长，几乎占据了整个收缩 期和舒张早期。在此期内任何刺激均不能引起心肌收 缩。因此心肌不会产生强直收缩，心脏总是有节律的 舒缩。在心脏舒张早期之后，给心肌一次有效刺激， 会引起心脏一次期前收缩，紧接着出现一次较长的间 歇——代偿间歇。
对生理止血过程的理解。 2 实验原理
血液凝固是一个酶解激活过程，有多种凝血因子 参与。根据凝血过程起动时凝血因子来源不同，可将 凝血分为内源性激活途径和外源性激活途径。
3 实验对象：家兔 4 方法与步骤 4.1 家兔的麻醉、保定与手术
33%乙醇溶液，6mL/kg，耳缘静脉注射。 4.2 颈动脉采血 4.3 试管准备 4.4 记录凝血时间
麻醉注意事项 （1）正确选用药品、用药剂量及给药途径。 （2）静脉麻醉时，先将总量的1/3快速注入，使动物迅速渡过
兴奋期，余下2/3 缓慢注射，并观察动物状态及反应， 以准确判断麻醉深度。 （3）需补充麻醉药时，一次补量不超过总量的1/5 。 （4）麻醉中应随时保持呼吸道通畅，注意保温。 （5）在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不 理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。 （6）实验中注意体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。
（2）测定方法
①血红蛋白吸管清洁：自来水→蒸馏水→无水乙醇。 ②将0.1N盐酸加入测定管中至刻度“2”处。 ③用血红蛋白吸管吸取20μL血液，将血液吹入盐酸
中，并利用上层盐酸将吸管反复洗涤多次（避免起 泡）。 ④酸化10min后，逐滴加入蒸馏水，边加边混匀并与 标准比色板比较，至二者颜色相同为止。 ⑤读数即为每100mL血液中血红蛋白的克数。
减
麻醉效果观察 呼吸：呼吸加快且不规则，麻醉过浅；呼吸规则且平
稳，已达麻醉深度；呼吸变慢，且以腹式呼吸 为主，麻醉过深，动物有生命危险。 反射：角膜反射灵敏，麻醉过浅；角膜反射迟钝，麻 醉程度适宜；角膜反射消失，伴瞳孔散大，则 麻醉过深。 肌张力：肌张力亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻 醉合适。 皮肤夹捏：用止血钳夹捏动物皮肤，观察皮肤的反应。
6 器械打结
7.1 活结：用于家兔保定。
7.2 死结：用于血管、神经结扎。 要领：钳压线，线压钳。
实验二 计算机生物信号采集处理系统
1 系统组成与工作原理 PCLAB-UE由硬件和软件两部分构成，硬件主要
完成对各种生物电信号（如心电、肌电、脑电）与 非电生物信号（如血压、张力、呼吸）进行调理、 放大，并对信号进行模/数（A/D）转换，使之进入 计算机。软件主要对已经数字化了的生物信号进行 显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统 各部分进行控制，与操作者进行人机对话。
实验 管号
处理因素
棉花 肝素 石蜡 冰水 草 脑组织
草+Ca++ 肝素+Ca++ 对照
血凝时间 （S）
参考文献
[1] 陈杰，家畜生理学[M]，第四版，北京：中国家业出版社，23-34.
实验三
影响血液凝固的因素 红细胞脆性的测定 血红蛋白的测定
影响血液凝固的因素
1 实验目的 以凝血时间为指标，了解影响凝血的因素，加深
【注意事项】 （1）血红蛋白吸管和比色管要清洁； （2）吸取血液要准确，避免起泡； （3）滴加蒸馏水要准确； （4）酸化时间不能少于10min； （5）在自然光下比色。
实验报告的撰写
1 实验原理 2 材料与方法 2.1 主要器材 2.2 主要药品 2.3 实验动物 2.4 实验方法 2.4.1 Hb测定：按动物生理学实验85页方法进行[1]。 2.4.2 RBC脆性测定：按动物生理学实验90页方法进
3 实验对象：动物种类不限 4 方法与步骤 4.1 溶液配置
表2 不同浓度NaCl溶液配制
管号
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
1%NaCl （mL）
9.0 6.5 6.0 5.5 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5
蒸馏水 (mL)
1.0 3.5 4.0 4.5 5.0 5.5 6.0 6.5 7.0 7.5
现透明淡红色，表明部分红细胞已经破裂，称为不 完全溶血。 ②完全溶血试管：液体完全变成透明红色，管底无红 细胞下沉。
5 实验结果 表2 家兔Hb含量及RBC脆性测定
分组
Hb测定 （g/L）
RBC脆性测定（NaCl%） 最小抵抗力 最大抵抗力
实验组
对照组
123
0.60～0.55 0.40～0.35
6 注意事项 6.1 试管要干净； 6.2 配液要准确； 6.3 加血量要一致； 6.4 轻轻混匀，减少溶血机会； 6.5 静置时间不少于30min。
血红蛋白的测定
1 实验目的 掌握比色法测定动物血红蛋白含量的方法。
2 实验原理 血红蛋白的颜色与氧结合量有关，当用一定的氧
化剂将其氧化时，可使其转变为稳定、棕色的高铁血 红蛋白，而且颜色与血红蛋白的浓度成正比。因此， 可与标准色板进行对比，求出血红蛋白的浓度，即每 升血液中含血红蛋白的克数（g.L-1）。
【实验对象】蛙或蟾蜍
【实验药品】任氏液
【实验方法与步骤】
1.实验准备 （1）在体蛙心制备：取蛙一只，破坏脑、脊髓，仰卧
固定于蛙板上。左手持镊子提起胸骨后端的皮肤剪 一小口，然后向左、右两侧锁骨外侧剪开皮肤、肌 肉，剪断左右锁骨，使创口呈一倒三角形，充分暴 露心脏部位，并用眼科剪剪开心包膜，彻底暴露心 脏。
行[1]。 2.4.3 影响血液凝固因素：按动物生理学实验97页方
法进行[1]。
3 实验结果 3.1 家兔Hb含量及RBC脆性测定：见表1。
表1 家兔Hb含量及RBC脆性测定
分组
Hb测定 含量（g/L）
RBC脆性测定（NaCl%）
最小抵抗
最பைடு நூலகம்抵抗
实验组
对照组
123
0.60～0.55 0.40～0.35
不可相差太大。 6.3 判断凝血的标准要一致，一般以倾斜试管
达45°时试管内血液不见流动为准。
红细胞脆性的测定
1 实验目的 学习测定红细胞渗透脆性的方法，理解细胞外液
渗透张力对维持细胞正常形态与功能的重要性。 2 实验原理
正常红细胞悬浮于等渗的血浆中，著置于高渗溶 液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之，置于低渗溶 液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。如环境渗透 压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂，释放血红 蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液有一定的抵 抗力，这一特征称为红细胞的渗透脆性。
表1 家兔Hb含量及RBC脆性测定
表2 不同因素对家兔血凝时间的影响
分组
Hb
（g/1000mL）
实验组
对照组
8-15
RBC脆性（NaCL%）
最小抵抗
最大抵抗
0.6～ 0.55 0.4～ 0.35
5 讨论 5.1 家兔Hb测定结果与对照比较，其值偏高，原因： 5.2 家兔RBC脆性测定结果与对照比较，其值，原因： 5.3 家兔血凝时间测定结果表明，时间长短，原因：
致），从操作过程方面说明原因：……。 4.2 本次实验家兔RBC脆性测定结果，最小抵抗比对照组高（或
低、或基本一致），最大抵抗……，从操作过程方面说明 原因：……。 4.3 家兔凝血时间测定结果表明，××处理能加快（抑制或不 凝）血液凝固，为什么？××管加CaCl2后凝固，为什么？ （从凝血机制分析） 5 参考文献
4.3 放大系统（信号调节） 放大器：可将生物电信号放大1000倍以上。
4.4 显示、记录系统 生理记录仪：常用有二道、四道及八道生理记 录仪等，一个通道可记录一个信号。 计算机生物信号采集处理系统：PCLAB-UE计算 机生物信号采集处理系统。
5 动物生理实验基本操作技术 5.1 手术器械
通道功能调节； 刺激参数调节。 3.5 存储：文件保存位置：F：/，文件名：07动医3-呼吸
（左2）。 3.6 编辑：
打开原文件→选择→复制→打开“工具”下的“画 图”→处理文件→复制图片→存盘到F：/。
家兔Hb、RBC脆性测定及影响血凝的因素观察 1 实验相关信息及目的 2 材料 2.1 动物 2.2 主要药品： 2.3 主要仪器： 3 实验方法：简述或按《动物生理学实验》方法进行[1]。 4 结果 4.1 家兔Hb、RBC脆性测定：见表1。 4.2 家兔血凝时间的测定：见表2。
3 实验对象：动物种类不限 4 方法与步骤：使用沙里氏血红蛋白计测定。
比色法是用HCl使血红蛋白酸化形成粽色的高铁 血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。 （1）血红蛋白计由标准比色箱和测定管组成。测定管 两侧有刻度，一侧为血红蛋白量的绝对值，以每100 mL血液中所含血红蛋白的克数表示；另一侧为相对 值，以％（即相当于正常平均值的百分数）来表示。
5 实验结果
表1 血液凝固及其影响因素
试管号 1 2 3 4 5 6 7
实验处理 空白
液体石蜡4滴 棉花少许 冰水环境 肝素4滴 草酸钾4滴
脑组织浸液4滴 5号管加CaCl24滴 6号管加CaCl24滴
凝血时间（秒）
6 注意事项 6.1 采血过程要尽量快，以减少计时误差，对
比实验的采血时间要紧接着进行。 6.2 每支试管口径大小及采血量要相对一致，
33%乙醇生理溶液：5～7 mL/kg，耳缘静脉注射。 速眠新（846）：0.1～0.2 mL/kg，皮下注射。 （2）麻醉前核对药名，检查药品有无变质。 （3）狗、猫等呕吐中枢发达的动物在手术前应禁食 12
h，以减轻呕吐反应。 （4）需在全麻下进行手术的动物，可适当给予麻醉
辅 助药，如皮下注射吗啡镇静止痛，注射阿托品
3.2 不同因素对血液凝固时间的影响
表2 血液凝固及其影响因素
试管号 1 2 3 4 5 6 7
实验处理 空白
液体石蜡4滴 棉花少许 冰水环境 肝素4滴 草酸钾4滴
脑组织浸液4滴 5号管加CaCl24滴 6号管加CaCl24滴
凝血时间（秒）
4 分析与探讨 4.1 本次实验家兔Hb测定结果比对照高（或低、或基本一
2.实验项目
（1）描记正常曲线，观察曲线的收缩相和舒张相。 （2）用中等强度的单个阈上刺激在收缩期刺激心室，
动物生理学实验1 ppt课件
实验一
动物生理学实验常用仪器 实验基本操作技术
PCLAB-UE生物机能实验系统简介及使用
1 动物生理学实验的地位 本共27学时，属专业基础课程。 成绩计算：报告及修改（红笔）60%， 笔试考试30%，考勤10%。
2 动物生理学实验的目的 掌握基本实验方法； 掌握主要仪器的操作方法； 掌握生理实验基本技能； 分析实验结果、写出规范的实验报告。