食品中乳酸菌地检测

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

1 范围

本标准规定了含乳酸菌食品中乳酸菌(lactic acid bacteria)的检验方法。

本标准适用于含活性乳酸菌的食品中乳酸菌的检验。

2 规范性引用文件

本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本标准。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本标准。

3 术语和定义

3.1 乳酸菌 lactic acid bacteria

一类可发酵糖主要产生大量乳酸的细菌的通称。本标准中乳酸菌主要为乳杆菌属(Lactob acillus)、双歧杆菌属(Bifidobacterium)和链球菌属(Streptococcus)。

4 设备和材料

除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:

4.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃。

4.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。

4.3 均质器及无菌均质袋、均质杯或灭菌乳钵。

4.4 天平:感量0.1 g。

4.5 无菌试管:18 mm×180 mm、15 mm×100 mm。

4.6 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或微量移液器及吸头。

4.7 无菌锥形瓶:500 mL、250 mL。

5 培养基和试剂

5.1 MRS(Man Rogosa Sharpe)培养基及莫匹罗星锂盐(Li-Mupirocin)改良MRS培养基:见附录A中A.1。

5.2 MC培养基(Modified Chalmers 培养基):见附录A中A.2。

5.3 0.5%蔗糖发酵管:见附录A中A.3。

5.4 0.5%纤维二糖发酵管:见附录A中A.3。

5.5 0.5%麦芽糖发酵管:见附录A中A.3。

5.6 0.5%甘露醇发酵管:见附录A中A.3。

5.7 0.5%水杨苷发酵管:见附录A中A.3。

5.8 0.5%山梨醇发酵管:见附录A中A.3。

5.9 0.5%乳糖发酵管:见附录A中A.3。

5.10 七叶苷发酵管:见附录A中A.4

5.11 革兰氏染色液:见附录A中A.5。

5.12莫匹罗星锂盐(Li-Mupirocin):化学纯。

5.13 半胱氨酸盐酸盐(Cysteine Hydrochloride):纯度>99%。

6 检验程序

乳酸菌检验程序见图1。

7 操作步骤

7.1样品制备

7.1.1 样品的全部制备过程均应遵循无菌操作程序。

7.1.2 冷冻样品可先使其在2 ℃~5 ℃条件下解冻,时间不超过18 h,也可在温度不超过4 5 ℃的条件解冻,时间不超过15 min。

7.1.3 固体和半固体食品:以无菌操作称取25 g样品,置于装有225 mL生理盐水的无菌均质杯内,于8000 r/min~10000 r/min均质1 min~2 min,制成1:10样品匀液;或置于2 25 mL生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min制成1:10的样品匀液。

7.1.4 液体样品:液体样品应先将其充分摇匀后以无菌吸管吸取样品25 mL放入装有225 mL生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分振摇,制成1:10的样品匀液。

7.2 步骤

7.2.1 用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1 mL,沿管壁缓慢注于装有9 m L生理盐水的无菌试管中(注意吸管尖端不要触及稀释液),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。

7.2.2 另取1 mL无菌吸管或微量移液器吸头,按上述操作顺序,做10倍递增样品匀液,每递增稀释一次,即换用1次1 mL灭菌吸管或吸头。

7.2.3 乳酸菌计数

7.2.3.1 乳酸菌总数

根据待检样品活菌总数的估计,选择2个~3个连续的适宜稀释度,每个稀释度吸取1 mL样品匀液于灭菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。稀释液移入平皿后,将冷却至50℃的MRS琼脂培养基倾注入平皿约15mL,转动平皿使混合均匀。36℃±1℃厌氧培养48 h±2 h,培养后计数。从样品稀释到平板倾注要求在15min内完成。

7.2.3.2 双歧杆菌计数

根据对待检样品双歧杆菌含量的估计,选择2个~3个连续的适宜稀释度,每个稀释度吸取1 mL样品匀液于灭菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。稀释液移入平皿后,将冷却至5 0℃的莫匹罗星锂盐和半胱氨酸盐酸盐的MRS培养基倾注入平皿约15mL,转动平皿使混合均。36℃±1℃厌氧培养48 h±2 h,培养后计数平板上的所有菌落数。从样品稀释到平板倾注要求在15 min内完成。

7.2.3.3 嗜热链球菌计数

根据待检样品嗜热链球菌活菌数的估计,选择2个~3个连续的适宜稀释度,每个稀释度吸取1 mL样品匀液于灭菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。稀释液移入平皿后,将冷却至50℃的MC培养基倾注入平皿约15mL,转动平皿使混合均匀。36℃±1℃需氧培养48 h±

2 h,培养后计数。嗜热链球菌在MC琼脂平板上的菌落特征为:菌落中等偏小,边缘整齐光滑的红色菌落,直径2 mm±1 mm,菌落背面为粉红色。从样品稀释到平板倾注要求在15 min内完成。

7.2.3.4 乳杆菌计数

7.2.3.1 项乳酸菌总数结果减去7.2.3.2 项双歧杆菌与7.2.3.3 项嗜热链球菌计数结果之和即得乳杆菌计数。

7.3 菌落计数

可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位(colony-forming units,CFU)表示。

7.3.1 选取菌落数在30 CFU~300 CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU的平板记录具体菌落数,大于300 CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。

7.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。

7.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。

7.4 结果的表述

7.4.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g(mL)中菌落总数结果。

7.4.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,按公式(1)计算:

式中:

N——样品中菌落数;

∑C——平板(含适宜范围菌落数的平板)菌落数之和;

n1——第一稀释度(低稀释倍数)平板个数;

n2——第二稀释度(高稀释倍数)平板个数;

d——稀释因子(第一稀释度)。

相关文档
最新文档