双向电泳技术研究进展
《双向电泳技术》课件

高通量
该技术可以同时分离大量蛋白质,提高了实 验的通量。
高稳定性
该技术具有较高的稳定性,实验结果重复性 好。
缺点
实验周期长
双向电泳技术的实验周期较长 ,需要耗费较多的时间和人力
。
对样品要求高
该技术需要大量的起始样品, 并且对样品的纯度要求较高。
对实验条件要求严格
双向电泳技术的实验条件较为 苛刻,需要精确控制实验参数 。
在药物研发中的应用
总结词
双向电泳技术为药物研发提供了高通量和高效率的蛋白质分离手段,有助于发现潜在的药物靶点和筛 选候选药物。
详细描述
在药物研发过程中,双向电泳技术可用于分析药物对蛋白质表达谱的影响,从而发现药物作用的靶点 。此外,通过比较不同物种或组织的蛋白质表达谱,可以发现潜在的药物靶点,为新药研发提供思路 和候选药物。
应用领域的拓展
疾病诊断与治疗
利用双向电泳技术分析疾病相关蛋白质,为疾病诊断 和治疗提供依据。
药物研发
通过双向电泳技术筛选药物作用靶点,加速新药研发 进程。
生物工程与农业
在生物工程和农业领域中应用双向电泳技术,优化生 物过程和育种。
未来发展方向与挑战
标准化与规范化
建立双向电泳技术的标准化操作流程和质量控制体系,提高实验 结果的可靠性和可比性。
CHAPTER 02
双向电泳技术的实验流程
样本制备
01
02
03
样本选择与处理
选择适当的组织或细胞样 本,进行适当的处理以提 取蛋白质。
蛋白提取
使用适当的缓冲液和试剂 ,从样本中提取蛋白质。
蛋白定量
使用蛋白质定量方法,确 定蛋白质的浓度。
蛋白质提取
溶解蛋白质
双向电泳技术的原理及应用
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双向电泳技术的原理及应用1. 原理双向电泳技术是一种分离和鉴定蛋白质的常用方法。
它结合了凝胶电泳和电泳移动的优势,可以在同一实验中实现更高的分辨率和更好的分离效果。
双向电泳的原理基于两个关键因素:分子大小和电荷。
在实验中,蛋白质样品首先沿一个方向进行电泳。
由于蛋白质的不同大小和电荷,它们会在凝胶中形成不同的带状图案。
然后,凝胶会旋转90度,使蛋白质在垂直方向上进行电泳。
这样一来,蛋白质会在另一个方向上发生分离。
双向电泳的核心是双向凝胶,其结构类似于二维网络。
在第一个方向上,凝胶中的蛋白质会形成一维图案,而在第二个方向上,蛋白质会形成另一维图案。
通过对这两个图案的分析,可以得到更为准确的蛋白质信息。
2. 应用2.1 蛋白质分离和纯化双向电泳技术在蛋白质分离和纯化中有着广泛的应用。
由于双向电泳可以提供更高的分辨率,可以分离和鉴定更多的蛋白质。
这在研究蛋白质结构和功能以及疾病诊断中具有重要意义。
2.2 蛋白质组学研究双向电泳技术在蛋白质组学研究中发挥着重要作用。
通过双向电泳,可以分离出复杂样品中的蛋白质,并获得其质量和电荷信息。
这些信息可以用于鉴定蛋白质和研究其功能。
2.3 药物研发双向电泳技术在药物研发中也有广泛的应用。
通过双向电泳,可以分离和鉴定药物的靶点,进一步了解药物与蛋白质的相互作用机制。
这对于药物设计和优化具有重要意义。
2.4 分子生物学研究双向电泳技术在分子生物学研究中有着重要的应用。
通过双向电泳,可以鉴定蛋白质的表达变化,从而了解基因表达调控机制。
这对于研究细胞功能和疾病发生机制具有重要意义。
2.5 环境监测双向电泳技术在环境监测中也有着广泛的应用。
通过双向电泳,可以分离和鉴定环境中的污染物,从而评估环境质量和污染程度。
这对于环境保护和治理具有重要意义。
3. 优缺点3.1 优点•分辨率高:双向电泳可以提供更高的分辨率,可以分离和鉴定更多的蛋白质。
•信息丰富:双向电泳可以获得蛋白质的质量和电荷信息,有助于了解蛋白质的结构和功能。
荧光差异显示双向电泳技术原理
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荧光差异显示双向电泳技术原理双向电泳是一种常用的蛋白质分离技术,通过电场的作用将蛋白质样品分离成不同的带状区域。
而荧光差异显示双向电泳技术则是在双向电泳的基础上,利用荧光染料对蛋白质进行标记,使得分离出的蛋白质带状区域能够以荧光的形式显示出来。
本文将详细介绍荧光差异显示双向电泳技术的原理及其在蛋白质研究中的应用。
荧光差异显示双向电泳技术的原理主要包括样品制备、电泳分离、荧光染色和荧光成像等步骤。
样品制备是荧光差异显示双向电泳的关键步骤之一。
样品制备的目的是将蛋白质从复杂的生物体中提取出来,并使其具备较好的电泳性质。
常见的样品制备方法包括胶束电泳法和硅胶柱层析法等。
胶束电泳法是通过洗涤剂将蛋白质从细胞中溶解出来,形成胶束溶液,再经过离心等步骤得到纯化的蛋白质样品。
硅胶柱层析法则是利用硅胶柱将蛋白质样品分离纯化,去除杂质。
样品制备的关键在于保证蛋白质样品的纯度和完整性,以便后续的电泳分离。
电泳分离是荧光差异显示双向电泳的核心步骤。
电泳分离是通过电场的作用将蛋白质样品分离成不同的带状区域。
由于蛋白质的分子量和电荷差异,蛋白质在电场中会产生不同的迁移速度,从而实现分离。
双向电泳是指在水平方向和垂直方向施加交叉电场,使得蛋白质样品能够同时在两个方向上进行迁移,从而增加了分离效果。
电泳分离的关键在于电场的施加和控制,以及电泳胶的选择和制备。
然后,荧光染色是荧光差异显示双向电泳的重要步骤之一。
荧光染色是通过将蛋白质样品与荧光染料结合,使得分离出的蛋白质能够以荧光的形式显示出来。
常用的荧光染料包括SYPRO Ruby、CyDye和FluorProtein等。
荧光染色的关键在于染料的选择和染色条件的优化,以确保荧光信号的强度和稳定性。
荧光成像是荧光差异显示双向电泳的最后一步。
荧光成像是通过荧光成像仪将荧光信号转化为图像,以便后续的分析和解读。
荧光成像的关键在于成像仪的选择和参数设置,以及荧光信号的采集和处理。
荧光差异显示双向电泳技术在蛋白质研究中具有广泛的应用。
电泳技术的应用及其研究进展
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电泳技术的应用及其研究进展摘要:本文概述了电泳技术的发展历程,并对几种常用的电泳技术原理及其应用作了简要介绍。
关键字:电泳技术应用双向电泳电泳技术发现于150多年前,1808年俄国物理学家Reuss进行了世界上第一次电泳实验,这个早期实验为电泳的理论和实践的发展及其应用奠定了基础。
1937年瑞典的Tiselius建立了“移界电泳法”,用于蛋白质分离的研究,成功的将血清蛋自分成了白蛋自和四种球蛋自,开创了电泳技术的新纪元[1]。
以后采用支持介质的区带电泳逐渐取代了这种在自由溶液中进行的移界电泳,并在生物学,分子生物学,生物工程中得到广泛应用。
1959年Raymond和Weintraub利用人工合成的凝胶作为支持介质,创建了聚丙烯酰胺凝胶电泳,极大地提高了电泳技术的分辨率,开创了近代电泳的新时代。
30多年来,聚丙烯酰胺凝胶电泳仍是生物化学和分子生物学中对蛋白质、多肽、核酸等生物大分子使用最普遍,分辨率最高的分析鉴定技术,是检验生化物质的最高纯度:即“电泳纯”(一维电泳一条带或二维电泳一个点)的标准分析鉴定方法,至今仍被人们称为是对生物大分子进行分析鉴定的最后、最准确的手段,即“Last Check”。
1981年Jorgenson 和Lukacs首先提出在75 内径毛细管柱内用高电压进行分离, 创立了现代毛细管电泳。
1984年Terabe等建立了胶束毛细管电动力学色谱。
1987年Hjerten 建立了毛细管等电聚焦, Cohen和Karger提出了毛细管凝胶电泳。
1988~1989年出现了第一批毛细管电泳商品仪器。
短短几年内, 由于CE符合了以生物工程为代表的生命科学各领域中对多肽、蛋白质(包括酶,抗体)、核苷酸乃至脱氧核糖核酸(DNA)的分离分析要求, 得到了迅速的发展。
尤其是高效毛细管电泳(HPCE)在分离分析酶、蛋自质、多肽、核酸等大分子方面具有高分辨率、高灵敏度,分析时间短,用量少等特点,是十分理想的分离手段。
蛋白质组学研究介绍结合双向电泳

蛋白质组学研究的主要内容和方法
蛋白质表达分析
研究不同生理或病理条件下蛋白质的表 达水平变化,揭示蛋白质的表达模式和
规律。
蛋白质相互作用研究
利用酵母双杂交、免疫共沉淀等技术 手段,研究蛋白质之的相互作用和
复合物的形成。
蛋白质功能研究
通过基因敲除、基因敲减、定点突变 等技术手段,研究蛋白质的功能和作 用机制。
智能化
结合人工智能和机器学习技术,实现双向电 泳的智能化分析,自动识别和鉴定蛋白质, 提高数据分析的准确性和可靠性。
拓展双向电泳技术的应用领域
临床诊断
01
将双向电泳技术应用于临床诊断,通过对生物标志物的检测和
分析,辅助医生进行疾病诊断和治疗方案的制定。
药物研发
02
利用双向电泳技术筛选和鉴定药物作用靶点,为新药研发提供
蛋白质芯片技术
高通量、快速、简便,但灵敏度和分辨率相对较低,且覆盖的蛋白质数量有限。
双向电泳与蛋白质免疫印迹技术的比较
双向电泳
可以对全蛋白质组进行分离和定性,分 辨率高。
VS
蛋白质免疫印迹技术
可以对特定蛋白质进行检测和定量,灵敏 度高,但只能针对已知的蛋白质进行检测 。
05
双向电泳技术的发展前景 和展望
蛋白质的纯化
通过双向电泳,可以去除样品中的杂 质,提高蛋白质的纯度,从而获得更 准确的鉴定结果。
蛋白质的表达和鉴定
蛋白质表达分析
通过比较不同生理状态或不同组织中 蛋白质的表达模式,可以研究蛋白质 的表达水平,进而了解其在生命活动 中的作用。
蛋白质鉴定
通过与已知蛋白质的数据库进行比对, 可以鉴定出双向电泳图谱中的蛋白质, 为后续的功能研究提供依据。
脑脊液双向电泳中去除高丰度蛋白技术的研究

脑脊液双向电泳中去除高丰度蛋白技术的研究脑脊液是一种由脑室内分泌的液体,主要由脑脊液脂质、蛋白质和细胞组成,对于神经系统的正常功能起着至关重要的作用。
然而,由于脑脊液中含有丰富的蛋白质,这些蛋白质可能会干扰对其他低丰度蛋白质的研究,因此急需一种技术来去除脑脊液中高丰度蛋白。
目前,蛋白质双向电泳技术已经成为一种被广泛应用于蛋白质分析领域的技术。
蛋白质双向电泳技术是一种结合了等电聚焦和SDS-PAGE两种电泳技术的方法,通过等电聚焦将蛋白质按照pI值分离开来,再通过SDS-PAGE根据分子量将蛋白质进一步分离,从而实现蛋白质的高分辨率分离。
然而,由于蛋白质双向电泳常常受限于蛋白质的动态范围,对于高丰度蛋白质的分离效果并不理想。
为了解决蛋白质双向电泳中高丰度蛋白质的干扰问题,研究人员提出了一种新的去除高丰度蛋白质技术,即脑脊液双向电泳中去除高丰度蛋白技术。
这种技术利用了一种新型亲和吸附材料,能够高效地去除脑脊液中高丰度蛋白质,从而提高了对低丰度蛋白的检测灵敏度和分离效果。
研究人员首先设计并合成了一种具有特异亲和性的聚合物材料,该材料具有一定的选择性,可以高效地吸附脑脊液中的高丰度蛋白质。
经过优化实验条件后,研究人员将这种聚合物材料应用于脑脊液双向电泳中,成功地去除了脑脊液中大部分高丰度蛋白质,为后续的低丰度蛋白质分离和分析奠定了基础。
通过将这种去除高丰度蛋白技术与蛋白质双向电泳技术相结合,研究人员成功地提高了对脑脊液中低丰度蛋白质的检测灵敏度和分离效果,为深入研究脑脊液中的蛋白质组成和功能提供了重要的技术支持。
这种新型技术不仅可以应用于脑脊液的研究,还可以推广到其他生物体液中高丰度蛋白质的去除,对于蛋白质组学研究和生物医学领域具有重要意义。
梳理一下本文的重点,我们可以发现,为解决脑脊液蛋白质分析中的难题提供了新的思路和方法,有望在蛋白质组学研究和生物医学领域取得重要的突破和进展。
希望未来能够进一步完善这项技术,为脑脊液相关研究和临床诊断治疗提供更好的支持和保障。
双向电泳和质谱技术

双向电泳和质谱技术双向电泳和质谱技术是两种广泛应用于生物化学和生物物理学领域的分析方法。
它们通过不同的原理和技术手段,可以对生物分子进行定性和定量的分析。
本文将介绍双向电泳和质谱技术的基本原理、应用领域以及发展前景。
一、双向电泳双向电泳是一种常用的蛋白质分析方法,它通过电泳将蛋白质在两个正交方向上进行分离,从而实现高分辨率的分析。
其基本原理是利用蛋白质在电场中的电荷、大小和形状等特性,通过在两个方向上施加电场,不断地移动蛋白质分子,使其在凝胶中分散开来,最终实现完全的分离。
双向电泳技术在生物化学和生物物理学领域中有着广泛的应用。
它可以用于研究蛋白质的组成和结构,探索蛋白质相互作用的机制,寻找新的蛋白质标记和药物靶点等。
双向电泳技术的主要优点是分离效果好、分析速度快、灵敏度高。
然而,该技术也存在一些局限性,比如在分离过程中可能出现混叠现象,对样品要求较高等。
二、质谱技术质谱技术是一种以测定生物样品中质量与荷电比(m/z)为基础的分析方法,它可以对样品中的化合物进行分析和鉴定。
质谱技术的基本原理是将样品中的化合物通过电离技术转化为带电离子,然后根据离子在磁场中受到的作用力大小,测量离子的质量和荷电比,从而确定分子的质量。
根据质谱仪的不同类型和检测模式,质谱技术可以分为质谱仪、质谱成像、质谱图谱等多种形式。
质谱技术在生物化学和生物物理学领域中扮演着重要的角色。
它可以用于寻找新的生物标记物、研究代谢产品的组成、药物的代谢途径以及蛋白质的翻译后修饰等。
同时,质谱技术还可以与其他分析方法进行联用,如液相色谱联用质谱、气相色谱联用质谱等,以增强分析的灵敏度和分辨率。
三、双向电泳与质谱技术的结合双向电泳和质谱技术在生物科学研究中常常被结合使用,以实现更全面、深入的分析。
双向电泳可以将蛋白质分子进行高效的分离,而质谱技术可以对分离得到的蛋白质进行质量测定和结构鉴定。
通过双向电泳与质谱技术的结合,可以在一定程度上弥补两种方法的局限性,提高分析结果的准确性和可靠性。
双向电泳技术及其在肿瘤研究中的应用_熊兴东

综述双向电泳技术及其在肿瘤研究中的应用熊兴东1,刘新光1,李恩民2=指示性摘要> 详细介绍了双向电泳技术的原理、发展历史及其技术操作,综述了双向电泳技术在肿瘤研究中的应用。
双向电泳技术是蛋白质组学研究的基础技术平台。
应用双向电泳技术分离肿瘤与正常组织细胞之间的差异表达蛋白可为寻找肿瘤的特异标志物、揭示肿瘤的发病机制以及开发新的肿瘤治疗方式及治疗药物等提供新途径。
=关键词> 双向电泳;肿瘤;蛋白质组=中图分类号>R730=文献标识码>A=文章编号>1672-4992(2005)02-270-03随着人类基因组计划的即将完成,生命科学进入了后基因组时代。
如何探索这些基因的功能及其在生物体中发挥的作用已成为人们关注的焦点。
基因是遗传信息的携带者,而蛋白质才是生命活动的真正执行者。
因此,从组织或细胞的整体入手研究功能基因编码与翻译的蛋白质(功能蛋白质组)将是很长一段时间里蛋白质组研究的热点问题。
目前这一研究的首要任务就是应用双向电泳技术来分离和制备复杂的蛋白成分,为下一步的分析和鉴定奠定基础[1]。
肿瘤特别是恶性肿瘤是危害人类最严重的疾病之一。
目前人们通过双向电泳技术分离正常组织细胞与肿瘤之间的差异蛋白质组分,在寻找肿瘤的特异标志物,研究肿瘤的发病机制等方面已显示出强大的作用。
1双向电泳技术1.1双向电泳技术的原理及其发展历史双向电泳技术是蛋白质组学研究的核心技术之一。
它利用了蛋白质等电点和分子量的不同来分离复杂蛋白质组分,具有较高的分辨率和灵敏度,目前已成为复杂蛋白质组分检测和分析的一种强有力的生化技术。
1975年O F'arrell 首先提出了经典的双向电泳技术体系。
他用管状载体两性电解质凝胶作为第一向进行等电聚焦,聚焦后的管状凝胶在含SDS的缓冲液中平衡后,以琼脂糖包埋置于垂直板SDS凝胶的浓缩胶上,然后用L ae mm li的不连续SDS梯度凝胶电泳作为第二向。
双向电泳原理及实验步骤

银染(Silver Stain Plus™ stain)
荧光染色(SYPRO® Ruby protein gel stain)
适用于质谱的染色方法
考马斯亮蓝染色
银染的检测灵敏度很高,可达到200pg,但其线性很差。普通的银染过程中因醛类的特异反应,而与下游质谱不兼容。
快速银染法,可与下游质谱兼容,但其检测灵敏度较低,并伴有很深的背景干扰。
聚焦时间的优化
IEF的基本条件
Stemp 1
Stemp 2
Stemp 3
total
voltage
Time
Volt-Hours
Ramp
250
20min
---
Linear
4000
4000
2hr
---
---
10,000V-hr
Linear
Rapid
5 hr
14,000V-hr
7 cm
Stemp 1
Stemp 2
双向电泳样品的溶解
是成功进行双向电泳的最关键因素之一 溶解的目标: 样品中非共价结合的蛋白质复合物和聚积体完全破坏,从而形成各个多肽的溶解液; 必须允许可能干扰2-DE分离的盐、脂类、多糖和核酸等物质的去除; 保证样品在电泳过程中保持溶解状态。
离液剂:通过改变溶液中的氢键结构使蛋白质充分伸展,将其疏水中心完全暴露,降低接近疏水残基的能量域。典型代表是尿素和硫尿。
02
样品上样缓冲液
标准溶液:
Reagent
Amount
8M urea
47ml of 8.5 stock or 24g urea in 25ml H2O
50mM DTT or 2mM TBP
385mg or 500ul of 200mM TBP stock
双向电泳技术在蛋白质组研究中的应用体会

像分析系统 。还应该强调分析 中是否进行了光密度 的校准 和空 间的标定以及 MO D的计算 方法 , 以便 其他 科研 工作 者能够判 断测量结果 的精度 和客观性 。此外在科研实验 中不 能片面地夸 大计算机图像分 析的作用 , 要注意样本 的代表性和随机性 , 选择 合适的参数 , 并保证实验条件和分析步骤完全统一 。
参 考 文 献
个 实 验 的 所 有 图 片手 工 进 行 上 述 的 分 析 步 骤 极 为 烦 琐 ,
并要保持 统 一 的标 准尤 为 困 难。这 就需 要进 行 批 处 理 , 宏 即 ( co 功能 , Mar) 该功能 由图像 分析软件提 供 , 操作 中不受人 为 在
因素 的干 扰 , 主要 步 骤 是 将 测 量 参 数 、 图像 分 割 阈 值 分 别 保 存 为
D - b l i u o mmu o i ohmi lq a ti t n[ ] J ABl ee ts efri n hs ce c unic i J. a d s t a fa o
Hi t c m t c e ,2 0 5 ( ) 5 8 . so he Cy o h m 0 3, 1 5 : 75 5 4
最后聚焦结束为36000v1124胶条的平衡重泡胀和等电聚焦结束后用四蒸水打湿的滤纸充分吸干胶条上的矿物油和多余的样品把胶条放入平衡液i胶条平衡缓冲液母液10mldtt03g中于摇床摇振15rain再于平衡液胶条平衡缓冲液母液10iill碘乙酰胺0375g中摇床摇振15min25第二向电泳sdpage用滤纸吸去胶条上多余的水化液及样品将胶条转移至事先制好的聚丙烯酰胺凝胶上转移时注意胶条支持膜紧贴长玻板胶面朝向短玻板
蛋白质的双向电泳

分子量 提取的总蛋 白溶液 小 通过双向电泳使得不同等电点和分子量的 蛋白质根据其自身特性分布到凝胶的不同 位置从而实现蛋白质的双向分离
2DE图谱
硝酸银染色图谱 考马斯亮蓝染色图谱
双向电泳(DIGE)示意图
样品1: Cy3标记 将标记的 样品混合 样品2: Cy5标记
双向电泳分离
荧光扫描仪扫描ຫໍສະໝຸດ 图像重叠分析蛋白质双向电泳
蛋白质组学(proteomics)
概念:是从整体角度分析生物体蛋白质组动 态变化的一门科学 研究内容:蛋白质的识别、定量;蛋白质的 定位、修饰;蛋白质之间的相互作用并根据 这些研究最终确定它们的功能
技术流程
提出 生物学问题 实验组和对照组 样品制备 凝胶图像分析
双向电泳(2DE/DIGE)
胶条平衡
等电聚焦结束后进行SDS-PAGE电泳 之前需进行胶条平衡,以便于被分离 的蛋白质与SDS充分结合,保证SDSPAGE电泳的顺利进行 步骤:一般采用两步平衡法,用含 SDS、DTT、尿素和甘油等的缓冲液 先平衡一次,再用碘乙酰胺取代DTT 后再平衡一次
SDS-PAGE电泳
使得蛋白质按照分子量的大小不同而 分离,与普通SDS-PAGE相似 在双向电泳系统中无需浓缩胶,因为 第一向等电聚焦已经使得蛋白得到浓 缩
DIGE图谱
样品制备
双向电泳的最关键步骤之一
制备原则:尽可能多地提取出总蛋白质, 尽可能简单的操作步骤,注意防止样品 提取过程中的各种化学修饰,去除样品 中核酸、盐离子等干扰物质。
等电聚焦
通过10000V高压使得蛋白质按照其等电 点特性进行聚焦 步骤:胶条水化、低压除盐、高压聚焦、 低压维持 聚焦时间:聚焦时间太短,会导致水平 和垂直条纹,过长会造成蛋白图谱变性, 在胶条碱性端产生水平条纹以及蛋白丢 失。最佳时间的确定需要根据蛋白样品 类型、蛋白载样量、PH范围和胶条长度 来确定。
双向电泳的应用和原理

双向电泳的应用和原理应用双向电泳是一种常用的生物分析技术,常用于蛋白质分析和DNA分析等领域。
以下是双向电泳的一些主要应用:1.蛋白质分析:双向电泳被广泛用于蛋白质分析。
通过将样品中的蛋白质分离成不同的带,可以进一步研究蛋白质的结构和功能。
2.DNA测序:双向电泳也可以用于DNA测序。
通过将DNA片段分离成不同的带,可以确定DNA的序列。
3.肿瘤标记物检测:双向电泳可以用于检测肿瘤标记物,从而帮助早期诊断和治疗。
4.药物筛选:双向电泳可以用于筛选新药物的研究。
通过比较不同试验条件下的蛋白质表达,可以确定新药物的作用机制。
5.疾病研究:双向电泳可以用于研究不同疾病的发生机制和治疗靶点。
通过比较患者样本和正常对照的蛋白质表达,可以发现与疾病相关的蛋白质变化。
原理双向电泳是将电泳技术应用于两个方向的分离,以实现更高分辨率的分析。
以下是双向电泳的基本原理:1.等位点电泳:双向电泳始于等位点电泳(IEF),即根据蛋白质的等电点将其分离成不同的带。
蛋白质在直流电场下会在电极之间移动,直到达到与环境中的离子浓度相等的位置。
这样,蛋白质就能被固定在凝胶中的特定位置。
2.SDS-PAGE:随后,使用聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)将蛋白质按照其分子量进一步分离。
在SDS-PAGE中,SDS(十二烷基硫酸钠)会使蛋白质带负电荷,从而使蛋白质按照其分子量在电场下移动。
3.双向电泳:在双向电泳中,IEF和SDS-PAGE两个步骤结合在一起。
首先,将样品在一维的IEF凝胶中进行等位点电泳分离。
然后,将等位点电泳的凝胶旋转90度,将其置于SDS-PAGE凝胶上。
这样,样品就可以在两个方向上进行电泳分离。
4.分析结果:双向电泳结束后,可以通过染色或质谱分析等方法来可视化和分析分离的蛋白质带。
比较不同样品的带的强度和位置可以得出有关蛋白质表达和组成的信息。
双向电泳的原理和应用使其成为生物学和生物医学研究中不可或缺的工具。
双向电泳技术研究进展

双向电泳技术研究进展摘要:双向电泳(two dimensional electrophoresis , 2-DE)技术是获得细胞、组织或器官等蛋白表达图谱的主要手段,是蛋白质组学研究的三大核心技术之一。
本文主要从双向电泳技术的发展,主要操作步骤及其面临的主要挑战等方面对改技术的研究进展进行综述。
关键词:双向电泳;研究1.双向电泳技术的发展蛋白质双向电泳源于1975年O,Farrell. Klose.Scheele 对大肠杆菌、老鼠及几尼猪蛋白质的研究。
它首先根据样品中蛋白质等电点不同进行等电聚焦(IEF)作为第l向,然后再按照蛋白质分子量大小不同进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS -PAGE)作为第2向,经染色后可以在凝胶上得到大量的蛋白质点,从而得到样品的蛋白质表达图谱。
根据双向电泳中第l向等电聚焦方法的不同,双向电泳主要分为2个主要类型,ISO-DALT(等电点一道尔顿)IPG.DALT ( 固相pH梯度一道尔顿)双向电泳。
1.1 ISO-DALT双向电泳技术传统的ISO-DALT双向电泳中,首先将载体两性电解质添加在丙烯酰胺凝胶中,凝胶聚合后在电场作用下形成连续的DH值梯度,两性电解质以游离的形式分布于聚丙烯酰胺凝胶的网孔中。
通常采用圆柱状电泳,IEF凝胶制备在圆柱型玻璃管中,可以将样品加在未凝固的凝胶溶液中,也可在凝胶凝固后在玻璃管顶端加样,然后进行等电聚焦,通常在50~100V电压下聚焦1~2 h,让样品进入IEF胶条,然后在200 ~400V或更高电压下进行聚焦,直到电流接近零时为止。
等电聚焦结束后取下凝胶柱,向玻璃管中凝胶与管壁间注水,将凝胶条吹出,用缓冲液平衡凝胶条,主要目的是充分打断多肽链间及多肽链内部的二硫键并使其与SDS充分结合,然后将胶条用琼脂包埋于第2向电泳的凝胶板中,进行第2向SDS-PAGE,SDS-PAGE 可以使用均一的分离胶浓度,也可采用不连续梯度胶或者连续梯度胶。
双向电泳技术在蛋白质组学研究中的应用进展
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双 向电泳 技 术 由 Fr 等人 于 1 7 ar l e 9 5年 建 立 。
作 者 简 介 :杨 玉 霞 ( 97一) 18 ,女 ,河 北 石 家 庄 人 ,本 科 生 ,水 稻 栽 培 生理 专 业 。E m i:18 2 @ na.d .n - al1 120 ju eu c 。
予技术 指导 , 推进 产业新 的发展 。 ( 任编 辑 :张才德 ) 责
衄
澎 雇 学 21第 期 江 辛 0 年 6 1
辨率 高 、灵 敏 度 高 ,而 且 图 谱 必 须 有 良好 的 重 现 性 。但是 由于 技术 的 熟 练 程 度 以及 技 巧掌 握 的 不
其 基本 原理是 :第 1向进 行等 电聚焦 ,因为蛋 白质 是两性 分子 ,具有 不 同的等 电点 ,在 p 梯度 介 质 H
而 双 向 凝 胶 电 泳 (w -i es n le c o hrs , todm ni a l t p o i o er es
1 蛋 白质 组 学
蛋 白质组 ( rt me ,源 于蛋 白质 ( rt n Poe ) o poe ) i 与基 因 ( eo e g nm )2个 词 的杂合 ,是 指 一种 基 因组 或一 种生 物 、一 个细胞 ( 织 )所 表达 的全 套蛋 白 组
目前 蛋 白质 组研究 技术 的标准 方法 。
作用 与联 系 ,在 整体水 平上 来研究 蛋 白质 的组 成 与 调控 的活 动规律 。
蛋 白质 组学 研究 的主要 内容包 括 2个 方 面 ,即
2 双 向 电泳 技 术
Western blot 、蛋白质双向电泳的基本原理、方法及在医学中的实际应用
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2.PVDF膜
灵敏度、分辨 率和蛋白亲和 力比常规的膜 要高,对蛋白 的吸附能力要 远远大于NC膜
3.尼龙膜
对核酸和蛋白 质具有很强的 结合能力,能 代替NC膜用于 分子印迹和杂
交实验。
选择膜的标准
选择标准
1.膜与目的蛋白分子的结合能力(也就是单位面积的膜能结合 蛋白的载量),以及膜的孔径(也就是拦截蛋白的大小)
Western Blot的三大医学应用
Western blot法诊断囊虫病
应用荧光定量PCR 和 Western- blot 检测 RNA干扰肺腺癌A549 细 胞STAT3基因表达水平
Western-blot法测定风 疹病毒特异性抗原
1、Western blot法诊断囊虫病
囊虫病是由猪带绦虫幼虫即囊尾蚴寄生于人体引起的人 兽共患寄生虫病。
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31
技术流程
提出 生物学问题
实验组和对照组样品制备
双向电泳(2DE/DIGE)
凝胶图像分析
差异蛋白点选取 蛋白酶解及质谱分析 差异蛋白点的成功鉴定
生物学问题的解释
32
双向电泳(2DE/DIGE)
• 目前进行蛋白质组学分析的最常规实验技术 • 能实现多达10000种不同蛋白质进行分离分析
双向电泳(2DE)示意图
等电聚焦,实现蛋白质按等电点 进行分离
大 分子量
SDS-PAGE分离 ,使得蛋白质按 分子量大小排序
小
通过双向电泳使得不同等 电点和分子量的蛋白质根 据其自身特性分布到凝胶 的不同位置从而实现蛋白
质的双向分离
2DE图谱
硝酸银染色图谱
考马斯亮蓝染色图谱
综合实验论文:双向电泳技术1
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目录引言 (1)1 材料及试剂 (2)1.1材料 (2)1.2试剂 (2)2 实验设备 (4)3 实验步骤 (5)3.1样品制备 (5)3.2第一向等电聚焦电泳(IEF) (5)3.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 (6)3.4 考马斯亮兰染色 (7)3.5 图谱分析 (7)4 结果 (8)5 小结 (8)参考文献 (9)双向电泳技术xx(指导老师:xx)(xxxx)摘要:双向电泳是利用蛋白质在两次独立的分离步骤中的特性将蛋白质分开:第一向步骤——等电聚焦(IEF)根据蛋白质的等电点(pI)将蛋白质分离。
在第二向步骤中 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)利用蛋白质的分子量(Mr, 相对分子量)大小将它们分离。
所得结果的斑点序列都对应着样品中的单一蛋白。
本文以提取菠菜叶中的蛋白质为例,详细介绍了双向电泳技术的原理和操作过程。
关键词:双向电泳技术;等电聚焦;SDS- PAGE分离;双向电泳技术xx(指导老师:xx)(xxxx)引言双向电泳(Two-dimensional electrophoresis)在 1975年由 P.H.O'Farrel和J.Klose发明,是分析从细胞、组织或其它生物样品中提取出来的蛋白混合物最有力和广泛应用的方法。
这项技术利用蛋白质在两次独立的分离步骤中的特性将蛋白质分开:第一向步骤——等电聚焦(Isoelectricfocusing ,简称IEF)根据蛋白质的等电点(pI)将蛋白质分离。
在第二向步骤中 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)利用蛋白质的分子量(Mr, 相对分子量)大小将它们分离。
双向电泳所得结果的斑点序列都对应着样品中的单一蛋白。
因此,上千种蛋白质均能被分离开来,并且各种蛋白质的等电点,分子量和含量的信息都能得到。
自产生以来,双向电泳作为生化分离技术的重要性事实上早已被承认,而由于各方面的改进在最近几年才广泛应用[1]。
具有以下几个方面的优越性:•对未处理样本耐受性好,不需要预纯化 (如:色谱层析);•分辨率非常高;• 2D 可以有效的组分收集器;•蛋白在凝胶介质中受到保护;•在蛋白质组学技术中应用范围最广(front-end );•与其他技术相比,在一次试验中可检测到的蛋白点更多;•与后续分析技术兼容性好 (如. MDLC) [2]。
双向凝胶电泳技术在中医证候研究中的应用
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因素 的综合 性诊 断 概念 , 是致 病 因素 与 机体 反 应 两 方
其 电荷为 零 的 p 位 置 时 , 品蛋 白质 就 根 据 其 等 电 H 样
点 得到分 离 。S SP G D —A E有 垂 直 和水 平 2种 方 式 。垂
面情况的综合。证 , 是指对疾病所处的一定 阶段的病
离 2种 以上蛋 白质 样 品 , 比较 同一 蛋 白在 不 同样 品 中
D 是根 据蛋 白质 等 电点 和 分 子 量 的不 同 , 过 两 次 E) 通
方 向互相 垂 直 的高 分辨 率等 电 聚焦 电泳 和 十二烷 基磺
酸 钠一 聚丙 烯 酰 胺 凝 胶 电泳 ( o im dd elslh t sdu oey up a e
的样 品在 同一块 凝胶 上 进 行 分 离 , 不 同波 长 的激 光 用
激 发后 可 以显示 不 同 的颜 色 。DG I E技 术 的优 点是 采 用 几种不 同的荧光 染料 ( y 、y 、y ) 别标 记 不 同 C 3 C5 C 2 分 的蛋 白质 样 品 , 设立 内标 , 以在 同一块胶 上 同时分 并 可
2 双 向 电泳 技术 是研 究 中医证候 的重 要方 法
双 向电泳技 术包 括蛋 白样 品制备 、 电聚焦 、D — 等 S S P G 染 色 等步 骤 。样 品 制备 非 常关 键 , 理 的 样 品 A E、 合 制备 可保证 2一D E的 重 复性 。尽 量 减 少 蛋 白提 取 过 程 中的降解 和丢 失 , 以提 高分 辨 率 。等 点 聚 焦 是 在存
同净 电荷 和不 同分 子量 的蛋 白质 二维平 面上 呈点 状分 开 的技术 。双 向 电泳 技 术 17 9 5年 由意 大利 生 化 学 家
橡胶树胶乳全蛋白的提取及双向电泳分析
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橡胶树胶乳全蛋白的提取及双向电泳分析摘要:本研究的目的是提取橡胶树胶乳中的全蛋白,并通过双向电泳分析来鉴定其多样性和特征。
为此,橡胶树胶乳溶剂提取的蛋白被经过凝胶锥电泳的二维运动。
结果显示,45个突变体的橡胶树胶乳中存在20种不同的蛋白类型。
这些组分包括蛋白酶、玾代蛋白酶、促酶、蛋白酶、蛋白酶抑制剂和核糖核酸结合蛋白。
结果表明,橡胶树胶乳全蛋白的提取和双向电泳分析可以用于发现其多样性和特征。
关键词:橡胶树胶乳,全蛋白,提取,双向电泳,多样性正文:本研究旨在提取橡胶树胶乳中的全蛋白,并使用双向电泳来研究其多样性和特征。
橡胶树胶乳是一种由橡胶树叶制成的浓缩液,含有大量的组分,包括酶、核苷酸、核糖体和橡胶结合蛋白。
为了提取全蛋白,橡胶树胶乳溶剂提取的蛋白被运用Tris-HCl缓冲液(pH 8.0)处理,然后通过凝胶锥电泳的二维运动进行。
双向电泳分析结果显示,45个突变体的橡胶树胶乳中存在20种不同的组分。
这些组分包括蛋白酶、现代蛋白酶、促酶、蛋白酶、蛋白酶抑制剂和核糖核酸结合蛋白。
一些蛋白的表达量因突变体而异,这说明了某些蛋白具有特定的功能,而另一些则具有更广泛的功能。
因此,本研究表明,橡胶树胶乳全蛋白的提取和双向电泳分析可以用于发现其多样性和特征,有助于研究橡胶树胶乳的性质和功能。
研究表明,橡胶树胶乳中存在多种不同的蛋白酶,其中最重要的是蛋白酶、现代蛋白酶和促酶。
鉴定出这些蛋白酶可以推断植物胶乳体的生物学功能,从而为植物胶乳体生物学功能的研究提供基础。
同时,可以使用硝酸测定来评估橡胶树胶乳中含量最高的蛋白酶类型,并研究不同类型的蛋白酶的活性。
此外,还可以研究聚丙烯酰胺凝胶电泳峰的表达变化,来分析不同突变体的蛋白质合成水平。
由于橡胶树胶乳含有丰富的成分,因此其研究和应用将具有重要的意义。
理解橡胶树胶乳的组成和功能,将有助于开发更有效的利用方法,以及增加其在农业、医药、食品和环境技术中的应用。
未来的研究应继续探究橡胶树胶乳蛋白酶的活性和组成,以及其参与植物胶乳体生物学功能的机制。
双向电泳和质谱技术
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双向电泳和质谱技术双向电泳和质谱技术是生物分析领域中常用的两种先进技术手段,它们在蛋白质分析、基因测序和疾病诊断等方面发挥着重要作用。
本文将重点介绍双向电泳和质谱技术的原理、应用及未来发展趋势。
1. 双向电泳技术双向电泳是一种利用电场在两个方向同时进行电泳分离的方法。
在垂直电泳的基础上,通过在水平方向引入一个交叉的电场,使得分子在两个方向上同时受到电场的作用,从而实现更加细致的分离和分析。
双向电泳技术可以有效地应对复杂样品的分析需求,提高分离效率和分辨率,广泛用于蛋白质组学和基因组学领域。
2. 质谱技术质谱技术是一种通过测定分子的质荷比来识别、定量和分析化合物的方法。
质谱技术主要包括质谱仪器、样品制备和数据分析三个方面。
通过质谱技术可以快速准确地鉴定生物样品中的蛋白质、代谢产物和小分子化合物,为生物医学研究和临床诊断提供重要帮助。
3. 双向电泳和质谱技术的应用双向电泳和质谱技术在生物学研究和医学诊断中有着广泛的应用。
在蛋白质组学研究中,双向电泳可以帮助科学家分析蛋白质的组成和结构,揭示蛋白质的功能与调控机制;而质谱技术则可以通过蛋白质质谱鉴定和定量,解析复杂生物系统中的蛋白质交互作用和信号传导通路。
在疾病诊断中,质谱技术可以通过检测患者生物标志物的质谱图谱,诊断疾病类型和病情进展,为个体化治疗提供指导。
4. 双向电泳和质谱技术的未来发展随着科学技术的不断进步,双向电泳和质谱技术也在不断优化和完善。
双向电泳技术不断提高分离效率和分辨率,以适应更加复杂样品的分析需求;质谱技术在仪器性能、数据处理和生物信息学分析方面得到了进一步提升,为生物学研究和医学诊断带来更多可能性。
未来,双向电泳和质谱技术将继续发展壮大,成为生命科学研究和临床医学应用的重要工具之一。
总结双向电泳和质谱技术作为生物分析领域的重要手段,为生命科学领域的研究和应用提供了有力支持。
通过深入了解双向电泳和质谱技术的原理和应用,我们可以更好地利用这两种技术手段,推动生物学研究的进步和医学诊断的发展。
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双向电泳的应用及研究进展摘要:双向电泳是蛋白质组学研究中最常用的技术,具有简便、快速、高分辨率和重复性等优点。
本文重点介绍了双向电泳的基本原理及其应用。
同时对当前双向电泳技术面临的挑战和发展前景进行了讨论。
关键词: 双向电泳,应用,前景Abstract:Two- dimensional electrophoresis is now the key technique in proteome research,have the advantage of simple and convenient、quick、high resolution and good repeatability. This article introduced the technical principle and research application ,delivered the prospect of the two- dimensional electrophoresis technique .Key worlds:Two- dimensional electrophoresis,application,prospect1双向电泳基本原理1975年,意大利生化学家O’Farrell发明了双向电泳技术[1],双向电泳是指利用蛋白质的带电性和分子量大小的差异,通过两次凝胶电泳达到分离蛋白质群的技术。
双向电泳技术依据两个不同的物理化学原理分离蛋白质。
第一向电泳依据蛋白质的等电点不同,通过等电聚焦将带不同净电荷的蛋白质进行分离。
在此基础上进行第二向的SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,它依据蛋白质分子量的不同将之分离。
双向电泳所得结果的斑点序列都对应着样品中的单一蛋白。
因此,上千种蛋白质均能被分离开来,并且各种蛋白质的等电点,分子量和含量的信息都能得到。
2双向电泳的应用双向电泳的分辨率较高,自第一次应用该技术以来,其分辨率已从15 个蛋白质点发展到10 000多个蛋白质点。
一般的双向电泳也能分辨1 000~3000 个蛋白质点。
因此,近年来,双向电泳被广泛应用于农业、医学等研究领域。
2.1 在动物科学中的应用在动物科学研究方面,双向电泳被广泛应用于小鼠血清蛋白、卵巢蛋白、兔晶状体蛋白质、昆虫离体细胞膜蛋白、户尘螨蛋白、家蚕雌性附腺及其Ng突变体蛋白质、大腹园蛛毒素蛋白质、家蚕蛋白质、牛精液蛋白、猪巨噬细胞蛋白等方面的研究。
如钟小兰等[2]利用双向电泳技术分析肝郁症模型大鼠血清蛋白质组的差异表达。
王治东等[3]采用蛋白质组学的双向电泳和蛋白质氨基酸序列分析技术研究了8Gy γ射线照射后24 h 小鼠血清蛋白质的变化。
马翔等[4]通过双向电泳和质谱技术分析性成熟小鼠卵巢蛋白质组,并对其中的一种蛋白质进行免疫组化研究。
刘奕志等[5]通过双向电泳和质谱鉴定有效分离和分析兔晶状体蛋白质组的特性,为白内障的防治带来新的前景。
柳亦松等[6]以大腹园蛛粗毒为材料利用双向电泳技术获得蛋白质组双向电泳图谱,检测到500 个左右的蛋白质点,并对其中部分蛋白质点进行了质谱分析。
靳远祥等[7]采用双向凝胶电泳和计算机辅助分析方法,分别对家蚕(Bombyx mori)限性黄茧品种雌蚕(黄茧)和雄蚕(白茧)的中部丝腺组织细胞蛋白质进行分离和比较分析。
2.2 在植物中的应用在植物科学研究方面,双向电泳被广泛应用于水稻蛋白质、小麦蛋白质、茶树蛋白质、杉树蛋白质等方面的研究。
如易克等[8]利用双向电泳技术对水稻种子胚乳蛋白进行了分析,获得了较好的电泳图谱,为探讨水稻灌浆期间与籽粒充实相关蛋白表达的变化,建立了一套适于水稻种子胚乳蛋白双向电泳分析技术。
Picard 等利用双向电泳分析了亲缘关系较近的硬粒小麦不同株系的遗传多样性。
林金科等[9]利用双向电泳技术分析了茶树蛋白质组,探索出一种可获得重复性好,清晰度高的蛋白质双向电泳图谱技术,并发现一种辨别茶树蛋白质样品质量好坏的简便方法。
杨梅等[10]建立了适用于杉叶片蛋白质组研究的双向电泳技术,对杉木叶片蛋白质的溶解方法、上样量、IEF 及SDS-PAGE 电泳等关键步骤进行了优化。
另外,梁文裕等[11]应用双向电泳技术分析了龙眼胚胎分化发育过程中蛋白质组分的变化。
丁坤善等[12]建立了油松雌性不育系球果蛋白质双向电泳技术体系。
李慧玉等[13]对樟子松突变丛生枝蛋白质进行了双向电泳分析。
2.3 在医学中的应用目前许多研究者利用双向电泳对人体的各种组织、器官、细胞进行了研究,为疾病的诊治及了解发病机制提供了新的手段,例如,在肿瘤的研究中,寻找与肿瘤发生、发展和抗药性有关的蛋白,孙庆、杨小玉等[14]对骨肉瘤组织和正常组织进行了双向电泳分析,得到较好的电泳图谱,建立和优化人骨肉瘤蛋白质组双向电泳图像分析方法。
苏坚[15]采用二维电泳、图像分析、质谱技术等方法在相同条件下,对二烯丙基二硫(DADS)处理前后SW480细胞两种样品的总蛋白质进行双向电泳,其中167个匹配的蛋白质点存在表达量上的差异。
与对照组相比,处理组蛋白质表达量下调的有69 个,利用基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱(MALDI-TOF-MS)对其中8个表达明显下调的蛋白质斑点进行分析鉴定,获得相应的肽质量指纹图谱(PMF),通过数据库搜索,确定了这8 个蛋白,这些差异蛋白质涉及细胞周期调控、细胞分化、细胞凋亡及细胞分裂增殖等众多事件。
从而说明,DADS可能具有抑制结肠癌细胞生长,阻滞细胞周期,诱导细胞分化及凋亡的作用。
利用双向电泳技术建立和优化了人血清蛋白质图谱,为进一步开展疾病的血清蛋白质组学研究奠定基础。
刘希成等[16]对人未做处理的血清以及去除白蛋白和免疫球蛋白G(IgG)的蛋白质组学方法进行比较和优化,质谱分析了9 个差异蛋白点,鉴定为8 种蛋白质,其中7 种为功能蛋白质。
胡成效等[17]通过双向电泳分析系统性红斑狼疮(SLE)患者外周血单个核细胞蛋白质表达谱的变化,发现有11 个蛋白点在SLE 患者组表达上调,9 个表达下调,SLE 患者外周血单个核细胞蛋白质表达发生了明显改变,为从淋巴细胞蛋白质谱变化的整体角度上阐明SLE 发生的分子机制及免疫调控通路奠定了基础。
赵慧辉[18]采用双向凝胶电泳和基质辅助激光解析电离飞行时间质谱(MALDI-TOF-MS)对8 例心绞痛血瘀症患者血瘀症程度变化前后的血浆进行比较蛋白质组学研究,寻找心绞痛血瘀症相关蛋白。
结果初步发现了凝聚素(Clusterin)、载脂蛋白A-Ⅰ(ApoA-Ⅰ)在血瘀症程度变轻后表达增加,而纤维蛋白原β链(Fibrinogenβchain)、维生素D 结合蛋白(Vitamin D-Binding Protein)、结合珠蛋白β链(Haptoglobin βchain)等在血瘀症程度变轻后表达降低。
以上这些物质均可能与心绞痛血瘀症相关,但结果有待运用其它生物学的方法进行具体的验证并探索其机制。
另外双向电泳还应用在临床诊断、病理研究、药物筛选、新药开发、食品检测、甚至物种鉴定等方面。
3双向电泳技术的局限性及方法的改进虽然双向电泳技术具有其他蛋白质分离技术无可比拟的分离能力,目前仍然存在着一些技术细节上的挑战和缺陷。
主要有以下几个方面:3.1蛋白样品制备效率偏低样品制备是双向电泳的第一步,其成功与否是决定双向电泳分离能力高低的关键。
在蛋白质样品提取过程中,一些低浓度蛋白质往往会相对过早丢失。
此外,一些难溶的蛋白,尤其是膜蛋白的提取效率较低。
目前一些公司如Bio-Rad研制出一种顺序提取试剂盒,专用于提取一些难溶的膜蛋白。
3.2疏水性膜蛋白的难于分离与检测一般来说,疏水性膜蛋白比亲水性蛋白质更难操作。
膜蛋白更易于聚集在管壁上,由于蛋白质组的研究常在nmol甚至fmol水平上进行,这种特性将会导致很大的损失,甚至完全丢失。
另外,α-螺旋跨膜蛋白在变性的2-D胶上不能很好被有效分离。
若要分离这些蛋白质,需要有机溶剂分馏法或者反相HPLC等技术的辅助。
3.3极端酸性或碱性蛋白质的难于分离极性蛋白质尤其是碱性蛋白质在细胞中常与DNA结合,在信号转导中起着调控作用,因此分离这类蛋白质有着很重要的意义。
在胶条水合时,选用窄范围IPGs(固相PH梯度胶条)如pH 3~7或pH 7~10水合上样会引起明显的横纹,影响蛋白点的分离。
目前用杯上样水合可以提高分离效果。
在杯上样时,一般将蛋白样品放在酸性窄范围IPGs的阴极端或在碱性窄范围IPGs的阳极端。
3.4蛋白质的动态分辨率有待提高对于一根固定长度和pH范围的IPGs胶条,最多能分离几千个蛋白质。
因此,要将某一种组织的所有蛋白质在仅一个pH范围的IPGs上分离是不可能的。
一般采用多个pH范围的IPGs进行分离。
在样品水合上样前,需将蛋白样品按不同pH范围进行预分离,可以提高低丰度蛋白质的分辨率。
3.5自动化程度需进一步提高在双向电泳进行过程中,有不少步骤需要手工操作,因此比较费时,而且易产生误差,造成低重复性。
也不利于实现高通量分离蛋白质。
目前,双向电泳后半部分操作如蛋白胶图的软件分析和蛋白点的切割和处理已实现半自动化,大大加速双向电泳进程。
蛋白质组学理想的高通量全系统方法应包括以下部分:样品收集技术、高分辨电泳装置、自动化凝胶染色仪、半自动化图像分析软件、机器人模拟的斑点处理过程、MALDI-TOF和串联质谱仪,并且具有整合的生物信息学软件,可以链接到单个模块并进行畅通的样品处理、追踪、数据分析和数据归档。
3.6蛋白质定量的问题在蛋白样品水合前,一般需要测定样品中蛋白含量。
最常用方法用Bradford 法测定蛋白浓度。
由于蛋白样品含有去污剂如SDS和还原剂DTT等物质,因此,用此法测定蛋白浓度线性关系差,测定结果出现偏差,给不同样品或处理条件下蛋白表达差异比较带来误差。
目前,一些公司已经开发了蛋白定量测定试剂盒,提高样品中蛋白定量的准确性。
4 前景与展望目前双向电泳技术尚未完善,手工操作较多,经验性强,且存在许多局限性,尽管如此,该技术目前仍然是蛋白质组研究中不可替代的分离方法,随着蛋白质组学的兴起,对技术有了新的要求和挑战。
随着相关学科的发展和技术的进一步完善以及新仪器的开发,限制双向电泳的羁绊不断被突破,双向电泳将在今后的研究中以其独到的优势继续发挥不可替代的作用。
参考文献[1] O'Farrell PH. Biol Chem,1975,250:4007~4021.[2] 钟小兰,吕志平,等. 中华中医药杂志(原中国医药学报),2006,21(7):399~401.[3] 王治东,陈肖华,等. 辐射研究与辐射工艺学报,2005,23(1):53~56.[4] 马翔,钱云,等.北京大学学报(医学版),2004,36(6):581~586.[5] 刘奕志,张敏. 中华眼科杂志,2004,40(2):113~117.[6] 柳亦松,谢锦云,等. 生命科学研究,2006,8(2):170~121.[7] 靳远祥,徐孟奎,等. 农业生物技术学报,2004,12(4):43l~435.[8] 易克,田云,等. 湖南农业大学学报(自然科学版),2004,30(6):513~515.[9] 林金科,郑金贵,等. 茶叶科学,2003,23(1):16~20.[10] 杨梅,陈伟,等. 热带亚热带植物学报,2007,15(5):438~442[11] 梁文裕,陈伟,等. 热带亚热带植物学报,2005,13(3):229~232.[12] 秦新民,李惠敏,等. 广西植物,2004,24(6):566~569.[13] 丁坤善,郑彩霞,等. 植物学通报,2005,22(2):190~19.[14]孙庆,杨小玉,等. 中国实验诊断学,2006,10(7):730~732.[15]苏坚,贺修胜,等. 中国药理学通报,2006,22(5):583~587.[16]刘希成,田真,等. 现代生物医学进展,2007,7(3):325~355.[17]胡成效,戴勇,等. 广东医学,2008,29(1):86~89.[18]赵慧辉,王伟,等.北京中医药,2008,27(2):96~99.。