动物实验的基本技术操作方法
小鼠实验的基本技术和方法
小鼠实验的基本技术和方法小鼠实验是生物实验中常用的实验方法之一,主要用于研究生物学、药理学、毒理学等领域。
以下将介绍小鼠实验的基本技术和方法。
一、小鼠的选材与饲养1.小鼠的选材:选取体重相近、同龄、同性的小鼠作为实验对象,并确保其健康状态。
2.小鼠的饲养:小鼠应在洁净、无臭、适温的实验动物房进行饲养。
提供适宜的饲料和清洁的饮水,保持适定的饲养环境,有规律地进行日常护理,确保小鼠的健康和舒适。
二、小鼠实验的基本技术1.注射技术:常用的小鼠注射技术包括静脉注射、皮下注射、腹腔注射等。
操作时应注意选用适当的注射器和针头,避免伤害到小鼠的内脏和组织。
2.静脉采血技术:静脉采血是获取小鼠血液样本的一种常用技术。
通常采用静脉穿刺的方式,先选定采血部位,再使用适当的器具(如针管)进行采血。
3.取脏器技术:小鼠解剖和取脏器是许多实验研究的必要步骤。
这包括心脏、肺、肝脏、脾脏等器官的解剖和获取。
操作时应尽量避免伤害到脏器,确保获取到完整可用的样本。
4.外周血细胞计数:通过采集小鼠的血液样本,使用血细胞计数仪进行细胞计数。
这是评估小鼠免疫功能、全血红细胞计数和血红蛋白浓度的重要方法,有助于评估一些疾病或药物对血液系统的影响。
三、小鼠实验的常用方法1.急性毒性实验:通过给小鼠灌胃或注射一定量的物质来观察其毒性反应,包括死亡率、体重变化、行为异常等。
根据实验设计的需要,可以使用LD50(半数致死量)等指标来评估物质的毒性。
2.慢性毒性实验:将小鼠长期接触一定浓度的物质,观察其对小鼠生理和行为的长期影响。
常用的实验方法包括饮水或饮食添加剂量法、慢性面毒研究等。
3.细胞培养和移植:通过培养小鼠的细胞,观察其在体外的生长和变化。
可以进行细胞增殖、凋亡、分化等方面的研究。
此外,还可以将小鼠的细胞或组织移植到其他物种中,进行异种移植实验。
4.基因改良和基因敲除:通过基因工程技术,改变小鼠基因组的特定基因,观察其对小鼠生理和行为的影响。
动物实验基本操作技术
动物实验基本操作技术动物实验作为一种科学研究手段,常用于医学、生物学等领域的实验研究。
为了确保实验的可靠性和安全性,研究人员需要正确掌握基本的动物实验操作技术。
下面将介绍一些常用的动物实验基本操作技术。
首先,动物实验前,需要对动物进行适当的饲养管理,确保其健康状态。
这包括提供适宜的饲料和饮水,保持合适的环境温度和湿度,以及定期清洁和消毒动物饲养环境。
此外,研究人员还需对动物进行身体检查,以排除可能影响实验结果的健康问题。
其次,对于需要进行手术的实验,研究人员需要具备相关的手术技术。
例如,动物麻醉技术是必不可少的,可以采用静脉注射麻药、局部麻醉或气管插管麻醉等方法。
在动物手术过程中,需要准确切割皮肤或组织,处理血管、神经和器官,以及进行缝合和止血等操作。
因此,研究人员需要熟练掌握相关手术技术,确保手术过程的顺利进行。
此外,动物实验中还常使用动物注射技术。
注射技术包括口服给药、皮下注射、肌肉注射和静脉注射等。
研究人员需要准确计量给药剂量,选择合适的注射部位和注射器具,并注意注射速度和注射途径的选择。
在实验中,研究人员还需要掌握注射后的观察和记录技巧,及时发现和处理可能的不良反应。
另外,动物实验还涉及到采集和处理生物样本的技术。
例如,研究人员需要采集血液、组织或其他体液样本,以进行生化分析、细胞培养或组织学检查等。
采样时需要注意卫生与无菌操作,避免交叉污染。
采样后,研究人员需要合理保存和处理样本,以保证实验结果的可靠性。
此外,动物实验中的数据记录与分析也是十分重要的。
研究人员需要仔细记录实验过程的各种参数,包括实验开始时间、操作步骤、药物剂量、实验结果等。
此外,研究人员还需要进行数据分析,以得出科学合理的结论。
在数据分析过程中,研究人员可以使用统计学方法,如平均值、标准差、方差分析等。
最后,动物实验的伦理与法规也是非常重要的。
研究人员需要遵守相关的伦理规范和动物保护法律法规,保证动物实验的道德性和合法性。
动物实验常见操作技术
动物实验常见操作技术动物实验是科学研究中常用的一种手段,通过对动物进行操作和观察,来获取实验数据和研究结论。
以下是一些常见的动物实验操作技术:1.注射技术:注射是动物实验中最常用的操作技术之一、可以通过静脉注射、皮下注射、腹腔注射等方式给动物注射药物或其他试剂,观察其对动物的影响和反应。
2.毒性实验:毒性实验是对动物进行毒性评价的一种方法。
常见的操作包括给动物灌胃、皮肤涂抹、吸入等,观察其毒性反应和致死情况,推测对人类的毒性状况。
3.手术技术:手术技术在动物实验中广泛应用,常见的手术操作包括剖腹手术、心脏手术、脑部手术等。
通过手术操作,可以研究动物的生理机制、病理变化以及治疗方法。
4.组织培养技术:组织培养技术用于从动物体内提取组织样本,并在体外培养,观察和研究组织的生理特性和生长发育。
5.行为学测试技术:通过对动物进行不同的行为学实验,来研究动物的学习、记忆、行为模式等。
例如,迷宫学习实验、条件反射实验等。
6.电生理技术:电生理技术可以记录和分析动物的神经电信号。
常见的操作包括电极植入、电刺激、脑电图(EEG)记录等技术。
7. 遗传技术:通过遗传技术对动物进行基因改造,可以研究和验证特定基因的功能和效应。
CRISPR-Cas9、转基因技术等是常用的遗传技术。
9.统计和数据分析:动物实验中的数据分析是重要的一环,可以利用统计学方法对实验数据进行分析,得出结论并作出科学推断。
10.人道处理:在进行动物实验过程中,需要遵循伦理和动物保护的原则,确保动物的福利和权益。
对动物进行适当的麻醉、照护和安乐死是必要的人道处理技术。
总结来说,动物实验涉及到各种各样的操作技术,包括注射、手术、行为学测试、组织培养、遗传技术等。
这些技术旨在通过实验观察和数据分析,揭示生物学、医学等领域的科学问题,推进科学的发展和人类的福祉。
但同时,在进行动物实验时,还要充分考虑伦理和动物保护的原则,确保动物的福利和权益。
动物实验常见操作技术
动物实验常见操作技术动物实验是科学研究中常用的一种手段,通过对动物进行各种操作和处理,获得与人类相关的科学数据和知识。
以下是动物实验中常见的操作技术。
一、麻醉和镇痛技术动物实验中会应用麻醉药物使动物失去感觉和意识,以减少动物在实验过程中的痛苦和压力。
常用的麻醉技术包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。
镇痛技术用于减轻术后疼痛,常采用各种药物如阿片类和非甾体抗炎药等。
二、手术技术手术技术是动物实验中常见的一项操作技术,用于在动物体内插入仪器、移除组织样本、修复组织或器官的损伤等。
常见的手术技术包括卵巢切除术、肝脏切片术、心脏手术等。
三、体内采样技术体内采样技术是从动物体内获取生物样本的一种方法,用于分析动物的生理和生化指标。
常见的体内采样技术包括血液采样、尿液采样、肠道内容物采样等。
四、药物给药技术药物给药技术是将药物通过各种途径输入动物体内,以研究药物的药代动力学和药效学等。
常见的给药途径包括静脉注射、腹腔注射、皮下注射等。
五、环境控制技术环境控制技术用于控制实验动物的环境条件,以确保实验结果的准确性和可靠性。
常见的环境控制技术包括温度控制、湿度控制、光照控制等。
六、行为测定技术行为测定技术用于评估动物的行为特征和认知功能,常用于研究动物的学习记忆、情绪行为等。
常见的行为测定技术包括开放田间测试、旋转杆测定、挖洞测试等。
七、分子生物学技术分子生物学技术用于研究动物的基因表达、DNA/RNA的分离和测定等。
常用的分子生物学技术包括PCR技术、凝胶电泳技术、蛋白质电泳技术等。
八、影像学技术影像学技术用于研究动物的器官结构、功能和病理变化等。
常见的影像学技术包括X线摄影技术、CT扫描、MRI等。
九、细胞培养技术细胞培养技术用于研究动物的细胞生长、增殖和代谢等。
常用的细胞培养技术包括离心培养、悬浮培养、共培养等。
以上列举了动物实验中常见的操作技术,不同实验目的和研究领域需要选用不同的操作技术,以获得准确和可靠的实验结果。
动物实验的基本技术和方法
动物实验的基本技术和方法动物实验是科学研究中常用的一种手段,通过对动物进行实验,可以了解生物体的生理、病理、药理等信息,对人类疾病的预防和治疗起到重要作用。
下面将介绍动物实验的基本技术和方法。
1.动物选择:选择适合进行实验的动物是进行动物实验的首要任务。
常用的实验动物有小鼠、大鼠、兔子、猪、狗等。
根据研究目的的不同,可以选择不同品种、不同年龄、不同性别的动物进行实验。
2.动物养护:对于实验动物的养护是确保实验结果可靠的重要环节。
动物应在适宜的温度、湿度和光照条件下饲养,并提供适宜的饲料和水源。
为了防止交叉感染,需要实施严格的无菌操作和动物消毒。
3.动物注射:动物注射是常用的动物实验技术之一、通过针筒和注射器将药物或其他物质注射到动物体内,以研究其作用机制。
常见的注射方式有皮下注射、肌肉注射和静脉注射。
4.动物手术:动物手术是进行生理、病理研究的重要手段。
常见的动物手术包括造模手术、器官移植手术和腹腔镜手术等。
在进行动物手术时,需要注意术前麻醉、手术操作的细节和术后的护理。
5.动物观察:动物观察是动物实验中重要的实验方法之一、通过观察动物行为、体征和疾病发展等,了解其生理和病理状态。
动物观察可以采用直接观察和间接观察的方法,比如记录动物的活动情况、进食量、体重变化等。
6.动物取样和检测:在动物实验中,需要采集动物的组织、血液、尿液等样本进行检测。
常用的动物取样方式有穿刺、切片、摘取组织等。
取样后,可以进行生化分析、免疫表型分析等检测方法进行进一步研究。
7.数据统计和分析:对于动物实验的结果,需要进行数据统计和分析,以得出科学的结论。
常用的统计分析方法有t检验、方差分析、回归分析等。
通过数据的处理和分析,可以确定实验结果的可靠性和显著性。
8.动物伦理:在进行动物实验时,需要遵循动物伦理原则,确保动物的福利和权益。
包括动物的合理饲养和管理、注重动物的生理和心理健康、减少动物的痛苦和不适等。
同时,需要通过伦理审查机构的审批,确保实验符合伦理要求。
动物的基本操作方法
(二)豚鼠采血法
1、耳缘剪口采血 2、心脏采血 3、肌动脉采血 4、背中足静脉取血 (三)兔采血法 1、耳静脉采血 2、耳中央动脉采血 3、心脏取血 4、后肢胫部皮下静脉取血 5、股静脉、颈静脉取血
(四)狗、猫采血法 1、后肢外侧小隐静脉和前肢内侧下头静脉采血 2、股动脉采血 3、心脏采血 4、耳缘静脉采血 5、颈静脉
(一)皮下注射 (二)皮内注射 (三)肌肉注射 (四)腹腔注射 (五)静脉注射 (六)淋巴囊注射 (七)经口给药 (八)其它途径给药
如呼吸道给药、皮肤给药、脊髓腔内给药、小脑延 髓池给药、脑内给药、直肠内给药、关节腔内给药等。
六、实验动物的麻醉
(一)常用的麻醉剂 1、挥发性麻醉剂;2、非挥发性麻醉剂; 3、中药麻醉剂。
➢ 这种标记方法在实验室最常使用,也很方便。 ➢ 编号的原则:先左后右,从上到下。
(二)烙印法
➢ 用刺数钳在动物耳上刺上号码,然后用棉签蘸着溶在酒 精中的黑墨在刺号上加以涂抹,烙印前最好对烙印部位 预先用酒精消毒。
(三)号牌法
➢ 用金属制的牌号固定于实验动物的耳上,大动物可系于 颈上。
➢ 对猴、狗、猫等大动物有时可不做特别标记,只记录它 们的外表和毛色即可。
(二)动物的麻醉方法 1、全身麻醉 (1)吸入法;(2)腹腔和静脉给药麻醉法 2、局部麻醉 3、麻醉注意事项 (1)静脉注射必须缓慢 (2)麻醉时需注意保温
七、实验动物采血方法
(一)小鼠、大鼠采血法 1、割(剪)尾采血 2、鼠尾刺血法 3、眼眶静脉丛采血 4、断头取血 5、心脏采血 6、颈动静脉采血 7、腹主动脉采血 8、股动(静)脉采血
动物实验的基本操作方法
一、动物实验的常用方法
1、复制动物模型法;
2、切开、分离法;
动物实验基本操作
动物实验基本操作一、实验动物的抓取与固定。
(一)小鼠。
1. 抓取。
- 用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将其提起,放在鼠笼盖或其他粗糙表面上。
当小鼠向前挣扎时,用左手的拇指和食指迅速捏住小鼠两耳后颈背部皮肤,无名指和小指夹住小鼠尾巴根部,将小鼠固定成头部略向上的姿势。
- 原因:捏住尾巴提起小鼠可以避免小鼠咬伤操作人员,将其放在粗糙表面上是利用小鼠的本能反应(向前挣扎),便于后续准确抓取其颈背部皮肤。
而固定成头部略向上的姿势有利于进行诸如灌胃、注射等操作,并且能防止小鼠咬伤操作人员脸部等部位。
2. 固定。
- 如需进一步固定,可将小鼠放在特制的小鼠固定器内,将其身体和四肢固定好。
也可以将小鼠固定在泡沫板上,用大头针固定其四肢(这种方法常用于解剖实验)。
- 原因:使用固定器可以确保小鼠在实验过程中保持稳定,减少因挣扎而影响实验操作的准确性,同时也能保障操作人员的安全。
对于解剖实验,在泡沫板上用大头针固定四肢可以充分暴露小鼠的身体结构,便于进行精细的解剖操作。
(二)大鼠。
1. 抓取。
- 先用右手抓住大鼠尾巴中部,将大鼠提起,放在粗糙平面上。
然后用左手戴防护手套(大鼠体型较大且可能会激烈挣扎,容易咬伤操作人员),从大鼠背部绕到其胸前,拇指和食指捏住大鼠两耳后颈背部皮肤,其余手指握住大鼠身体,将其提起固定。
- 原因:与小鼠抓取类似,先抓住尾巴提起是为了初步控制大鼠,放在粗糙平面上利用其向前挣扎的本能便于后续抓取。
戴防护手套是因为大鼠的咬合力较强,为了防止操作人员受伤。
2. 固定。
- 可将大鼠放入大鼠固定器中固定。
对于需要进行手术等操作的大鼠,也可将其麻醉后固定在手术台上,用绑带固定其四肢。
- 原因:固定器和手术台固定都能保证大鼠在实验过程中保持稳定,使实验操作能够顺利进行,尤其是在进行需要精细操作的手术时,稳定的固定是确保手术成功的关键因素之一。
二、实验动物的给药操作。
(一)口服给药。
1. 灌胃法(以小鼠为例)- 准备好灌胃针(一般为特制的金属针具)和相应的药物溶液。
动物实验的基本操作方法
动物实验的基本操作方法动物实验是一种科学研究方法,用于研究动物的生理、病理、行为和药理等方面的问题。
在进行动物实验时,必须严格遵守相应的伦理和法律规定,并采取一系列操作措施保证动物的福利和安全。
下面将介绍一些动物实验的基本操作方法。
1.动物选材:选择合适的动物品种和个体,以确保实验结果的准确性和可重复性。
根据实验目的和动物特征,选择合适的动物模型,如小鼠、大鼠、家兔、猪等。
2.动物饲养:为动物提供适宜的饮食、住所和环境条件,确保动物的生理和行为需要得到满足。
饲养动物的场所需要保持清洁、干燥和温度适宜。
饲养员需要定期检查和维护饲养设施,确保良好的饲养条件。
3.动物标记:在实验开始前,通常需要为动物进行标记,以便对个体进行识别和追踪。
常见的标记方法包括使用耳标、颈环、脚环等。
标记方法应该选择无害和可靠的方式,以避免对动物造成不必要的伤害或不适。
4.麻醉和麻醉恢复:在一些实验操作中,需要给动物进行麻醉,以减轻或消除动物可能遭受的疼痛和不适。
麻醉方法应根据动物品种和体重选择合适的药物和剂量,并在麻醉过程中密切观察动物的麻醉深度和生命体征。
在实验结束后,需要给动物提供适当的护理和监测,以保证动物能够恢复到正常的生理状态。
5.动物取样:在一些实验中,需要从动物身体中取样,如血液、组织、尿液等,以进行后续的分析和检测。
在进行取样操作时,需要注意采用无菌操作技术,并控制好取样的时间和方法,以减少对动物的伤害和痛苦。
6.实验控制组:为了保证实验的可靠性和可重复性,通常需要设置实验对照组。
对照组和实验组之间应尽量保持一致的环境和操作条件。
同时,需要收集和记录相关的数据和信息,以便后续的数据分析和结论的推断。
7.实验设计和随机分组:在进行动物实验时,应采用合适的实验设计和统计分析方法,以尽量降低误差和偏差。
实验分组应进行随机分配,以保证所研究的因素对实验组和对照组的影响是均匀的。
8.数据分析和结果解释:在完成实验后,需要对实验数据进行统计分析和结果解释。
动物实验常用操作技术
动物实验常用操作技术动物实验常用操作技术是指在动物实验过程中常用的一些操作技术,用于进行动物实验的各项实验操作。
这些操作技术的选择和使用对于实验结果的准确性和可靠性有着重要的影响。
在动物实验中,常用的操作技术主要包括动物麻醉、注射、剖检、培养和观察等。
一、动物麻醉技术动物麻醉技术是在动物实验中常用的首要操作技术之一、麻醉技术的运用可以使实验动物保持在一定的安静状态下,减轻动物实验过程中的痛苦和压力,同时还可以提高实验的可靠性和准确性。
常用的动物麻醉技术主要有局部麻醉、全身麻醉和麻醉复苏等技术。
局部麻醉常用的方法有局麻药物的表面涂擦、注射、浸渍和包扎等方式;全身麻醉常用的方法有麻醉药物的口服、皮下、肌肉注射、静脉注射等方式;麻醉复苏技术包括将动物由麻醉状态逐渐恢复到清醒状态,并监测复苏过程中的生理指标。
二、动物注射技术动物注射技术是在动物实验中常用的操作技术之一、注射技术的运用可以向实验动物的体内引入药物、疫苗或其他试剂,观察其对动物的作用和效果。
常用的动物注射技术主要有皮下注射、肌肉注射、静脉注射和腹腔注射等。
皮下注射一般是将药物或试剂注射到动物的皮下组织中;肌肉注射是将药物或试剂注射到动物的肌肉组织中;静脉注射是将药物或试剂注射到动物的血管中;腹腔注射是将药物或试剂注射到动物的腹腔腔隙中。
三、动物剖检技术动物剖检技术是在动物实验中常用的操作技术之一、剖检技术的运用可以观察动物内部器官的结构和病变,对实验结果的解释和分析起到关键的作用。
常用的动物剖检技术主要包括尸体解剖和活体解剖两种。
尸体解剖是在动物死亡后对尸体进行的解剖,以观察其内部器官的结构和异常情况;活体解剖是在动物存活的情况下进行的解剖,以观察其内部器官的运动和功能情况。
四、动物培养技术动物培养技术是在动物实验中常用的操作技术之一、培养技术的运用可以在体外条件下维持动物细胞和组织的生长和繁殖,为研究动物细胞和组织的生物学特性提供便利。
常用的动物培养技术主要有细胞培养和组织培养两种。
动物实验基本操作技术
d.颈静脉
狗、猫、兔
e.心脏
豚鼠、大鼠、小鼠
f.断头
大鼠、小鼠
g.翼下静脉
鸡、鸭、鸽、鹅
h.颈动脉
鸡、鸭、鸽、鹅
第44页/共85页
部 位
动物种类
a.股动脉、颈动脉
狗、猴、猫、兔
b.心脏
狗、猴、猫、兔
c.颈静脉
马、牛、山羊、绵羊
d.摘眼球
大鼠、小鼠
第45页/共85页
第34页/共85页
第六节 常规采血方法
第35页/共85页
第36页/共85页
第37页/共85页
第38页/共85页
第39页方法的选择,决定于实验目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。而研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱,需要比较动、静脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及 K+、Na+、Cl-离子浓度,必须采取动脉血液。
a.尾静脉
大鼠、小鼠
b.耳静脉
兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
c.眼底静脉丛
兔、大鼠、小鼠
d.舌下静脉
兔
e.腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f.冠、脚蹼皮下静脉
鸡、鸭、鹅
第43页/共85页
部 位
动物种类
a.后肢外侧皮下小隐静脉
狗、猴、猫
b.前肢内侧皮下头静脉
狗、猴、猫
c.耳中央动脉
体重/g
150~210 170~240 210~270 240~320
第18页/共85页
动物实验技术动物实验的基本操作
动物实验技术动物实验的基本操作动物实验是科研和医学领域常用的手段,用于评估新药、疫苗、治疗方法和理解生物学机制等。
但是,动物实验是具有伦理争议的,因为涉及到动物权益和福利。
因此,在进行动物实验时,需要遵循一定的伦理原则和严格的实验操作。
以下是动物实验的基本操作:1.实验动物的选择:在选择实验动物时,需要根据研究目的和方法来选择适合的动物模型。
常用的实验动物包括小鼠、大鼠、兔子、狗等。
2.动物的饲养和管理:实验动物需要提供适宜的饲养环境,包括合适的温度、湿度和气流等,并提供适宜的饮食和水源。
此外,实验动物还需要定期检查其健康状态,并按照相关规定进行处理。
3.实验操作的准备:在进行动物实验前,需要准备好实验所需的器械、药物和试剂等。
此外,还需要制定详细的实验方案,确定实验的具体步骤和时间,以确保实验的可重复性和准确性。
4.麻醉和镇痛:在进行动物实验时,有时需要对实验动物进行麻醉或镇痛,以减轻它们的痛苦和压力。
这需要根据具体的实验操作来选择合适的麻醉和镇痛方法。
5.试验操作:根据实验目的和方法,进行相应的操作,如采集血液、组织和器官,注射药物,进行手术,观察行为等。
在进行试验操作时,需要注意操作的准确性和规范性,以保证实验结果的可靠性。
6.数据记录与分析:在进行动物实验时,需要对所得到的结果进行准确的记录,并进行数据的分析和统计。
这将有助于研究者对实验结果进行解读和理解,并做出相应的结论。
7.实验结束和动物处理:在实验完成后,需要根据相关规定对实验动物进行处理。
对于无疾病和伤残的动物,可以选择放归或继续饲养。
对于疾病严重或造成较大伤害的动物,可以选择安乐死或处理。
总而言之,动物实验是一项复杂的科研工作,需要研究者具备较高的科学素养和操作技能。
在进行动物实验时,需要始终将动物福利放在首位,并遵循严格的伦理和法规要求,以确保实验的科学性和可靠性。
动物实验基本技术和方法
动物实验基本技术和方法
细胞培养与分离
细胞培养技术是实验室中使用最广泛的技术之一,在分子生物学领域中,它是可以在实验室环境控制的条件下培养活细胞的技术。
它是将细胞
及其产物从原始组织中分离出来,使细胞生长、增殖、繁殖,明确细胞形态、核型和功能结构.
细胞培养的基本技术包括:
1.细胞收集技术:通常是用生化组织学技术,以腹腔注射、血液抽取、经鼻粘膜术等从动物身体中取得细胞,在此过程中要避免注射液等外界刺
激引起的炎症反应带来的细胞损伤。
2.细胞的解剖分离:利用生化操作,如断裂、打散等,获得单细胞或
少量细胞的集合。
3.细胞培养和培养条件:细胞培养采用两种培养方式,即细胞培养皿
和玻片培养,一般就细胞培养瓶选用50mlPA金属瓶,玻片培养的固有形
态较好,容易观察到细胞的形态、核型、细胞器以及胞质的结构。
在培养
液中添加一定量的葡萄糖、酮类、低聚糖以及多种微量元素等,另外,还
要控制培养瓶或玻片中使用的氧气浓度,使培养条件趋于理想。
4.细胞实验的操作:此部分包括一些相关技术,如PH信号检测、染
色检测、血清学检测、冷冻封存及免疫检测等。
动物实验的基本操作技术实验报告
动物实验的基本操作技术实验报告一、实验目的动物实验是生物医学研究中不可或缺的一部分,通过本次实验,旨在掌握动物实验中常见的基本操作技术,包括动物的抓取、固定、麻醉、给药、采血、处死等,为后续的科研工作打下坚实的基础。
二、实验材料1、实验动物:小白鼠若干只2、实验器材:鼠笼、手套、镊子、注射器、酒精棉球、手术剪、止血钳、麻醉剂等3、实验药品:生理盐水、阿托品等三、实验方法与步骤(一)动物的抓取与固定1、小白鼠的抓取戴上手套,用右手轻轻抓住鼠尾,将其提起,置于鼠笼盖上。
待小白鼠向前爬行时,迅速用左手拇指和食指捏住其两耳及颈部皮肤,将其提起。
2、小白鼠的固定可采用仰卧位固定,将小白鼠仰卧在固定板上,用大头针或橡皮筋穿过其四肢的掌蹠部,固定在板上。
也可采用俯卧位固定,将小白鼠俯卧在固定板上,用大头针或橡皮筋穿过其四肢的掌蹠部,固定在板上。
(二)动物的麻醉1、腹腔注射麻醉抓取固定好小白鼠后,用酒精棉球消毒其腹部皮肤。
以 45 度角将注射器针头刺入小白鼠的腹腔,缓慢注入麻醉剂,注意观察小白鼠的反应,直至其进入麻醉状态。
2、吸入麻醉将小白鼠放入含有麻醉剂的密闭容器中,观察其呼吸和反应,待其麻醉后取出。
(三)动物的给药1、腹腔注射给药按照上述麻醉时的腹腔注射方法,将药物缓慢注入小白鼠的腹腔。
2、灌胃给药用特制的灌胃针,从小白鼠的口角插入,沿咽后壁缓慢插入胃内,注入药物。
(四)动物的采血1、眼眶后静脉丛采血抓取固定好小白鼠,使其头部向上。
用左手拇指和食指抓住其颈部皮肤,使眼球突出。
用毛细吸管从内眦部刺入眼眶后静脉丛,吸取血液。
2、尾尖采血用酒精棉球消毒小白鼠的尾尖。
用手术剪剪去尾尖 2-3mm,让血液自然流出,用吸管吸取。
(五)动物的处死1、颈椎脱臼法抓取固定好小白鼠,用左手拇指和食指捏住其头部,右手拉住鼠尾用力向后上方拉,使颈椎脱位,导致脊髓横断而死亡。
2、过量麻醉法给小白鼠注射过量的麻醉剂,使其呼吸心跳停止而死亡。
动物实验的基本技术操作方法
动物实验的基本技术操作方法动物实验是一种科学研究的重要手段,也是科学发展和医学进步的必要步骤之一、在进行动物实验时,研究人员需要掌握一系列基本的技术操作方法。
下面将介绍几种常见的动物实验技术操作方法。
1.动物麻醉操作:动物麻醉是进行动物实验的前提条件,可以减少动物的痛苦和压力,保证实验结果的可靠性。
常用的麻醉方法包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。
研究人员需要掌握药物的剂量、给药途径和监测动物麻醉深度的方法。
2.动物手术技术:在进行一些复杂的实验时,需要进行动物手术操作。
手术技术操作包括皮肤消毒、手术切口、血管或器官的外露和缝合等。
研究人员需要掌握无菌操作的技巧和手术操作的规范,以确保手术的成功和动物的生存率。
3.器械使用和数据记录:在动物实验中,研究人员需要掌握各种生物学实验仪器的使用方法,如离心机、显微镜、血液分析仪等。
同时,需要准确记录实验过程中的数据,包括动物身体指标、实验参数和操作步骤等。
4.体内注射技术:动物实验中常用的一项技术是体内注射,包括静脉注射、皮下注射和腹腔注射等。
研究人员需要掌握注射针头的选择、皮肤局部麻醉的方法和注射位置的确定等。
5.血液采集技术:在一些实验中需要进行动物的血液采集,以获取血液样本进行化验或分析。
血液采集技术包括尾脉、静脉和心脏穿刺等。
研究人员需要掌握相应的采血器具的使用方法,以及合理的采血量和采血速度。
6.器官取材和组织处理技术:在一些器官相关的实验中,需要对动物进行器官取材和组织处理。
器官取材技术包括猝死动物器官取材和活体器官取材。
组织处理技术包括固定处理、包埋和切片等。
研究人员需要掌握无菌操作技术和组织处理的标准流程,以获得有效的实验结果。
7.动物分组和饲养技术:在进行动物实验前,需要对动物进行分组和饲养。
分组技术包括随机分组和对照组的设计等。
饲养技术包括提供适宜的饲料和水源、维持良好的生活环境等。
研究人员需要了解动物的生理特点和各种实验动物的饲养要求,以保证动物的健康状态和实验的可靠性。
实验动物基本操作
2、固定板固定:方法与小鼠固定板固定相同, 只是需选择更大一些的固定板。
3、固定器(盒)固定:方法与小鼠固定器(盒) 固定相同,只是固定器较小鼠的大。同样适用 于大鼠尾静脉注射。
• 动物实验时,当使用的动物数或实验分组数大于1 时,需要对动物个体间或组间区别开来,就需进 行编号与标记。因此编号与标记的目的就是动物 个体与组别的识别。
• 标记的方法很多,良好的标记方法应满足:号码 清楚、持久、简便易认和适用,不影响实验结果 ,对动物的刺激小,标记物对动物无毒性。编号 方法无定法,原则是使实验者能够识别动物个体 和组别。
兔子固定板固定
五、实验犬
(一)抓取 对未经驯服和调教的外购犬抓取时,可用特制的 长柄铁钳夹住犬的颈部,由另一人用布带或粗绳 缚其嘴,并将布带、绳固定在狗耳后颈部,防止 脱落 。
(二)固定
实验台固定:用特制的长柄铁钳夹住犬的颈 部后,麻醉动物。将麻醉的犬放在实验台上, 再用粗棉带(绳)固定四肢于实验台上。并将 犬舌拉出。此固定方法仰卧位适用于口腔、颈、 胸、腹、四肢等部位的实验,俯卧位适用于脑、 背部位的实验。
(二)固定
1、徒手固定:用一只手抓住兔的颈背部皮肤,另 一只手抓住兔的两后肢,固定在实验台上。
也可以坐在椅子上用一手抓住兔颈背皮肤和两耳, 大腿挟住兔的后半身,用另一只手抓住两前肢将 兔固定。此固定方法适用于腹腔、肌肉注射,及 经口给药。
2、固定盒固定 :此固定方法适用于头、耳部位实 验。
3、固定板(台)固定:此固定方法可使兔俯卧、 仰卧或侧卧固定,适宜于兔头、颈、躯干手术 及其它实验操作。
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一、动物实验的常用方法
近年来由于电子显微技术的进展,不仅可以 观察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结构的 变化,而且也可以运用电子扫描方法对动物 器官的微小结构进行完整的表层观察。
一、动物实验的常用方法
9.免疫学观察法 注入抗原使动物致敏,制备各种抗血清, 如常选用新西兰或大白耳家兔制备病原体 免疫血清、间接免疫血清、抗补体抗体血 清、抗组织免疫血清等。采用免疫荧光技 术、酶标记免疫技术、放射免疫测定技术、 免疫电镜技术等对动物免疫后各种免疫变 化进行检查。
五、实验动物被毛的去除方法
使用以上各种脱毛剂,都应事先剪短被 毛,以节省脱毛剂,并减少对皮肤的刺 激反应,应用时用棉球蘸脱毛剂,在所 需局部涂一薄层,2-3分钟后,用温水洗 去脱落的被毛,以纱布擦干局部,涂一 层油脂即可。
六、实验动物给药途径和方法
给药的途径和方法是多种多样的, 可根据实验目的、实验动物种类和 药物剂型等情况确定。
一、动物实验的常用方法
7.生物电、活性观察法 对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观 察记录,如心电、肌电、脑电等;对动物组 织中各种活动物质用生物化学法测定,如各 种酶,激素等。
一、动物实验的常用方法
8.病理解剖学、组织学观察法 采用肉眼观察、光镜和电镜检查,来观察、 分析动物各种疾病时病理组织学改变。可 从组织学的角度来探讨疾病防治机理,例 如通过阑尾组织切片和肉眼观察,分析口 服中药、针刺或局部敷药对有炎症阑尾的 影响,阐明不同证型时阑尾变化的病理学 特点以及某些病人用中西医结合非手术治 疗后复发的原因。
小鼠的灌胃给药
几种动物不同给药途径的常用注射量(毫升) 几种动物不同给药途径的常用注射量(毫升)
注射途径 腹 肌 静 皮 腔 肉 脉 下 小鼠 0.2-1.0 0.1-0.2 0.2-0.5 0.1-0.5 大鼠 1-3 0.2-0.5 1-2 0.5-1.0 豚鼠 2-5 0.2-0.5 1-5 0.5-2 兔 5-10 0.5-1.0 3-10 1-3 狗 5-15 2-5 5-15 3-10
颜 色 被 毛 涂 擦 标 记 法
三、实验动物编号标记方法
(二)烙印法 用刺数钳在动物耳上刺上号码,然后用 棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在刺号上加 以涂抹,烙印前最好对烙印部位预先用 酒精消毒。
三、实验动物编号标记方法
(三)号牌法 用金属制的牌号固定于实验动物的耳上, 大动物可系于颈上。 对猴、狗、猫等大动物有时可不做特别 标记,只记录它们的外表和毛色即可。
一、动物实验的常用方法
10.其它方法 如联体动物法,条件反射法、生物遗传 法、放射生物法、药物化学法等等。 动物实验的基本操作技术方法,根据实 验顺序分述如下:
二、实验动物的抓取固定方法
正确的抓取固定动物,是为了不损害动 物健康,不影响观察指标,并防止被动 物咬伤,保证实验顺利进行。抓取固定 动物的方法依实验内容和动物类而定。
一、动物实验的常用方法
这类研究方法的优点在于被研究的对象,其 机体内外环境已处于较自然的相对平衡状态, 条件比较稳定,所得的结果接近生理情况。 但需要事先制备,术后护理,等动物恢复健 康后才能从事实验,花费时间较长,工作量 较大,因而在选用上受到一定限制。除了用 手术制备的动物实验外,运用药物或食铒等 措施制备病理模型,如诱发各种实验性动物 疾病模型的方法也可归为慢性动物实验。
生理学的动物实验方法 病理生理学的动物实验方法 药理学的动物实验方法 病理解剖、组织学动物实验方法 微生物、免疫学的动物实验方法
动物实验 (按不同 学科分)
下面举一些动物实验的常用方法:
一、动物实验的常用方法
1.复制动物模型法 此法是动物实验最基本的方法,是采用 人工的方法使动物在一定致病因素(机 械、化学、生物和物理)作用下,造成 动物的组织,器官或全身的一定损伤, 复制成与人类疾病相似的动物疾病模型, 来研究各种疾病的发生、发展规律及防 治方法。
经过这样调整,两组小鼠的分配如下:
A组 B组 3 1 5 2 6 4 8 12 11 7 13 9 14 10
பைடு நூலகம்
五、实验动物被毛的去除方法
动物的被毛常能影响实验操作和结果的 观察,因此实验中常需去除或剪短动物 的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和脱 毛三种。 剪毛 固定动物后,用粗剪刀剪去所需部位的被 毛。剪毛时需注意以下几点:
动 物 编 号 随 机 数 目 归 组
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
16
22
77
94
39
49
54
43
54
82
17
37
93
23
B
B
A
B
A
A
B
A
B
B
A
A
A
A
四、实验动物的随机分组方法
结果列入A组的动物有8只,列入B组的动物 有6只。如要使两组相等,须将A组减少一只, 划入B组。应把哪一只小鼠划入B组,仍可用 随机数字表,在上述抄录的14个数后面再抄 录一个数字为78,此数以8除之,因为归入A 组的小鼠有8只,故以8除,得余数6。于是把 第6个A(即编写为第12号的小鼠)划给B组。
第四章 动物实验的基本 技术和操作方法
南开大学医学院 张京玲
主要内容
动物实验基本技术和操作方法 一、动物实验的常用方法 二、实验动物的抓取固定方法 三、实验动物编号标记方法 四、实验动物的随机分组方法 五、实验动物被毛的去除方法
主要内容
六、实验动物给药途径和方法 七、实验动物用药量的确定及计算方 法 八、实验动物的麻醉 九、实验动物采血方法 十、急性动物实验中常用的手术方法 十一、实验动物的急救措施 十二、实验动物的处死方法
五、实验动物被毛的去除方法
⑴把剪刀贴紧皮肤剪,不可用手提起被毛, 以免剪破皮肤; ⑵ 依次剪毛,不要乱剪; ⑶ 剪下的毛集中放在一个容器内,勿遗留 在手术野和兔台周围,以保证手术野 的清洁和防止注射器等夹毛。
五、实验动物被毛的去除方法
拔毛:兔耳缘静脉注射或取血时以及给 大、小白鼠作尾静脉注射时,需 用拇指、食指将局部被毛拔去, 以利操作。 脱毛:脱毛系指用化学药品脱去动物的 被毛,适用于无菌手术野的准备 以及观察动物局部皮肤血液循环 和病理变化。
二、实验动物的抓取固定方法
(一)小鼠抓取固定方法 (二)大鼠的抓取固定方法 (三)蛙类的抓取固定方法 (四)豚鼠的抓取固定方法 (五)兔的抓取固定方法 (六)狗的抓取固定方法 可见实验录像中相关内容。
三、实验动物编号标记方法
动物在实验前常常需要作适当的分组, 那么就要将其标记,使各组加以区别。 标记的方法很多,良好的标记方法应满 足标号清晰、耐久、简便、适用的要求。 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、 号牌等方法。
一、动物实验的常用方法
5.瘘管法 用无菌手术方法给动物造成不同的人造瘘管 如胃肠道瘘管、膀胱瘘管、唾液腺瘘管、食 道瘘管、胆囊瘘管等。这些瘘管可以收集内 脏液体,是生理学消化研究的主要方法。此 种方法是慢性动物实验所常用的方法。慢性 动物实验一般是先在无菌操作下制备好实验 模型(瘘管法是其中一种),待动物恢复健 康后进行研究。
一、动物实验的常用方法
无损伤整体实验 整体实验 有损伤整体实验 动物实验 亚细胞实验 ( (按机体水 离体实验 细胞实验 平不同分) 组织实验 器官实验 急性实验(2天以内) 动物实验 亚急性实验(1~4周) (按实验时 慢性实验(2~6个月或更长时间 间长短分) 甚至整个生命期)
一、动物实验的常用方法
一、动物实验的常用方法
3.切除和注入提取液法 常用于研究内分泌器官的生理和病理病 变,如研究切除某一腺体后看辐射对机 体的影响,切除某一腺体后看出现什么 症状而推论这种腺体的功能;如蝌蚪无 甲状腺素,如注入甲状腺素,蝌蚪很快 变成了蛙。
一、动物实验的常用方法
4.离体组织器官法 它是利用动物的离体组织、器官或生物 性致病因子(微生物、寄生虫等),置 于一定的存活条件下(如温度、营养成 分、氧气、水、pH等)进行观察的一种 实验方法。
四、实验动物的随机分组方法
动物实验时,常常需要将选择好的实 验动物,按研究需要分成若干个组, 分组时为了避免人为的因素影响,常 应用随机数字表进行完全随机化的分 组。
四、实验动物的随机分组方法
将实验单位随机分成两组 设有小鼠14只,试用随机数字表将其分 成两组。先将小鼠依次编为1、2、 3……14号,然后任意从随机数字表的 某一行某一数字开始抄录14个数,编排 如下(见下表),现令单数代表A组, 双数代表B组。
五、实验动物被毛的去除方法
常用脱毛剂的配方: ⑴ 硫化钠3g、肥皂粉1g,淀粉7g,加水适量调成糊 状。 ⑵ 硫化钠8g、淀粉7g、糖4g、甘油5g、硼砂1g, 加水75ml。 ⑶ 硫化钠8g,溶于100ml水中。 以上脱毛剂配方适用于家兔、大白鼠、小白鼠等小 动物的脱毛。 ⑷硫化钠10g、生石灰15g,溶于100ml水内,此配 方适用于狗等大动物的脱毛。
一、动物实验的常用方法
动物实验方法是多种多样的,在医学 的各个领域内都有其不同的应用,其 中一些基本方法都是共同性的,如动 物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、 给药、采血、采尿、急救、处死、尸 检等,不管是从事何种课题的医学研 究都要用这套基本方法,因此,动物 实验基本方法,已成为医学科技工作 者必须掌握的一项基本功。
六、实验动物给药途径和方法
(一)皮下注射 (二)皮内注射 可见皮肤表面鼓起一小皮丘。 (三)肌肉注射 (四)腹腔注射 (五)静脉注射 (六)淋巴囊注射
皮下注射
腹腔注射
静脉注射
六、实验动物给药途径和方法
(七)经口给药 (八)其它途径给药
1.呼吸道给药 3.脊髓腔内给药 5.脑内给药 7.关节腔内给药 2.皮肤给药 4.小脑延髓池给药 6.直肠内给药