酶化学法测定糖化血红蛋白性能的验证

酶化学法测定糖化血红蛋白性能的验证

肖弘;王敏;李小盛

【摘要】目的对酶化学法测定糖化血红蛋白进行方法学性能的验证.方法参考美国国家临床实验室标准化委员会系列文件和相关文献,结合工作实际对酶化学法测定糖化血红蛋白进行精密度、准确度的分析测量范围和生物参考区间等进行评价,并将实验结果与厂家提供的分析性能或公认的质量指标进行比较.结果批内变异系数(CV) 0.87%～1.29%,批间CV 1.74%～2.12%;在3.0%～16.0%范围内线性良好Y=1.010X-0.004,r=0.999 7,平均回收率101.37%;该方法与TOSOH G7离子交换高效液相层析法二组比较差异无统计学意义(Y=0.962 2X+0.045,r=0.994

0,P>0.05);分析测量范围(AMR)验证和生物参考区间验证结果均符合质量要求.结论酶化学法测定糖化血红蛋白主要分析性能符合质量目标要求,适合临床检验科应用.【期刊名称】《检验医学与临床》

【年(卷),期】2011(008)012

【总页数】3页(P1450-1451,1454)

【关键词】糖化血红蛋白;酶化学法;性能验证

【作者】肖弘;王敏;李小盛

【作者单位】上海市长宁区天山中医医院检验科,200051;上海市长宁区天山中医医院检验科,200051;上海市长宁区天山中医医院检验科,200051

【正文语种】中文

糖化血红蛋白(HbA1c)的化学结构通常为具有一个特定六肽的血红蛋白分子，是葡萄糖和血红蛋白β链N末端缬氨酸(Val)(βN-1-去氧果糖基血红蛋白)的一个稳定加和物[1]。在人体内，葡萄糖和血红蛋白β链N末端Val氨基之间进行非酶促反应，先形成不稳定的希夫碱，然后缓慢地重排，形成稳定、不可逆的氨基酮，其合成过程缓慢且不可逆，不受血糖浓度暂时波动的影响，可反映测定前4～8周血糖的平均水平。HbA1c作为糖尿病筛选、诊断、血糖控制、疗效考核的有效监测指标，在临床中得到了广泛使用，2002年美国糖尿病协会已将其作为监测糖尿病血糖控制的金标准[2]，故对糖尿病诊断有特殊诊断意义。本文依据美国国家临床实验室标准化委员会(NCCLS)标准化文件对酶化学法测定糖化血红蛋白进行精密度、准确度、分析测量范围和生物参考区间等性能进行验证和评价，并将实验结果与厂家提供的分析性能或引用专业文献的相关方法学分析性能予以证实[3]。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 仪器罗氏公司MODULAR-P全自动生化分析仪。日本TOSOH G7离子交换高效液相层析法(IE-HPLC)。

1.1.2 试剂酶化学法试剂由日本积水医疗株式会社提供，试剂盒的组成包括前处理液、液体型双试剂:试剂R1 N-(羧甲基氨羰基)-4，4′-二甲氨基、二苯胺化钠，试剂R2过氧化物酶、果糖基氨基酸氧化酶。前处理液批号011RCF，试剂R1批号010RAF，试剂R2批号009RAF。IE-HPLC法试剂采用仪器配套试剂。试剂1批号E7-111M，试剂2批号 E7-201N，试剂3批号7-305M，试剂4批号HW-03M。

1.1.3 标本来源测定标本来均源于本院门诊、住院患者及体检中心送检标本，均为空腹采血2 mL，乙二胺四乙酸二钾(EDTA-K2)抗凝。验证人群纳入标准:均为健康

体检者，年龄24～77岁。经B超、心电图、临床各项检查及血糖、肝肾等检验排除肝病、肾病、冠心病、高血压、肿瘤、糖尿病等病史和疾病。

1.2 方法

1.2.1 实验方法

1.2.1.1 酶化学法原理在蛋白酶的作用下，切断源于血红蛋白A1c的β链N末端

的糖化甘氨酰谷氨酰胺，同时通过测定600 nm与800 nm的吸光度差，求出血

红蛋白(Hb)的浓度。第2反应中，果糖基氨基酸氧化酶(FPOX)作用于糖化甘氨酰

谷氨酰胺，在过氧化物酶的存在下，生成的过氧化氢与N-(羧甲基氨羰基)-4，4′-

二甲氨基二苯胺化钠(显色剂)产生显色反应。通过测定此吸光度求出HbA1c的浓度。用先添加500 μ L的HbA1c前处理液于试管中然后离心分离标本(2 000

rpm/min 5 min)进行标本的前处理，从血球层采取25 μ L加入前处理液中混合后，用前处理标本在罗氏公司MODULAR-P全自动生化分析仪上进行测定。

1.2.1.2 IE-HPLC原理应用TSK凝胶G7His柱，根据树脂表面阳离子交换基团和

血红蛋白成分之间的离子反应不相同的原理，分离出HbA1c成分。

1.2.2 验证方法

1.2.2.1 精密度验证参照NCCLS EP5-A2文件[4]，取高、低2个不同浓度的

HbA1c血标本，经前处理后标本同1 d内进行20次检测计算批内精密度。同样

取这2个标本经前处理后，分装-18℃保存，每天取出置室温自然融化，温和混匀后，上下午各测1次，连续检测20 d计算批间精密度。

1.2.2.2 干扰试验验证参照NCCLS EP7-A2文件[5]，采用Sysmex A-PLUS干扰

试剂盒，将溶解后标本(干扰物质含胆红素、溶血素、脂肪乳的浓缩液)1.0 mL和EDTA-K2抗凝血9.0 mL混合制成标本A，溶解后的标本(空白)1.0 mL和EDTAK2抗凝血9.0 mL混合制成标本B，标本A和标本B按以下表格配制稀释系列，然后对每管进行测定，见表1。

表1 干扰物配制稀释系列注:-表示无数据。对照 1/10 2/10 3/10 4/10 5/10 6/10 7/10 8/10 9/10 1样本A - 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1.0样本B 1.0 0.9

0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 -

1.2.2.3 准确度验证参照NCCLS EP9-A2文件[6]，使用该方法与通过美国NGSP

认证产品TOSOH G7 IE-HPLC法进行方法学比较，每天取8例标本，分别用2种方法按顺序1→8进行标本测定，再按相反顺序8→1重复测定，测定5 d，共40例标本(标本浓度3.0%～16.0%)，作相关分析。

1.2.2.4 回收实验验证取1例新鲜血液标本，经前处理液溶血后，分4例，每例500 μ L，其中1例加入50 μ L蒸馏水，另外3例分别加入等量的高、中、低3

个浓度的试剂配套标准品。记录平均回收率。

1.2.2.5 分析测量范围(AM R)验证参照NCCLS EP6-A2文件[7]，取测量范围内低高(H)、(L)2个浓度标本，经前处理后按10L、8L+2H、7L+3H、4L+6H、

5L+5H、4H+6L、3H+ 7L、2H+8L、10H比例混合后，得到9个不同浓度的预

期值标本，随机排列分别连续测定4次，记录结果，将预期值和实测值进行比较。

1.2.2.6 生物参考区间验证参考NCCLS C28-A2文件[8]，选择60例经健康体检

无系统疾病参考标本，统计各参考个体检测值，与生产厂方说明书提供的参考区间比较。

1.3 统计学方法采用Microsoft Excel 2000软件和SPSS 11.5统计软件进行数据统计分析。浓度用±s表示、显著性检验用成组t检验。

2 结果

2.1 精密度验证结果按照2010年上海市临床检验中心临床化学质量控制允许偏倚范围，糖化血红蛋白的允许误差限值为T±15%，现该种方法批内CV(%)均小于

1/4允许误差限值(3.75%)、批间CV(%)均小于1/3允许误差限值(5.00%)，均符

合要求[9]。结果见表2。