生物发酵饲料企业标准
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
备案号:
江西高安生物饲料科技有限公司企业标准
生物发酵饲料
发布实施
江西高安生物科技饲料有限公司发布
前言
本标准由江西高安生物科技饲料有限公司提出并起草。本标准主要起草人:钟启平、杨林海。
生物发酵饲料
1范围
本标准规定了生物发酵饲料的技术要求、试验方法、检测规则及标志,包装,运输和储存。
本标准适用于以玉米粉、豆粕粉、麦麸、米糠为主要原料,配合而成发酵配料,再加微生物发酵剂菌种,加水,密封,发酵而成的生物发酵饲料。
2 规范性引用文件
下列文件中的条款,通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件其随后所有的修改(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准。然而,鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准。
GB/T190-2000 包装储运图示标志
GB6435 饲料水分的测定方法
GB13078 饲料卫生标准
GB15699-1-93 饲料采样标准方法
GB 10648 饲料标志规定
GB/T20191-2006 饲料中嗜酸乳杆菌的微生物学检验
3 要求
3.1 原料
本品所使用的原料应当符合国家饲料卫生标准。
3.2 感官指标
浅黄色,湿润,无发霉,无异物,有一定酸香味和醇香味。
3.3 理化指标
3.3.1 水分≤45%
3.3.2 理化指标
乳酸含量≥3亿/克
3.4 卫生指标
按GB13078饲料卫生标准规定执行。
3.5 对激素和添加的规定
饲料中不得添加国家尚未批准在配合饲料中使用的激素、药物和添加剂。
4 试验方法
4.1 感觉指标
采用感官评定。
4.2 水份
按GB6435-1986规定执行。
4.3 乳酸菌活菌计数检验方法
4.3.1 设备和仪器
电子天平:感量0.01克;
震荡器:往复式;
恒温培养箱:33℃±1℃;
冰箱:1~5℃;
高压灭菌锅:0~3Mpa;
电炉:可调式
灭菌移液管:1ml 10ml 25ml;
恒温水浴锅;
灭菌三角瓶:100ml 250ml 500ml;
灭菌玻璃珠:直径5mm;
灭菌试管:16×160mm;
灭菌培养皿:直径90mm;
酒精灯;
显微镜:400~1000倍以上;
4.3.2 测定步骤
4.3.2.1 检验程序
采样→稀释并振荡分散→配制成几个适当倍数的稀释液→选择2个适当稀释度,取1毫升加入灭菌培养皿中→每个培养皿中倾注15毫升左右前述52℃的呈溶解状态的培养基→在33℃温度下培养48小时→菌落计数和鉴定→形成报告。
4.3.2.2 采样
取整袋包装,散料进行采样时,必须特别注意样品的代表性和避免采样的污染。首先准备好灭菌容器和采样工具,严格按GB/T 14699.1规定进行采样;采样后应尽快进行检验,否则将样品放在低温干燥处保存。
4.3.2.3 稀释并振荡分散,制成悬浮液
精确称取1克样品(精确到0.0002克),转入99ml的无菌生理盐水和10颗玻璃珠的250ml无菌三角瓶中,摇动三角瓶(或放于振荡器上),摇动30~40分钟,转速200r/min,使样品充分溶解和分散,从而制成100倍的稀释悬浮液。
4.3.2.4 稀释并配制成几个适当倍数的稀释液,进行培养。
使用无菌移液管吸取上述的100倍稀释悬浮液1ml,加入装有99ml无菌生理盐水的无菌三角瓶中(注意吸管尖端不要触及瓶内稀释液),振荡摇匀,即一次操作稀释了100倍,配制成10000倍稀释液。
再按上述的操作再把上述的10000倍稀释液进行稀释,重复上述操作,直至样品溶液稀释到1×10-8倍备用,即1亿倍,稀释到这个倍数,是一共操作了3次的结果,注意每一次操作必须使用无菌吸管,吸管不可以重复使用。
再取上述稀释了1亿倍的稀释液50毫升,加入装有50毫升无菌生理盐水的无菌三角瓶中,振荡摇匀,即稀释到2亿倍。
4.3.2.5 制作培养平板
准确吸取上述稀释了2亿倍的稀释液1ml,移入90mm无菌培养皿中,并及时将水浴锅52℃保温备用的培养基15ml注入培养皿中(注意倾注前摇晃一次),盖上盖子,并转动平皿使之混合均匀,等其凝固后再移入培养箱中培养,共作3个重复,以上操作,从稀释试样到倾注培养基到培养皿,操作过程不超过20min。
同时,选择1亿倍的稀释液,也做上述的操作,并作3个重复。
注意:以上操作必须在无菌操作室,或超净工作台中进行,操作前双手洗净并用70%酒精消毒处理。灭菌后的培养基事先置于52℃的恒温水浴锅中,并放于无菌操作室中备用。
4.3.2.6 培养
待培养基凝固后,盖了盖子,翻转培养皿,置于33℃±1℃恒温培养箱中培养48小时,观察菌落特征,选择菌落数在30~300之间的平板进行计数。
4.3.2.7 菌落初步鉴定方法
首先根据是否产生透明圈,来判断粪肠球菌及杂菌,有透明圈者为粪肠球菌,无透明圈的,可以初步判定为杂菌;
4.3.2.8菌落计数原则
进行鉴定后,可对特征菌落进行计数,可肉眼观察,必要时使用放大镜,以防遗漏,在计数出各平板的菌落数后,求出同一个稀释度的两个平板的平均数。
当平板上有链状菌落生长时,如呈链状生长的菌落之间无任何明显界限,则应作为一个菌落计,如存在有几条不同来源的链,则每条链均应按一个菌落计算。如有成片状菌落生长,该平板一般不宜采用,如片状菌落不到平板一半,而另一半又分布均匀,则可以半个平板的菌落数乘2代表全平板的菌落数。
以平板上出现30个~300个菌落数的稀释度平板为计数标准,并确定为稀释倍数(C)。
当只有一个稀释度,其平均菌落数在30个~300个之间时,则以该平均菌落数乘以其稀释倍数。
若两个稀释度,其平均菌落数30个~300个之间时,应按两者菌落总数之比值来决定。若其比值小于2应计数两者的平均数,若大于2则计数其中稀释较小的菌落总数。
若两个稀释度的平均菌落数大于300个,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数。
若两个稀释度的平均菌落数小于300个,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数。
若两个稀释度的平均菌落数不在30个~300个之间,则以最接近300个或30个的平均菌落数乘以稀释倍数。
4.3.2.9 结果计算
根据菌落特征判定,分别数出平板中的粪肠球菌菌落数及杂菌菌落数,统计算出同一稀释度三个平皿上粪肠球菌平均菌落数B,和杂菌数平均菌落数E。
则计算公式如下:
粪肠球菌A的计算公式按式(1)计算:
A = B×C (1)