大肠杆菌及大肠菌群计数方法

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食品卫生微生物指标及微生物检测

食品卫生微生物指标及微生物检测

GB中国国家标准 SN 中国检验检疫行业标准
FDA BAM(Bacteriological analytical manual) 美国食品药品管理局细菌学分析手 册
ISO(International Organization for Standardization )国际标准化组织
乳糖发酵管3537 ℃ ,242小时
革兰氏阳性 革兰氏阴性 无芽孢杆菌
产气
大肠菌群阴性 报告
大肠菌群阳性 报告
不产气
大肠菌 群阴性
报告
产气实验
EMB(伊红美蓝) 琼脂培养基原理
EMB琼脂培养基中含有的伊红和美蓝染料, 可抑制革兰氏阳性细菌。那些能发酵乳糖的细 菌,能将染料摄入细胞,从而使菌落呈现出紫 色或边缘无色、中央暗黑色的菌落。
样品稀释25 g(mL)样品+225 mL 稀释液,均质


10 倍系列稀释

选择适宜3 个连续稀释度的样品匀液,接种

LST 肉汤管
M
36 ℃ ±1 ℃ 48 h ±2h
P
不产气
产气
N
BGLB 肉汤

36 ℃ ±1 ℃ 48 h ±2h


不产气
产气

大肠菌群阴性
大肠菌群阳性
菌落总数 指食品检样经处理,在一定条件下培养后, 所得1g食品或1mL食品中或1cm2食品表面积 上所含有的细菌菌落总数。
一定条件:如需氧情况、营养条件、pH、培养温度和时间 等
不能满足厌氧或微需氧菌、有特殊营养要求的以及非嗜中 温的细菌的生长
因此菌落总数并不表示实际中的所有细菌总数,菌落总数 并不能区分其中细菌的种类

大肠菌群的计数实验

大肠菌群的计数实验

大肠菌群计数实验MPN 计数法、设备和材料250ML锥形瓶 3 个100ML 烧杯 1 个250ML量筒 1 个1000ML 烧杯 1 个15*150mm试管 3个1ML 刻度吸管 4 个18*180mm试管20杜氏小管个玻璃棒 1 个接种环 1 个剪刀 1 把药匙 2 个均质器天平(感量0.1g )电炉洗耳球二、实验准备1、配制培养基:LST培养基的配制:用天平称取17.8gLST 培养基于锥形瓶中加入500ML蒸馏水加热煮沸至完全溶解分装于装有杜氏小管的大试管中,每管10ML,共10 管高温灭菌备用BGLB培养基的配制:用天平称取20gBGLB培养基于锥形瓶中加入500ML蒸馏水加热煮沸至完全溶解分装于装有杜氏小管的大试管中,每管10ML,高温灭菌备用2、生理盐水取 4.25g 氯化钠于大烧杯中加入500ML蒸馏水溶解取225ML生理盐水于锥形瓶中分别取9ML生理盐水于 3 只小试管中将分装好的生理盐水进行高温灭菌3、灭菌:将均质杯、100ML 烧杯、刻度吸管、剪刀、接种环、洗耳球高温灭菌备用三、取样在提交的产品中随机抽取三箱,从每箱中随机抽取未打开包装的产品 1 袋~3 袋,抽取不低于250g 的样品作为微生物指标检验试样。

检样25 g(mL)样品+225 mL 稀释液,均质10 倍系列稀释选择3个适宜稀释度的样品匀液,接种LST 肉汤管不产气BGLB 肉36不产气大肠菌群阴性报告结果五、操作步骤初发酵试验1、称取25g 样品,放人盛有225m 生理盐水的无菌均质杯内,8 00or/min-10 000r/min 均质 1 min-2 min ,制成1:10 的样品匀液。

四、检验程序36 ℃± 1℃ 48h ±2h产气产气℃±1℃±2h大肠菌群阳性查MPN 表2、用1ml 无菌吸管吸取1:10 样品匀液1ml,沿管壁缓缓注人9ml 生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管,使其混合均匀,制成1:100 的样品匀液。

大肠杆菌的检测MPN计数法

大肠杆菌的检测MPN计数法

大肠杆菌的检测(MPN计数法) 大肠杆菌的检测在环境和食品微生物检测中至关重要,因为这些微生物的存在可能指示污染和潜在的健康风险。

MPN计数法是一种常用的检测大肠杆菌的方法,下面将详细介绍这种方法。

一、MPN计数法简介MPN计数法,全称Most Probable Number,即最可能数,是一种通过统计学方法估算微生物数量的方法。

它的基本原理是在一定的稀释度下,通过系列梯度稀释的样本中存在微生物的概率来推算样本中实际的微生物数量。

二、MPN计数法检测大肠杆菌的步骤1.样品采集:采集被检样品,如水、食品等,并按照无菌操作的要求进行处理,以避免污染和交叉感染。

2.制备稀释液:将样品进行一系列的稀释,如10-1、10-2、10-3等。

每个稀释度的样品需要进行三份平行试验,以增加结果的可靠性。

3.选择合适稀释度的样品:根据实验结果,选择适合的稀释度的样品进行MPN计数。

这个稀释度应该是使样品中大肠杆菌的数量落在10~100之间,以提高估算的准确性。

4.培养:将选择的稀释度的样品分别接种到含有特殊培养基的试管中,培养基是为了促进大肠杆菌的生长。

每个试管中接种的样品量为10ml。

5.结果分析:经过一定时间的培养后,观察每个试管中的菌落数并记录。

根据统计学原理,通过这些数据可以得出样本中大肠杆菌的最可能数。

6.结果报告:根据实验数据,计算并报告每100ml(或者每1g)样品中大肠杆菌的最可能数。

三、MPN计数法的优势和局限性优势:1.MPN计数法是一种广泛应用的方法,可用于估计微生物的数量,不仅适用于大肠杆菌,还适用于其他微生物。

2.该方法不需要昂贵的仪器设备,操作相对简单,可用于基层实验室。

3.MPN计数法可以提供微生物数量的范围,而非单一数值,对于初步估计和趋势分析具有一定的参考价值。

局限性:1.MPN计数法的主观性较强,结果会受到操作人员的影响。

因此,需要操作者接受专业培训并遵循严格的操作规程。

2.MPN计数法的准确性相对较低,尤其是在微生物数量较少的情况下,可能存在较大的误差。

大肠菌群计数检验重点

大肠菌群计数检验重点
杜第一法: 确证大肠菌群LST阳性管数,检索MPN表(见附录),报告每g(mL)样品中大肠菌群的MPN值。
第二法: 经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)中计数的平板菌落数,再乘以稀释倍数,即为每g(mL)样品中大肠菌群数。例:10-4样品稀释液1mL,在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落,挑取其中10个接种BGLB肉汤管,证实有6个阳性管,则该样品的大肠菌群数为:100×6/10×104/g(mL)=6.0×105CFU/g(mL)。
A
一般样品25ML(克)+225ML生理盐水=1:10,从10-1取样1ML,接种到3管LST(月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤)中。
B
从10-1取样1ML+9 ML生理盐水=1:100,从10-2取样1ML,接种到3管LST中。
C
从10-2取样1ML+9 ML生理盐水=1:1000,从10-3取样1ML,接种到3管LST中。
溴甲酚紫,中性时呈蓝紫色,酸性时呈黄色,如果颜色不变(呈蓝紫色),说明无产酸的大肠菌群;如果颜色变黄色,说明可能出现能分解乳糖产酸的大肠菌群。
01
胆盐可以抑制其它细菌生长繁殖。
01
分解乳糖产酸产气的大肠菌群,看小倒管中的气体。
01
原理
1 产气 2 不产气
大肠菌群是指一群在37°C培养24小时能分解乳糖产酸产气、需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
01
作为粪便污染指标,有广泛的卫生学意义
食品中大肠菌群数系以每100g(或mL)检样内大肠菌群最可能数(the most probablenumber-简称MPN)表示。
03
大肠菌群计数检验
旧国家标准
第二天

食品卫生微生物学检验 大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌计数

食品卫生微生物学检验 大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌计数

大肠菌群计数:第一法 6 操作步骤
6.2 初发酵实验 对每个样品,选择适宜的三个连续稀释度的样品匀液,液体 样品可以包括未经稀释的原液,每个稀释度接种三管月桂基硫酸 盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量需要超过1mL, 则用双料LST肉汤)。36℃±1℃培养24h±2h,检查倒管内是否有气 泡产生或轻摇试管时是否有密集连续的细小气泡从管底逸出,如 未产气则继续培养至48h±2h。记录在24h和48h内产气的LST肉汤管 数。未产气者为大肠菌群阴性;对产气者,则进行复发酵试验。
食品卫生微生物学检验 大肠杆菌计数
Microbiological examination of food hygiene -Enumeration of Escherichia coli
大肠菌群计数
大肠菌群
定义:一群在36℃条件下培养24~48小时能发酵乳糖、产酸 产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。 卫生学概念,包括埃希氏菌属,克雷伯氏菌属、肠杆菌属 和柠檬酸杆菌属等的细菌 检验比较简单,所以被广泛用做水源的卫生指标和食品加 工卫生状况的通用指标
Microbiological examination of food hygiene -Enumeration of Coliforms
食品卫生微生物学检验 粪大肠菌群计数
Microbiological examination of food hygiene -Enumeration of faecal coliforms
℃± 1 ℃ 36 36℃

24h~ 48h
报告结果
大肠菌群计数
大肠菌群计数
大肠菌群计数
第一法
MPN法
第二法 平板计数法 第三法 Petrifilm测试片法

大肠菌群检测中平板计数法主要操作要领

大肠菌群检测中平板计数法主要操作要领

大肠菌裙检测是一项非常重要的微生物检测工作,它可以帮助我们了解环境和食品中是否存在大肠菌裙,从而保证人们的健康安全。

在大肠菌裙检测中,平板计数法是一种常用的检测方法。

下面将介绍大肠菌裙检测中平板计数法的主要操作要领。

1.准备工作在进行大肠菌裙检测之前,需要准备相应的实验器材和培养基。

实验器材包括平板计数仪、移液器、无菌培养皿等。

培养基一般选择大肠埃希氏菌(EC)培养基。

2.样品处理将待测样品取适量放入无菌容器中,进行适当的稀释。

这一步要确保样品的稀释倍数适中,以保证后续的计数结果准确。

3.接种和培养取一定量的处理过的样品,在无菌工作台上均匀涂抹于含有适量培养基的培养皿上,然后进行培养。

培养条件一般为37摄氏度,培养时间为24小时。

培养后会形成菌落,这些菌落代表了原始样品中的细菌数量。

4.计数和记录在培养后,利用平板计数仪对菌落进行计数。

计数的时候需要注意避免重复计数同一菌落,保证计数准确。

需要记录计数结果,包括菌落数量和相应的单位。

5.结果分析根据计数结果,可以对原始样品中的大肠菌裙数量进行估算。

可以通过对对照组和样品组的比较来判断样品中大肠菌裙的数量是否合格。

大肠菌裙检测中平板计数法的主要操作要领就是以上几点。

通过严格按照这些要领进行操作,可以确保检测结果的准确性和可靠性。

在进行操作过程中,还需要遵守无菌操作规范,确保实验过程中不受外界污染。

希望大家在进行大肠菌裙检测时能够严格按照操作要领进行,保证测试结果的准确性,从而更好地保障人们的健康安全。

大肠菌裙检测中的平板计数法是一种经典的微生物计数方法,它主要用于测定食品、饮用水、环境等样品中大肠菌裙的数量。

在这个过程中,我们需要注意几个关键的环节,来保证实验的准确性和结果的可靠性。

在准备工作环节,我们需要保证实验器材和培养基的质量。

实验器材一定要经过严格的消毒和清洁,以免外来细菌的污染影响实验结果。

培养基的选用也尤为重要,要选择与待测细菌的生长要求相适应的培养基,以保证细菌在培养基上的正常生长。

大肠菌群计数方法

大肠菌群计数方法

版本:A/1 日期:2012-05-25页数: Page 1 of 12标题: 大肠菌群计数方法文件修改记录分发号 : ______(仅适用于控制文件) (仅盖有红色印章的文件才有效)版本 修订次数 修订日期 修 订 内 容0 0 2011-02-14 A 1 2012-05-25 修订版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 2 of 12标题:大肠菌群计数方法1.0目的规定大肠杆菌计数的方法。

2.0适用范围适用于加多宝凉茶、浓缩汁或原辅材料中的大肠杆菌群的计数。

3.0术语3.1大肠菌群:一群在36℃条件下培养48h能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧格兰仕隐形无芽孢杆菌。

3.2MPN最可能数(most probable number):基于泊松分布的一种间接计数方法。

4.0职责4.1质检部:负责按此方法对加多宝来凉茶、浓缩汁或原辅材料中大肠菌群进行计数。

5.0流程图见附录A、附录B。

6.0内容及要求6.1设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其它设备和材料如下:6.1.1恒温培养箱:36℃±1℃6.1.2冰箱:2℃-5℃6.1.3恒温水浴箱:46℃±1℃6.1.4天平:感量0.1g6.1.5振荡器6.1.6无菌吸管:1ml(具0.01刻度)、10ml(具0.1刻度)或微量移液器及吸头。

6.1.7无菌锥形瓶:容量500ml6.1.8无菌试管:18×200ml6.1.9小导管6.1.10无菌培养皿:直径90mm6.1.11菌落计数器6.2培养基和试剂6.2.1月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤6.2.2煌绿乳糖胆盐(BGLG)肉汤版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 3 of 12标题:大肠菌群计数方法6.2.3乳糖胆盐发酵培养基(LBB)6.2.4乳糖蛋白胨培养基(LPB)6.2.5伊红美蓝琼脂培养基(EMB)6.2.6结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)6.2.775%乙醇溶液6.2.8无菌生理盐水:称取8.5g氯化钠溶于1000ml蒸馏水中,121℃高压灭菌15min6.3大肠菌群MPN计数法6.3.1加多宝凉茶、浓缩汁等产品及原辅材料中大肠菌群的测定6.3.1.1样品稀释a、固体和半固体样品:称取25g样品置于盛有225ml无菌生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1-2min,制成1:10的样品匀液。

计量大肠菌群数量的计数方法

计量大肠菌群数量的计数方法

计量大肠菌群数量的计数方法大肠菌群是指在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。

直接或间接来自人与温血动物的肠道:包括肠杆菌科的大肠埃希氏菌属、柠檬酸杆菌属、肠杆菌属和克雷伯菌属,其中大肠埃希氏菌属为最典型大肠埃希氏菌。

一、卫生学意义人与温血动物粪便污染的指示菌:•大肠埃希氏菌——粪便近期污染;•其他菌属——粪便陈旧污染。

肠道致病菌污染食品的指示菌:•与肠道致病菌(如沙门氏菌、志贺氏菌)来源相同;在外界生存的时间与主要肠道致病菌一致。

二、修订的主要内容本标准与GB4789.2-2010相比,主要修改如下:1、删除了标准的英文名称2、修改了发布单位名称2010版本“中华人民共和国卫生部”2016版本“中华人民共和国国家卫生盒计划生育委员会”和“国家食品药品监督管理总局”3、前言:本标准代替GB4789.3—2010《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》、GB/T4789.32—2002《食品卫生微生物学检验大肠菌群的快速检测》和SN/T0169—2010《进出口食品中大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌检测方法》大肠菌群计数部分。

本标准与GB4789.3—2010相比,主要变化如下:———增加了检验原理;———修改了适用范围;———修改了典型菌落的形态描述;———修改了第二法平板菌落数的选择;———修改了第二法证实试验;———修改了第二法平板计数的报告。

三、大肠菌群计数的两种方法第一法MPN法适用于大肠菌群含量较低的食品中大肠菌群的计数。

检验原理:MPN法是统计学和微生物学结合的一种定量检测法。

待测样品经系列稀释并培养后,根据其未生长的最低稀释度与生长的最高稀释度,应用统计学概率论推算出待测样品中大肠菌群的最大可能数。

第二法平板计数法适用于大肠菌群含量较高的食品中大肠菌群的计数。

检验原理:大肠菌群在固体培养基中发酵乳糖产酸,在指示剂的作用下形成可计数的红色或紫色,带有或不带有沉淀环的菌落。

大肠菌群计数含MPN表

大肠菌群计数含MPN表

大肠菌群计数是一种估计悬浮在水溶液中活菌数的方法。

一般分几组进行,每一组各有数重复,分别以渐次的方式加入不同量的待测水溶液于培养液中进行培养,随后观察每一组中的试管是否有菌生长,然后再利用统计表估计菌数。

例如水中coliform数的测定,将待测水溶液以10ml,1ml及的量分别加入各组,每组三重复,经培养后观察coliform是否有生长,统计有菌生长的管数,以统计表统计菌数。

活菌的浓度可利用MPN的方式来估计,方式简单,可分为下列两步骤:在培养基中作数个重复稀释;记录有菌生长的试管。

若试管中无生长,则可能代表连一支菌都没有生长。

从统计观点,MPN这个方法是一种非常没效率的方式,因为每一试管与培养皿表面生长的菌数只有很小部分符合。

然而MPN的好处有以下:若菌无法长在固态培养基时,便可使用;若菌的生长的动力学具有很大变化,便可使用:假设某些菌会会立即且迅速的生长,且会在固态培养基产生很大的菌落,且与我们要的菌落接触到或盖过时;因为较少且具高度游动性或快速生长的菌,可能形成小菌落,因而其数量是很多而导致无法计数;假如非我们所要菌存在,或无筛选的方法存在时,便可使用。

虽然有污染的细菌可以大量生长,但仍可藉由我们所要看的菌产生特定的产物来估计;假如琼脂或其他固化材料有某些因素会干扰我们计数时,便可使用大肠菌群MPN表正反应试管数MPN/ml ( g )95% 信赖界线下限上限000< 30013< 590103< 513020---1004< 5201017121110712311111336120113362009136201143372101534421120789220214472212810150230---30023412030139713030264153803104372103117514230312120303803209315380321153044032221035470330240361,300331460712,4003321,1001504,800333> 1,100> 150> 4,800说明:若稀释倍数为10,100,1000倍(即每ml LST中,, ml(g)之检体),且LST均产气(正反应试管数3-3-3),经接种至EC,而其产气试管数为3-1-0,对照MPN为43,即为该检体大肠杆菌MPN数为43/ml (g)。

大肠菌群平板计数法方法学验证报告

大肠菌群平板计数法方法学验证报告

大肠菌群平板计数法方法学验证报告实验步骤如下:1.准备培养基:将大肠杆菌选择培养基加入培养基瓶中,并用自来水洗净外面的杂质,随后用蒸馏水冲洗内表面。

将瓶口用无菌布覆盖,用锡箔纸包好,然后高温高压灭菌,储存在无菌环境中备用。

2.取少量待检样品:将待检食品样品(例如牛奶、蔬菜、饮用水等)取一适量,在无菌的条件下进行操作。

先将样品摇匀使其均匀分布,然后用无菌吸管取1毫升待检样品。

3.稀释样品:用无菌吸管将1毫升待检样品转移至无菌试管中,再向试管分别加入9毫升无菌生理盐水,摇匀使其均匀混合。

此时的样品为10倍稀释样品,将试管中的液体倒入下一个试管中,再加入9毫升无菌生理盐水,以此类推,制备出一系列浓度递减的稀释样品。

4.接种培养基:将每个稀释样品分别倒入标记好的平板培养基上,倒入后轻轻晃动,使其均匀分布在培养基上,然后在无菌工作台上用无菌铂丝铲取纱球大小的韧带状菌液涂抹在固体培养基表面,使细菌均匀生长。

5.培养和计数:将培养基板反面朝上,放入37°C恒温培养箱中进行培养,培养的时间一般为24小时。

待培养结束后,观察培养基表面是否出现典型的大肠菌群菌落。

使用菌落计数器对每个平板上的菌落进行计数。

根据以上实验步骤进行大肠菌群平板计数法的实验后,得出以下结论:1.适用性验证:通过本实验,我们可以验证大肠菌群平板计数法的适用性。

在我们的实验中,使用该方法对不同类型的食品样品进行了检测,并得出了相应的菌落计数。

这表明该方法适用于不同类型的样品,可以准确地测定大肠菌群数量。

2.优点:大肠菌群平板计数法具有以下优点:简单易行,操作方便;可定量测定大肠菌群数量,结果可靠;适用于不同类型的食品样品。

3.缺点:大肠菌群平板计数法也存在一些局限性:菌落计数需要较长时间,一般需要24小时才能观察到菌落;该方法只能测定培养基中能够生长的细菌,无法对其他微生物进行定量测定。

综上所述,大肠菌群平板计数法是一种能够准确测定大肠菌群数量的方法。

大肠菌群计数MPN法

大肠菌群计数MPN法
粪大肠菌群 (Fecal colifoms)
一群在44.5 ℃发酵乳糖、产酸产气、IMViC生化试验为++--或-+--的革兰氏阴性无芽孢杆菌。分类学概念:肠杆菌科、埃希氏菌属是人和温血动物肠道内普遍存在的细菌,是粪便中的主要菌种。一般生活在人大肠中并不致病,但它侵入人体一些部位时,可引起感染 。O抗原(菌体抗原,150个) K抗原(荚膜抗原,90个) H抗原(鞭毛抗原,50个)
月桂基磺酸盐胰蛋白胨(LST)
归纳总结
培养基主要成分作用
①胆盐可抑制革兰氏阳性菌。②煌绿是抑菌抗腐剂,可增强对革兰氏阳性菌的抑制作用。③乳糖是大肠菌群可利用发酵的糖类。有利于大肠菌群的生长繁殖并有助于鉴别大肠菌群和肠道致病菌。④发酵试验判定原则:产气为阳性。由于配方里有胆盐,胆盐遇到大肠菌群分解乳糖所产生的酸形成胆酸沉淀,培养基可由原来的绿色变为黄色,同时可看到管底通常有沉淀。
煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)
归纳总结
注意事项
目前很多产品大肠菌群标准要求单位为MPN/100mL(g),同2010版检测结果单位MPN/100mL(g)不一致。中华人民共和国卫生部公告 2009第16号正式公告:现行食品标准中规定的大肠菌群指标以“MPN/100克或MPN/100毫升”为单位的,适用《食品卫生微生物学检验大肠菌群测定》(GB/T 4789.3-2003)进行检测;以“MPN/克或MPN/毫升”、“CFU/克或CFU/毫升”为单位的,适用《食品卫生微生物学检验大肠菌群计数》(GB/T 4789.3-2008)进行检测。
大肠菌群 (Coliforms)
指在44.5℃培养24-48h能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽孢杆菌。北美国家一般使用“粪大肠菌群”概念,如AOAC、FDA;而欧洲使用“耐热大肠菌群”概念,较少使用“粪大肠菌群”,如NMKL。与大肠菌群一样,并非细菌学分类命名,而是卫生细菌领域的用语,它不代表某一个或某一属细菌,而指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致。

大肠菌群的计数标准

大肠菌群的计数标准

大肠菌群的计数标准大肠菌群的计数标准主要由GB 4789.3—2016《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》规定。

以下是该标准的十大要点解读:一、标准适用范围:本标准规定了食品中大肠菌群(Coliforms)计数的方法,适用于不同含量的大肠菌群食品。

二、术语和定义:大肠菌群定义为在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。

三、最可能数(MPN)法:MPN法是统计学和微生物学结合的一种定量检测法,通过系列稀释并培养后,根据未生长的最低稀释度与生长的最高稀释度,应用统计学概率论推算出待测样品中大肠菌群的最大可能数。

四、平板计数法:大肠菌群在固体培养基中发酵乳糖产酸,在指示剂的作用下形成可计数的红色或紫色,带有或不带有沉淀环的菌落。

五、设备和材料:包括恒温培养箱、冰箱、恒温水浴箱、天平、均质器、振荡器、无菌吸管、无菌锥形瓶、无菌培养皿、pH计或pH比色管或精密pH试纸、菌落计数器等。

六、培养基和试剂:包括月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤、煌绿乳糖胆盐(BGLB)肉汤、结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)、无菌磷酸盐缓冲液、无菌生理盐水、1mol/L NaOH溶液、1mol/L HCl溶液等。

七、MPN计数法操作步骤:包括样品的稀释、复发酵试验(证实试验)、大肠菌群最可能数(MPN)的报告等步骤。

八、平板计数法操作步骤:包括样品的稀释、平板计数、平板菌落数的选择、证实试验、大肠菌群平板计数的报告等步骤。

九、结果报告:经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以计数的平板菌落数,再乘以稀释倍数,即为每g(mL)样品中大肠菌群数。

十、标准的实施和发布:GB 4789.3—2016标准于2016年12月23日发布,2017年6月23日实施。

这些要点详细说明了大肠菌群计数的标准方法和操作步骤,确保食品中大肠菌群的准确检测。

大肠菌群第二法计算题

大肠菌群第二法计算题

大肠菌群第二法计算题大肠菌群第二法,又称大肠杆菌群指数法,是一种评价水质卫生状况的重要方法。

它通过检测水样中大肠菌群的数量,来判断水质是否受到粪便污染,从而为水资源的合理利用和卫生管理提供科学依据。

一、大肠菌群第二法计算公式及意义大肠菌群第二法的计算公式为:大肠菌群指数(MI)=(A+B+C+D)/1000其中,A、B、C、D分别代表不同稀释度下的大肠菌群数量。

MI值越高,说明水体受到粪便污染的程度越严重。

我国《生活饮用水卫生标准》规定,MI值不应大于10。

需要注意的是,MI值并非绝对标准,还需结合其他水质指标综合评价水质状况。

二、计算实例与步骤详解以下是一个计算实例:某水样经稀释后,四个浓度下的大肠菌群数量分别为10、20、30、40。

则MI值的计算过程如下:MI = (10+20+30+40)/1000 = 10根据计算结果,该水样的MI值为10,处于正常范围内。

三、应用场景及注意事项大肠菌群第二法适用于水源水、饮用水、瓶装水等水样的检测。

在实际应用中,还需结合水样的其他污染指标,如细菌总数、总大肠菌群等,综合评价水质状况。

注意事项:1.水样采集要具有代表性,尽量避开污染源附近。

2.样品运输和保存过程中,应严格遵循相关标准和方法,防止样品污染或损失。

3.实验操作过程中,要确保实验器材和人员的卫生,避免实验误差。

4.计算MI值时,应注意单位的转换,确保计算结果的准确性。

总之,大肠菌群第二法作为一种评价水质卫生状况的方法,具有较强的实用性和可操作性。

通过对MI值的计算和分析,可以初步判断水体的污染程度,为水资源管理和保护提供依据。

大肠杆菌及菌落总数

大肠杆菌及菌落总数

所谓细菌总数是指1mL或1g检样中所含细菌菌落的总数,所用的方法是稀释平板计数法,由于计算的是平板上形成的菌落(colony-forming unit,cfu)数,故其单位应是cfu/g(mL)。

它反映的是检样中活菌的数量。

所谓大肠菌群,是指在37℃24h内能发酵乳糖产酸、产气的兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌的总称,主要由肠杆菌科中四个属内的细菌组成,即埃希氏杆菌属、柠檬酸杆菌属、克雷伯氏菌属和肠杆菌属。

水中大肠菌群的检验方法,常用多管发酵法和滤膜法。

多管发酵法可运用于各种水样的检验,但操作繁琐,需要时间长。

滤膜法仅适用于自来水和深井水,操作简单、快速,但不适用于杂质较多、易于阻塞滤孔的水样。

(三)实验器材(1) 菌落总数的测定:1)培养基:牛肉膏蛋白胨琼脂培养基牛肉膏3.0 g 蛋白胨10.0g NaCl 5.0g 水1000mL pH7.4~7.6 将培养基配方比例依次准确地称取牛肉膏、蛋白胨、NaCl放入烧杯中,牛肉膏常用玻棒挑取,放在小烧杯或表面皿中称量,用热水溶化后到入烧杯。

也可放在称量杯中,称量后直接放入水中,这时如稍微加热,牛肉膏便会与称量纸分离,然后立即取出纸片。

在上述烧杯中先假如少于所需要的水量,用玻棒搅匀,然后,加入琼脂,再在石棉上加热使其溶解。

将药品完全溶解后,补充水到所需的总体积。

在未调pH前,先用精密pH试纸测量培养基的原始pH,如果偏酸,用滴管向培养基中逐滴加入1mol/L NaOH,边加边搅拌,并随时用PH试纸测其PH,直至PH达7.6。

反之,用1mol/LHCL 进行调节。

无菌生理盐水:需用生理盐水浓度是0.9%:称取0.9克氯化钠,溶解在少量蒸馏水中,稀释到100毫升。

2)器材试剂:牛肉膏蛋白胨 NaCl 1moL/LNaOH 1moL/LHCL 灭菌水高压蒸气灭菌锅培养皿三角烧瓶带玻璃塞瓶天平试管牛角匙pH试纸(pH5.5-9.0)棉花记号笔纱布吸管麻绳牛皮纸量筒玻璃棒电热炉称量杯灭菌三角瓶灭菌的具塞三角瓶灭菌平皿灭菌吸管灭菌试管高压蒸气灭菌:1.将内层锅去处,再向外层锅中加入适量的水,使水面与三角架相平为宜。

大肠菌群平板计数法计算公式

大肠菌群平板计数法计算公式

大肠菌群平板计数法计算公式
构建类肠杆菌群计数技术是衡量卫生水中大肠杆菌群的一个重要手段。

大肠杆菌群平板计数法是大肠杆菌群计数法中一种比较常见的技术,主要是利用培养基的抗血清特异性效能吸附技术,将水样中大肠杆菌群从环境介质中捕获、纯净、总数计算。

其计数法主要有以下几步:
(1)采样:从相应环境或样品中采集所需细菌样本;
(2)分离:用特定培养基培养,在合适的条件下,将沾染大肠杆菌群的样本分离出来;
(3)分析:采用抗血清特异性吸附技术,将纯化的大肠杆菌群模拟出来;
(4)计数:合理设置计数条件,将模拟出来的大肠杆菌群数目计算出来,得出大肠杆菌群数量。

大肠杆菌群平板计数法可以用于解决卫生水建筑中节水管道、游泳池和地下水渠等设备的安装的卫生检查问题,因为这类设备的渗漏可能会引起重要的公共卫生及环境污染问题。

由此可见,大肠杆菌群平板计数法也给建筑的正常使用 and 经营提供了较为准确的分析依据。

大肠杆菌群平板计数法是测定建筑环境中大肠杆菌群的一种有效手段,它为建筑安装和使用提供了较高精度的细菌数量测定结果,可以有效预防建筑环境传染疾病的发生。

这种技术可以广泛用于水处理厂、公共卫生毒理实验室、游泳池、室内健身中心、精湛的安装建筑市场以及大型建筑工程布置。

大肠菌群计数检验步骤

大肠菌群计数检验步骤

大肠菌群计数检验步骤第一法大肠菌群MPN 计数操作步骤6.1、样品的稀释6.1.1、固体和半固体样品:称取25g 样品,放人盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8 00or/min-10 000r/min 均质1 min-2 min ,或放人盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min-2 min ,制成1:10 的样品匀液。

6.1.2、液体样品:以无菌吸管吸取25ml样品,置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分棍匀,制成1:10 的样品匀液。

6.1.3、样品匀液的pH 值应在6.5-7.5 之间,必要时分别用1mol/L 氢氧化钠(NaOH )或1 mol/L 盐酸(HCI )调节。

6.1.4、用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1ml,沿管壁缓缓注人9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1 支1ml无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:100 的样品匀液。

6.1.5、根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成10 倍递增系列稀释样品匀液。

每递增稀释1 次,换用1 支1ml无菌吸管或吸头。

从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15 min 。

6.2、初发酵试验每个样品,选择3 个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3 管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1ml(如接种量超过1ml,则用双料LST肉汤), 36℃±1℃培养24h±Zh ,观察倒管内是否有气泡产生,如未产气则继续培养至48h±2h 。

记录在24h 和48h 内产气的LST 肉汤管数。

未产气者为大肠菌群阴性,产气者则进行复发酵试验。

6.3、复发酵试验用接种环从所有48h±2h 内发酵产气的LST 肉汤管中分别取培养物l环,移种于煌绿乳糖胆盐( BGLB)肉汤管中,36℃±1℃培养48h±2h ,观察产气情况。

大肠菌群测定步骤

大肠菌群测定步骤

食品大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌检测步骤一、培养基制备1、生理盐水氯化钠 8.5g蒸馏水 1000.0ml将氯化钠溶于蒸馏水中,搅拌均匀后用量筒量取225ml分装到各个广口瓶中,1210C高压灭菌15min,备用。

2、月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤称取37克放入烧杯,将各成分溶解于1000ml蒸馏水中,放电炉子上加热并搅拌均匀,分装于装有倒立发酵管的试管中,每管10ml,装完盖帽,1210C高压灭菌15min,双料培养基除蒸馏水不变外,其余成分加倍。

3、样品制备(在无菌室中进行)(1)固体或半固体样品无菌操作称取样品25g置于装有225ml生理盐水的广口瓶中,充分振摇、混匀,制成1:10的样品稀释液备用。

(2)液体样品以无菌吸管吸取样品25g置于装有225ml生理盐水的广口瓶中,充分混匀,制成1:10的样品稀释液备用。

4、样品稀释用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1ml,沿管壁缓慢注于盛有9ml 生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管混匀,制成1:100的样品匀液。

按照该操作程序,可制备1:1000,1:10000。

等10倍系列稀释样品匀液,每递增稀释一次,换用1次1ml无菌吸管或吸头。

根据对样品污染状况的估计,选择2-3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1ml样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。

同时分别吸取1ml空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。

二、大肠菌群的测定(MPN法)1、选取适宜的三个连续稀释度的样品匀液,每个稀释度均接种三管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1ml。

360C+10C培养24h-48h后,观察倒管内是否有气泡产生,并记录24h和48h内产气的LST肉汤管数。

对未产气的试管,可以轻敲试管壁的方式观察是否有较细小的气泡从管底逸出,如果所有LST肉汤管均未产气,可按。

报告结果;如果LST管有产气,则按下面步骤作证实试验。

大肠杆菌及大肠菌群计数方法

大肠杆菌及大肠菌群计数方法

大肠杆菌及大肠菌群计数方法大肠杆菌和大肠菌群计数方法Enumeration of Escherichia coli and the coliform章节内容:传统检测大肠菌群和大肠杆菌的方法LST-MUG法检测冷藏和冷冻食品中的大肠杆菌(除双壳类软体动物制品外)瓶装水检测方法贝类和贝类肉制品检测方法柑桔类水果汁中大肠杆菌检测方法大肠菌群和大肠杆菌计数的其他方法参考文件大肠埃希氏菌,以前常称大肠杆菌,于1885年由德国儿科医生Theodor Escherich 发现,广泛存在于人类和温血动物的肠道中,是人类和动物肠道中需氧性共生菌的优势菌群,维持宿主健康部分生理功能必需的肠道菌。

大肠埃希氏菌属肠杆菌科,肠杆菌科包括许多种细菌,致病菌有沙门氏菌、志贺氏菌、和耶尔森氏菌。

虽然大多数的大肠埃希氏菌为非致病菌,但是当宿主免疫力降低或细菌侵入肠道的外组织或器官时,可引起肠外感染。

某些血清型可产生毒素,为致病性大肠埃希氏菌,可引起人类腹泻。

1892年,Shardinger建议把大肠杆菌作为粪便污染的指标。

由于大肠杆菌广泛存在于人类和动物中,而在其他地方少见。

再者,大肠杆菌能发酵葡萄糖(以后改为为乳糖)产生气体。

与已知的非产气致病菌容易区别开来。

因此,大肠杆菌的检测已成为水和食品的近期粪便污染指标,表明可能含有致病菌。

肠道中柠檬酸盐菌,克雷伯氏菌和肠杆菌能发酵乳糖,与大肠杆菌的生物型非常相似,使得把大肠杆菌作为健康威胁的指标,在实际应用中很复杂。

于是,大肠菌群这个术语用来描述这类肠道菌,大肠菌群不是一个分类学上的定义,而是一个工作定义,指的是一群在35℃培养48h,产酸产气的,革兰氏阴性的芽孢杆菌。

1914年,每国公共健康协会把大肠菌群作为一个重要的卫生标准。

虽然大肠菌群很容易检测到,但不一定与粪便污染有关系,因为在自然环境样品中也常存在。

于是,粪大肠菌群就作为粪便污染的指标。

首先由Eijkman提出,指的是在高温下发酵乳糖,是总大肠菌群的亚群,同时也称为耐热大肠菌群。

大肠杆菌计数

大肠杆菌计数
将预热至45℃士0.5℃的结晶紫中性红胆盐琼 脂10 mL~15mL倾注于每个平皿中。小心旋 转平皿,将培养基与样品匀液充分混匀。
待琼脂凝固后,再加3 mL~4mL VRB-MUG 覆盖平板表层。 凝固后翻转平板,36℃±1℃ 培养18 h~24h。
注:空白对照不加VRB-MUG覆盖。
大肠杆菌平板计数与报告
注:如果是出现了这个表以外的生化反应类型,表明培养物可能不纯,应该重 新划线分离,必要时需要重复试验。
EMB琼脂
主要成分:乳糖、营养物质。指示剂系统: 伊红和美监。
原理:大肠菌群分解乳糖产酸,使伊红与美 蓝结合而形成黑色化合物,故菌落呈黑紫色, 并可产生金属光泽。黑色程度与光泽产生情 况与伊红、美蓝二者的比例有关。
第一法 大肠杆菌计数MPN法
大肠杆菌计数MPN法检验程序
检样25g(ml)+225ml稀释液,均质
10倍稀释
选择3个连续稀释度样品匀液接种LST
36℃±1℃
48±2h
不产气
产气
EC肉汤
45℃±0.2℃
24±2h
查MPN表,报告
不产气
产气
36℃±1℃ 24±2h
EMB琼脂平板 营养琼脂斜面培养
I M Vi C生化试验,革兰染色
肠菌群数。
大肠杆菌测试片的计数与结果报告
选取菌落数在15~150之间的测试片作为计 数标准。
选择菌落数在15~150之间的稀释度,平均 菌落数乘以稀释倍数报告之。
如果所有稀释度测试片上的菌落数都小于 15,则计数稀释度最低的测试片上的平均 菌落数乘以稀释倍数报告之。
如果所有稀释度的测试片上均无菌落生长, 则以(<)1乘以最低稀释倍数报告之。
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大肠杆菌和大肠菌群计数方法Enumeration of Escherichia coli and the coliform章节内容:•传统检测大肠菌群和大肠杆菌的方法•LST-MUG法检测冷藏和冷冻食品中的大肠杆菌(除双壳类软体动物制品外)•瓶装水检测方法•贝类和贝类肉制品检测方法•柑桔类水果汁中大肠杆菌检测方法•大肠菌群和大肠杆菌计数的其他方法•参考文件大肠埃希氏菌,以前常称大肠杆菌,于1885年由德国儿科医生Theodor Escherich 发现,广泛存在于人类和温血动物的肠道中,是人类和动物肠道中需氧性共生菌的优势菌群,维持宿主健康部分生理功能必需的肠道菌。

大肠埃希氏菌属肠杆菌科,肠杆菌科包括许多种细菌,致病菌有沙门氏菌、志贺氏菌、和耶尔森氏菌。

虽然大多数的大肠埃希氏菌为非致病菌,但是当宿主免疫力降低或细菌侵入肠道的外组织或器官时,可引起肠外感染。

某些血清型可产生毒素,为致病性大肠埃希氏菌,可引起人类腹泻。

1892年,Shardinger建议把大肠杆菌作为粪便污染的指标。

由于大肠杆菌广泛存在于人类和动物中,而在其他地方少见。

再者,大肠杆菌能发酵葡萄糖(以后改为为乳糖)产生气体。

与已知的非产气致病菌容易区别开来。

因此,大肠杆菌的检测已成为水和食品的近期粪便污染指标,表明可能含有致病菌。

肠道中柠檬酸盐菌,克雷伯氏菌和肠杆菌能发酵乳糖,与大肠杆菌的生物型非常相似,使得把大肠杆菌作为健康威胁的指标,在实际应用中很复杂。

于是,大肠菌群这个术语用来描述这类肠道菌,大肠菌群不是一个分类学上的定义,而是一个工作定义,指的是一群在35℃培养48h,产酸产气的,革兰氏阴性的芽孢杆菌。

1914年,每国公共健康协会把大肠菌群作为一个重要的卫生标准。

虽然大肠菌群很容易检测到,但不一定与粪便污染有关系,因为在自然环境样品中也常存在。

于是,粪大肠菌群就作为粪便污染的指标。

首先由Eijkman提出,指的是在高温下发酵乳糖,是总大肠菌群的亚群,同时也称为耐热大肠菌群。

粪大肠菌群的检测,除水、贝类、贝类养殖水在44.5℃进行,其他所有食品都在45.5℃进行。

粪大肠菌群包含绝大部执蟪Ω司? 克雷伯氏菌也作为粪大肠菌群,但克雷伯氏菌的检出被认为与粪便污染并无关系。

因此,大肠杆菌又被作为一个重要指标。

快速鉴定大肠杆菌的新方法采用,使检测大肠杆菌相对容易了。

现在,在不同的应用中,大肠杆菌,大肠菌群和粪大肠菌群这三种类型作为污染指标。

大肠菌群常用于水或食品加工过程中卫生状况的指标。

粪大肠菌群用于贝类和贝类养殖水的标准指标。

大肠杆菌用于近期粪便污染或不卫生的处理过程指标。

几乎所有的检测方法都是基于发酵乳糖。

最可能数值法(MPN)是一种统计学方法,包括近似确证和完全验证。

在检测过程中,样品要进行系列稀释。

实验操作要记录发酵乳糖产气的阳性管数,然后进行另外两步实验,利用阳性结果查统计表(见附录2),估计细菌的数量,仅前两步用于检测大肠菌群和粪大肠菌群,所有三步用于检测大肠杆菌。

3管 MPN法用于检测大部分食品,5管 MPN法用于检测水,贝类和贝类养殖水。

10管MPN法用于检测瓶装水或估计本样品为受到严重污染.另外还有一种固体平板计数法,使用VRBA培养,其含有中性红作指示剂,当发酵乳糖时产生红色菌落。

还有一种膜过滤法检测大肠菌群和粪大肠菌群,主要根据发酵乳糖产酸形成不同的菌落颜色。

本章节也介绍荧光法检测大肠杆菌;检测贝类的特殊方法;一种简单的瓶装水检测方法;和一种与HACCP法规中相关的检测柑桔类水果汁中大肠杆菌的方法.1. 传统方法检测大肠菌群、粪大肠菌群、和大肠杆菌A.设备和材料1.水浴箱:44.5±0.2℃,水浴箱中的水应高于试管中的培养基液面。

2.插入型温度计:1-55℃,大约长55cm,精度为0.1℃,必须经NIST或相关部门检测合格3.培养箱:35±1.0℃4.电子天平:感量0.1g,称量范围大于2Kg5.均质器或均质瓶(见第1章)6.无菌吸管:1.0ml和10.0ml7.无菌器皿:(用于样品处理)8.无菌稀释用带盖玻璃瓶9.菌落计数器或同等产品10.长波紫外灯:(-365nm)不超过6w11.PH计B.培养基和试剂煌绿乳糖胆盐肉汤,2% (M25)LST肉汤(M76)EC肉汤(M49)L-EMB琼脂(M80)胰蛋白胨(色氨酸)肉汤(M164)MR-VP肉汤(M104)Koser枸橼酸盐肉汤(M72)PCA(标准方法)(M124)Butterfield`s磷酸盐缓冲液(R11)或同等稀释液(贝类除外)Kovacs`试剂(R38)V-P试剂(R89)革兰氏染色液(R32)甲基红指示剂(R44)结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)(M174)VRBA-MUG琼脂(M175)EC-MUG培养基(M50)LST-MUG肉汤(M77)0.1%蛋白胨水稀释液(R56)C、MPN法—用于大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌的计数称取50g样品加入高速捣碎杯中,见第1章或现在FDA器械。

冷冻样品在2-5℃解冻(≤18h),但不要融化。

加入450ml 磷酸盐缓冲液,搅拌2分钟,如果样品量小于50g,称取一半样品加入足够体积的无菌稀释液,制成1:10的样品液,在捣碎杯中的液体应完全覆盖刀片。

稀释倍数根据大肠菌群对样品的污染情况,用稀释液将样品制成一系列十倍递增的样品稀释液,以30cm幅度于7s内将样品振摇25次(或以器械振摇器震荡)。

选择适宜的三个连续稀释度的样品稀释液,每个稀释度接种3管LST,每管接种1ml,以一定的角度,使吸管的尖部在试管壁上停留2-3s,从制备样品匀液至稀释完毕,全过程不要超过15min。

(注意:用5管MPN法检测贝类食品和贝类养殖水)将接种的LST管放置35℃培养,检查和记录在24±2h时倒管内产气的试管,未产气的试管继续培养24h,在48±2h 时检查和记录产气情况,对所有产气的试管进行确证试验。

D、MPN法—大肠菌群确证试验将所有LST肉汤产气管,用接种环接种一环到煌绿乳糖胆盐(BGLB)肉汤中。

置BGLB 试管于35℃培养48±2h,记录所有BGLB肉汤管的产气管数。

按BGLB肉汤产气管数,查MPN表(见附录2 ),计数出大肠杆菌的最可能数值。

E、MPN法—粪大肠菌群和大肠杆菌确证试验从产气LST肉汤管中接种一环培养物到EC肉汤管中(木制接种棒也可以使用)。

将所有接种的EC肉汤管放入带盖水浴箱中,45.5℃培养24±2h,检查产气情况。

如果不产气,继续培养至48±2h,检查产气情况。

按产气管数,查MPN表计数出粪大肠菌群MPN值。

继续大肠杆菌分析,按以下F部分进行。

EC肉汤MPN方法可用于海水和贝肉类的粪大肠菌群检测。

注意:除水、贝类和贝类养殖水中的粪大肠菌群检测的培养温度为44.5±0.2℃外,其他所有食品中粪大肠菌群的培养温度为45.5±0.2℃。

F、MPN法—大肠杆菌的完全测定进行大肠杆菌完全测定前,轻轻摇匀产气的EC肉汤试管,取产气管的培养物划线接种于伊红美蓝平板(L-EMB),35℃培养18-24h,检查L-EMB平板上有无具黑色中心的有金属光泽或无金属光泽的扁平菌落。

挑取5个典型菌落接种到PCA斜面培养基上,35℃培养18-24h,进行进一步检测。

注意:检测5个可疑菌落中任何一个为大肠杆菌,都可以确证EC肉汤管为阳性。

因此,并非5个菌落都必须检测。

革兰氏染色:所有为革兰氏染色阴性短杆菌的培养物,都应进行IMVIC生化反应检测和重新接种到LST肉汤进行产气确证试验。

吲哚试验:将PCA斜面纯培养物接种到胰蛋白胨肉汤中,35℃培养24±2h,加Kovacs 氏试剂0.2-0.3ml。

上层出现明显红色为靛基质阳性反应。

VP试验:将纯培养物接种到MR-VP肉汤中,35℃培养48±2h,以无菌操作称取培养物1ml至13*100mm试管中,加入0.6mlα-萘酚溶液,0.2ml 40%KOH溶液和少许肌酸结晶。

振摇试管后静置2h。

如出现伊红色,为VP阳性反应。

甲基红试验:在VP试验完后,试管中MR-VP培养物剩余部分继续在35℃培养48±2h;滴加5滴甲基红溶液,培养物变为明显红色为甲基红试验阳性,若变为黄色则为阴性反应。

柠檬酸盐试验:接种纯培养物到Koser’S枸橼酸盐肉汤中清澈液体,避免接种量过量产生浑浊。

35℃培养96h,培养物为明显浑浊为阳性反应。

发酵乳糖产气试验:接种纯培养物到LST肉汤中,35℃培养48±2h,产气或轻轻摇动试管产生气泡为阳性反应。

结果报告:所有培养物(A)在35℃培养48±2h内发酵乳糖产酸产气(B)革兰氏阴性无芽孢杆菌(C)IMVIC试验为+ + - -或- + - -为大肠杆菌。

再根据EC肉汤中阳性管数(连续3个稀释度)查MPN表(见附录2)计算出每克(毫升)样品大肠杆菌MPN值。

注意:可以选用API20E或VITEK生化分析,鉴定大肠杆菌,替代IMVIC生化试验。

G.大肠菌群固体培养基测定法按照生产厂家说明制备结晶紫中性红琼脂(VRBA)冷至48℃时备用。

样品制备按照以上I.C部分制备。

每个稀释度分别移取2个1ml样品液到2个灭菌平皿中,根据细菌受损和挤压的程度。

取10ml冷至48℃的VRBA培养基加入平皿中,小心旋转平皿,将培养基与样品液充分混匀。

待琼脂凝固后,再加入5mlVRBA培养基覆盖平板表层,以防止细菌蔓延生长。

如果细菌细胞受损严重,需要复苏修复,取8-10ml冷至48℃的胰蛋白胨大豆琼脂,将培养基与样品液充分混匀,在室温中放置2±0.5h,再加入8-10ml冷至48℃的VRBA培养基覆盖平板表层。

把凝固后的平板,35℃倒置培养18-24h,检测乳制品时,放置32℃培养18-24h,用带光源的放大镜下检查平板。

选用有25-250个菌落的平板,计数平板上出现的典型大肠菌群,典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为0.5mm 或更大。

为了确证大肠菌群,从VRBA平板至少挑取10个典型菌落,接种于BGLB 肉汤内,35℃培养24h和48h,观察产气情况。

注意:将出现产气的BGLB肉汤管判为大肠菌群阳性。

对形成菌膜的阳性管应进行革兰氏染色,以便挑除革兰氏阳性杆菌。

每克样品中的大肠菌群数量等于经最后证实为阳性的试管百分比乘以VRBA上的可疑菌落,再乘以稀释倍数。

另外一种方法:大肠杆菌可以与大肠菌群进行区别,在每毫升VRBA覆盖琼脂中加入100ug MUG,经培养后,大肠杆菌在长紫外灯下出现蓝色荧光。

(详见LST-MUG部分Ⅱ)H、膜过滤法(MF)检测大肠菌群:见部分Ⅲ,瓶装水检测。

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