实验四五六动物的给药、麻醉、处死术

（3）肌肉注射给药
小鼠体积小，肌肉少，很少采 用肌肉注射。当给小鼠注射不溶 于水而混悬于油或其他溶剂中的 药物时，采用肌肉注射。用药量 不超过0.1ml/10g体重。
(4)静脉注射给药
小鼠尾静脉注射：
用75%酒精棉球反复擦拭尾部,以达到消毒和使尾 部血管扩张的目的. 以左手拇指和食指捏住鼠尾 两侧,使静脉更为充盈, 右手持4号针头注射器, 使针头与静脉平行(小于30°角),从尾巴的下1/4 处进针, 注射量为0.05-0.1ml/10g体重。
实验四 实验动物的给药方法
实验目的：通过实习掌握动物实验中常用的给药方法如
经口给药、皮下注射、皮内注射、腹腔注射、肌 肉注射、静脉注射。
实验材料：
实验动物为小白鼠、大鼠 器材为灌胃针（带圆珠头）、胶皮胃管，开口器、
注射器、针头 (4号，4号半，5号，5号半，6号）、 镊子酒精棉球、脱脂消毒棉球、鼠，兔固定器、 犬，猫固定台。
1.针刺 针刺人中穴对抢救家兔效果较好，对犬用每 分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。
2.注射强心剂
（1）肾上腺素 可以静脉注射0.1%肾上腺素1ml （0.5-1mg），必要时直接作心脏内注射。但在氟 烷麻醉中禁用。肾上腺素能提高心肌应激性，增 加心肌收缩力，加快心率，增进心肌排血量。
（2）阿托品 为副交感神经阻滞剂，兴奋窦房结及 房室结，使心率加快，也有一定的复跳作用。用 于治疗窦缓、室颤等。
兔耳缘静脉给药：
先拔去注射部位的 被毛，用手指弹动或轻 揉兔耳，使静脉充盈， 右手持注射器连6号针 头尽量从静脉的远端刺 入，若有回血，推注药 液无阻力，则将药液全 部注入，然后拔出针头， 用干棉球压迫针眼片刻。
狗的静脉注射：
静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉或后肢小 隐静脉注射。
（5）腹腔注射
（二）局部麻醉法
局部麻醉是用局部麻醉药阻滞周围神经末梢 或神经干、神经节、神经丛的冲动传到产生局限 性麻醉区。局部麻醉的特点是动物保持清醒状态， 对重要器官功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一 种比较安全的麻醉方法。
局麻药按化学结构可分为酯类和酰胺类，酯 类局麻药有可卡因、普鲁卡因、丁卡因和氯普鲁 卡因；酰胺类局麻药有利多卡因、布比卡因、卡 博卡因和地布卡因。
（7）阴茎静脉注射给药
对于雄性大鼠此法是较为常用的给药方法。
（8）椎管内注射给药
此法主要用于家兔的椎管麻醉或抽取脑脊液。
（9）关节腔内注射给药
此法适用于家兔给药。
（10）椎动脉注射给药
此法适用于家兔和猫。
（11）颈外静脉注射给药
此法适用于犬的静脉给药。
（12）蟾蜍淋巴囊内注射
三、呼吸道给药
呼吸道给药主要指大鼠、 小鼠而言的。粉尘、气体 或烟雾等状态的受试物需 通过呼吸道给药。
药品：乙醚、戊巴比妥钠、咖啡因 器材：麻醉箱或其它密闭容器如烧杯、棉球
实验方法：
（一）全身麻醉法
1.吸入法：吸入麻醉是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉 剂经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。本法 最适合于大、小鼠的短期操作试验的麻醉。
将大鼠、小鼠或兔放入杯或缸内，将乙醚倒在 棉花上，在室温下乙醚逐渐变成气体挥发，将缸内 动物麻醉，动物倒下后立即取出，此时动物肌肉松 弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。
四、涂布给药
大鼠、小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药， 从而定性地判定药物或毒物经皮肤的吸收 作用。豚鼠、家兔涂布给药的部位通常为 脊柱两侧的背部皮肤，给药部位需脱毛后 24h方可给药。
五、直肠给药和阴道给药
不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）
动物名称 灌胃给 药
小鼠 0.9
大鼠 5.0
实验五 实验动物麻醉方法
实验动物的麻醉有局部麻醉和全身麻醉， 其方法有吸入麻醉法、注射麻醉法、口服及灌 胃麻醉法和针刺麻醉法。麻醉方式和麻醉剂的 选用，因实验目的、动物种类、日龄和动物健 率状况不同而异。
实验目的： 通过对动物的麻醉，掌握最常用的吸
入麻醉法和注射麻醉法以及不同种类动物、 不同麻醉药品的使用方法和使用剂量。 实验材料： 动物：小鼠、大鼠、兔或狗
局麻常用的方法有表面麻醉、浸润麻醉和区 域阻断麻醉、脊髓麻醉等，使用最多的是浸润麻 醉。
表面麻醉：将穿透力强的局部麻醉药直接作用于 黏膜表面，使黏膜下神经末梢麻醉，可将药物配 成不同浓度的溶液、凝胶和糊剂，通过滴入、喷 雾、涂布和灌注等方法将其应用到眼、口腔、鼻 腔、喉外耳道或尿道等黏膜处，产生麻醉。多用 丁卡因和利多卡因。丁卡因常用于眼部手术，利 多卡因常用于猫气管插管前的咽喉表面麻醉。
使鼠腹部朝上，鼠头 略低于尾部，在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺，针 头到达皮下后，再稍向前进 针，后以45°角刺入腹腔， 保持针尖不动，回抽针栓， 如无回血、肠液和尿液后即 可注射药液。注射量为0.10.2ml/10g体重。
（6）脑内给药
大鼠、小鼠脑内给药常用于将病原体接种于动物脑内， 观察接种后的各种变化。
2.注射麻醉法：
注射麻醉是使用非挥发性全身麻醉药进行麻醉 的方法。注射麻醉方法简便，麻醉时间较长，适合 于需要长时间麻醉的动物实验。一般采用腹腔注射、 静脉注射、肌肉注射硫喷妥钠、戊巴比妥钠、氯胺 酮、水合氯醛、乌拉坦等方法进行麻醉。兔、猫、 犬、猪等大动物长采用静脉注射、肌肉注射的方法 进行麻醉，剂量为30-35mg/kg ；小鼠、大鼠、豚 鼠等小动物采用腹腔注射的方法，剂量为4050mg/kg。
二、注射给药法
（1）皮下注射给药
作皮下注射常选颈背或大腿内侧的皮肤。将 皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把 针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下， 推送药液,缓慢拔出注射针,稍微用手指压片刻针 刺部位,以防止药物外漏。注射量约为0.10.3ml/10g体重。
（2）皮内注射给药
接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将 注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇 指和食指按住皮肤使之绷紧，将针头与皮肤呈 30°角，紧贴皮肤皮层刺入皮内，针头的横断 面朝上，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并稍 刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白 色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。注射量 为0.1ml/次。
家兔 200
猫
250
皮内注射 皮下注射 肌肉注射 腹腔注 射
0.1
1.5
0.2
1
0.1
5.0
0.5
2
0.2 10
2.0 5
0.2 10
2.0 5
静脉注射
0.8 4.0 10 10
猴300 0.ຫໍສະໝຸດ 503.0 1020
犬
500 0.3 100 4.0 -
100
注意：一次给予药物的最大容量不可超过表中数值。
化学药物致死法
此法适用于多种动物。可采用吸入二 氧化碳、乙醚、三氯甲烷等致死。也可注 入过量麻醉药物导致动物死亡，给药量以 深度麻醉剂量的5-10倍，动物在10-15min 死亡。
浸润麻醉和区域阻滞麻醉：沿手术切口线逐层
注射局部麻醉药或手术区周围部位注射药物，阻滞 神经纤维而达到麻醉作用，前者称为浸润麻醉，后 者称为区域麻醉。适用于犬、猫皮肤撕裂窗缝合， 皮肤疣及皮肤肿瘤的切除、幼犬截尾术和皮肤活组 织的采集等。
脊髓麻醉也叫椎管注射麻醉或脊髓硬膜外麻醉。常
用于剖腹产手术。
（三）麻醉意外的抢救措施
颈椎脱臼法：用左手拇指和食指捏住小白鼠头的
后部，并用力下压，右手抓住鼠尾，用力向后上 方拉，即可使颈椎脱臼，瞬间死亡。
空气栓塞法
向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生 栓塞而死亡。兔一般选用耳缘静脉。兔静脉内注 入20—40ml空气即可致死。
击打法:用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。
急性失血法
注意点：注意动物咬伤学生，注意注射器伤人。
实验方法
一、经口给药
（一）口服给药 将药物添加到饲料或饮水中，让动物自由
采食的方法。
（二）灌胃给药
是指借助器械将药物直接灌入动物胃内的方法。注意操作时 不要损伤动物。一次给药量小鼠（20-24）0.5ml，大鼠 (100-199)3ml，豚鼠（250-300)4-6ml，兔(2000-3000)100150ml。
3.注射呼吸中枢兴奋药
可从静脉注射山梗菜碱、尼可刹米、戊四氮 或美解眠（与戊四氮相似），也可快速注射 高渗葡萄糖液（40%）、快速输血输液或人 工呼吸。
实验六 实验动物的处死方法
掌握小鼠、大鼠、地鼠、豚鼠、兔、 狗、猫的处死方法，在处死动物的过程中 尽量减轻动物的痛苦。
实验动物处死方法：
1.颈椎脱臼法 2.空气栓塞法 3.急性失血法 4.断头法 5.击打法 6.化学药物致死法
1.大鼠、小鼠、豚鼠灌胃给药
插入灌胃针时将喂管顺咽后壁轻轻往下推，其轻轻顺着上腭 到达咽部,靠动物的吞咽动作使喂管顺着食管滑入小鼠的胃， 插入深度约3cm。若误插入气管,动物会有挣扎。
2.兔、猫灌胃
家兔灌胃需一个竹制或木制的开口器、一杯清水和一根 用于灌胃的12号或14号导尿管。
3.犬灌胃给药
轻度麻醉动物后，固定于手术台上，行股 部手术。暴露股三角区，分离股动脉（向心端用 动脉夹夹住），并插入一根塑料管。打开动脉夹， 使血液流入容器内，一般动物3—5min内即可致 死。除股动脉外，常用颈总动脉放血。此法处死 动物较为安静，对内脏器官无损伤，使采集病理 切片标本，同时采集血液的一种较好的方法。兔 可以采用此法处死。