蛋白质含量测定方法汇总

实验七蛋白质含量测定

测定蛋白质的定量方法有很多，目前常用的有染料法，双缩脲(Biuret)法，酚试剂法(Lowry)法及紫外吸收法。

[目的要求]

1．掌握测定蛋白质的含量基本方法。

2．了解染料法、双缩脲法、Lowry法和紫外吸收法测定原理。

一、染料法

[实验原理]

在酸性溶液中染料考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合，此时考马斯亮蓝G-250颜色从红色变为蓝色，吸收高峰从460nm移至595nm。利用这个原理可以测定蛋白质含量。

该法近年在某些方面有取代经典的Lowry法趋势，因为它操作简单，反应时间短，染料-蛋白质颜色稳定，抗干扰性强。本法的缺点是：对于那些与标准蛋白氨基酸组成有较大差异的蛋白质，有一定误差，因为不同的蛋白质与染料的结合是不同的，故该法适合测定与标准蛋白质氨基酸组成相近的蛋白质。

[器材]

吸量管；试管；721型分光光度计

[试剂]

1.标准牛血清白蛋白溶液：配成0.1mg/ml的溶液。

2.待测蛋白质溶液。

3.染料溶液：称取考马斯亮蓝G-250 0.1g溶于95%的酒精50ml，再加入85%的浓磷酸100ml，用水稀释至1000ml,混匀备用。

[操作步骤]

按上表分别向各支试管内加入各种试剂，充分混匀，5min后在595nm波长处以0号管调零,测定各管吸光度值（A）。以吸光度值为纵坐标,蛋白质浓度为横坐标绘制标准曲线。

2．样品测定：

取1ml样品溶液（约含25～250微克蛋白质），加入染料溶液5ml混匀，5min后测定其595nm吸光度值，对照标准曲线求得蛋白质浓度。

二、双缩脲(Biuret)法测定蛋白质含量

[实验原理]

在碱性溶液中，双缩脲(H2N-CO-NH-CO-NH2)与二价铜离子作用形成紫红色的络合物，这一反应称双缩脲反应。凡分子中含二个或二个以上酰胺基(—CO-NH2)，或与此相似的基团[如—CH2-NH2，—CS-NH2，—C(NH)NH2]的任何化合物，无论这类基团直接相连还是通过一个碳或氮原子间接相连，均可发生上述反应。蛋白质分子含有众多肽键(—CO-NH—)，可发生双缩脲反应，且呈色强度在一定浓度范围内与肽键数量即与蛋白质含量成正比，可用比色法测定蛋白含量。测定范围为1～10mg蛋白质。干扰这一测定的物质主要有：硫酸铵、Tris缓冲液和某些氨基酸等。

此法的优点是较快速，不同的蛋白质产生颜色的深浅相近，以及干扰物质少。主要的缺点是灵敏度差。因此双缩脲法常用于快速，但并不需要十分精确的蛋白质测定。

[试剂]

1．双缩脲试剂：取CuSO4·5H20(c.P.)1.5g和酒石酸钾钠(c.P.)6.0g以少量蒸馏水溶解，再加2.5mol／L NaOH溶液300ml，KI 1.0g，然后加水至1000ml。棕色瓶中避光保存。长期放置后若有暗红色沉淀出现，即不能使用。

2．标准蛋白质溶液：用标准的结晶牛血清清蛋白（BSA）或标准酪蛋白，配制成10g/L 的标准蛋白溶液，可用BSA浓度1g/L的A280为0.66来校正其纯度。如有需要，标准蛋白质还可预先用微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量，计算出其纯度，再根据其纯度，称量配制成标准蛋白质溶液。牛血清清蛋白用H2O 或0.9%NaCl配制，酪蛋白用0.05mol/L NaOH配制。[器材]

1．试管：15×150mm 试管7只；

2．1ml，5ml移液管；

3．坐标纸；

4．721分光光度计。

[操作步骤]

取试管7支，编号，按下表操作：

混匀，37℃水浴20分钟，冷却至室温，在分光光度计波长540nm处，用空白管调零，读取各管吸光度值。1～5为标准曲线管，测得吸光度后，以吸光度为纵坐标，蛋白质浓度为横坐标绘制标准曲线。以测定管的吸光度，在标准曲线上求得蛋白质浓度。

[注意事项]

1．双缩脲试剂中，加入酒石酸钾钠，Cu2+形成稳定的络合铜离子，以防止CuSO4·5H20不稳定形成Cu(OH)2沉淀。酒石酸钾钠与CuSO4·5H20之比不低于3∶1，加入KI作为抗氧化试剂。

2．双缩脲试剂要封闭贮存，防止吸收空气中的二氧化碳。

3．本法各种蛋白质的显色程度基本相同，重复性好，几乎不受温度影响，唯一缺点是灵敏度较低。

4．黄疸血清、严重溶血对本法有明显干扰。

[思考题]

1．双缩脲法测定蛋白质的原理是什么?其它还有什么方法测定蛋白质的含量?

2．请用双缩脲法，设计一个测定蛋白质含量的定量方法(除标准曲线法外)。

三、酚试剂法测定血清蛋白质含量

（改良Lowry法）

[实验原理]

蛋白质分子中所含肽键在碱性条件下与铜络合生成复合物产生紫红色化合物（双缩脲反应），同时使肽链展开，蛋白质中半胱氨酸、络氨酸、色氨酸和组氨酸均能使钨酸、钼酸同时失去1个，2个或者3个氧原子，还原成多种还原型的混合酸，并且有特殊的蓝颜色（最大吸收峰波长为745～750nm,反应式一）其蓝色深浅与蛋白质含量在一定范围内成正比，由此可测出样品中蛋白质的含量。同时蛋白质肽键发生烯醇化反应（反应式二）能使钼离子在pH10时螯合在肽结构中，形成复合物，从而使电子转移到混合酸的显色剂上，大大增加了酚试剂对蛋白质的敏感性。

反应式一3H2OP2O5•13WO3•5MoO3•10H2O

3H2OP2O5•14WO3•4MoO3•10H2O

反应式二3H2OP2O5•13WO2•5MoO3•10H2O

3H2OP2O5•14WO2•4MoO2•10H2O

烯醇化反应后，可与Cu2+络合，络合后，易于使肽释放电子，使酚试剂还原。

[试剂器材]

1．碱性铜试剂：

甲液：称取无水碳酸钠2.0g，溶于0.1mol/L NaOH溶液100ml中。

乙液：取硫酸铜（CuSO4•5H2O ）0.5g，溶于1%酒石酸钾溶液100ml中。

临用前取甲液50ml，乙液1ml混合，即为碱性铜试剂。此液需现用现配。

2．标准蛋白质溶液（250 g/ml）：精确称取结晶牛血清清蛋白25mg，溶于0.9%NaCl 溶液中，以容量瓶定容至100ml。

3．样品：取血清0.1ml，置于50ml容量瓶中，用0.9%NaCl溶液稀释至刻度处，混匀，为待测血清样品。

4.酚试剂：取钨酸钠（Na2WO4•2H2O）100g和钼酸钠（Na2MoO4•2H2O）25g,溶于700ml蒸馏水中，再加入85%磷酸50ml和浓硫酸100ml充分混匀，置于1500ml圆底烧瓶中温和地回流10小时，冷却，取下冷凝装置，再加入硫酸锂（Li2SO4•2H2O）150g,水50ml,溴3～4滴，开口继续沸腾15分钟，驱除过量的溴，冷却后稀释至1000ml，过滤，溶液应呈黄色或金黄色（如带绿色不能使用，应继续加溴煮沸），置于棕色瓶中保存。使用前，以酚酞为指示剂，用0.1mol/LNaOH溶液滴定，求出酚试剂的摩尔浓度。然后根据此浓度，将酚试剂用蒸馏水稀释至最后酸度为1mol/L。（滴定时可将酚试剂稀释，以免颜色影响）。试剂放置过久，变成绿色时，可再加溴数滴煮15分钟，如能恢复原有的金黄色仍可使用。

5．721分光光度计；旋涡混合器；秒表；试管。

[操作步骤]