肿瘤细胞培养
人肿瘤细胞培养的原理
人肿瘤细胞培养的原理人肿瘤细胞培养是指将来自人体中的肿瘤组织或细胞分离、培养和保存的过程。
这种细胞培养技术不仅在医学研究领域具有重要意义，也被广泛地应用于药物筛选、毒性测试及疾病模型的构建等领域。
人肿瘤细胞培养的原理主要包括以下几个方面：1. 肿瘤细胞的分离和培养基的选择：首先从人体肿瘤组织中获得细胞，通常采用手术、活检或穿刺等方法取得。
然后将组织样本经过切碎、消化酶处理等步骤，使其中的细胞得以分离。
根据所选细胞类型的不同，可以选择适当的培养基来维持细胞的生长、增殖和功能维持。
常用的培养基包括DMEM （Dulbecco's Modified Eagle Medium，杜尔贝科修正鹰鳝培养基）、RPMI 1640（Roswell Park Memorial Institute 1640）、F12（Ham's F-12鹰鳝培养基）等。
2. 细胞的传代：肿瘤细胞培养的过程中，细胞会经过一系列的传代过程。
一般情况下，初始细胞数较少的细胞会在培养基中进行扩增，达到一定的细胞数量后，需要进行传代。
传代是将已经增殖的细胞在一个新的培养器中继续培养的过程。
传代过程需要注意，细胞的数目、培养基的成分和细胞培养器的选择等因素都会影响细胞的传代效果。
3. 培养条件的优化：为了使肿瘤细胞在体外更好地生长和繁殖，需要优化培养条件。
这包括培养基的配方、温度、pH值、气体组成等因素的调整。
培养基中通常会添加适当的营养物质，如氨基酸、脂类、维生素和微量元素等，以满足细胞的生长需求。
同时，细胞培养过程中需要保持适当的温度和湿度，通常将温度维持在37，湿度维持在95％以上。
还需要提供合适的气体环境，如5％CO2 /空气混合体，以维持细胞生长所需要的适宜pH值。
4. 检测细胞的纯度和活力：细胞培养过程中，需要定期检测细胞的纯度和活力。
细胞的纯度是指细胞中肿瘤细胞的比例，可以通过免疫细胞化学、流式细胞术等方法进行检测。
肿瘤干细胞培养条件与方法
肿瘤干细胞培养条件与方法
肿瘤干细胞培养条件和方法可能因不同的肿瘤类型和研究目的而有所差异。
以下是一般的肿瘤干细胞培养条件和方法的概述：
1. 肿瘤组织获取：从患者或动物模型中获取肿瘤组织样本。
2. 肿瘤细胞分离：使用适当的方法，如酶消化或机械破碎，将肿瘤组织分离成单个细胞。
3. 细胞筛选：通过特定的标志物或功能特性，如表面标志物表达、干细胞特性等，筛选出肿瘤干细胞。
4. 培养条件：肿瘤干细胞通常需要特殊的培养条件，如无血清或低血清培养基、特定的生长因子和细胞因子、合适的气体环境等。
5. 细胞培养：将筛选出的肿瘤干细胞接种到培养容器中，并提供适当的培养条件，包括温度、湿度、气体环境等。
6. 监测和鉴定：定期观察肿瘤干细胞的生长情况、形态和功能特性，通过免疫荧光染色、流式细胞术等技术鉴定其干细胞特性。
需要强调的是，肿瘤干细胞的培养和研究是一个复杂的领域，需要专业的技术和设备。
肿瘤细胞培养技术
EGF FGF NGF
5ng/ml 5ng/ml 5ng/ml
肿瘤细胞的培养
与常规细胞培养技术相同 一个细胞群体，存在多种亚群，复杂性 建株细胞较正常细胞易于培养
细胞分裂增殖的调控 （细胞周期）
多种基因的协同作用 调控因子：
基因：Cdc2、 cyclin 蛋白磷酸化 蛋白激酶的调控 胸苷激酶的调控 负调：DNA损伤与DNA修复：抑制抗性
体内：裸鼠或免疫功能抑制鼠，成瘤率、抑瘤 生长率、转移率、生存时间及死亡率
作用机理的研究：基因、蛋白、酶、标志、受体
肿瘤细胞培养的应用
肿瘤细胞的遗传特性：各种癌基因及抑 癌基因的分析、染色体定位（FISH法）
肿瘤细胞的生物学行为：细胞周期 （FACS)、信号传递
肿瘤细胞的标志与激素、受体变化（免 疫细胞化学、放射自显影、酶免疫、荧 光免疫、放射免疫、免疫印迹）
建株：生长半年以上，病理诊断、光镜及电 镜观察、生长特征、染色体分析、肿瘤标志、 致瘤及转移情况
注意：不是每一肿瘤组织都能建株
应用- 肿瘤治疗的研究
治疗药物敏感性的鉴定与筛选 肿瘤的多药耐药性的鉴定 各种新药治疗的实验研究
体外：肿瘤的生长（3HTdr掺入） 肿瘤的杀伤率（MTT、51Cr释放）
增生、吞噬碎片；第4~5天可见小堆 杂交瘤细胞生长。记录。 2. 融合后5~7天确认骨髓瘤细胞全部死亡， 毛细吸管吸出0.1ml ~ 0.15ml HAT， 换成同量HT培基。
单克隆抗体制备
七. 杂交瘤抗体检测： 培基变黄，杂交瘤细胞占孔底面积1/4、状
态好，可测上清液抗体（非分泌性比分泌性杂 交瘤长速快），及时测抗体及时克隆化，以免 目的杂交瘤丢失。
可溶性抗原：2~10g
细胞抗原：1 105
细胞培养技术在肿瘤治疗中的应用
细胞培养技术在肿瘤治疗中的应用肿瘤，是指细胞或组织在身体内异常增生并失控的状态。
肿瘤的治疗方式有许多种，包括手术、放疗、化疗、靶向治疗等。
而随着细胞培养技术的进步，肿瘤治疗的方式也在逐渐改变。
本文将深入探讨细胞培养技术在肿瘤治疗中的应用。
一、细胞培养技术介绍细胞培养技术是将细胞从原发组织或体液样本中分离出来，然后将其培养在合适的培养基中，利用培养基中的营养物质来促进细胞增殖和分化，使其不断扩增。
细胞培养技术是生物医学研究和药物开发的重要手段，可以用于细胞生物学研究、药物筛选、细胞工程等领域。
二、肿瘤细胞的培养肿瘤细胞是指在体内或外部培养条件下失去了正常细胞生长调节的肿瘤细胞。
肿瘤细胞的培养是肿瘤研究的重要手段，可以用于了解肿瘤的发生、发展机制以及治疗新方法的研究。
肿瘤细胞的培养方法与正常细胞的培养方法基本相同。
将肿瘤细胞分离出来后，将其悬浮于培养基中，利用不同的培养基、血清和生长因子等营养物质来促进细胞增殖和分化。
但是，肿瘤细胞由于失去了正常细胞的调节，故往往比正常细胞更易于分裂。
三、肿瘤细胞的应用1、肿瘤细胞的实验研究肿瘤细胞的培养在肿瘤研究中有着广泛的应用，可以用于了解肿瘤发生、发展机制以及治疗新方法的研究。
通过对肿瘤细胞的培养，可以做到以下几点：（1）了解肿瘤细胞的特性：肿瘤是由恶性细胞组成的，因此肿瘤细胞在生长和生存上与正常细胞存在巨大的差异。
通过对肿瘤细胞的培养，可以了解到肿瘤细胞的生长特点、分化特点和基因表达情况，从而开展更深入的研究。
（2）寻找抗肿瘤药物：肿瘤细胞培养可以用于筛选抗肿瘤药物。
通过对不同药物的加入，可以测试不同药物对肿瘤细胞的影响，从而筛选出更有效的药物。
2、肿瘤细胞的移植研究肿瘤细胞的移植研究是在动物体内将肿瘤细胞移植到其特定的器官或者组织中，并观察肿瘤细胞的生长、转移与侵袭的一类实验方法。
它可以用于预测肿瘤的危险性和发生情况，测试和评价药物的疗效，探究肿瘤转移的过程和机制。
肿瘤细胞培养方法
肿瘤细胞培养方法
肿瘤细胞培养成功关键在于：取材、成纤维细胞的排除、选用适宜的培养液和培养底物等几个方面。
在具体培养方法方面，肿瘤细胞培养与正常组织细胞培养并无原则差别，初代培养应用组织块和消化培养法均可。
1、取材：
人肿瘤细胞来自外科手术或活检瘤组织。
取材部位非常重要，体积较大的肿瘤组织中有退变或坏死区，取材时尽量避免用退变组织，要挑选活力较好的部位。
癌性转移淋巴结或胸腹水是好的培养材料。
取材后宜尽快进行培养，如因故不能立即培养，可贮存于4℃中，但不宜栽过24小时。
2、培养基：
肿瘤细胞对培养基的要求不如正常细胞严格，一般常用的RPMII640. DMEM s Mc-Coy等培养基等皆可用于肿瘤细胞培养。
肿瘤细胞对血清的需求比正常细胞低，正常细胞培养不加血清不能生长，肿瘤细胞在低血清培养基中也能生长。
肿瘤细胞对培养环境适应性较大,是因肿瘤细胞有自泌(Autocrine )性产生促生长物质之故。
但这并不说明肿瘤细胞完全不需要这些成分。
按不同细胞需要不同的生长因子；肿瘤细胞与正常细胞之间、肿瘤细胞与肿瘤
细胞之间对生长因子的需求都存在着差异。
但大多数肿瘤细胞培养中仍需要生长因子。
有的还需特异性生长因子〔如乳腺癌细胞等）。
总之培养肿瘤细胞仍需加血清和相关生长因子培养更易成功。
肿瘤细胞培养
第6章肿瘤细胞得培养肿瘤细胞培养就是研究癌变机理、抗癌药得敏感性、肿瘤细胞与癌分子生物学特性得重要手段。
癌细胞就是比较容易培养得细胞，当前所建立得细胞系中癌细胞就是最多得。
应用体外细胞培养技术进行肿瘤研究具有许多优点：(1)可免受机体内环境因素得影响，避免了个体差异性，便于探索各种物理、化与生物因素对肿瘤细胞生命活动得影响。
(2)既便于从细胞水平上研究肿瘤细胞得结构与功能，又便于从基因及分子水平上研究癌变得发生机理；(3)可长期传代、保存，便于观察肿瘤细胞生物学特性与遗传行为得改变。
(4)可用于快速筛选抗癌药物与研究耐药机理。
(5)研究周期短，比较经济。
但就是它也有缺点，如长期培养可使细胞生物学特性发生改变;体外实验所得得结果不能完全代表体内得情况，应与体内试验结合研究更为合理等。
一、肿瘤细胞培养得生物学特性1、形态与性状形态不规则,细胞界限淸晰，伸展较差,核膜、核仁轮廉明显，核仁多、核浆丰富、折光性强, 电镜观察细胞表而微绒毛多而细密，与肿瘤细胞具不左向运动与铺着不依赖性有关、2、生物特性癌细胞在无血淸或低血淸(2%~ 5 %)时仍能生长,营养要求不奇，因能自分泌促增殖因子, 在软琼脂培养时单个细胞能形成集落，生长方向性消失，再加上失去了接触抑制，癌细胞数量增多时可呈多层重叠生长，细胞饱与密度大，有丰富得三极有丝分裂，分裂指数髙，细胞倍增周期短。
3、永生性永生性也称不死性,在体外培养中表现为可无限制传代而不凋亡(Apoptos i s ),体外培养得肿瘤细胞系(株)都表现有这种特性。
但体外培养得永生性与体内肿瘤得恶性(包括侵润性) 就是两种性状，受不同基因调控得，因恶性肿瘤多数在体外培养时并不那么容易获得成功，生长增殖能力并不旺盛，有时只能传若「代,说明体外培养得永生性可在体外培养后获得得。
另外，体外培养得许多细胞系，如N 1H3T3、Rat -1 10T1/2等均具有永生性而无恶性。
但两者有相关性，永生性可能就是细胞恶性变得某一阶段。
肿瘤细胞培养
肿瘤细胞培养肿瘤细胞培养是一种对肿瘤细胞进行体外增殖和研究的重要方法。
它不仅有助于我们更好地理解肿瘤的发生机制，还为肿瘤的诊断和治疗提供了有力的工具。
本文将介绍肿瘤细胞培养的基本原理、方法和应用。
一、肿瘤细胞培养的基本原理肿瘤细胞培养的基本原理是利用体外培养条件模拟体内微环境，提供细胞生长所需的营养物质、培养基和合适的温度、pH值等因素，使肿瘤细胞在培养皿中快速增殖。
培养的肿瘤细胞可以源自原发肿瘤组织、转移灶或肿瘤细胞系，通过适当的培养条件，能够在体外长期维持其生物学特性。
二、肿瘤细胞培养的方法1. 细胞来源选择肿瘤细胞培养的最初步骤是选择合适的细胞来源。
可以从患者的原发肿瘤组织或转移灶中分离细胞，也可以使用已建立的肿瘤细胞系。
选择适宜的细胞来源是确保实验结果准确性的关键。
2. 细胞分离和传代细胞分离是将肿瘤组织或培养皿中的细胞分离出来，常用的方法有胰蛋白酶消化、机械切割等。
分离的细胞可以根据需要进行一定次数的传代，以延长细胞的寿命并获得足够的细胞数量。
3. 细胞培养条件细胞培养条件是保证肿瘤细胞在体外生长和繁殖的关键。
首先是选择适宜的培养基，其中包含维持细胞生长所需的营养物质、生长因子和抗生素等。
此外，还需要控制培养温度、CO2浓度和pH值等条件，模拟体内环境。
4. 细胞检测和鉴定培养的肿瘤细胞需要进行鉴定，以确保其纯度和稳定性。
常用的方法有细胞形态观察、免疫组织化学染色、流式细胞术等。
鉴定后的细胞可以用于进一步的实验研究。
三、肿瘤细胞培养的应用1. 药物筛选和耐药性研究肿瘤细胞培养可以用于药物筛选，通过观察不同药物对细胞的影响，筛选出对某种类型的肿瘤细胞有特异性杀伤作用的药物。
此外，肿瘤细胞培养还可以用于研究耐药性的机制和逆转耐药的方法。
2. 基因功能研究通过转染技术将特定基因靶向敲除或过表达到肿瘤细胞中，可以研究基因在肿瘤发生发展中的功能，并探索潜在的靶向治疗策略。
肿瘤细胞培养为基因功能研究提供了良好的实验材料。
肿瘤细胞原代培养
肿瘤细胞原代培养
肿瘤细胞原代培养是一种将体内肿瘤组织中的细胞分离出来，在培养基中进行繁殖和扩增的方法。
这种方法可以帮助研究人员更深入地了解肿瘤细胞的生物学特性，发现新的治疗方法和药物。
肿瘤细胞原代培养需要选择适当的细胞类型和培养条件。
通常采用的细胞类型有肺癌、乳腺癌、肝癌等多种肿瘤细胞。
培养条件包括培养基的成分、PH值、温度、氧气含量、营养物质等。
肿瘤细胞原代培养的优点是可以获得大量的肿瘤细胞，方便进行实验和研究。
同时，原代培养的肿瘤细胞更接近于体内的肿瘤细胞，更适合用于药物筛选和毒性测试。
然而，肿瘤细胞原代培养也存在一些缺点。
由于肿瘤细胞的不稳定性和异质性，有些肿瘤细胞很难在培养中生长和扩增。
此外，肿瘤细胞原代培养也容易受到外界因素的干扰，如细菌和真菌的污染、PH 值的变化等，从而影响实验结果的准确性。
因此，在进行肿瘤细胞原代培养时，需要注意细胞的选择和培养条件的控制，尽可能减少外界因素的干扰，以获得准确可靠的实验结果。
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肿瘤细胞系体外培养及其应用研究
肿瘤细胞系体外培养及其应用研究肿瘤是一种具有高度异质性和恶性生长特征的疾病，也是目前人类面临的重大健康挑战之一。
为了研究肿瘤的发生、发展和治疗等问题，科学家们利用体外培养技术建立了肿瘤细胞系，为肿瘤生物学和临床治疗研究提供了重要的基础数据和实验平台。
一、肿瘤细胞系的建立和特点肿瘤细胞系是从肿瘤组织中分离出来的一组细胞，经过体外培养和传代后形成的细胞群落。
肿瘤细胞系与正常细胞系相比，在形态、功能、分子特性和细胞变异性等方面存在较大差异，因此具有以下特点：1. 增殖能力强：肿瘤细胞系能够在体外无限制地生长和扩增，而正常细胞系则会出现增殖停滞或老化。
2. 基因型和表型多样性：不同的肿瘤细胞系具有不同的基因型和表型，反映了肿瘤异质性。
3. 药物敏感性差异性：肿瘤细胞系对不同的药物敏感性差异很大，可以用于筛选和评价抗癌药物。
4. 稳定性差：肿瘤细胞系经常发生变异和突变，容易失去原有的生物学特性。
二、肿瘤细胞系的体外培养技术肿瘤细胞系的体外培养技术是利用细胞的自我复制和维持稳定增殖的能力，在体外提供适当的培养环境，使细胞能够继续生长和繁殖。
肿瘤细胞系的体外培养技术主要包括以下几个方面：1. 细胞分离和培养：将肿瘤组织进行机械或酶解，获得单个细胞。
将分离的细胞种植在含有适当营养和生长因子的培养基中，形成基础的肿瘤细胞系。
2. 细胞传代和稳定化：将肿瘤细胞系不断进行传代，使其稳定生长和扩增。
同时采用低温冻存或细胞冻干等技术保存和维护细胞系的稳定。
3. 细胞凋亡和生物型分化：通过刺激肿瘤细胞系进行凋亡和生物型分化，来研究肿瘤生长和细胞变异性等问题。
三、肿瘤细胞系的应用研究肿瘤细胞系作为肿瘤生物学和临床治疗研究的工具之一，在以下方面发挥了重要作用：1. 肿瘤基础生物学研究：通过建立不同肿瘤细胞系，研究肿瘤诱导机制、生长信号通路、转录和翻译调控等问题，为肿瘤分子生物学和肿瘤基因组学研究提供了重要的基础数据。
2. 肿瘤药物筛选和评价：利用肿瘤细胞系对各种化合物、天然产物和免疫抑制剂等药物进行筛选和评价，并综合考虑体外和体内试验结果，为肿瘤临床治疗提供了重要的前期研究数据。
3d肿瘤细胞培养步骤
3d肿瘤细胞培养步骤三维细胞培养是一种模拟体内环境的技术，用于研究肿瘤细胞的生长、侵袭性和治疗反应等特性。
与传统的二维细胞培养相比，三维细胞培养可以更好地模拟组织或肿瘤内部的细胞间相互作用和信号传递，更准确地反映细胞在体内的生物学行为。
下面是三维肿瘤细胞培养的一般步骤：1.基质选择：选择一种适合于三维细胞培养的基质。
常用的基质包括基质凝胶（例如明胶、蛋白质基质或聚合物凝胶）和无基质的培养系统（例如自我聚合细胞培养系统）。
2.基质预处理：将所选基质进行预处理，例如用消毒剂消毒，并将其放入培养器中。
3.细胞处理：将细胞处理成单细胞悬浮液。
可以通过胰蛋白酶或酶解液等方法将细胞从培养皿中解离，然后通过离心或筛网将细胞沉淀或过滤收集。
4.细胞计数：使用细胞计数器或显微镜对收集到的细胞进行计数，以确定接种细胞的浓度。
5.细胞接种：将细胞悬浮液均匀地接种到预处理好的基质上。
可以使用不同的方法进行接种，如滴定法、注射法或转接法。
6.细胞培养：将接种好的细胞培养器放置在细胞培养箱或培养箱中，控制好适宜的培养条件，如温度、湿度和二氧化碳浓度等。
7.培养液更换：根据需要和实验要求，定期更换培养液，以保持培养环境的稳定。
8.细胞培养时间：根据实验的目的和要求，将细胞在三维培养体中培养适当的时间。
培养时间的长短取决于所研究肿瘤细胞的特性和所需的实验结果。
9.细胞观察和实验操作：根据实验的需要，进行细胞观察和相关实验操作。
可以使用显微镜观察细胞形态、细胞聚集和细胞-基质相互作用等。
也可以进行细胞增殖、侵袭性实验、药物筛选以及信号通路研究等。
10.结果分析和讨论：根据实验结果，进行结果分析和讨论。
可以通过图像分析、荧光检测、PCR分析等方法，对实验结果进行定量或定性的分析。
总之，三维肿瘤细胞培养是一种模拟体内环境的培养技术，可以更好地模拟细胞在体内的生物学行为。
通过合理选择基质、适当的细胞处理和培养条件，结合相关实验操作和结果分析，可以对肿瘤细胞的特性、行为和治疗反应等进行深入研究。
pbmc肿瘤细胞共培养实验方法
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肿瘤细胞培养
1、原代培养
这种方法采用前述的组织消化分散法，将妨碍细胞生长的细胞间质包括基 质、纤维等去除，使细胞分散，形成悬液，易于从外界吸收养分和排出代 谢产物，可以很快得到大量活细胞，细胞也可能在短时间内生长成片。适 用于培养大量组织，原代细胞产量高；但步骤繁琐、易污染，一些消化酶 价格昂贵，实验成本高。 步骤：1、按消化分离法收获细胞。 2、待组织已分散成细胞团或单个细胞，则终止消化，过筛200目 过掉组织块，大块组织继续消化。 3、收集过滤消化液离心1000rpm/min，5min，去上清加含血清 培养液，轻轻吹打形成细胞悬液，计数后接种到培养瓶，臵 CO2培养箱培养。
细胞生长曲线
肿 瘤 个 人 精 准 医 疗
三、体外培养肿瘤细胞的生物学检测
2、检查项目
软琼脂培养：软琼脂克隆形成实验主要用于非贴壁生长的细胞，某些恶性肿瘤 细胞，不仅在贴壁状态下能增殖，在悬浮状态下能增殖，其在软 琼脂中形成克隆的能力反映了恶性程度，这种方法可用于细胞分 化的基础研究和临床肿瘤治疗的疗效检验等方面。 步骤：1、制备1.2%和0.7%浓度的琼脂糖溶液，灭菌备用。 2、制备20%FBS+2x1640+2xPS营养液。 3、铺下胶：1:1混合1.2%与营养液，混匀，凝固，备用。 4、铺上胶：1:1混合0.7%与营养液，加入细胞悬液， 混匀铺到下胶上，凝固后培养箱培养，10-14d。
四、肿瘤细胞的冻存、复苏与运输
3、运输 在购买和交换培养细胞时，需根据保存方式和运输时间，采用适当的运输方法。 1、充液法运输：选生长良好的细胞，待接近或刚刚连接成片后，去掉培养 液，加入新鲜培养液至培养瓶颈部(保留少量空气)，拧紧 瓶盖，然后用封口膜将瓶口密封。到达目的地后，弃去多 余培养液，臵37℃培养，次日传代。 2、冰瓶运输：在较短时间内运输细胞，可将未冷冻的细胞悬液放入装有碎 冰的冰瓶内，以保持细胞活力。 3、液氮罐运输：细胞冻存后，将有细胞的冻存管放人液氮罐内进行运输。 在液氮罐搬运过程中，要防止液氮外漏。
肿瘤细胞原代培养
肿瘤细胞原代培养肿瘤细胞原代培养是一项重要的实验技术，用于研究肿瘤细胞的生物学特性以及开展抗肿瘤药物的筛选和评估。
本文将介绍肿瘤细胞原代培养的基本原理、操作步骤以及应用前景。
一、基本原理肿瘤细胞原代培养是将从患者体内获得的肿瘤组织分离、培养和传代的过程。
首先，通过手术或穿刺等方式采集到肿瘤组织，将组织切割成小块或将细胞分散成悬浮液。
然后，将组织块或细胞悬浮液接种到含有适当培养基和培养液的培养皿中。
在适宜的培养条件下，肿瘤细胞会依次附着、扩增和形成克隆，形成原代培养物。
原代培养物可经过传代，得到连续的肿瘤细胞株。
二、操作步骤1. 组织采集：使用无菌器械采集新鲜的肿瘤组织，尽量避免污染和损伤。
2. 组织处理：将组织切割成小块或细胞分散成悬浮液，使用胰酶等消化酶加速细胞的分散。
3. 培养基配制：根据具体需要，配制适当的培养基，包括营养物质、生长因子和抗生素等。
4. 细胞接种：将组织块或细胞悬浮液接种到培养皿中，控制接种密度和培养皿的表面涂层，有利于细胞的附着和生长。
5. 培养条件：保持培养皿内的适宜温度、湿度和气体环境，提供充足的营养物质和生长因子，促进细胞的增殖和分化。
6. 细胞观察：定期观察细胞的形态、增殖情况和污染情况，记录生长曲线和细胞倍增时间。
7. 传代培养：当细胞达到一定密度时，用胰酶等消化酶将细胞从培养皿中解离，重新接种到新的培养皿中，继续培养。
三、应用前景肿瘤细胞原代培养是肿瘤研究和药物筛选的重要工具。
通过原代培养，可以获取患者个体的肿瘤细胞，研究其生物学特性、毒性反应、侵袭和转移能力等。
同时，原代培养还可用于筛选和评估抗肿瘤药物的疗效和毒副作用，为临床治疗提供参考。
肿瘤细胞原代培养还可应用于肿瘤干细胞的研究。
肿瘤干细胞具有自我更新和多向分化的能力，是肿瘤发生、发展和耐药性的关键因素。
通过原代培养，可以分离和培养肿瘤干细胞，研究其特性和调控机制，为肿瘤干细胞治疗提供理论和实验基础。
肿瘤细胞原代培养是一项重要的实验技术，具有广泛的研究和应用价值。
肿瘤浸润细胞培养方法
肿瘤浸润细胞培养方法【导语】肿瘤浸润细胞培养是癌症研究中的一个重要环节，对于探索肿瘤的发生、发展和治疗具有重要意义。
本文将详细介绍肿瘤浸润细胞的培养方法，以期为相关领域的研究提供参考。
【正文】一、肿瘤浸润细胞的概述肿瘤浸润细胞是指在肿瘤组织中存在的具有免疫活性的细胞，主要包括T 细胞、B细胞、巨噬细胞等。
这些细胞在肿瘤微环境中发挥重要作用，可影响肿瘤的生长、侵袭和转移。
对肿瘤浸润细胞进行体外培养，有助于深入研究其生物学特性及在肿瘤发生发展中的作用。
二、肿瘤浸润细胞的培养方法1.样本采集从新鲜的肿瘤组织中分离肿瘤浸润细胞。
首先，将肿瘤组织剪切成小块，然后用PBS（磷酸盐缓冲液）清洗，去除血细胞和杂质。
2.细胞分离将清洗后的肿瘤组织放入含有胶原酶和DNA酶的消化液中，在37℃的条件下消化1-2小时。
消化结束后，通过过滤和离心等方法分离细胞。
3.细胞培养（1）细胞计数：使用细胞计数板对分离得到的细胞进行计数，并调整细胞浓度为合适的范围。
（2）细胞接种：将细胞接种在含有10%胎牛血清的RPMI-1640或DMEM培养基中。
（3）培养条件：在37℃、5% CO2的条件下培养细胞。
4.细胞纯化为了提高肿瘤浸润细胞的纯度，可采用免疫磁珠分选法对细胞进行纯化。
具体方法如下：（1）标记：使用特异性抗体标记肿瘤浸润细胞。
（2）磁珠分选：将标记好的细胞与磁珠混合，在磁场中进行分选。
（3）收集：收集纯化后的细胞，用于后续实验。
5.细胞传代细胞生长至80%-90%汇合时，进行传代。
传代时，可用胰蛋白酶或EDTA 消化细胞，然后按照1:3-1:5的比例进行传代。
三、注意事项1.在细胞培养过程中，要密切观察细胞生长状态，定期更换新鲜培养基。
2.避免细胞过度生长，以免影响细胞活力。
3.严格无菌操作，防止细胞污染。
4.根据实验需求，选择合适的细胞纯化方法。
肿瘤细胞培养
肿瘤细胞培养肿瘤细胞培养是医学研究中重要的实验手段之一，它可以提供大量的肿瘤细胞用于进一步的研究。
本文将介绍肿瘤细胞培养的基本步骤和技术要点。
一、肿瘤细胞培养的基本步骤1. 细胞准备：选择合适的肿瘤细胞株，并从冷冻保存状态中复苏。
确保培养皿和培养试剂的无菌，准备培养基以提供适宜的细胞生长环境。
2. 细胞接种：将肿瘤细胞接种到培养皿中，控制接种密度和接种体积，使细胞能够充分附着并快速扩增。
3. 细胞培养：将接种成功的细胞放置于恒温培养箱内，提供适宜的培养条件（如温度、湿度和二氧化碳浓度等），定期更换培养基以维持细胞的正常生长。
4. 细胞观察：定期观察和记录细胞的生长情况，包括细胞数目增长趋势、细胞形态和细胞的附着情况等。
5. 细胞传代：当细胞密度达到一定程度时，需进行细胞传代以避免细胞因长时间培养而导致的突变或凋亡。
传代时需要使用胰蛋白酶等相关试剂进行细胞的离析和分散。
二、肿瘤细胞培养的技术要点1. 培养基选择：不同类型的肿瘤细胞对培养基的要求有所不同，因此应选择适宜的培养基。
一般情况下，培养基中应包含足够的营养物质和生长因子，同时控制培养基的pH值和温度。
2. 细胞密度控制：细胞密度对于细胞生长和代谢活性具有重要影响。
过高的密度会导致细胞周围缺氧和养分不足，过低的密度则无法维持细胞生长。
准确控制细胞密度可以提高细胞培养的成功率和生长速度。
3. 细胞消毒：细胞培养过程中，细胞容易受到外界的污染。
因此，在进行细胞接种和传代时，需要严格遵守消毒操作规范，使用无菌器材和试剂，并且定期对培养箱和操作台进行消毒。
4. 细胞分化和标志物检测：某些肿瘤细胞在培养过程中可能会发生分化现象，失去肿瘤特性。
因此，需要进行细胞的标志物检测，以确保细胞仍保持原始的肿瘤细胞特征。
5. 质量控制和质量保证：肿瘤细胞培养需要严格遵循实验室的规范操作流程，并进行质量控制和质量保证。
细胞培养过程中应定期检测培养皿和培养基的无菌性，避免外界因素对实验结果的干扰。
肿瘤细胞和t细胞共培养步骤
肿瘤细胞和t细胞共培养步骤肿瘤细胞和T细胞的共培养是一项关键的实验技术，用于研究肿瘤免疫治疗的效果。
通过这种共培养，可以观察到肿瘤细胞与T细胞之间的相互作用，评估T细胞对肿瘤细胞的杀伤能力，从而为研发新的肿瘤免疫治疗策略提供重要的依据。
我们需要准备好培养肿瘤细胞和T细胞所需的培养基和培养器具。
培养基是一种含有营养物质的液体，可以提供肿瘤细胞和T细胞所需的营养和生长条件。
培养器具包括培养皿、细胞培养瓶等，用于容纳细胞和培养基。
接下来，我们需要将肿瘤细胞和T细胞分别收集并进行处理。
肿瘤细胞可以通过活检或培养细胞株的方式获取，而T细胞则可以从血液中分离得到。
为确保实验的准确性，我们需要对收集到的肿瘤细胞和T细胞进行鉴定和筛选，以确保其纯度和活性。
在共培养之前，我们需要将肿瘤细胞和T细胞分别进行预处理。
对于肿瘤细胞，可以通过添加适当的培养基和药物来促进其生长和增殖；而对于T细胞，则需要进行活化处理，以增强其杀伤肿瘤细胞的能力。
当肿瘤细胞和T细胞准备就绪后，我们可以将它们一起置于培养皿或细胞培养瓶中，加入适量的培养基，使其充分接触和相互作用。
在共培养的过程中，我们可以通过显微镜观察细胞的形态变化、增殖情况和相互作用方式，以及T细胞对肿瘤细胞的杀伤效果。
共培养的时间可以根据实验的需要灵活调整，一般可以持续数小时到数天。
在共培养结束后，我们可以通过染色和显微镜观察，评估T细胞对肿瘤细胞的杀伤效果。
此外，还可以使用流式细胞仪等技术，对细胞进行更为精确的分析和鉴定。
肿瘤细胞和T细胞的共培养技术为研究肿瘤免疫治疗提供了有力的工具。
通过观察和评估T细胞对肿瘤细胞的杀伤能力，我们可以更好地了解肿瘤免疫逃逸的机制，寻找新的治疗靶点，并优化肿瘤免疫治疗的策略。
这项实验技术的应用前景广阔，有望为肿瘤免疫治疗的发展做出重要贡献。
肿瘤细胞的培养
20
1、取材
人肿瘤细胞来自外科手术或活检瘤组织。取材 部位非常重要，体积较大的肿瘤组织中有退变 或坏死区，取材时尽量避免，要挑选活力较好 的部位。 癌性转移淋巴结或胸腹水是很好的培养材料。
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取材后尽快将癌组织进行培养，一般4小时内 细胞存活最好。标本在4℃存放，不宜超过24 小时。
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人癌细胞建系必须要有完整的记录，包括组织 来源、病人姓名、住院号、年龄、性别、临床 诊断、病理诊断（应明确分类分期）、术前放 化疗情况，为细胞建系的重要材料。 为了鉴定建立的细胞系来源和生物学特性，最 好留有病人正常组织和血标本。
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② 肿瘤细胞的自分泌也会因分散培养而被稀释，达不到 肿瘤生长的需求，降低肿瘤细胞的生长增殖力。 ③ 并非所有肿瘤细胞都有强的生长活力和长的生命周 期，只有干细胞才有强的增殖生长能力，但这些细胞 数量很少。 ④ 离体培养肿瘤细胞可能需求与体内相似的特殊生存条 件。
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（一）癌细胞原代培养
癌细胞建系的方法和程序相似于正常细胞，包括 标本收集和处理、原代培养、传代、换液、冻 存、复苏等过程。 培养成功关键在于：取材、成纤维细胞的排除、 选用适宜的培养液和培养底物等几个方面。
34
⑤ 其它方法
聚丙烯酰胺抑制成纤维细胞生长 密度梯度离心等
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（2）选择性培养基
选择性培养基是针对特殊细胞生长的营养要求 设计的。 在癌细胞建系中，选择性培养基的应用是提高 癌细胞体外存活、抑制成纤维细胞生长的关键 技术改进。
HITES选择培养基是一种改良RPMI-1640培养基，含有氢化可
的松、胰岛素、转铁蛋白、雌激素、硒等成分。HITES培养基适 合用于人小细胞肺癌建系。
具体做法是：
1）收集培养的肿瘤细胞，用无血清培养液洗一遍；2）计数 后将0.2ml含2×106～2×107个细胞的细胞悬液注射到动物皮下。 约一个月左右（最短在3天后），可见注射局部有肿瘤出现，甚至 有转移瘤形成。经病理组织学检查可以确定肿瘤是否由接种的细 胞产生。也可接种到腹腔或通过鼠尾静脉注射。
肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤
肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤肿瘤细胞原代培养实验具体方法及步骤肿瘤细胞的原代培养与正常细胞的原代培养的条件基本相似。
一般常用原代细胞的基础培养基，10%血清浓度即可，在原代培养时需加入原代细胞培养的特制添加物，或原患者血清（1%-2%）以利细胞生长。
用细胞生长因子如胰岛素、氢化可的松、雌激素等等。
也可以考虑动物媒介培养。
根据细胞种类不同选用不同的促细胞生长因子。
具体步骤一、将取得的瘤组织去除脂肪、结缔组织及坏死部分。
二、在平皿中用Hanks液洗3次，剪碎组织，切成1-2 mm3小块。
三、接种于培养瓶（或皿）中，37℃、5%CO2或加盖并塞在普通恒温箱中培养。
注意一、注意污染1、严格进行动物皮肤消毒，使用三套器械取材。
新生动物皮肤先用2%碘酒液消毒，成年鼠先用3%——5%碘酒液消毒后用75%酒精消毒。
2、严格进行无菌操作，防止细菌、霉菌、支原体污染，避免化学物质污染。
自取材开始，保持所有组织细胞处于无菌条件。
细胞计数可在有菌环境中进行。
3、吸取液体前，瓶口和吸管进行火焰消毒；吸取液体时，避免瓶口和吸管碰撞。
4、离心管入台前，管口、管壁应消毒。
5、实验者离开超净台时，要随时用肘部关闭工作窗。
6、使用过的器械用酒精棉球擦去血污后，移入另一个器皿中继续消毒，在浸泡器械时剪刀口要叉开放，镊子弯头要向下放，并加盖消毒。
凡在超净台外操作的步骤，各器皿需用盖子或橡皮塞，以防止细菌落入。
二、器材使用时既要注意用火焰消毒，又要防止烫伤、烫死细胞。
经火焰消毒后的吸管一定要用Hanks液冷却。
总结经验一、对肿瘤细胞系或细胞株的评价已建成的各种肿瘤细胞系或细胞株，无疑都是可用的实验对象。
近年我国已建成的肿瘤细胞系已非常多，并获得越来越广泛的应用。
但根据研究者的经验，在使用这些细胞系时，应持特别审慎态度，主要是应考虑到这些细胞在长期传代中有否发生遗传性改变的可能。
众所周知，长期传代细胞系染色体核型常是不稳定的。
另外也可能发生如基因突变、基因易位或缺失等变化。
肿瘤细胞的实验报告
一、实验目的1. 了解肿瘤细胞培养的基本原理和方法。
2. 观察肿瘤细胞的生长特点、形态变化及细胞周期。
3. 掌握显微镜观察技术，提高对肿瘤细胞的识别能力。
二、实验原理肿瘤细胞是指在体内发生异常增殖的细胞，其生长速度较快，细胞周期缩短。
在体外培养条件下，肿瘤细胞能够保持其生物学特性，为研究其生物学行为提供有力手段。
本实验通过培养肿瘤细胞，观察其生长特点、形态变化及细胞周期，为进一步研究肿瘤的发生、发展及治疗提供实验依据。
三、实验材料1. 肿瘤细胞株：人肝癌细胞株（HepG2）、人乳腺癌细胞株（MCF-7）。
2. RPMI-1640培养基：含10%胎牛血清、1%双抗（青霉素、链霉素）。
3. CO2培养箱。
4. 显微镜及配套设备。
5. 计时器。
四、实验方法1. 肿瘤细胞复苏：将冷冻保存的肿瘤细胞取出，放入37℃水浴中解冻，然后接种于培养瓶中，置于CO2培养箱中培养。
2. 细胞传代：待细胞长满培养瓶底时，用胰酶消化细胞，按照1:2的比例传代。
3. 观察细胞生长：每天观察细胞生长情况，记录细胞生长状态。
4. 显微镜观察：取生长良好的细胞，用显微镜观察细胞形态、大小、排列等。
5. 细胞周期检测：采用流式细胞术检测细胞周期。
五、实验结果1. 细胞生长特点：肿瘤细胞在体外培养过程中，生长速度快，细胞周期缩短，细胞密度较高。
2. 细胞形态变化：肿瘤细胞呈圆形、多角形或不规则形，细胞核较大，核仁明显，细胞质丰富。
3. 显微镜观察：通过显微镜观察，发现肿瘤细胞呈典型的异型性，细胞排列紧密，形态多样。
4. 细胞周期检测：流式细胞术检测结果显示，肿瘤细胞处于G1期、S期、G2期和M期，细胞周期缩短。
六、实验讨论1. 肿瘤细胞在体外培养过程中，能够保持其生物学特性，为研究肿瘤的发生、发展及治疗提供有力手段。
2. 本实验通过观察肿瘤细胞的生长特点、形态变化及细胞周期，为后续研究提供了实验依据。
3. 肿瘤细胞的异型性是肿瘤诊断和鉴别诊断的重要依据，本实验通过显微镜观察，进一步证实了肿瘤细胞的异型性。
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恶性转化细胞系和癌细胞系一样具有永生性和
恶性表型，对此两种来源的细胞系鉴定也是相
似的，为研究恶性肿瘤提供了有用模型。
一般转化细胞系只具有无限生长能力，不具有
恶性细胞的表型，此种细胞系可相似于正常细
胞的模型而被应用。
20
癌细胞系的建立
癌细胞培养的最主要的问题是从体内到体外环
境的改变。
22
癌细胞系的建立
② 肿瘤细胞的自分泌也会因分散培养而被稀释，达不到
肿瘤生长的需求，降低肿瘤细胞的生长增殖力。
③ 并非所有肿瘤细胞都有强的生长活力和长的生命周期， 只有干细胞才有强的增殖生长能力，但这些细胞数量 很少。 ④ 离体培养肿瘤细胞可能需求与体内相似的特殊生存条
件。
23
癌细胞系的建立
（一）癌细胞原代培养
这些试验只有采用细胞培养法才能在短期内观察到细胞
的变化，动物试验很难判定药物的直接作用，因此细胞 培养及癌的细胞诱导分化的细胞工程是进行抗癌研究、 癌细胞的恶性逆转研究理想的实验诱导模型。
7
5、癌细胞的杀伤效应研究
抗癌的间接效应，往往是药物作用于机体免疫系统促使
免疫细胞发生对肿瘤细胞的特异性和非特异性的免疫应 答，如释放免疫调节因子（如IFN、IL-2等）或细胞毒 因子（LT、TNFα/β），以及激活杀伤肿瘤的淋巴细胞 发挥杀肿瘤效应。
肿瘤细胞培养是研究癌变机理、抗癌药检测、
肿瘤细胞和癌分子生物学极其重要的手段。肿
瘤细胞培养对阐明和解决癌症将起着不可估量
的作用。
3
1、肿瘤病因和发病机制的研究
体外试验证明了物理因素（如射线）、化学因素（化学
致癌剂）及生物因素（致癌病毒、EB病毒、SV40和多 发瘤病毒等），均能使正常细胞发生转化，致使正常细
胞永生化或恶性化，为癌的诱发因素和环境提供了实验
依据。
环境因素或药物的致畸、致突变研究也可为该环境条件
或药物的致癌性提供实验依据，因此细胞培养是癌的发 生和发展研究的理想实验研究手段。
4
2、抗癌药物筛选方面的研究
不同的癌细胞对不同的化疗药物具有不同的敏感性。 采用癌细胞体外培养方法，既可研究某种药物对不同癌
核型、呈异倍体或多倍体等。
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体外培养肿瘤细胞的三个显著
基本特征：
永生性
不受控增殖性 致瘤性
18
三、肿瘤细胞系的建立
恶性肿瘤细胞培养建立细胞系，包括从人或动
物恶性肿瘤取材建立癌细胞系和正常细胞在体
外经理化、生物因素诱发的转化细胞系。
转化细胞系可以是恶性转化细胞和一般转化细
胞两种。
物上生长。
低血清要求，不依赖生长因子，因其可自分泌产
生促增殖因子。
癌细胞或培养中发生恶性转化后的单个细胞培养
时，形成集落（克隆）的能力比正常细胞强。
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3、永生性
永生性也称不死性。在体外培养中表现为细胞
可无限传代而不凋亡。体外培养中的肿瘤细胞 系（株）都表现有这种性状。
永生性和恶性（包括浸润性）是两种性状，受
细胞的敏感性，为药物抗癌敏感谱提供依据；
同时又可采用某种癌细胞开展对不同药物，不同剂量的
敏感性研究，以筛选出对该肿瘤最敏感的化疗药物和使 用剂量，供人体治疗时参考。
5
3、癌基因和抑癌基因方面的研究
实验证明癌的发生和发展与癌基因（原癌基因）和抑癌
基因两种基因的表达调控密切相关。
体外细胞培养既利于测定癌基因及癌基因表达产物，又
用Hanks洗涤处理一次后，更换新培养液，继续培养，
可获纯净肿瘤细胞。如成纤维细胞未被除净，可再次 重复。
38
癌细胞系的建立
（5）其它方法
聚丙烯酰胺抑制成纤维细胞生长 密度梯度离心等
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癌细胞系的建立
5、选择性培养基
选择性培养基是针对特殊细胞生长的营养要求
设计的。
在癌细胞建系中，选择性培养基的应用是提高
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癌细胞系的建立
常用酶：
胰蛋白酶是分离细胞最常应用的酶，但它对结缔
组织的消化能力有限，适合含结缔组织较少的肿
瘤，并且对细胞膜有损害作用，影响细胞存活。
胶原蛋白酶仅对细胞间质有消化作用而对上皮细
胞影响不大，适于分离纤维性组织、上皮及癌组
织。
29
癌细胞系的建立
胶原酶的消化方法：
0.5mg／ml胶原酶处理，可在显微镜下观 察，纤维细胞逐渐被除去为止。用Hanks液或 培养基洗涤，除去附着细胞的酶，再进行接种
和培养。
30
癌细胞系的建立
注意：
当肿瘤组织标本很小，不能用酶消化获取癌细
胞时，可以用组织块法进行原代培养。
癌组织中不可避免有已耗竭和坏死的细胞，在
酶消化前，应尽可能清除，以免接种后很快溶
解破坏，释放出影响癌细胞生长的有害物。
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癌细胞系的建立
3、接种细胞
消化后制备的癌细胞，培养时应有足够的细胞
核型、对激素的反应、对抗癌药物的敏感性均
不同，这种特性被称为肿瘤细胞的异质性 （heterogeneity）。
15
同一肿瘤内细胞的活力有差别，有的细胞衰老
退化，有的处于周期阻滞状态，那些呈活跃增 殖状态的细胞称肿瘤干细胞。只有肿瘤干细胞 才是支持肿瘤生长的成分。
16
7、细胞遗传
大多数肿瘤细胞有遗传学改变，如失去二倍体
密度，通常接种细胞浓度为5×105／ml，37℃ 培养。
32
癌细胞系的建立
4、成纤维细胞过度生长的去除
常采用机械刮除法、反复贴壁法、消化排除法、
胶原酶消化法和密度梯度离心法等。
用选择培养基、饲养层等方法可以克服其过度
生长。
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癌细胞系的建立
（1）机械刮除法
将玻璃吸管前端在火焰上烧弯曲，用作除去成纤 维细胞的工具。可在显微镜下直接刮除生长的成纤维 细胞，也可事先在显微镜下对有成纤维细胞生长的单 层培养瓶上做出标记，然后按标记刮除。刮除后，用 培养液洗1~2次后，加入新培养液培养。如需要可多次 刮除。
可以测定抑癌基因的表达水平。癌细胞的体外培养是定 量研究癌基因和抑癌基因表达调控的理想工具。
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4、癌细胞的诱导分化和逆转方面的研究
血癌往往是由低分化的幼稚细胞的单克隆恶性增生所引
起，若将血癌的体细胞通过体外诱导分化，促使向终未 细胞分化成为功能性血液细胞，这就可使血癌患者获得
完全缓解或达到治愈的目的。
肿瘤细胞的培养
安徽医科大学微生物学教研室
1
内容纲要
肿瘤细胞体外培养的重要性和应用 体外培养肿瘤细胞的特征
肿瘤细胞系的建立
癌细胞系的建立
转化细胞系的建立
癌细胞系和转化细胞系的鉴定
2
一、肿瘤细胞体外培养的重要性和应用
肿瘤细胞在组织培养中占有核心的位置，当前
建立的细胞系中癌细胞系是最多的。
化疗情况，为细胞建系的重要材料。
为了鉴定建立的细胞系来源和生物学特性，最
好留有病人正常组织和血标本。
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癌细胞系的建立
2、分离
单纯的机械方法分离如吹打和过滤对癌细胞损
伤小。有些肿瘤如人卵巢癌、某些神经胶质瘤
可采用。
癌组织多为较坚实的实体，肿瘤细胞包埋在大
量的纤维基质中，难以进行机械分离。因此酶 消化法是分散癌细胞的好方法。
培养。
用此法处理后，成纤维细胞比肿瘤细胞易先脱落。经过 几次反复处理，可能把成纤维细胞除净。
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癌细胞系的建立
（4）胶原酶消化法
本法是利用成纤维细胞对胶原酶较为敏感的特点，
通过消化进行选择。
可用0.5mg/ml的胶原酶消化处理，边消化边在倒置显 微镜下观察，当发现成纤维细胞被除掉后，即终止消 化；
这种效应均可通过体外杀肿瘤细胞试验来证实，取同体
淋巴细胞经体外培养后，并加入IL-2/IFN-γ等，能明显 增强NK、TCL、LAK和TIL杀肿瘤活性。经扩增达一定 数量后再回输给病人，其疗效明显。
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二、体外培养肿瘤细胞的特征
肿瘤细胞与体内正常细胞相比，不论在体 内或在体外，在形态、生长增殖、遗传性状等 方面都有显著的不同。
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5、浸润性
浸润性是肿瘤细胞的扩张性增殖行为，培养癌
细胞仍持有这种性状。
在与正常组织混合培养时，能浸润入其它组织
细胞中，并有穿透人工隔膜生长的能力。
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6、异质性
通过肿瘤细胞培养及克隆分析发现，同一肿瘤
是由具有不同生物学特征的细胞亚群构成的。
这些细胞亚群的浸润性、生长率、转移能力、
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癌细胞系的建立
（3）消化排除法
先是用0.5%胰蛋白酶和0.02％EDTA（1：1）混合液漂洗 培养细胞一次，然后再换成新的混合液继续消化，并在 倒置显微镜下观察和不时摇动培养瓶，到半数细胞脱落 下来后，便立即停止消化；
把消化液吸入离心管中，离心去上清，吸入另瓶中，加 培养液置温箱中培养；向原瓶内也补加新的培养液继续
不同基因调控。从一些具有永生性而无恶性的
细胞系，如NIH3T3、Rat-1、10T1/2等细胞可以
证明。
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4、致瘤性
细胞接种同种动物或裸鼠后的致瘤性是客观反
映细胞恶性程度的指标。
具体做法是：
1）收集培养的肿瘤细胞，用无血清培养液洗一遍；2）计数 后将0.2ml含2×106～2×107个细胞的细胞悬液注射到动物皮下。 约一个月左右（最短在3天后），可见注射局部有肿瘤出现，甚至 有转移瘤形成。经病理组织学检查可以确定肿瘤是否由接种的细 胞产生。也可接种到腹腔或通过鼠尾静脉注射。